entendendo o metabolismo de amino ácidos em cereais · mutantes de endosperma de milho opaco...

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Entendendo Entendendo o o Metabolismo Metabolismo de de Amino Amino á á cidos cidos em em Cereais Cereais Salete A Salete A Gaziola Gaziola Bi Bi ó ó loga loga Laboratório de Genética Bioquímica de Plantas, Esalq/USP Foto: Prof. Dr. Ricardo A Azevedo Departamento de Genética Avenida Pádua Dias, 11 - Caixa Postal 83, CEP: 13400-970 - Piracicaba - São Paulo - Brasil Telefone: (0xx19) 3429-4250 / 4125 / 4126 - Fax: (0xx19) 3433-6706 - http://www.genetica.esalq.usp.br/semina.php

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EntendendoEntendendo o o MetabolismoMetabolismo

de de AminoAminoáácidoscidos emem CereaisCereais

Salete A Salete A GaziolaGaziola

BiBióólogaloga

Laboratório de Genética Bioquímica

de Plantas, Esalq/USPFoto: Prof. Dr. Ricardo A Azevedo

Departamento de Genética

Avenida Pádua Dias, 11 - Caixa Postal 83, CEP: 13400-970 - Piracicaba - São Paulo - BrasilTelefone: (0xx19) 3429-4250 / 4125 / 4126 - Fax: (0xx19) 3433-6706 - http://www.genetica.esalq.usp.br/semina.php

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Por que estudar o metabolismo de Por que estudar o metabolismo de

aminoaminoáácidos em cereais??cidos em cereais??

1. Os aminoácidos essenciais (9), incluindo

lisina são sintetizados pela maioria das

plantas e bactérias apenas.

2. Devem ser providos pela dieta

3. Os cereais são deficientes em pelo menos

um dos aminoácidos essenciais

4. Baixa qualidade nutricional dos grãos

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AminoAminoáácidos Essenciaiscidos Essenciais

Histidina

Isoleucina

Leucina

Lisina

Metionina

Fenilalanina

Treonina

Triptofano

Valina

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Glutamate

Glutamine

ASPARTATEASPARTATE ASPARAGINE

THREONINETHREONINE

METHIONINEMETHIONINE

LYSINELYSINE

ß -Aspartyl phosphate

Aspartate semialdehyde

HSDH

Dihydrodipicolinate Homoserine

O-Phosphohomoserine

Cystathionine

S-adenosylmethionine

ISOLEUCINEISOLEUCINE

ASN

AS

AK

ASADH

DHDPS

HK

TS

TD

CGS

Homocysteine

CBL

MS

SAM-S

Cysteine

AHR1

BCAT

DHAD

DHDPR

THPA*

ADAPAT*

ADPD*

DAPE

DAPDSulphate

Ammonium

-

+

-

-

-

-

Pyruvate

Valine

Leucine

-

AHAS

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----------------------------------------------------------------------------------

Tecido % de Lisina solúvel total

----------------------------------------------

WT Homozigoto

Calos 0.5 4.0

Folhas jovens 0.9 1.0

Folhas 1.9 29.0

Sementes imaturas 1.1 1.4

Sementes maturas 0.9 0.8

----------------------------------------------------------------------------------

Ghislain et al. (1995)

MutanteMutante dada enzimaenzima DHDPS DHDPS

emem N. N. sylvestrissylvestris

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Catabolismo de lisina

•Cevada, milho e trigo – 14C-lisina

Glutamato

+

Semialdeido

aminoadipatoBrandt, 1975; Sodek e Wilson, 1970

•Caracterização em mamíferos

Hutzler e Dancis, 1968;1970; Fjellstedt e Robinson, 1975

•Milho – sugerem que o catabolismo de lisina é

um dos mecanismos controlando a concentração

de lisina solúvel no endosperma.Arruda et al., 1982

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LORLOR

SDHSDH

----------

Via da sacaropina para o

catabolismo de lisina

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Recomendado: 5,5% na composição

de lisina (LYS) em arroz (WHO,

1973)

Arroz: 8% de proteína

4% na composição de lisina

Por que arroz???

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Objetivos Objetivos

�Purificar parcialmente e caracterizar as

enzimas LOR e SDH envolvidas no

catabolismo de lisina em sementes em

desenvolvimento de arroz.

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Material: Cultivar IAC-165 de arroz de

sequeiro

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� Sementes de arroz + tampão fosfato (1g:2 mL)

+ inibidores de protease e compostos fenólicos

homogeinização

Centrifugação

Precipitação com Sulfato de amônio

Métodos: 1º. Passo de purificação

“pellet” proteína

centrifugação

Dessalinização coluna sephadex

G-25

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Reação enzimática

NADPH +

NADP+

NAD +

NADP

+ NADH

NADPH NADP+ = absorbância

NAD NADH = absorbância

1 nmol NADPH/NAD = 0,00622

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Atividade de LORAtividade de LOR--SDH de tecidos SDH de tecidos

de arrozde arroz

Gaziola et al. (1995)

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CROMATOGRAFIA

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Perfil de Perfil de eluieluiççãoão das enzimas LORdas enzimas LOR--SDH de SDH de

arroz em cromatografia de troca iônica e arroz em cromatografia de troca iônica e

filtrafiltraçção em gel São em gel S--200200

Gaziola et al. (1997)

○ LOR □ SDH

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Atividade de LORAtividade de LOR--SDH de arroz SDH de arroz

em PAGEem PAGE

1 2 3 4

LOR SDHLOR SDH

Gaziola et al. (1997) Lugli et al. (2002)

Milho arroz Coix

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Passos Passos sequenciaissequenciais de purificade purificaçção das ão das

enzimas LOR e SDHenzimas LOR e SDH

Gaziola et al. (1997)

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Regulação da LOR e SDH por Cálcio

LORSDH

Gaziola et al. (2000)

A. 1-Controle

2- +EGTA

3- EGTA + CaCl2

B. Controle +

EGTA

+ crescentes

[CaCl2]

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Regulação da LOR e SDH por força

iônica (tris e KCl)

SDHLOR

Gaziola et al. (2000)

A. Aumento [Tris]

B. 10 mM Tris +

aumento [KCl]

C. 100 mM Tris +

aumento [KCl]

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Aspectos moleculares

•O arroz é considerado como planta modelo

entre os cereais

•Genoma relativamente pequeno 420 Mb (trigo

15000 Mb)

•Sequenciado em Oriza sativa ssp. Japonica e

ssp. Indica

Paterson et al., 2006

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Alinhamento da sequência de 2,6 kb de

arroz com o gene ZLKRSDH de milho

� O cDNA de arroz

codificando a proteína

LOR-SDH apresenta

83% e 98% de

homologia ao milho e

arroz (Oriza sativa L.

ssp. japonica),

respectivamente

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Perfil de expressão do gene LORSDH e

DHDPS em sementes em

desenvolvimento de arroz (qRT-PCR)

� LOR-SDH-fw: 5'- GCCGTTGACATTCTCCCTAC

� LOR-SDH-rv: 5'- AGTTCCCCTCTTGCCTCCT

� DHDPS-fw:5'- CATCGGAGCAGCACTACAGA

� DHDPS-rv: 5'- AACAGCGGAGGCAATACAAG

� OsTUB-fw: 5'- TCTCCCCTCTCTCCCTTCTC

� OsTUB-rv: 5'- ATCACCTCCACCAACAGTCC

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Perfil de expressão do gene LORSDH e

DHDPS em sementes em

desenvolvimento de arroz (qRT-PCR)

� LOR/TUB

� Est1: 5,6790912

� Est2: não obtido

� Est3: 0,1347982

� DHDPS/TUB

� EST1: 95,16249619

� EST2: 109,2272995

� EST3: 6,468562867

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Mutantes de endosperma de milho Mutantes de endosperma de milho

OpacoOpaco

Mutante Natural Opaco-2 - Mertz, 1964

QPM 451 e 473 – programas de melhoramento

combinando o genótipo o2o2 (opaco 2), para

conferir alta qualidade protéica, e modificadores

genéticos, para melhorar as qualidades físicas e a

aparência do grão, foram desenvolvidos os materiais

denominados QPM (milho de qualidade protéica)

�Caracterização das enzimas envolvidas no metabolismo de lisina (AK, HSDH, LOR e SDH).

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Atividade de AK e HSDH em milhoAtividade de AK e HSDH em milho

Gaziola et al. (1999)

WT o2

QPM QPM

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Atividade de LORAtividade de LOR--SDH em milhoSDH em milho

Gaziola et al. (1999)

WT o2

QPM QPM

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Mutantes de endosperma de milho Mutantes de endosperma de milho

Opaco e Opaco e FlouryFloury

Mutantes:

Opaco: o1, o2, o5, o7, o10, o11, o13.

Floury: fl1, fl2.

�Caracterização das enzimas envolvidas no catabolismo de lisina (LOR e SDH).

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Atividade de LORAtividade de LOR--SDH em mutantes Opaco SDH em mutantes Opaco eFlouryeFloury------------------------------------------------------------------------Genótipo LOR SDH------------------------------------------------------------------------Oh43+ 3.5053.505 3.4903.490Oh43 o1 3.830 3.050Oh43 o2 0.5900.590 0.7050.705Oh43 fl1 2.115 1.870Oh43 fl2 0.4900.490 0.8900.890

W22+ 3.245 3.295W22o10 0.720 1.505W22o11 3.6153.615 4.6904.690W22o13 0.580 1.310

B37+ 2.926 3.237B37o7 2.610 2.500

B77x79+ 3.397 2.410B77x79o5 0.380 1.300

WT3+ 3.097 3.129WT3fl3 2.490 3.330------------------------------------------------------------------------

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Atividade da enzima SDH de mutantes de Atividade da enzima SDH de mutantes de

milho opaco e milho opaco e flouryfloury em PAGEem PAGE

WT WT o2o2 o1 o5 o7 o10 o11 o13o1 o5 o7 o10 o11 o13

WT WT o2o2 fl1 fl2 fl3fl1 fl2 fl3

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Atividade de SDH em endosperma Atividade de SDH em endosperma

de milhode milho

(PAGE)(PAGE)

Pompeu et al. (2005)

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LOR e SDHLOR e SDH

� LOR-SDH: atividade endosperma

específica.

� LOR-SDH proteína bifuncional.

� Isoformas de LOR e SDH monofuncional.

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SuperproduSuperproduçção de lisina e ão de lisina e

AcAcúúmulo em sementes de cereaismulo em sementes de cereais

�Alteração das enzimas AK e DHDPS.

�Manipulação das enzimas do catabolismo de

lisina.

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Principais estratPrincipais estratéégias para o gias para o

acacúúmulo de lisina em cereaismulo de lisina em cereais

1. Programas de melhoramento: tempo longo.

2. Mutantes de ocorrência natural: opaco-2.

3. Mutantes bioquímicos: alteração da regulação das

enzimas chave.

4. Transformação de Plantas: produção de plantas

transgênicas expressando enzimas alteradas.

Azevedo and Lea (2001)

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AgradecimentosAgradecimentos

Dep. de Genética, Esalq/USP

Prof. Ricardo A Azevedo

FAPESP

CNPq