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Tesis de Posgrado

Estudio florístico y ecológico deEstudio florístico y ecológico demicromicetes xilófilos sobremicromicetes xilófilos sobre

tocones de Eucalyptus viminalis entocones de Eucalyptus viminalis enel NE de la Pcia. de Buenos Airesel NE de la Pcia. de Buenos Aires

Romero, Andrea Irene

1994

Tesis presentada para obtener el grado de Doctor en CienciasBiológicas de la Universidad de Buenos Aires

Este documento forma parte de la colección de tesis doctorales y de maestría de la BibliotecaCentral Dr. Luis Federico Leloir, disponible en digital.bl.fcen.uba.ar. Su utilización debe seracompañada por la cita bibliográfica con reconocimiento de la fuente.

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Cita tipo APA:Romero, Andrea Irene. (1994). Estudio florístico y ecológico de micromicetes xilófilos sobretocones de Eucalyptus viminalis en el NE de la Pcia. de Buenos Aires. Facultad de CienciasExactas y Naturales. Universidad de Buenos Aires.http://digital.bl.fcen.uba.ar/Download/Tesis/Tesis_2625_Romero.pdf

Cita tipo Chicago:Romero, Andrea Irene. "Estudio florístico y ecológico de micromicetes xilófilos sobre tocones deEucalyptus viminalis en el NE de la Pcia. de Buenos Aires". Tesis de Doctor. Facultad de CienciasExactas y Naturales. Universidad de Buenos Aires. 1994.http://digital.bl.fcen.uba.ar/Download/Tesis/Tesis_2625_Romero.pdf

Universidad de Buenos Aires

Facultad de Ciencias Exactas y Naturales

Estudio florístico y ecológico de micromicetes xilófilossobre tocones de Eucalyptus viminalisen el NE de la Pcia. de Buenos Aires

Andrea Irene Romero

Tesis para optar al título de Doctor en Ciencias Biológicas

Director: Dr. Jorge E. Wright

1994

AGRADECIMIENTOS

Deseo expresar mi más profundo agradecimiento a las siguientes personas e Instituciones:

Al Dr. Jorge E. Wright por haberme enseñado a descubrir el maravilloso mundo de los hongos y habercontribuido relevantemente a mi formación micológica.

A la Dra. Irma Gamundí por haberme guiado desde mis primeros estudios sobre Ascomycetes.

A la Dra. Silvia Lopez y al Dr. Daniel Cabral por haberme acompañado desde el comienzo de estacarrera de doctorado, por aquellos años de los muestreos y por brindarme toda su colaboración. ASilvia por la lectura crítica y por sus consejos.

A los Dr. Dave Minter, Paul Cannon y Gary Samuels por aprender mucho a su lado y por alentarmea encarar nuevos enfoques, afianzando la confianza en mí misma.

A la Dra. Marta Collantes por haberme ayudado a llevar a cabo la parte ecológica de este trabajo.Asimismo, extiendo toda mi gratitud, especialmente, a la Lic. Liliana Giussani y también a la Lic.Gabriela Posse.

A la Lic. Alejandra Ribichich por brindarme todo su asesoramiento, apoyo y ayuda.

A los Licenciados Javier López de Casenave y María Luisa Bolkovic por prestarme toda su atención,ayuda y consejos.

Al Dr. R. Goos por la confirmación de la determinación de algunos materiales.

A la Dra. Wendy Untereiner por el intercambio de ideas sobre los géneros Endoxyla y Ceratostomellaa través de sus amables y generosas cartas.

A las Licenciadas Viviana Chiocchio y Ana Menéndez por dedicar su tiempo a ayudarme en distintosaspectos.

A las Licenciadas Verónica Suarez, Cecilia Carmarán, Karina Ribichich, Mónica Lugo y AndreaRobiglio y, a la futura Lic. Silvana Seda, por ayudarme en todo momento, por no dejar de alentarmedurante la preparación de este arduo trabajo, por estar a mi lado, por ser mis amigas.

A mi amiga, la Dra. Clarice Loguercio Leite por su ayuda.

A mi amiga, la Dra. Susana Martínez por su todas sus oportunas, apropiadas y destacadas sugerencias,por su enorme ayuda.

A mi amiga Julia Proserpio por su colaboración en el armado de las láminas y por su permanenteestímulo.

A mis amigos, el Lic. Andrés Sturla y al futuro Lic. Andrés Acher por sus alientos constantes y porestar a mi lado.

Al Lic. Guillermo Vélez, mi querido Memo, por estar compartiendo los momentos difíciles de lapreparación de una tesis, y por toda la colaboración que supo brindarme.

A mis amigos, la Lic. Silvia Petriella y el Lic. Ricardo Dorr, por haber realizado muy gentilmente laedición de esta tesis.

A la firma Fiplasto S.A. por permitirnos el acceso a sus plantaciones comerciales donde se efectuaronlos muestreos.

A INTA San Pedro por facilitarnos los datos meteorológicos de la zona.

Al CONICET, que a través de los subsidios de investigación y apoyo económico para viajar aEE.UU., hizo posible este trabajo.

Al Dr. Hawksworth, Director del IMI (Inglaterra) por invitarme a realizar una pasantía en dichoinstituto y poner a mi disposición todos los medios para realizar mi trabajo, especialmente lorelacionado con parte de las fotografías mostradas en esta tesis.

A la Dra. Amy Rossman, Directora del BARC (EE.UU.) por recibirme en dicha institución parausufructuar la “Beca Predoctoral Anna Jenkins" y brindarrne todas las facilidades para llevar a caboparte de este estudio incluyendo, también, parte del trabajo fotográfico.

A los curadores de los herbarios BPI, CUP, IMI, K, LPS y NYBG por permitirme estudiar losmateriales ahí conservados.

Extiendo mi reconocimiento al Lic. Edgardo Albertó y a todos los integrantes del laboratorio N° 70.

Reiterando mi más sincero agradecimiento a los nombrados y a aquellos que quizás involuntariamenteomita, a todos gracias por su apoyo, ayuda y paciencia.

INDICE GENERAL

PROLOGO 7

PARTE lEstudio florístico de Ascomycetes y Deuteromycetes xilófilos sobre tocones deEucalyptus viminalis en el NE de Pcia. de Buenos Aires . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 8

INTRODUCCION 9

MATERIALES Y METODOS 14

1- Lugar del muestreo . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 14

2- Recolección de los ejemplares . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 143- Tratamiento de las colecciones 14

4- Aislamiento y cultivos . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 155- Clave . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 15

6- Ordenamiento y modalidad de las descripciones 16

RESULTADOS . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 18

1- Lista de las especies 182- Clave . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 24

3- Descripciones de las especies . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 38

FIGURAS Y LAMINAS . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . entre 38-170

DISCUSION Y CONCLUSIONES 170

INDICE DE TAXONES FUNGICOS . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 173

BIBLIOGRAFIA . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 184

PARTE 2Algunas consideraciones ecológicas de dicha comunidad 200

INTRODUCCION . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 201

MATERIALES Y METODOS . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 205

1- Elección y lugar de muestreo 2052- Diseño de muestreo . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 205

3- Análisis Estadístico . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 207

3.1- Tablas de frecuencias . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 207

3.2- Análisis de Correspondencia (AC) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 2093.3- Método de Clasificación no paramétrico (MRPP) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 2103.4- Riqueza, Diversidad, Equitatividad . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 210

3.4.1 Análisis de la riqueza en relación con los parámetros climáticos . . . . 212

RESULTADOS . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 213

l- Composición micótica . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 213

2- Tablas de frecuencias de especies . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 216

3- Tabla de frecuencias de especies en cada sustrato . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 2184- Análisis de Correspondencia (CA) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 221

5- Clasificación de los censos en grupos mediante el MRPP según sitios, tiempo detalado y estaciones . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 224

6- Riqueza, Diversidad, Equitatividad . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 226

DISCUSION . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 232

CONCLUSIONES . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 240

BIBLIOGRAFIA . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 242

APÉNDICE . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 245

Tablas del Análisis de Correspondencia . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 246

Indice de Gráficos y Tablas . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 249

PROLOGO

Se realizó un estudio florístico y ecológico de los micromicetes (Ascomycetes y Deuteromycetes)

xilófilos sobre tocones de Eucalyptus vimínalis del NE de la Provincia de Buenos Aires.

Esta investigación se inició con los siguientes objetivos:

l- estudiar los micromicetes xilófilos, 2- analizar estos organismos sobre una especie forestal de

importancia económica para nuestro país, 3- estudiar su presencia tanto en madera como en corteza,

4- diferenciar los campos estudiados según el paso del tiempo.

Los resultados obtenidos vinculados con el objetivo l, el estudio florístico-taxonómico,

adquirieron una dimensión considerable por lo cual se le dedica una sección aparte de las consideraciones

ecológicas. Es decir, este trabajo se presenta en dos partes:

l- Estudio florístico de Ascomycetes y Deuteromycetes xilófilos sobre tocones de Eucalyptus

viminalis en el NE de Pcia. de Bs.As. En esta parte se proporcionan: a) los antecedentes y limitaciones

del tema; b) la metodología empleada; c) una lista de las especies según el sistema de clasificación

adoptado; d) una clave; e) descripciones e ilustraciones de las especies acompañadas de observaciones

de distinta índole, según cada caso; y t) las conclusiones florísticas y taxonómicas que surgen de este

trabajo.

2- Algunas consideraciones ecológicas de dicha comunidad. En esta segunda parte se exponen

los antecedentes, se indican las técnicas multivariadas y los índices utilizados para alcanzar los objetivos

2, 3 y 4 y, los resultados de la aplicación de dichos métodos y finalmente, su discusión-conclusiones.

PARTE I

Estudio florísticode Ascomycetes y Deuteromycetes xilófilos

sobre tocones de Eucalyptus viminalisen el NE de la Pcia. de Buenos Aires

INTRODUCCION

Encarar un estudio “florístico”, especialmente sobre Ascomycetes, ya sea en su estado

teleomórfico o anamórfico, es una tarea muy ardua debido a la diversidad y tamaño del grupo. Dick y

Hawksworth (1985) señalaron que es el grupo más grande entre los hongos. Recorriendo el “Ainswonh

& Bisby 's Dictionary of the Fungi” (Hawksworth et aL, ¡983) apreciamos que Ascomycetes consta de

28.650 especies incluidas en 2.720 géneros frente a 16.000 especies y l 100 géneros de Basidiomycetes,

y Deuteromycetes consta de 17.000 especies.

Hawksworth (1985 c) puntualiza los distintos sistemas de clasificación propuestos por numerosos

investigadores (Clements & Shear, Nannfeldt, Miller, Lutrell, Müller & v. Arx, Chadefaud, Gaümann,

Ainsworth et aL, Wehmeyer, Barr, etc.) y no hay consenso para ninguno de ellos. El problema no está

restringido sólo a las categorías supra- órdenes, sino que también al nivel de órdenes no es clara la

limitación de los mismos. En este aspecto dos trabajos de Barr (1987 y 1990) han sido una contribución

importante. Para los grupos conocidos como Pyrenomycetes y Loculomycetes, Barr define los órdenes,

presenta clave de familias y para cada una de ellas. clave de géneros. Otro aporte relevante es la obra

de actualización periódica de géneros, familias y órdenes que editan Hawksworth & Eriksson (desde 1987

hasta actualidad), el “Systema Ascomycetum".

La tarea de identificación de especies fúngicas en países del hemisferio sur es aún más

difícil ya que contamos con pocos trabajos sobre especies autóctonas y/o locales (aunque hayan sido

introducidas), especialmente, aquellas pertenecientes a Pyrenomycetes y Loculosascomycetes.

En la Argentina, considerando a Spegazzini (1880-l926) pionero de la micología en general,

observamos que parte de su obra está dedicada a Ascomycetes y Deuteromycetes.

Gamundí contribuyó al conocimiento de nuestra micota, especialmente en lo referido a

Discomycetes. Entre sus trabajos podemos mencionar los importantes estudios genéricos de Scutellím'a

(1956), Cookeina (l957) y Jafneadelphus (1972 a) en la Argentina; trabajos flor-¡sticos-taxonómicos sobre

Discomycetes operculados tanto en Provincia de Buenos Aires (l958) como también en el Parque

Nacional Nahuel Huapí (1964 a) y sobre Discomycetes inoperculados (1962) en el mismo parque; la serie

de estudios sistemáticos y biológicos sobre Ascobolaceae de la Argentina (1964 b, 1966, 1969); sus

descripciones de algunos discomycetes de Chile (197] a); también estudió la especies sudamericanas del

género Cytraria (l97l b) y no podemos dejar de destacar sus aportes al conocimiento de la flora

criptogámica de Tierra del Fuego que abarca tanto especies del orden Pezizales como de Helotiales

(1972 b, 1973, ¡975, 1986).

Ranalli y colaboradores también han realizado trabajos citológicos (1975), sistemáticos y

biológicos de Ascobolaceae (l972, l978, 1981). Por otro lado, Bertoni & Ranalli (¡979) efectuaron

trabajos fisiológicos de algunas Hypocreales, Mercuri & Ranalli (1976) y Mercuri (1977) estudios

sistemático y biológicos también en Hypocreales.

Godeas (1972) inició una investigación de muestras de suelo de la región fitogeográfica chaqueña,

aislando formas ascospóricas. En este trabajo se brinda una lista de especies citadas para suelos en la

Argentina, acompañada de las referencia bibliográficas de los autores de dichas citas. La mayoría de esas

especies pertenecen a Gymnoascaceae, Helvellaceae y Pezizaceae. Wright et al. (1971) y Bertoni et al.

(1973) continuaron la ser-iede esta línea (Eurotiales y algunas Sordariaceae).

Calviello realizó una serie de trabajos (1978) sobre la familia Chaetomiaceae en la Argentina.

Otros investigadores se han dedicado a estudiar los Ascomycetes liquenizados en nuestro país.

Osorio & Ferraro (1975, 1976) y Ferraro (1978, 1979, 1981, 1983, 1986) estudiaron las Parmeliaceae de

las provincias de Santa Fe, Santiago del Estero y principalmente de Corrientes. Adler (1988) investigó

10

las Parmeliaceae de la Provincia de Buenos Aires y Scutari (1992) los líquenes foliosos y fruticosos de

las familias Physciaceae, Candelariaceae y Teloschistaceae. Calvelo & Lorenzo (l989) describieron

líquenes cortícolas en bosques de Nothofagus.

Recientemente, Lorenzo (1993) realizó un aporte excelente con su estudio florístico y ecológico

de Pyrenomycetes “sensu lata” coprófilos en la zona sur de nuestro país.

En cuanto a Deuteromycetes también se destacan los trabajos llevados a cabo por Gamundí,

Arambarri et al. (1977, ¡979. 1981, 1984, 1985) quienes describieron especies de este grupo en hojarasca

de Nothofagus dombeyi y N. pumílio del sur de nuestro país. Godeas et al. (1977 a) aislaron

Hyphomycetes de suelos de la Pcia. de Buenos Aires. Godeas et al. (1977 b) estudiaron micromicetes

imperfectos de suelos de Tierra del Fuego y, recientemente Godeas y Arambarri (1993) realizaron una

segunda parte sobre este mismo tema.

A través de esta reseña se pone en evidencia la necesidad de trabajos que contribuyan al

conocimiento de las especies de Ascomycetes y Deuteromycetes que habitan en nuestro país. También

se desprende de ella que no tenemos mucha información sobre la presencia de este grupo fúngico sobre

un sustrato tan importante, desde el punto de vista económico, como la madera. Conocer como primer

paso la biología básica de estos organismos nos permite iniciar investigaciones aplicadas de tanta

importancia para el hombre. No olvidemos que en este aspecto las especies de Ascomycetes y

Deuteromycetes son de enorme relevancia para el hombre y pueden ser encontradas virtualmente en

cualquier parte del mundo en una fantástica diversidad de habitats. Estos hongos cumplen una función

muy importante en la cadena alimentaria y en los ciclos de los nutrientes. Muchos de ellos son patógenos

tanto de plantas, como de animales y del hombre. Otros son agentes de biodeterioro y crecen sobre un

ll

rango muy amplio de materiales utilizados por el hombre que incluyen pinturas, kerosén, papel, vidrio

y muchos productos de la industria alimentaria. Por otro lado, obtenemos ciertos beneficios de ellos como

fuente importante de antibióticos, o en la industria alimentaria (levaduras) e incluso como hongos

comestibles: las “citarias, las trufas y las morchelas”.

En cuanto al sustrato, se eligió Eucalyptus viminalis, ya que es una especie forestal de

importancia económica para nuestro país. Por otro lado, este trabajo complementa la información ya

obtenida por Cabral (1982) y por Lopez (1984), que realizaron estudios en la mismas plantaciones de E.

viminalis. Cabral analizó la comunidad de micromicetes habitantes del filoplano y Lopez los

Basidiomycetes xilófilos. En cambio los antecedentes al nivel internacional referidos a Eucalyptus están

dirigidos principalmente al estudio de Ascomycetes y Deuteromycetes sobre hoja. Por un lado, la serie

de 28 trabajos florísticos-taxonómicos llevados a cabo por Swart (1979, Swart et al. 1983, 1988, entre

otros) en Australia y, por otro, los realizados desde el punto de vista fitopatológico también en hoja (Park

& Keane, 1984; Wall & Keane, 1984, entre otros). En Sudáfrica, Croux & van der Linde (1993), entre

otros, describen micromicetes sobre hoja. En cambio, los estudios sobre partes leñosas, ya sea cancros

sobre árbol en pie (Sutton & Davison, 1983) o sobre corteza o ramas caídas (Beaton & Weste, 1978) son

más aislados y escasos. Por el momento no hay ningún trabajo que reúna un grupo de especies

ascomáticas sobre una madera en particular. El trabajo de Mathiassen (1989), en Noruega, comparte el

hecho de estudiar especies de Pyrenomycetes y Loculoascomycetes sobre una especie forestal, Salix sp.

pero, además de las consideraciones taxonómicas ecológicas y fitogeográficas de los grupos fúngicos

estudiados, también examinó la composición fúngica en relación con las taxonomía de la especies de

Salix para ver si se podía utilizar como un carácter para subdividir el género Salix en grupos de especies.

Por todo lo antedicho, se decidió realizar un estudio sobre especies xilófilas pertenecientes a

Ascomycetes y Deuteromycetes considerando de suma importancia conocer nuestra micota ya que este

es el primer paso hacia los estudios de ciencias aplicadas.

El plan incluyó los siguientes pasos:

l) Muestreos estacionales en plantaciones comerciales de Eucalyptus viminalis, en la Provincia

de Buenos Aires (pertenecientes a la firma Fiplasto), durante dos años.

2) Reconocimiento taxonómico y descripción de las especies de Ascomycetes y Deuteromycetes

hallados sobre corteza y madera.

MATERIALES Y METODOS

l- Lugar del muestreo:

Se efectuaron relevamientos periódicos en las localidades de Ramallo y Gobernador Castro, Pcia.

Buenos Aires, en plantaciones de Eucalyptus viminalis Labill. de la firma Fiplasto S.A.. Estas localidades

pertenecen a la provincia Pampeana, distrito Occidental (Cabrera, l97l). Los detalles del diseño de

muestreo se presentan en los Materiales y Métodos de la parte II: Consideraciones Ecológicas.

2-Recolección de los ejemplares:

Las colecciones se obtuvieron a partir de tocones de árboles talados a los ocho años de edad,

sacando trozos de madera y corteza manualmente y, en los casos necesarios, con formón y martillo.

Debido al tamaño microscópico de las especies a estudiar se retiraron, tanto porciones de estos sustratos

en las que se observaba alguna colonia a simple vista como también porciones al azar. Así, se

recolectaron 2000 muestras. En el campo, cada trozo de sustrato se colocó en bolsa de polietileno y,

posteriormente, en el laboratorio fueron pasados a sobres de papel absorbente.

3- Tratamiento de las colecciones:

Para el estudio morfológico de las especies se utilizó lupa y microscopio óptico de campo claro

en la mayoría de los casos, y se recurrió al contraste de fase (CF), contraste de interferencia doble (DIC),

epifluorescencia (EPF) y microscopio electrónico de barrido (MEB) en algunos de ellos. Se realizaron

14

cortes a mano alzada y en micrótomo de congelamiento. Para microscopio óptico, los preparados se

montaron en KOI-l al 10%, en azul de algodón al lactofenol, en reactivo de Melzer (Singer, 1949280) y

floxina en solución acuosa 1%. Los preparados para fluorescencia fueron montados en una solución de

calcoflúor disuelto en “buffer” fosfato (Romero & Minter, 1988). Para el microscopio electrónico de

barrido se deshidrató el material en alcohol 50% y se dejó secar al aire.

Se realizaron los dibujos con cámara clara y se fotografiaron algunas especies.

4-Aislamiento y cultivos:

Se intentó el aislamiento y cultivo de las especies en medios sintéticos. Los medios utilizados

fueron: agar papa glucosado (APC), extracto de malta agarizado (ME), agar avena arrollada (OM)

(Hawksworth et aL, 1983) y medio aserrín (MA), cuya composición es: sacarosa 2,5 g; peptona l,5 g;

lactosa 2,5 g; agar lO g; infusión de aserrín 250 cc. Para preparar dicha infusión, se agregan 20 g de

aserrín de madera blanca a 500 cc de agua destilada, esterilizado en autoclave a 120 °C durante 30

minutos. En este trabajo se utilizó madera de Eucalyptus viminalis. Los cultivos se obtuvieron en su

mayoría por aislamiento directo con aguja estéril a partir de la muestra y en algunos casos se hicieron

diluciones en tubo con agua estéril y siembra con micropipeta de Pasteur. Cabe destacar que, debido al

gran número de muestras, no fue posible seguir en forma sistemática los aislamiento de todas las

especies. Sólo se prosiguió con aquellas que crecieron fácilmente.

5-Clave:

Se confeccionó una clave dicotómica con las especies registradas sobre Eucalyptus viminalis.

15

6-Ordenamiento y modalidad de las descripciones de las especies:

Las especies determinadas, pertenecientes a la división Ascomycotina, fueron ordenadas según

el sistema de clasificación propuesto por Barr (¡987 y 1990) y el “Systema Ascomycetum”, con algunas

excepciones que se indican oportunamente. Para describir los estados teleomórficos se utilizaron términos

tales como “ascoma peritecial, ascoma locular, hamatecio, paráfisis, pseudoparáfisis trabeculares"

definidos por Barr, en sus trabajos ya mencionados.

Las especies determinadas, pertenecientes a Deuteromycotina, fueron ordenadas en las Clases

l-lyphomycetes y Coelomycetes (Hawksworth et aL, 1983); dentro de dichas clases están descriptas en

orden alfabético. Para la terminología se siguió a Ellis (197], 1976) y a Cole & Samson (l979).

Se describen las especies nuevas para la ciencia, las que son nuevas citas para la Argentina

(aunque ya algunas fueron publicadas, se destacan las novedades en las especies propuestas y también

las menciones como primeras citas para el país porque estas observaciones son producto del trabajo de

esta tesis) y aquellas cuyas descripciones necesitan una ampliación. Las especies muy conocidas para la

ciencia o ya descriptas para nuestro país, sólo se mencionan.

Cada descripción de las especies en su estado perfecto consta de su nombre con su cita completa,

se indican algunos sinónimos particulares, y en la mayoría de los casos se da la cita bibliográfica donde

se puede encontrar la lista completa de sinónimos, a continuación se indican las láminas y figuras,

descripción del estado teleomórfico, incluyendo el sustrato sobre el cuál fue encontrado durante este

estudio, prosigue la descripción en cultivo en los casos que corresponda. Finalmente, se señala si el

estado anamórfico es desconocido y, si es conocido pero no fue encontrado durante este estudio, se

menciona su nombre acompañado de la cita bibliográfica donde fue establecida su relación; en cambio,

si fue encontrado durante este estudio, se describe a continuación y no en el grupo de Deuteromycotina.

16

De la misma manera se organizaron las descripciones de las especies imperfectas, describiendo el

anamorfo, citando si su teleomorfo se conoce o no, en los casos conocidos se menciona el nombre del

teleomorfo establecido. Todas las descripciones son seguidas por la mención del material estudiado y

observaciones.

Para resolver algunos problemas taxonómicos se estudiaron ejemplares de los siguientes

herbarios: BPI, CUP, IMI. K, LPS y NYBG.

RESULTADOS

1- Lista de las especies determinadas, en orden alfabético, según el sistema de clasificaciónadoptado:

*: nuevas citas para la Argentina.**: especies nuevas para la ciencia.***: géneros nuevos para la ciencia.****: combinación nueva.

I) ASCOMYCOTINAA- Clases, órdenes y familias según Barr 1987 y 1989.

CLASE HYMENOASCOMYCETES

CALOSPHAERIALES

-Calosphaeriaceaca Erostella minutissima "b Jattaea stachybotryoides "c Pleurostoma ootheca ‘

DIAPORTHALES

-Gn0moniaceae

a Gnomoniella dimorphospora nb Gnomoniella lignicola "

-Valsaceae

a Díaporthe ajf woodii °b Valsa ambiens ssp. leucostomoides °

HYPOCREALES

-Hypocreaceaea Hypocrea nígricans f nigricans 'b Hypomyces aureonitensc Hypomyces ochraceusd Hypomyces roselluse Nectría aureo-fidva °

f Nectria ochroleuca °g Nectriopsis oropensoides °

SORDARIALES

-C0niochaetaceaea Coniochaeta pulveracea °

-Lasiosphaeriaceaea Chaetosphaeria myriocarpa °b Chaetosphaeria preussii °c Melanochaeta sp. °

-Nitschkiaceaea Nitschkia broomeíanab Nitschkía variabilis "

XYLARIALES

-Bolíniaceaea Camarops rostratus "

-Clypeosphariaceaea Ceratostomella ampullasca °b Ceratostomella cirrhosa 'c Ceratostomella hyalostoma °d Endoxyla avocetta '

-Diatrypaceaea Diatrypella sp.

-Trichosphaeriaceaea Debaryella gracilis °b Porosphaerella setosa "c Rhamphoria delicatula °d Rhamphoria pinformís 'e Trichosphaerella ceratophora 'f Trichosphaerella decipiens °

-Xyla.riaceaea Hypoxylon cariesb Hypoxylon serpens °c Hypoxylon stygium °

CLASE LOCULOASCOMYCETES

CHAETOTHYRIALES

-Herpotríchellaceaea Capronía pilosella °

MELANOMMATALES

-Didymosphaen‘aceaea Delitschia corticola "

-Melanommataceaea Melanomma pulvis-pyrus °

PLEOSPORALES

-Botryosphariaceaea Botryosphaeria obtusa °b Botryosphaeria ribisc Botryosphaeria rhodina °

-Dacampiaceaea Moristroma polyspora m

-Hysteriaceaea Gloniopsis australisb Gloníum abbreviatum

c Hysteríum angustatum '

-Lophiostomataceaea Lophíostoma fuckelíi °b Lophiostoma myriocarpum °c Lophiostoma semiliberum °

Leptosphaeriaceaea Ophiobolus rubellus

-Pleosporaceaea Pleospora penicillus var. ambigua °b Kirschsteiniothelía aethiops °c Kirschsteiníothelía maritima '

B- Ordenes y familias según el Systema Ascomycetum, excepciones indicadas.

CLASE DISCOMYCETES

LEOTIALES

- Leotiaceae

a Bisporella díscedens °b Claussenomyces atrovirens °

-Orbiliaceae

a Hyalim'a scolecospora °b Orbilia delicatula °c Orbilia inflatula °d Orbilia sp."

LECANORALES (Hafellner, 1979)

-Dactylosporaceaea Dactylospora lurida °

PATELLARIALES (Hafellner, 1979)

-Patellariaceaa Patellaria atratab Rhízodiscinia lígnyota °

OSTROPALES

-Stictaceae

a Stictis radiata ssp. radiata

PEZIZALES

-Sarcostomataceaea Plectania platensis

Il) DEUTEROMYCOTINA

- Clases según Hawksworth et aL, 1983.

CLASE HYPHOMYCETES:

Allescheriella cyanea "Bloxamia Iruncata 'Candelabrum brocchiatum °Ceratosporella deviata °Chalara hughesiiChloridíum virescens var. vírescens °

Cladosporium cladosporioidesCladosporíum chlorocephalum 'Clonostachys araucaria °Corticomyces xenasmatoides mDactylaria chrysosperma °Dictyochaeta novae-guineensis 'Drepanospora pannosa °Edmundomasonía pulchra 'Endophragmiella pallescens 'Endophragmiella unisepta °Eversía subopaca °Fibulochlamysferruginosa mGlomerulomycesflbulosus mGonytrichum chlamydosporium var. chlamydosporium °Gyrothrix podosperma 'Haplotrichum curtisiiHaplotrichum gracileHelicomyces roseus 'Helicosporium aureumMyrothecium cinctumNeta patuxentica 'Periconía circinata 'Periconia minutissima °Periconia lateralis °Periconia tirupatiensis °Phaeoisaria clematidis °Pleurotheciopsis websteriiSpadicoides atra °Spadicoides bina 'Spadicoides klotzschii °

Spegazzinia tessarthraSporochisma nigroseptatum °Sporidesmium adscendens 'Sporotrichum aurantiacum °Sporotrichum azureumTetraploa aristataTorula herbarumTrichoderma hamatumTrichoderma harzianumTrichoderma viride

Vermícularíopsiella immersa var.immersa '

CLASE COELOMYCETES:

Microsphaeropsís pseudoaspera °Pestalotiopsis leprogenaWaydora typica '

Nota:No se incluyen en esta lista 15 taxones que fueron parcialmente identificados y que sí fueronconsiderados en la Pane II.

2- Clave de las especies de micromicetes xilófilos, registrados sobre Eucalyptus viminalis en el NEde la Provincia de Buenos Aires.

Nota: El número en negrita entre paréntesis después del nombre de la especie indica la página de ladescripción o de la cita.

Estados teleomórficos; esporas originadas en ascos . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 2Estados anamórficos; esporas originadas en células conidiógenas (= conidios) 67

Ascos reunidos en apotecios . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 3

Ascos reunidos en peritecios libres o en estromas o ascos en lóculos estromáticos (no enapotecios) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 13

Apotecios inmersos en el sustrato, margen blanco; ascos cilíndricos, ápice grueso con canal,inamiloides, octosporados; parálisis amiloides; ascosporas filiformes, multiseptadas. Anamorfodesconocido . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . Stictis radiata ssp. radiata (119)Apotecios no inmersos, con características diferentes . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 4

Apotecios sésiles a subestipitados, castaño oscuro casi negro,externamente surcados, anclados alsustrato por un tomento castaño verdoso oscuro; ascos cilíndricos, inamiloides, octosporados;ascosporas unicelulares, elipsoidales, asimétricas, con 9-1 l estrías transversales, incoloras, 20-25x 10-12 um; anamorfo: Conoplea fusca . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . Plectam'a platensis (120)Apotecios con otras características . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 5

Ascosporas septadas . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 6

Ascosporas 0-septadas . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . lO

Ascosporas uniseptadas 7Ascosporas plun'septadas . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 9

Ascosporas incoloras, apotecios blanco amarillentos, generalmente con células conidiógenas tipo“Chalara” sobre ellos . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . Bisporella discedens (108)Ascosporas castañas, apotecios castaños oscuros . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 8

Ascos con pared externa fuertemente amiloide, azul oscuro, poro central inamiloide; paráfisismoniliformes en el ápice. Anamorfo desconocido . . . . . . . . . . . . Dactylospora lurida (116)Ascos inamiloides pero gelatina himenial amiloide, azul muy claro; paráfisis no moniliformes.Anamorfo desconocido. . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . Rhizodiscinia lignyota (118)

Ascosporas claviformes, con 7-ll tabiques transversales, incoloras; apotecios negros, sésiles;ascos angostamente claviformes, ápice grueso, octosporados. Anamorfo desconocido . . . . . .

. . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . Patellaria atrata (117)

Ascosporas cilíndrico-fusiformes, con 5-8 septos transversales, l-3 longitudinales u oblicuos,incoloras, brotando dentro del asco en innumerables esporas bacilares. Anamorfo desconocido. . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . Claussenomyces atrovirens (110)

24

12

12’

13(2)13’

14

14‘

15

¡5’

¡717’

18

18’

¡9’

20

20’

2]

21’

Apotecios con márgenes dentados, amarillo claro translúcido, ascos octosporados. ascosporasfiliformes, sigmoideas. Anamorfo desconocido . . . . . . . . . . . . . Hyalim'a scolecospora (lll)Apotecios sin dientes, anaranjados. ll

Apotecios con excípulo de “textura globulosa”, formada por células de dos tamaños extremosmezcladas a modo de “encaje”. Ascosporas sigmoideas. Anamorfo desconocido. . . . . . . . . .

. . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . Orbilia sp. (114)

Apotecios con excípulo de textura “angularis” l2

Ascosporas reniformes. Anamorfo desconocido . . . . . . . . . . . . . . . . Orbilia delicatula (112)Ascosporas cilíndricas. Anamorfo desconocido . . . . . . . . . . . . . . . . . Orbilia inflatula (113)

Ascos unitunicados 14Ascos bitunicados . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 51

Peritecios libres . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 15

Peritecios en estromas . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 43

Peritecios no ostíolados; células de la pared peritecial con “poros de Munk” l6Peritecios ostíolados l7

Ascocarpos subglobosos, negros, espinosos; ascos claviformes multiesporados; ascosporasalantoides, uniseptadas, incoloras. Anamorfo desconocido . . . . . Nitschkia broomeiana (64)Ascocarpos cupulados al colapsarse, cubiertos por un tomento castaño iridiscente; ascos 32­esporados; ascosporas variables en forma, unicelulares, incoloras al principio más tarde castañasclaras. Anamorfo desconocido Nitschkia variabilis (65)

Peritecios papilados . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . [8

Peritecios con cuellos cortos o largos . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 31

Ascosporas O-septadas . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 19

Ascosporas septadas . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 22

Ascos multiesporados asimétricos con engrosamiento lateral pedicelo basal, ascosporasreniformes, incoloras Anamorfo desconocido Pleurostoma ootheca (41)Ascos octosporados o ló-esporados . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 20

Ascos 8-esporados, cilíndricos, ascosporas elipsoidales castañas oscuras, lisas, con surcogerminativo. Anamorfo desconocido. . . . . . . . . . . . . . . . . . . . Coniochaeta pulveracea (57)Ascos ló-esporados, ascosporas subesféricas, sin surco germinativo . . . . . . . . . . . . . . . . 21

Ascocarpos claros, con setas castañas oscuras, rígidas, simples. Anamorfo desconocido . . . . .. . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . Trichosphaerella decipiens (82)

Ascocarpos claros, con setas negras, ramificadas dicotómicamente Anamorfo: Tritirachiumoryzae Trichosphaerella ceratophora (81)

25

2222’

23

23’

2424’

2525 ’

2626‘

27

27’

28

28'

29

29’

30

30’

3]

31’

Ascosporas castañas, l-septo o l-3-septadas . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 23

Ascosporas incoloras, l-septo . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 24

Peritecios setosos, negros; setas negras, n'gidas simples; ascos 8-esporados; ascosporaselipsoidales, l septo generalmente central, a veces células desiguales, ven‘ugosas Anamorfodesconocido . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . Porosphaerella setosa (77)Peritecios glabros, negros; ascocporas fusiformes, 1-3 septos, células centrales más oscuras quelas terminales. Anamorfo: Sporochisma sp . . . . . . . . . . . . . . . . . . . Melanochaeta sp. (60)

Ascosporas lisas . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 25

Ascosporas ornamentadas . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 28

Peritecios glabros 26Peritecios setosos . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 27

Ascosporas cilíndricas. Anamorfo: Chloridium clavaeforme Chaetosphaen'a myriocalpa (58)Ascosporas elipsoidales, al madurar septo muy marcado llegando a partirse. Anamorfo:Chloridium preussii . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . Chaetosphaen'a preussii(59)

Ascocarpos claros, con setas castañas oscuras, n'gidas, simples; ascos con 8 esporas bicelulares.Anamorfo desconocido . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . Trichosphaerella decipiens (82)Ascocarpos claros, con setas negras, ramificadas dicotómicamente; ascos con 8 esporasbicelulares. Anamorfo: Tritirachium oryzae Trichosphaerella ceratophora (81)

Peritecios no sobre subículo De color anaranjado ocráceo cubierto por pelos blancosornamentados con extremos curvados; ascos 8-esporados; ascosporas elipsoidales a oblongas,espinulosas. Anamorfo: Acremonium sp . . . . . . . . . . . . . . . . . Nectriopsis oropensoídes (56)Peritecios sobre un subículo . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 29

Peritecios piriformes, rosados oscuros, sobre subículo blanco, ascosporas fusiformes, apiculadas.verrugosas Anamorfo: Cladobotryum dendroides . . . . . . . . . . . . . Hypomyces rosellus (52)Peritecios piriformes, amarillos-ocráceos, sobre subículo blanco . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 30

Ascos con ápice grueso atravesado por un canal; ascosporas cilíndrico-fusiformes, con apéndicesterminales cónicos curvados, equinuladas. Anamorfo: desconocido Hypomyces ochraceus (51)Ascos sin ápice grueso; ascosporas con la célula superior más ancha y más corta que la inferior,finamente espinulosas, algunas veces la superior termina en un pequeño apículo. Anamorfo:Gliocladium penicillioides . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . Hypomyces aureonitens (51)

Cuellos cortos 100-200 um long. Peritecios anarajados rojizos, inmersos, sólo asomando el cuelloo sólo la base del vientre inmersa; ascos claviformes-fusiformes, con anillo apical notorio;ascosporas fusiformes ligeramente curvadas, incoloras, 3-6 septadas. Anamorfo desconocido .

. . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . Debaryella gracilis (76)

Cuellos largos. Peritecios con otros caracteres . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 32

26

3232’

33

33’

3434’

35

36

36’

37

37’

38

39

39’

40

40’

Hifas ascógenas discretas . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 33

Hifas ascógenas no visibles . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 34

Peritecios negros; hifas ascógenas aseptadas, proliferantes, produciendo ascos lateral yterminalmente; ascos 8-esporados, oblongo-claviformes, ápice grueso con un aparato apical muypequeño; paráfisis excediendo notariamente el largo de los ascos. Anamorfo: desconocido

. . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . Erostella minutissima (38)

Peritecios con cuellos negros y vientres castaños dorados; hifas ascógenas aseptadas, proliferantes,produciendo células elipsoidales terminales y laterales, dehiscentes, a partir de las cuales surgenlos ascos con ápice conspicuamente grueso; paráfisis excediendo notoriamente el largo de losascos. Anamorfo desconocido . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . Jattaea stachybotryoides (39)

Ascosporas unicelulares . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 35

Ascosporas bi a pluricelulares . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 40

Ascosporas lisas . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 36

Ascosporas ornamentadas . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 37

Ascosporas castañas. Peritecios globosos a subglobosos, negros, vientre generalmente inmerso,tapizado por micelio; ascos 8-esporados, cilíndricos, aparato apical inconspicuo; ascosporaselipsoidales, con poro basal inconspicuo. Anamorfo desconocido . . . Endoxyla avocetta (73)Ascosporas incoloras. Peritecios negros, glabros; ascos cilíndricos, anillo apical conspicuo, 8­esporados; ascosporas asimétricas, un lado curvo y otro plano. Anamorfo desconocido . . . .

Gnomoniella lignicola (45)

Ascosporas de 2 tamaños. Peritecios negros, vientre y cuello cubierto por hifas; ascos ápicesimple, con 4 ascosporas grandes, 4-7 x 2,5-5 um, tuberculadas y 4 pequeñas l,8-2,5 um . . .

. . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . Gnomoniella dimorphospora (43)

Ascosporas de un sólo tamaño . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 38

Ascos ampuliformes, abruptamente pedicelados, aparato apical pequeño. Peritecios negros;ascosporas asimétricas, ligeramente fusiformes, 2-gutuladas, estríadas suavemente. Anamorfodesconocido . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . Ceratostomella ampullasca (70)Ascos cilíndricos . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 39

Peritecios con cuellos hirsutos; ascos 8-esporados; paráfisis con tabiques notorios, célula apicalflamiforme; ascosporas elipsoidales, ligeramente verrugosas. Anamorfo desconocido . . . . . .

. . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . Ceratostomella hyalostoma (72)

Peritecios con cuellos glabros, prominentes, negros brillantes; ascos 8-esporados, con aparatoapical; ascosporas O-septadas, 2-gutuladas, estríadas. Anamorfo desconocido . . . . . . . . . . . .

Ceratostomella cirrhosa (71)

Ascosporas únicamente con l septo. Peritecios negros, vientres inmersos y cuellos notoriamentelargos, 2-5 mm long, curvados casi paralelos al sustrato; ascos con anillo apical conspicuo.Anamorfo desconocido . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . Diaporthe aff woodii (46)

Ascosporas con l a 2; ó con más de 2 septos . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 4l

27

41

41’

42

42’

43

43’

4545 ’

46

46’

47

47’

4848’

49

49’

Ascosporas con l a 2 septos transversales. Peritecios con cuellos glabros, prominentes, negrosbrillantes; ascos 8-esporados, con aparato apical; ascosporas elipsoídales, 2-4 gútulas, estríadas.Anamorfo desconocido . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . Ceratostomella cirrhosa (71)

Ascosporas con más de 2 septos, transversales y longitudinales . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 42

Ascosporas claviformes con 7-12 septos transversales y 1-2 longitudinales; ascos con 8ascosporas que brotan en innumerables esporas pequeñas, 2 x l pm. Anamorfo: Phaeoisaria

Rhamphoria pínformis (79)Ascosporas elipsoídales oblongas muricadas, con una gútula por célula, germinado por variascélulas al mismo tiempo; ascos cilíndricos, ápice engrosado, 8-esporados. Anamorfo desconocido

. . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . Rhamphoria delicatula (78)

Estroma muy poco desarrollado, sólo una base estromática sobre la cual están los peritecios decolor anaranjado, globosos a pomifonnes . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 44Estroma desarrollado . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 45

Ascos claviformes, 8-esporados, anillo apical presente; ascosporas elipsoídales, bicelulares,incoloras, lisas o suavemente equinuladas. Anamorfo: Dendrodochium sp . . . . . . . . . . . . . .

. . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . Nectria aureo-fulva (54)

Ascos claviformes, 8-esporados, anillo apical conspicuo; ascosporas elipsoídales, bicelulares. lisaso equinuladas. Anamorfo:Gli0cladium roseum Nectria ochroleuca (55)

. . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . ..46

. . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . ..48

Estromas carbonososEstromas no carbonosos

Ostíolos en el centro de un anillo Estromas pulvinados a aplanados. Anamorfo desconocido. . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . Hypoxylon stygium (84)

Ostíolos sin anillo . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 47

Ascosporas castañas oscuras a la madurez. Estromas siguiendo las irregularidades del sustrato,superficie lisa o marcada por las papilas ostiolares. Anamorfo: Geniculosporium sp . . . . . . .

. . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . Hypoxylon serpens (83)

Ascosporas castañas claras a la madurez. Estromas aplanados, efusos. Anamorfo desconocido. . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . Hypoxylon caries (83)

Ascosporas alantoides . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 49

Ascosporas no alantoides 50

Ascos octosporados. Con disco estromático circular, blanco atizado a gris claro, atravesado porcuellos periteciales negros; ascosporas castañas claras. Anamorfo Cytospora annulata . . . . . .

. . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . Valsa ambiens ssp leucostomoides (47)

Ascos polisporados Estroma irregular, con ostíolos surcados; ascosporas castañas. Anamorfodesconocido Diatrypella sp (75)

50

50'

5]

51'

5252’

53

53’

54

54’

5555’

56

56’

57

57’

5858’

59

59’

Estromas discoides, negros externamente, blancos internamente, superficiales; peritecios en laporción superior; ascos cilíndricos, ló-esporados; ascosporas esféricas, suavemente ornamentadas,verdes en masa. Anamorfo: Trichoderma sp . . . . . . . . . Hypocrea nigricans f nign'cans (49)Estromas irregulares, superficie marcada con protuberancias cilíndricas, robustas, perforadas porel canal ostiolar; peritecios profundamente inmersos en la madera; ascos octosporados; ascosporasunicelulares, cilíndrico-elipsoidales, castañas, con poro basal inconspicuo. Anamorfo desconocido

Camarops rostratus (66)

Ascomas multiloculares, circulares. Ascos polisporados; ascosporas incoloras, elíptico-fusiformes,pequeñas 3-4 x 0,6-l,2 pm. Anamorfo desconocido . . . . . . . . . . Moristroma polyspora (93)Ascomas uniloculares . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 52

Ascomas histeriotecioides 53

Ascomas peritecioides . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 55

Ascosporas castañas, rectas o ligeramente curvadas, triseptadas, tabiques castaños más oscuros,16-20 x 5-7 pm. Anamorfo desconocido . . . . . . . . . . . . . . . . . Hysterium angustatum (97)Ascosporas incoloras . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 54

Ascosporas uniseptadas, levemente constreñidas, 7-8 x 3 pm. Anamorfo: Sphaeronaema sp . .. . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . Glonium abbreviatum (95)

Ascosporas muricadas, a menudo rodeada de una vaina gelatinosa gruesa. Anamorfo desconocidoGloniopsis australis (94)

Ostíolo aplanado lateralmente . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 56Ostíolo circular en sección . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 57

Papila ostiolar discreta, aplanada; ascosporas fusiformes, 3-septadas, incoloras. Anamorfodesconocido . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . Lophiostoma myriocarpum (99)Papila ostiolar robusta, 0,2 mm de altura, con aspecto de “boca de sapo”; ascosporas fusiformes,l-septadas, incoloras, levemente ensanchadas alrededor del septo. Anamorfo desconocido . . .. . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . Lophiostoma semiliberum (101)

Con cuello prominente. Vientres negros, tapizados por una tomento castaño iridiscente; ascoscilíndricos, octosporados; ascosporas castañas oscuras, bicelulares, con surco germinativo enambas células. Anamorfo desconocido Delitschia corticola (87)Sin cuello, con papila . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 58

Ascosporas unicelulares . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 59

Ascosporas septadas 6]

Ascosporas más de l2 pm de ancho. Anamorfo: Lasiodiplodia theobromae: conidios ovoidescastaños oscuros, uniseptados, septo grueso y negro, estriados longitudinalmente . . . . . . . . .

. . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . Botryosphaeria rhodína (92)

Ascosporas menos de 12 um de ancho . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 60

29

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60’

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67(1)67’

6868’

Ascosporas anchamente fusiformes. Anamorfo: Sphaeropsis sp: conidios ovalados, unicelulares,castaños oscuros, con verrugas alargadas . . . . . . . . . . . . . . . . . Botryosphaeria obtusa (90)Ascosporas ovoides. Anamorfo: Fusicoccum sp: macroconidios fusiformes y microconidiosalantoides . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . Botryosphaeria ribis (91)

Ascosporas muricadas, con 5-7 septos transversales, septos longitudinales en células centralesformando cruces, a veces también en las distales. Ascomas setosos. Anamorfo desconocido

. . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . Pleospora penicillus var. ambigua (104)

Ascosporas sólo con septos transversales . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 62

Ascosporas sólo con un septo . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 63

Ascosporas con más de un septo . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 65

Ascosporas incoloras. Ascomas semiinmersos; ascosporas fusiformes, levemente ensanchadasalrededor del septo. con 2 gútulas en cada célula, con apéndices terminales cortos, visibles conazul de algodón al lactofenol. Anamorfo desconocido . . . . . . . . . Lophiostoma fuckelii (98)Ascosporas castañas . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 64

Ascomas solitarios, negros, región ostiolar castaño ocre; peridio sin elementos del sustrato;hamatecio ligeramente amiloide. Anamorfo: Dendryphiopsis atra . . . . . . . . . . . . . . . . . . . .

. . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . Kirschsteiniothelia aethiops (105)

Ascomas solitarios o en grupos, negros, región ostiolar negra; peridio con elememtos del sustratoincluídos; hamatecio inamiloide. Anamorfo desconocido . Kirschsteiniothelia maritima (107)

Ascosporas multiseptadas. Ascomas con papila rojiza oscura; ascos cilíndricos, ápice engrosadoatravesado por un canal; ascosporas castañas oliváceas al envejecer, casi del mismo largo que losascos, lOO um. Anamorfo desconocido . . . . . . . . . . . . . . . . . . . Ophiobolus rubellus (102)Ascosporas con 3 septos . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 66

Ascomas pequeños, 90-]50 um diám, setosos. Ascos con anillo apical notorio; ascosporaselípticas fusiformes, ligeramente curvadas, castañas. Anamorfo: Cladosporium sp . . . . . . . . .

. . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . Capronia pilosella (85)

Ascomas medianos, hasta 500 pm diám, no setosos. Ascos con ápice grueso; ascosporas castañas.Anamorfozforma picnidial tipo Aposphaeria ? . . . . . . . . . . . . Melanomma pulvis-pyrus (88)

Anamorfos cuyos teleomorfos son miembros de Basidíomycetes . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 68Anamorfos cuyos teleomorfos son miembros de Ascomycetes . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 74

Hifas afibuladas . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 69

Hifas fibuladas 7l

30

69

69’

70

70’

7]71’

72

72’

73

Colonia amarilla pálida; hifas incoloras. ramificadas no en ángulos rectos, células conidiógenaspoliblásticas, cilíndricas, alargadas, temúnales, a veces intercalares, no denticuladas; conidiosunicelulares, elipsoidales, contenido granuloso y gutuloso cuando jóven, incoloros, lisos, llevandouna porción de la célula conidiógena al desprenderse, dextrinoides. Teleomorfo: Pycnoporellusmetamorphosus . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . Sporotrichum aurantiacum (161)Células conidiógenas poliblásticas, ensanchadas, denticuladas, terminales e intercalares; conidiosno dextrinoides . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 70

Colonia fen‘uginosa; hifas ramificadas en ángulo recto, paredes gruesas, castañas; conidiosesféricos, castaño dorado claro, pared gruesa, omamentados. Teleomorfo: Botryobasídium vagum. . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . Haplotrichum curtisií (144)

Colonia amarilla pálida; hifas ramificadas, paredes amarillentas; conidios elipsoidales, aman'llo páli­do, lisos o levemente omamentados. Teleomorfo desconocido . . Haplotn'chum gracíle (145)

Colonia blanca . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 72

Colonia fermginosa o azul-verdoso . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 73

Conidióforo ausente. Hifas ñbuladas no asociadas con las células conidiógenas; conidiomaresupinado, efuso, aracnoide y pruinoso, con aspecto xenasmatoide, blanco grisáceo; célulaconidiógena blástica, cilíndrica o no muy diferenciada de las células vegetativas; conidiosterminales, elipsoidales, incoloros, con separación rhexolítica. Teleomorfo desconocido . . . . .

. . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . Corticomyces xenasmatoides (132)

Conidióforo presente y fibulado. Conidioma efuso farináceo, blanco atizado a crémeo.Conidióforos simples o ramificados; célula conidiógena mono-poliblástica; conidios esféricos,brotando en varias direcciones formando una cabeza compacta. Teleomorfo desconocido . .

Glomerulomycesfibulosus (141)

Colonia feruginosa. Micelio incoloro fibulado; conidióforos ausentes o micronematosos; célulaconidiógena tálica, cilíndrica terminal, asociada con una fíbula basal o intercalar; conidiosesféricos, piriformes o elipsoidales, algunas veces pedicelados, amarillos, pared muy gruesa, 2-3pm de espesor, con 1-3 gútulas oleosas, con reacción dextrinoide. Teleomorfo desconocido . .

. . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . Fibulachlamys ferruginosa (139)

Colonia azul-verdosa. Micelio formado por hífas afibuladas de donde surgen los conidióforos ypor hifas fibuladas; conidióforos micro a seminematosos; célula conidiógenas monoblástica,integrada, terminal, a veces intercalar; conidios solitarios, esféricos, subesféricos o elipsoidales,ligeramente pigmentados, pared muy gruesa 3-4 um de espesor, con varias capas concéntricas,con 2-3 gútulas, con reacción dextrinoide fuerte. Teleomorfo desconocido . . . . . . . . . . . . . .

Allescheriella cyanea (123)

74(67) Células conidiógenas sobre conidióforos reunidos en picnidios o en conidiomas estromá­

74’

7575'

ticos . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 75

Células conidiógenas sobre conidióforos libres o en esporodoquios o en sinemas . . . . . 81

Conidiomas picnidiales o acervulares 76Conidiomas estromáticos 78

31

76

76’

77

77’

7878’

79

79’

80

80’

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81’

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82’

83

83'

Conidioma acervular; conidios con apéndices en ambos extremos, uno basal simple, el apicaltrifurcado, fusiformes, 4-septados, células centrales castaño oscuro, célula polares casiincoloras. Teleomorfo desconocido . . . . . . . . . . . . . . . . . Pestalotiopsis leprogena (167)Conidiomas picnidiales . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 77

Conidiomas picnidiales solitarios o agrupados, negros, inmersos; células conidiógenasenteroblásticas, ampuliformes; conidios unicelulares, elípticos a subglobosos, castaños claros,lisos o ligeramente ornamentados, 3-4 x 2,5-3 um. Teleomorfo desconocido . . . . . . . . . .

. . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . Microsphaeropsis pseudoaspera (166)Conidiomas picnidiales, negros, inmersos; células conidiógenas holoblásticas, cilíndricas;conidios, unicelulares, ovalados, castaños oscuros, con verrugas alargadas. Teleomorfo:Botryosphaeria obtusa Sphaeropsis sp. (90)

Conidios alantoides . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 79

Conidios no alantoides; si alantoides, de 2 tipos . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 80

Conidiomas erumpentes discoides, castaños pardos oscuros, posteriormente el disco se reducea una papila cónica y más oscura; ostíolo central; conidios unicelulares, incoloros, alantoides,3-5 x 0,5-1 um. Teleomorfo: Valsa ambiens ssp leucostomoides Cytospora annulata (48)Conidioma erumpente, pulvinado, negro, dividido verticalmente como gajos de naranja; paredestromática de 4 capas, la de mayor espesor, 45-90 pm, prosenquimática formada por hifasde paredes muy gruesas y gelatinizadas y lumen pequeño; conidióforos ramificados portandocélulas conidiógenas enteroblásticas, cilíndricas afinadas en el ápice, collarete pequeño;conidios unicelulares, incoloros, levemente alantoides, 4-7 x l pm. Teleomorfodesconocido Waydora typica (168)

Conidios de 2 tipos. Unicelulares e incoloros. Conidiomas solitarios o botriosos; conidiosenteroblásticos, macroconidios fusiformes, 16-23 x 5-7 um, microconidios alantoides, 2-3 xl um. Teleomorfo: Botryosphaería ribis . . . . . . . . Fusicoccum sp. (cf Dothiorella) (91)Conidios de un sólo tipo. Holoblásticos, bicelulares y castaños, con estrías longitudinales.Teleomorfo: Botryosphaería rhodina . . . . . . . . . . . . . . . Lasiodiplodia theobromae (92)

Conidióforos reunidos en esporodoquios o en sinemas . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 82Conidióforos solitarios o ausentes 85

Con sinemas. Pie negro, parte superior cubierto por los conidios en masa gris; célulaconidiógena poliblástica, cilíndrica o claviforme, castaña muy clara, con numerosos dientesmuy delgados (espículas); conidios unicelulares, elipsoidales a veces fusiformes, lisos,incoloros. Teleomorfo desconocido Phaeoisaria clematidis (154)Con esporodoquios . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 83

Conidios cuboides y esporodoquios glabros. Base negra, cubierta con una masa de conidiosblanca; células conidiógenas enteroblásticas, cilíndricas, muy largas 12-20 um long; conidiossolitarios o en cadenas frágiles, unicelulares, incoloros. Teleomorfo: desconocido . . . . . .

. . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . Bloxamia truncata (124)

Conidios no cuboides y esporodoquio setoso o con pelos . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 84

32

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86

86’

87

87’

8888’

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89’

9090’

9l

9l’

Con setas simples, erectas, septadas, castañas oscuras, lisas y conidios en masa blanca. Célulasconidiógenas enteroblásticas, subcilíndricas, incoloras; conidios unicelulares, cilíndricos,incoloros, lisos, 10-2] x 2-3 pm. Teleomorfo desconocido

. . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . Vermiculariopsiella immersa var. immersa (165)Con pelos flexuosos, simples a veces ramificados, septados, levemente pigmentados, converrugas castañas y conidios en masa negra. Células conidiógenas enteroblásticas, claviformesa veces cilíndricas, oscureciéndose hacia la base, con collarete oscuro; conidios fusiformes,oliváceos, con estrías longitudinales con anastomosis. Teleomorfo desconocido . . . . . . . .

. . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . Myrothecium cinctum (148)

Conidios de 2 tipos . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 86

Conidios de l sólo tipo . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 88

Ambos tipos de conidios con 2 septos en cruz, un tipo, liso y castaño, aspecto de “trebol de4 hojas” y el otro con espinas y castaños oscuros. Teleomorfo desconocido

Spegazzinia tessarthra (158). . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 87Conidios y ramoconidios

Conidióforo bien diferenciado en un estípite negro y una cabeza conidial, esférica, verdeolivácea; célula conidiógena poliblástica; ramoconidios 0-2 septados (más comunes encultivo); conidios unicelulares, castaños oliváceos, limoniformes, lisos o verrugosos.Teleomorfo desconocido . . . . . . . . . . . . . . . . . . . Cladosporium chlorocephalum (130)Conidióforos no diferenciados en pie y cabeza. Ramoconidios 0-1 septados, lisos oligeramente verrugosos; conidios en cadenas largas, ramificadas, elipsoidales o limoniformes,mayoría unicelulares, castaños oliváceos. Teleomorfo desconocido . . . . . . . . . . . . . . . . .

Cladosporium cladosporioides (129)

Conidios multiseptados 89Conidios 0 a 5-septados 97

Conidios solitarios, arena-ocre pálido, esférico, 80-100 um diám, células terminales conproyecciones dicotómicas pequeñas formado a partir de una célula conidiógena terminal,monoblástca, con ramificaciones dicotómicamente que a su vez se ramifican en todas lasdirecciones, varias veces. Teleomorfo desconocido . . . . Candelabrum brocchiatum (125)Conidios con otras características . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 90

Conidios rectos y simples . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 9l

Conidios espiralados o formados por brazos 92

Conidios elongados, con 16-62 septos transversales, 170-440 pm long, obclaviformes, ápiceredondeado, base cónica truncada, castaño oscuro rojizo. Teleomorfo desconocido . . . . . .

. . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . Sporidesmium adscendens (160)

Conidios cilíndricos, con 3 a lO septos transversales, 20-70 um long, extremos redondeados,oliváceos a castaños, verrugosos o finamente equinulados. Teleomorfo desconocido . . . . .

Torula herbarum (163)

33

9292’

93

93’

94

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95

95’

96

96’

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99

99’

100

lOO’

Conidios espiralados . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 93

Conidios formados por brazos . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 95

Conidios castaños, paredes gruesas, no higroscópicos, nacidos sobre proyeccionesdenticuladas, 2-ll veces espiralados. Teleomorfo: Tubeufia helicoma . . . . . . . . . . . . . . .

. . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . Drepanospora pannosa (135)

Conidios incoloros, paredes delgadas, higroscópicos, espiralados 1-8 veces . . . . . . . . 94

Conidióforo ausente o formado como ramas cortas a partir del micelio reptante; célulaconidiógena terminal, poliblástica, l-4 dientes; colonia efusa, rosada. Teleomorfo: Tubeufiacylindrotheca Helicomyces roseus (146)Conidióforo bien diferenciado, castaño oscuro; célula conidiógena poliblástica, conproliferación simpodial, terminal e intercalar, denticulada o con proyecciones diverticuladas;colonia verde amarillento. Teleomorfo: Tubeufia scopula Helicosporium aureum (147)

Conidios castaños con apéndices incoloros o ligeramente pigmentados, largos, 12-80 um long,conidios formado por varios brazos de 2-4 células cada uno. Teleomorfo desconocido . . .

. . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . Tetraploa aristata (162)

Conidios sin apéndices . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 96

Conidióforos bien diferenciados, con proliferación percurrente, castaños; célula conidiógenamonoblástica, terminal; conidios formados por una célula basal turbinada, castaña y por 2-3brazos, 4-6 septados, más claro hacia el ápice. Teleomorfo desconocido . . . . . . . . . . . . .

. . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . Ceratosporella deviata (126)

Conidióforos semimacronematosos, castaños claros; células conidiógenas terminales, conproliferación percurrente, llevando hasta 7 anelaciones gruesas, castañas oscuras; conidioscastaños, con 4 brazos apretados entre sí y orientados hacia abajo. Teleomorfo desconocido

Eversia subopaca (139)

Colonias blancas, rosadas o verdes (micelio conspicuo) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 98Colonias castañas, formadas principalmente por conidióforos, hifas vegetativas no visibles,inmersas en el sustrato 103

Colonias blancas o blancas con tintes rosados 99Colonias verdes . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . lOl

Conidios l-3 septados, claviformes, apiculados, incoloros. Colonia blanca-vinácea;conidióforos con ramificaciones subverticiladas a verticiladas; célula conidiógena mono opoliblástica formando conidios retrogresivamente o inconspicuamente simpodial. Teleomorfo:Hypomyces rosellus Cladobotryum dendroides (52)Conidios O-septados 100

Colonia blanca. Células conidiógenas fialídicas produciéndose a lo largo del conidióforo;conidios globosos, 2-3 um díám o elipsoidales. 3 x 2 m , en cabezuelas en el ápice de lasfiálides. Teleomorfo: Nectriopsis oropensoídes . . . . . . . . . . . . . . . Acremonium sp.(56)Colonia blanca con tintes rosados. Conidióforos ramificados l-2 verticiladamente, hacia el

34

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102

102’

103103

104

¡05l05’

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107’

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108’

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109’

ápice ramificación penicilada. Células conidiógenas fialídicas, dispuestas de a 2-4, obclavi-formes,con collarete; conidios en varias cadenas largas, tri o tetraradiadas en vista transversal, elipsoidales,ligeramente asimétricos. Teleomorfo: Nectria sp Clonostachys araucaria (130)

Conidios ovoides, elipsoidales, verdes; elongaciones hifales estériles presentes, conanastomosis; conidióforos robustos; células conidiógenas densamente agrupadas, cortas.Teleomorfo: Hypocrea sp . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . Trichoderma hamatum (163)Conidios esféricos; elongaciones hifales con anastomosis ausentes . . . . . . . . . . . . . . l02

Conidios lisos; conidióforos con ramificación dendroide; células conidiógenas dispuestassiguiendo modelo verticilado. Teleomorfo: Hypocrea sp . Trichoderma harzianum (164)Conidios delicadamente ornamentados, en cabezuelas globosas, en el ápice de la célulaconidiógena. Teleomorfo: Hypocrea sp . . . . . . . . . . . . . . . . . . Tríchoderma viride (164)

Conidios 0-septados . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 104

Conidios l a S-septados ll4

Con célula conidiógena politrética. Conidióforos solitarios o agrupados, erectos, simples,castaños; célula conidiógena terminal e intercalar; conidios unicelulares, castaños. Teleomorfodesconocido . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . Spadicoides atra (156)Con célula conidiógena no politrética. holoblástica o enteroblástica lOS

Con célula conidiógena holoblástica 106Con célula conidiógena enteroblástica l lO

Conidios anchamente elipsoidales o obovoides, con surco germinativo, castaños. Conidióforossinuosos, con ramificaciones en ángulo agudo, castaños, equinulados; células conidiógenaspoliblásticas, simpodiales, terminales. Teleomorfo: Plectania platensis . . Conoplea fusca (121)Conidios sin surco germinativos, esféricos a subesféricos, en cadenas, ornamentados,confinados a una cabezuela o zona apical; conidióforos rectos no sinuosos; célulasconidiógenas monoblásticas o poliblásticas, determinadas 107

Células conidiógenas subapicales y laterales sobre ramas cortas, quedando el ápice delconidióforo estéril y setiforme; conidios verrugosos, 7-10 um diám. Teleomorfodesconocido . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . Periconia lateralis (153)

Células conidiógenas apicales l08

Conidióforos macronematosos agrupados en fasículos, con los estípites densamente apretadosentre sí, verrugosos hacia la base; conidios equinulados, 5-8 um diám. Teleomorfodesconocido . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . Períconia tirupatiensis (153)Conidióforos solitarios 109

Apice del conidióforo circinado. Distinguiéndose un estípite negro brillante y una cabezuelacastaño fumosa; conidios con espinas cilíndricas, 7-l3 um diám. Teleomorfo desconocido

. . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . Pericom'a circinata (151)

Apice no círcinado Conidióforos solitarios o surgiendo de a dos, estípite negro brillante,

35

llO

llO’

lll

lll’

112

112’

ll3

ll3'

ll4ll4’

115

115’

ll6¡16’

ll7

ll7’

cabezuela esférica, castaña, compacta; conidios verrugosos, castaños, 4-7 um diám.Teleomorfo desconocido . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . Periconia minutissima (152)

Conidióforos micronematoso, rastreros, castaños oliváceos, acompañados por setas erectas, conun tronco principal liso o levemente ornamentado, castaño oscuro en la base, apicalmente conramificaciones subdicotómicas, aclarándose hacia los extremos, más ornamentadas; conidioscilíndricos o fusiformes, rectos o ligeramente curvados, en manojos formando agregadosblancos visibles con lupa, en las bases de las setas. Teleomorfo desconocido . . . . . . . . . .

. . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . Gyrothrix podosperma (143)Conidióforos macronematosos, sin setas lll

Con células conidiógenas fialídicas en verticilos a lo largo del conidióforo, dejando la porción apicalde éste libre; conidios ovales, 2-3 x 1-2 um, en cirro verde seco con lupa. Teleomorfo:Chaetosphaeria chloroconia . . . . Gonytrichum chlamydosporium var. chlamydosporium (142)Con células conidiógenas fialídicas apicales 112

Conidiogénesis múltiple en el interior del collarete. Conidióforos castaños oscuros, cabezuelaconidial verdosa; conidios elipsoidales, 2-3 x 1,5-2 um. Teleomorfo: Chaetosphaeriavermícularíoides . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . Chloridium virescens var. virescens (128)Conidiogénesis simple, produciendo conidios en sucesiones basípetas . . . . . . . . . . . . ll3

Conidios elipsoidales, 2,5-3,5 x l,5-2 um, incoloros. Teleomorfo: Chaetosphaeria preusii .. . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . Chlorídium preussii (59)

Conidios con base truncada y ápice redondeado, ligeramente pigmentados; collarete oscuro.a veces, notorio. Teleomorfo: Chaetosphaería myriocarpa Chloridium clavaeforme (58)

115120

Conidios siempre uniseptadosConidios l a S-septados

Con célula conidiógena politrética. Conidióforos simples, erectos, en grupos pequeños,castaños; célula conidiógena terminal e intercalar; conidios elipsoidales, castaños, con un septonegro grueso, lisos. Teleomorfo desconocido . . . . . . . . . . . . . . . Spadicoides bina (156)Célula conidiógena no politrética, holoblástica o enteroblástica l l6

Célula conidiógena holopoliblástica denticulada . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . l l7Célula conidiógena enteroblástica l 18

Colonia efusa, amarillo-verdoso. Conidioforos levemente pigmentados; célula conidiógena casiincolora, ligeramente ensachada en el ápide, dientes cilíndricos; conidios fusiformes, incoloros,lisos. Teleomorfo desconocido . . . . . . . . . . . . . . . . . . . Dactylaria chrysosperma (133)Colonia laxa, castaño oscura, con masa conidial blanca basal pulverulenta; compuesta por hifascastañas oscuras ramificadas dicotómicamente con anastomosis formando una red aracnoide laxay por conidióforos incoloros o ligeramente amarillentos, simples, rectos o flexuosos. surgiendolateral o terminalmente de hifas oscuras; conidios ligeramente alantoides, incoloros, generalmente2-gútulas por células. Teleomorfo desconocido . . . . . . . . . . . . . . . . . Neta patuxentica (150)

36

118

118’

119

119’

120120’

121

121’

122

122'

123

123'

124

124’

Célula conidiógena enteroblástica con proliferaciones percurrentes quedando con variasanelaciones; conidios holoblásticos, solitarios, ovoides, l septados, castaños, célula inferiorligeramente más clara, llevando en su base restos de la célula conidiógena. Teleomorfodesconocido . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . Endophragmiella unisepta (138)

Célula conidiógena enteroblásticas fialídicas, sin proliferaciones; conidios enteroblásticos . . 119

Monofialídica. Conidióforos castaños, reducidos a 1-2 células o ausentes; célula conidiógenalageniforme, castaña, vientre elipsoidal a subcilíndrico, collarete cilíndrico, 20-30 pm long;conidios en cadena, amarillos en masa, cilíndricos con extremos obtusos, l-septados, incoloros.Teleomorfo desconocido . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . Chalara hughesii (127)Polifialídica. Conidióforos 3-5 septados, castaños claros, 30-85 um long, acompañados por setascastañas oscuras, largas, hasta 250 um long; célula conidiógena generalmente con un collareteterminal, ocasionalmente con 1-2 collaretes laterales; conidios en manojos blancos, falcados, conapéndices terminales. Teleomorfo deconocido Díctyochaeta novae-guineensis (134)

Conidios 1 a 3-septados 121Conidios 4 a 5-septados . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 123

Célula conidiógena politrética. Conidióforos agrupados o esparcidos, castaños oscuros aclarándosehacia el ápice, célula apical ensanchada, la basal bifurcada; células conidiógenas terminales eintercalares; conidios cilíndricos con extremos redondeados, 2-septados, castaños, con septosgruesos y negros, ligeramente apiculados en la base. Teleomorfo desconocido . . . . . . . . . . .

. . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . Spadicoides klotzschií (157)

Célula conidiógena no politrética 122

Conidios elipsoidales, 1-2 septados, castaños, blásticos, llevando en su base restos de la célulaconidiógena; célula conidiógena enteroblástica con proliferaciones percurrentes quedando con 1-3anelaciones;. Teleomorfo desconocido . . . . . . . . . . . . . . Endophragmiella pallescens (137)Conidios claviformes, 3-septados, con una gútula por célula, castaños Conidióforos complejos,en grupos a partir de un pequeño estroma, castaños oscuros, la última célula puede funcionarcomo conidiógena u originar a su vez varias células conidiógenas. Teleomorfo desconocido .

Edmundomasonia pulchra (136)

Conidióforos acompañados por hifas capitadas, rodeadas de un cubierta mucilaginosa, estérilesy células conidiógenas fialídicas. Fíalides con vientres lageniformes 18-20 um long, castañooscuro, collarete laciniado en el extremo, 15-17 pm long; conidios en cadenas cortas (4),cilíndricos con extremos romos, 5-septados, castaños, septos negros, células terminales mas cortasy mas claras. Teleomorfo desconocido . . . . . . . . . . . . . . Sporochisma nigroseptatum (159)Conidióforos no acompañados por hifas capitadas; células conidiógenas no fialídicas. Poliblásticao monotrética . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 124

Poliblástica, percurrente, lóculos conidiógenos simpodiales; conidios fusiformes, en cadena, 4-5­septados, incoloros. Teleomorfo desconocido . . . . . . . . . . . Pleurotheciopsis websterii (155)Monotrética, terminal; conidios cilíndricos u obclavados, extremos redondeados, 4-5-septados,castaños oliváceos. Teleomorfo: Kirschsteiniothelia aethiops . . . . Dendryphiopsis atra (105)

37

3- Descripción De Las Especies

ASCOMYCOTINA

Hymenoascomycetes

CALOSPHAERIALES

CALOSPHAERIACEAE

l a- Erostella minutissima Romero & Samuels, Sydowia 43: 236, 1991.

(Fig. l: A-C; Lám. I: 1-5)

Peritecios globosos, glabros, 150-200 um diám., inmersos o superficiales, solitarios o

gregarios, negros; con cuellos centrales, a veces excéntricos, rectos, no ramificados, 200-250 um de

largo, perpendiculares u oblicuamente paralelos a la superficie del sustrato. Hifas ascogénas discretas,

aseptadas, 20-30 x 2 um, proliferantes, produciendo secuencialmente aseos laterales y terminales. No

se observaron ganchos. Ascos octosporados, oblongo-claviformes, 15-18 x 4-5 um, ápices

conspicuamente gruesos, con un aparato apical refringente muy pequeño, inamiloide. Ascosporas

cilíndrico-oblongas, 3-5 x 1,5-2 um, unicelulares, incoloras. Parálisis excediendo el largo de los ascos,

septadas, célula apical claviforme 3-5 um diám., raramente ramificadas, abundantes. Sobre corteza,

a veces madera en corte transversal.

Anamorfo: desconocido.

Material estudiado: Romero 39/4-13 VIII-81 (Holotipo BAFC 32023); 5, 22/4-13 VII-81;

9, ll, 18, 20, 22, 23, 24, 31, 37, 38, 40/4-13 XI-8l; 30/4-13 II-82; 7, 10, 16, 25, 28/4-13 V-82; 4,

38

ll, 24, 25, 29/22-4 Xl-81; 38/22-4 V-82; 4/22-8 XI-81; 35/22-8 II-82; 40/4-13 V-82; l, 9, 13, 16,

18, 22, 24, 25, 27, 31/4-13 VIII-82; 7, 25, 29/4-13 XI-82; 13, 15, 22/4-13 II-82; 14, 2], 26, 30/4-l3

V-83; 8, 15, 36/22-4 VII-82; 36/22-4 XI-82; 31, 34/22-4 II-83; lO, 40/22-4 V-83; 9, 22/22-8 VII-82;

8/22-8 XI-82 (BAFC).

Observaciones:

Erostella minutissíma difiere de Erostella minima (Tul. & Tul.) Traverso, especie tipo del

género Eroslella (Sacc.) Traverso (sensu Barr 1990), por tener ascosporas más pequeñas y cuellos más

largos.

Los ascos de E. minutissíma se desprenden de la hifa ascógena dejando restos de la base del

asco adheridos a la misma (Flechas en Fig. l: C). Debido al tamaño muy pequeño de los ascos, lo

único que se pudo observar en sus ápices es un pequeño punto refringente y no el tipo de estructura

apical.

Nota: Recientemente Barr (1993) expone una nueva versión de la familia Calosphaeriaceae

incluyendo los géneros: Calosphaeria (sin. Wegelina), Enchnoa, Jattaea (para algunas especies

incluidas en Romellia), Pachytrype y Pleurostoma (para las especies tipo de Romellia, Togninia y

Erostella). De acuerdo con el material estudiado oportunamente, se podría transferir E. minutissíma

a Jattaea pero no a Pleurostoma. Por el momento se mantendrá E. minutissima hasta la revisión de

los tipos involucrados.

2 b- Jattaea stachybotryoides Romero & Samuels, Sydowia 43: 234, 1991.

(Fig. 1: D-H; Lám. n: 1-5)

39

Peritecios con vientres globosos, 180-350 pm diám., pared peritecial negra, cubiertos por un

tomento castaño dorado de 2-5 pm de espesor, compuesto por hifas amarillentas de paredes gruesas

difundiendo un pigmento amarillo en KOH 3%, inmersos o superficiales, solitarios o gregarios; con

cuellos centrales, rectos o ligeramente ondulados, negros, raramente ramificados, glabros, 200-350 pm

long. Hifas ascogénas discretas, aseptadas, 9-17 x 2-3 um, proliferantes, produciendo secuencial y

simultáneamente células elipsoidales, 3-5 x 2-3 pm, terminales y laterales, dehiscentes, a partir de las

cuales surgen los ascos blásticamente (?). No se observaron ganchos. Ascos octosporados,

oblongo-claviformes, 18-25 x 4-6 pm, ápice conspicuamente grueso. Ascosporas cilíndrico-oblongas,

3-6 x 1,5-2 pm, unicelulares, bigutuladas, incoloras. Parálisis excediendo el largo de los ascos, 2-6

pm diám. en el ápice, septadas, no constreñidas, pared delgada, pocas veces ramificadas, abundantes.

Sobre corteza.

Anamorfo: desconocido.

Material estudiado: Romero 6 (Holotipo BAFC 32019), 29/4-13 XI-82 ; 30/22-4 XI-81; 6,

31/22-8 XI-81; l, 34/4-13 II-83; 18/4-l3 V-83 (BAFC).

Observaciones:

Según Barr (l985) los ascos de Jattaea Berlese se hallan agrupados en fascículos sobre hifas

ascógenas cortas. Pero al observar los ascos en un isotipo de Jattaea microtheca (Cke. & Ellis)

Berlese (Ellis, North American Fungi 580; BPI, 2 porciones), especie tipo del género, se comprobó

(¡ue también, como en nuestra especie, surgen de células elipsoidales apicalmente dispuestas en las

hifas ascogénas. En J. microtheca se observaron abundantes ganchos y ascos claviformes pedicelados.

El tomento castaño dorado, en contraste con los cuellos negros, de esta nueva especie, es un

carácter peculiar. Las paredes de la hifas que lo componen tienen una coloración amarilla. Dentro del

40

orden Calosphaeriales, otros miembros poseen también tomento peritecial (Calosphaeria ludens Berl.

y J. microtheca (C. & E.) Berl., Berlese 1900). J. microtheca podría ser la especie más parecida a J.

stachybotryoides y se diferencia porque el tomento de J. microtheca es inconspicuo y castaño y posee

un cuello muy corto, tipo papila.

3 c- Pleurostoma ootheca (Berk. & Cunis) Barr, Mycologia 77: 564, 1985.

Sphaeria ootheca Berk. & Curtis, Grevillea 4:]08, 1876.

Sphaeria mucida var. rostellata Schwein. fide Berkeley 1876.

Coronophora 00theca (Berk. & Curtis)Sacc., Syll. Fung. l: 106, 1882.

(Fig. 1: I-L; Lám. III-IV)

Peritecios negros con brillo metálico, a veces cobrizos en la base, globosos, papila central,

200-300 pm diám.. Hifas ascogénas septadas, ramificadas, proliferantes. Ascos subglobosos,

asimétricos, con la pared engrosada subapical y lateralmente, con septo basal grueso, con apéndice

filamentoso muy delgado en su base, polisporados, 15-20 x 7-10 pm. Ascosporas alantoides o

reniformes, incoloras, unicelulares, 2,5-3(4) x l-l,5 pm. No se observaron paráfisis. Sobre corteza.

Anamorfo: desconocido.

Material estudiado: Romero 4. 39/4-13 VIII-81; 33/4-13 Xl-8l; 38/4-13 II-82; 14/4-13V-82;

9, 12, 20, 24/4-13 VIII-82; 39/4-13 XI-82; l, 19/4-13 II-83 (BAFC).

Observaciones:

De acuerdo con Barr (1985) se reconocen 2 especies en el género Pleurostoma Tul. & Tul.,

41

P. candolleí Tul. & Tul. y P. ootheca (Berk. & Curtis) Barr. Las diferencias entre ellas no son muy

marcadas y están basadas en los tamaños de los peritecios, de las ascosporas y en la posición de la

papila.

Nuestro material fue comparado con: l) el holotipo de Sphaeria ootheca Berk. & Cum, sobre

Quercus sp., Berk. n° 2110, kl, 2) Sphaeria mucida var. rostellata Schwein., n° 7294, K! y 3)

Coronophora ootheca (Berk. & Curt.) Sacc., Kl. Con el que más coincide en medidas y morfología

es Sphaeria mucida var. rostellata que justamente ya fue considerada sinónimo de S. ootheca por el

mismo Berkeley (|876). Con los otros materiales hay algunas diferencias de tamaño poco

significativas.

El material estudiado por Barr (op. cít.) se hallaba sobre madera descortezada, aparentemente,

de Quercus sp.

Estudios realizados con microscopio de fluorescencia, utilizando calcoflúor (Romero & Minter,

¡988) pusieron en evidencia detalles del asco y de las hifas ascógenas. Los ascos se disponen

simpodialmente sobre la hifas ascógenas (Lám. IV: l). El asco tiene, por un lado, un engrosamiento

de pared (Lám. llI: l; Lám. IV: 2) en la región subapical y lateral (fuertemente fluorescente)

haciéndolo asimétrico y por otro, un septo muy grueso basal (Lám. IV: l) (también fuertemente

fluorescente) que lo delimita de la célula ascógena, a partir del cual parece desprenderse por

esquizolisis. Dicha fractura aparentemente ocurre por el medio del septo, quedando parte del mismo

en la base del asco libre y parte en la célula ascógena (Lám. Ill: l; lV: 2). Podríamos homologar este

tipo de separación, con la separación esquizolítica de los conidios, fenómeno muy generalizado entre

anamorfos de muchos ascomicetes pero ésta es la primera vez que se observa en el desprendimiento

de ascos. Durante este proceso o después de la separación del asco, parece formarse un apéndice

filamentoso en la base del mismo, que aparentemente nace desde el interior del septo y asoma por el

42

centro de éste (Lám. IV: 3).

El engrosamiento de la región superior lateral del asco y el septo basal de compleja estructura

son dos características muy peculiares y, al menos por el momento, únicas. Tampoco es claro qué

función cumple este engrosamiento subapical ya que no se observó nada que indicara que actúe en

la descarga de las ascosporas; por el contrario puede pensarse que es una estructura que ha perdido

tal función ya que los ascos se desprenden como una unidad. El microscopio de fluorescencia permitió

observar todas estas estructuras y detalles, pero no se pudo interpretarlas en su totalidad;

evidentemente se requieren otros tipos de estudios, por ejemplo, con microscopio electrónico.

La especie se cita por primera vez para el país.

DIAPORTHALES

GNOMONIACEAE

4 a- Gnomoniella dimorphospora Romero Samuels, Sydowia 43: 238, 1991.

(Fig. 2: A-D; Lám. v: 1-7)

Peritecios globosos, 250-350 um diám., negros, semiinmersos, solitarios, no estromáticos, con

cuellos centrales, rectos, no ramificados, cilíndricos, 150-350 x 75-80 pm; vientres y cuellos cubiertos

por hifas castañas, aclarándose hacia el ápice, septadas, no ramificadas, onduladas, 2,5-3 pm diám.,

afinándose hacia el ápice; pared peritecial 20-25 um de espesor, textura angularis. Ascos cilíndricos

a claviformes, 20-30 x 5-6(8) um, ápice simple, flotando libremente en la cavidad del peritecio en la

43

madurez, con 4 ascosporas grandes y 4 pequeñas, raramente con 8 ascosporas de tamaño uniforme.

Ascosporas unicelulares, bigutuladas, tuberculadas, incoloras; ascosporas grandes elipsoidales, 4-6(7)

x 2,5-3(5) um, ascosporas pequeñas subglobosas, l,8-2,5 um diám.. Parálisis 50-70 x 3-4 um,

septadas, levemente constreñidas en los septos, no ramificadas, pared delgada, ápices claviformes a

veces, abundantes. Sobre madera descortezada.

Anamorfo: desconocido.

Material estudiado: Romero 8, 23, 30/22-411-82; 37/22-8 VII-81; 28, 35/22-8 11-82; lO/4-l3

VIII-82 (Holotipo BAFC 32025), junto con Hyphoderma setigerum ; 30/4-¡3 V-83; ¡0/22-4 VIII-82;

4/22-4 Xl-82; 9, 27/22-4 V-83; 5/22-8 II-83 (BAFC).

Observaciones:

Gnomoniella dimorphospora se distingue de las otras especies del género, por su habitat

lignícola, por la presencia de apéndices hifales que surgen de la pared peritecial y por sus ascosporas

ornamentadas. El carácter lignícola es inusual ya que esta familia se considera principalmente

herbícola (Barr, 1978; Monod, 1983).

Una de las especies más próximas podría ser Gnomoniella abortiva Monod. Esta especie y la

nuestra comparten la característica de poseer ascosporas dimórficas. Pero se diferencian en l) la

morfología de las ascosporas: oblongas-fusiformes en G. abortiva vs ovales las grandes, y

subglobosas, las pequeñas, en G. dimorphospora; 2) forma del asco y aparato apical: fusiforrne y

aparato apical conspicuo en G. abortiva vs cilíndrico-claviforme en G. dímorphospora; y 3) peritecios

glabros en G. abortiva vs peritecios cubiertos por pelos hifales en G. dimorphospora. G. abortiva fue

descripta sobre tallos y pecíolos de Rosaceae.

Cabe destacar que una de las colecciones de G. dimorphospora se desarrolló dentro del

44

basidiocarpo de Hyphoderma setigerum (Fr.) Donk.. A pesar de que se observó que las hifas habían

crecido a través del basidioma, no se pudo determinar parasitismo en ninguna dirección.

En cuanto a nuestro país, Arambarri et Gamundí (1985) describieron otra especie en este

género, G. nothofagi Arambarri et Gamundí, sobre hojas caídas de Nothofagus pumilio, procedentes

de Neuquén. Esta especie no sólo difiere de la especie nueva aquí propuesta, en cuanto al habitat, sino

también en su morfología general y dimensiones.

5 b- Gnomoniella lignicola Romero & Samuels,Sydowia 43: 241, 1991.

(Fig. 2: E-G; Lám. V: 9-11)

Peritecios globosos, 400-800 pm, negros, superficiales, solitarios, no estromáticos, glabros;

con cuellos largos, 400-500 pm long., rectos, cilíndricos, 80 pm diám.. Pared peritecial 18-30 pm de

espesor, textura angularis . Ascos cilíndricos, octosporados, ascosporas uniseriadas, anillo apical

conspicuo, I ', 75-95 x 7,5 pm. Ascosporas asimétricas con un lado curvo y otro plano, incoloras,

unicelulares, lisas, egutuladas, 9-12 x 4,5-5,2 pm. Paráfisis no ramificadas, paredes delgadas,

levemente constreñidas en los septos, ca. 100 x 9 pm, afinándose hacia el ápice, 4,5 pm diám.,

escasas. Sobre madera descortezada.

Anamorfo: desconocido.

Material estudiado: Romero l, 7, l4, 27/22-8 Xl-81; l, 7, 14, 26 (Holotipo BAFC 32026)

/22-8 XI-8l; 15, 35/22-8 V-82; 16/22-4 11-83; 17/22-8 XI-82; 26/22-8 V-83.

45

Observaciones:

Gnomoníella ligm'cola se distingue por poseer esporas uniseriadas mientras que las especies

europeas estudiadas por Monod (1983) son biseriadas y, además, como la especie anterior, por su

habitat lignícola.

VALSACEAE

6 a- Diaporthe aff. woodii Punithalingam, Mycol. Pap. 136: Sl, l974.

(Fig. 2: H-K; Lám. V: 8)

Peritecios negros, aislados, vientres inmersos en la madera, cuellos curvados casi paralelos

al sustrato, largos 2-5 mm long. Estroma efuso formando externamente una capa negra sobre el

sustrato, internamente líneas negras por debajo de los vientres. Ascos claviformes, sésiles, anillo apical

conspicuo, 40-45 x 8-10 pm. Ascosporas biseriadas, elipsoidales, con extremos ligeramente agudos,

uniseptadas, con 2 gútulas por célula, incoloras, lisas, 10-12 x 3-4 pm. Ejemplar relativamente joven

pudiéndose observar todavía paráfisis y sucesivos “croziers”. Sobre madera.

Anamorfo: desconocido. La mayoría de la especies del género Diaporthe Nitsch. tienen como

anamorfo especies de Phomopsis Sacc. En nuestro caso no encontramos ningún anamorfo con el que

lo podamos relacionar.

Material estudiado: Romero 8/22-8 XI-82 (BAFC).

Observaciones:

Este material se ubica tentativamente bajo este nombre. Coincide con la descripción de D.

woodi realizada por Punithalingam (op. cit.) en cuanto al asco. ascosporas y al sustrato del cual fue

aislado. Pero es difícil su identificación difinitiva con D. woodíi Punit., ya que este autor sólo la

describió en cultivo sin especificar los datos sobre el sustrato natural. De los datos de cultivo difiere

por la disposición de las ascosporas en el interior de asco, por la forma y, sobre todo, por las medidas

del ancho de las mismas.

Lo más llamativo del material en cuestión, es justamente el aspecto general de estos cuellos

tan largos, carácter no muy común en el género. Otra especie que parece tener cuellos largos (hasta

3 mm) es, D. manihotis Punit. (1982), pero en dicha especie los peritecios están agrupados,

observándose discos estromáticos que contienen lO-lS peritecios por grupo.

También se han consultado los trabajos de Wehmeyer (1930), Kobayashi (1970), entre otros,

no encontrándose una ubicación más satisfactoria para este ejemplar.

De acuerdo con Farr (1973), Spegazzini ha descripto varias especies en este género, las cuales

han sido revisadas por Wehmeyer y reubicadas en especies de otros géneros.

7 b- Valsa ambiens (Pers.:Fr.) Fr. ssp. leucostomoides (Peck) Spielman, Canad. J. Bot. 63(8):

1361, 1985.

Bas. Valsa leucostomoides Peck, NY State Bot. Rep. 382103, 1885.

Para la lista completa de sinónimos ver Spielman op. cit.

(Fig. 3: A-H)

47

Peritecios reunidos en estromas discoides. Disco estromático circular a irregular, aplanado,

más o menos prominente, semiinmersos, blanco tiza a gris claro, furfuráceo, 500-700 um diám.

Cuellos agrupados o esparcidos en el centro del disco. Peritecios negros, circinados, 2- 10por estroma,

300-450 um diám.. Ascos claviformes, paredes delgadas, 30-45 x 6-8 um. Ascosporas alantoides,

castaño claras, 8-10 x 2-3 um. Sobre corteza.

Anamorfo: Cytospora annulata Ellis & Everh., Proc. Acad. Sci. Philadelphia 45: 160, 1893.

Disco circular gris oscuro, con un ostíolo, único, central, negro, generalmente el disco se

reduce quedando el ostíolo cónico y negro. Lóculo formados por varias cámaras. Conidióforos

ramificados. Células conidiógenas enteroblástcas, cilíndricas. Conidios alantoides, incoloros,

unicelulares, 3-5 x 0,5-1 um.

Material estudiado: Romero l (C. annulata), 15/4-13 XI-81; 7/4-l3 XI-82; l/4-l3 XI-82; 2

(C. annulata) /4-l3 II-83 (BAFC).

Observaciones:

Nuestro material coincide con la descripción de Spielman (1985), excepto por las medidas que

son un poco menores en este material. En esta ocasión también se encontraron estromas teleomórficos

intercalados con estromas anamórficos.

Otras especies de este género, ya sea en su estado perfecto o imperfecto, han sido citadas sobre

Eucalyptus. Por ejemplo, Farr et al. (1989), citan Valsa eucalypti Cke. 8L Harkn., descripta

originalmente sobre E. globulus Labill., pero según Spielman (op. cit)., se trata de una especie del

género Leucostoma. Recientemente, Old et al. (1991) proponen a Valsa ceratosperma (Tode:Fr.) Maire

como el teleomorfo de Cytospora eucalypticola van der Westhuizen, ambos estados encontrados sobre

distintas especies de Eucalyptus en Australia y Japón. También realizaron estudios de cultivos

48

estableciendo dicha relación. Valsa ceratosperma van der Westh., de acuerdo con Spielman (1985)

y con Old et. al.(op. cit.) difiere de V. ambiens ssp. leucostomoídes, en que el disco estromático es

casi inconspicuo por la cantidad de cuellos periteciales que lo cubre y que superan en longitud el nivel

del mismo. Además posee un endostroma muy desarrollado y, según lo establecido en el trabajo de

Old et aL, también tiene anamorfo diferente.

Old et al. (¡986) realizaron un estudio sobre hongos aislados de cancros en eucaliptos del

sudeste de Australia, en el cual demostraron que C. eucalypticola no era la especie causante de los

cancros, sí coloniza heridas provocadas por otros y estimula la formación de “kino”.

Con respecto a nuestro país, Spegazzini describió Cytospora australiae (1880) y C. eucalyptina

(1899) sobre ramas en descomposición de E. globulus. Las especies de Valsa propuestas por

Spegazzini han sido tranferidas a otros género según Farr, (1973) y ninguna de ellas se hallaba sobre

Eucalyptus.

Esta es la primera vez, que se cita V. ambiens ssp. leucostomoídes sobre Eucalyptus y en la

Argentina.

l-IYPOCREALES

HYPOCREACEAE

8 a- Hypocrea nigricans (Imai) Doi f. nigricans (Imai) Doi, Bull. Nat. Sci. Mus. Tokyo 15:

732, 1972.

Chromocrea nigricans lmai, Trans. Sapporo Nat. His. Soc. l4: 102, 1935.

(Fig. 3; I-L)

Estromas negros externamente, algunas veces negro verdosos, discoides, dispersos, 2-4 mm

diám.. Región ostiolar “textura angularis”, compuesta por células de paredes gruesas y verdosas.

Región interna “textura intricata”. Peritecios globosos o elipsoidales por presión mutua, 100-170 um

diám. Ascos cilíndricos, ló-esporados, 50-70 x 5 um. Ascosporas globosas, levemente ornamentadas,

verdes en masa, 3-4 um diám.. Sobre madera.

Anamorfo: Trichoderma sp. sensu Doi ([972).

Material estudiado: Romero 20, 25/4-13 II-82; 9/4-13 V-82; 21/22-4 VIII-81; 16/22-4 Il-82;

6, 7, 9, 14, 18/22-8 VIII-81; 2, 20, 3l/22-8 XI-81; 20/22-8 lI-82; 26, 36/4-l3 XI-82; 20, 33/4-[3

V-83; 10, 25/22-4 VIII-82; 10/22-4 V-83; 2, 8/22-8 VIII-82; 7/22-8 II-83 (BAFC).

Observaciones:

Doi (1972) realizó la presente combinación estudiando material japonés sobre distintas maderas

en descomposición, sobre hojas muertas, sobre Coriolus 5p., etc. Obtuvo en cultivo Trichoderma sp.,

estado anamorfo de esta especie. En un trabajo posterior del mismo autor (1976: 126) fue citada por

primera vez para Brasil, asociada con Hypocrea schweintzii (FL) Sacc., sobre corteza.

A partir de esta muestra se obtuvo en cultivo el estado anamorfo tipo Tríchoderma, coincidente

con el descripto por Doi (op. cit.) para esta forma. Ello ayudó a tomarla decisión de ubicar la muestra

estudiada bajo este nombre, ya que se dudaba debido a su parecido con H. pseudonígricans Doi (op.

cit)., pues las diferencias en el estado perfecto no son muy marcadas. Además, nuestro material tiene

caracteres similares a ambas especies, por ejemplo, el estroma es más parecido al de H. nigricans f.

nigricans y las ascosporas a H. pseudonigricans, en cuanto a tamaño y ornamentación.

La especie ha sido citada por primera vez para la Argentina (Romero, 1987).

9 b- Hypomyces aureom'tens Tul. & Tul., Sel. Fung. Carp. 3: 64, 1865.

(Fig. 3: M-Q)

Peritecios piriformes, amarillo-ocráceos, lisos o levemente pruinosos, 130-200 pm diám.,

gregarios sobre un subículo hifal laxo blanco. Ascos cilíndricos, claviformes, S-esporados, 70-90 x

4-6 pm. Ascosporas uniseriadas, l-septadas, ligeramente constreñidas en el septo, célula superior más

ancha y más corta que la inferior, incoloras, finamente espinulosas, alguna veces la célula superior

termina en un pequeño apículo, 7-10 x 2-3 pm. Sobre corteza.

Anamorfo: Gliocladium penicillioides Corda, sensu Samuels (1976).

Material estudiado: Romero 30/22-8 VIII-82 (BAFC).

Observacines:

Este material fue determinado siguiendo a Samuels (op. cit.). Con respecto al color del

subículo, Samuels aclara que al principio es blanco y que posteriormente se torna amarillo oro.

La especie ha sido citada por primera vez para la Argentina (Romero, 1987).

10 c- Hypomyces ochraceus (Pers.:Fr.) Tulasne, Selecta Fung. Carp. III: 4|, 1865.

(Fig. 4: A-C)

Peritecios piriformes, amarillo-ocráceos o ambar, 150-300 x 190-390 pm, gregarios sobre un

subículo hifal laxo blanco a ligeramente ocráceo. Ascos cilíndricos, 8-esporados, ápice grueso

atravesado por un canal, ¡90-250 x 7-8 pm. Ascosporas uniseriadas, cilíndrico-fusiformes, con

51

apéndices cónicos puntiagudos levemente curvados en cada extremo, l-septadas cuando maduras,

ligeramente constreñidas en el septo, incoloras, equinuladas, 25-30 x 5-7 pm. Sobre corteza.

Anamorfo: desconocido.

Material estudiado: Romero 24/22-4 V-83 (BAFC).

Observaciones:

Por el momento se le adjudica este nombre a dicho ejemplar pero según Rogerson (com.pers.)

puede ser que el nombre correcto sea H. armeníacus Tul.; también señaló que el estado anamorfo

podría ser Cladobotryum apiculatum.

La especie se cita por primera vez para nuestro país.

ll d- Hypomyces rosellus (Alb. et Schw.) Tul. Ann. Sci. Nat. ser. IV, 13: 12, 1860.

(Fig. 4: L-M)

Peritecios piriformes, rosado oscuros, 270 pm diám., sobre un subículo blanco. Ascos no se

pudieron observar. Ascosporas uniseptadas, fusiformes o elípticas, apiculadas, incoloras, verrugosas,

18-28 x 5-7 pm. Sobre corteza.

Anamorfo: Cladobotryum dendroides (Bull. ex Mérat) Gams et Hoozemans, Persoonia 6: 103,

1970.

Colonia blanca, vinacea o púrpura. Conidióforos incoloros a púrpura, de pared delgada a

gruesa, con ramificaciones subverticilada a verticilada. Célula conidiógena subulada, mono o

poliblástica formando conidios retrogresivamente o inconspicua-mente simpodial. Conidios l-3

52

septados (pocas veces 4 septos), claviformes, apiculados, incoloros. 20-33 (16) x 7-10 pm. Sobre

madera.

Material estudiado: Romero l2 (teleomorfo)/22-8 II-83; ll (anamorfo) /22-8 VIII-82

(BAFC).

Observaciones:

Este ejemplar (12/22-8 II-83) se pudo identificar debido al color rosado característico y a sus

ascosporas aunque parece estar demasiado maduro. Se encontró micelio rosado en varias

oportunidades en el suelo alrededor de los tocones. Dos muestras fueron halladas sobre corteza y

solamente una de ellas tenía peritecios con ascosporas pero carecía de ascos.

También se halló C. dendroides (l 1/22-4 VIII-82) sobre corteza, estado anamorfo de H.

rosellus de acuerdo con Hoog (1978). Dicha muestra se cultivó en los medios APG, ME, OM y CM.

En CM dió un micelio inmerso, incoloro, difundió un pigmento rosa al medio y produjo pocos

conidios. En APG originó un micelio aéreo casi blanco. En ME y OM dió micelio amarillo aéreo,

muchos conidios y reverso ocre. En ningún medio se obtuvo el teleomorfo.

Spegazzini (1919) citó H. rosellus para Brasil sobre Polystíctus pinsitus.

Nuestro material, en el estado sexual, coincide con la descripción de Dingley (1951). Tubaki

(1975 a) citó H. rosellus para Japón, aclarando que los peritecios son poco frecuentes mientras que

su anamorfo Cladobotryum dendroides (Bull.) Gams et Hoozemans es muy común.

La especie se ha citado por primera vez para la Argentina (Romero, 1987).

12 e- Nectria aureo-fulva Cke. & Ellis, Grevillea 7: 8, 1878.

Cucurbitaria aureo-fidva (Cke. & Ell.)Kuntze, Rev.Gen.Plant 3 (2): 461, 1898. fide Samuels

1976: 8|.

(Fig. 4: D-G)

Peritecios globosos, 250-400 pm diám., o pomiformes 370- 440 x 250-350 pm, en grupos de

2-30 sobre un estroma, de color anaranjado. Pared peritecial 40-50 pm de espesor formada por 2

capas pseudoparenquimáticas, una externa de 25-35 pm de espesor, de células esféricas o angulares

de 7-10 pm diám., de paredes delgadas, otra interna 15-20 um de espesor, de células rectangulares,

de paredes gruesas; papila ostiolar corta o ausente, ostíolo central, apareciendo como un disco

ligeramente cónico translúcido. Ascos clavifonnes, ápice romo, anillo presente, maduración sincrónica,

8-esporados, 55-80 x 7-9 um. Ascosporas ellipsoidales, a veces con extremos ligeramente agudos,

bicelulares, no constreñidas o levemente, incoloras, lisas o suavemente equinuladas, formadas en toda

la longitud del asco, biseriadas en el ápice, 9-12 x 4-5 pm. Sobre corteza.

Anamorfo: Dendrodochium sp. de acuerdo con Samuels (op. cit.)

Material estudiado: Romero l/4-l3 VIII-81; 35/4-13 VIII-81 (BAFC).

Observaciones:

Estas muestras coinciden con la descripción de Samuels (op. cit.), quién estudió tanto material

sobre sustrato como también cultivos, obteniendo esporodoquios a partir de ascosporas en OA

(agar-avena arrollada) y CMD (agar-harina de maíz-dextrosa) pero en ningún medio obtuvo peritecios.

Este material parece ser joven pues se han observado varios “croziers” sucesivos y grupos de

54

ascos en distinto estado de desarrollo (Fig. 4: F).

La especie se cita por primera vez para la Argentina.

l3 f- Nectria ochroleuca (Schweinitz) Berk. Grevillea 4: 16, 1875.

Para la lista de sinónimos ver Samuels op. cin; 7l.

(Fig. 4: N-P)

Peritecios globosos a pomiformes 250-360 um diám., en grupos de 2-30 sobre un estroma,

de color anaranjado pálido. Papila ostiolar ausente, ostíolo central, apareciendo como un disco

ligeramente más oscuro. Ascos claviformes, ápice romo, anillo conspicuo, maduración sincrónica,

8-esporados, 50-65 x 5-8 um. Ascosporas elipsoidales, a veces con extremos ligeramente agudos,

bicelulares, no constreñidas o levemente, incoloras, lisas o ligeramente equinuladas, formadas en toda

la longitud del asco, biseriadas en el ápice, 8-12 x 4-5 um. Sobre corteza.

Anamorfo: Gliocladium roseum Bainier, de acuerdo con Samuels (op. cit.)

Material estudiado: Romero 12/4-13 XI-Sl (BAFC).

Observaciones:

Esta especie y la anterior, N. aureo-fulva, parecen ser muy afines. Samuels (op. cít.) señaló

que puede haber superposición de medidas, sobre todo de ascosporas y que en ese caso sólo es posible

diferenciarlas por sus respectivos anamorfos. Sin embargo, en estos materiales se aprecia una

diferencia notable en el anillo apical del asco, siendo mucho más evidente en el material clasificado

como N. ochroleuca.

55

Ambas especies han sido citadas, para Estados Unidos, Cuba, Pto. Rico, Jamaica, Venezuela

y Colombia pero no para la Argentina.

l4 g- Nectriopsis oropensoides (Rehm in Bref. et Tavel) Samuels, Mem. N.Y.B.G. 48: 47, 1988.

(Fig. 4: H-K)

Peritecios globosos, castaño pálido en seco, colapsados, cubiertos por pelos blancos, largos,

entrelazados; pared peritecial compuesta por células de paredes delgadas. Pelos incoloros, ondulados,

septados, ramificados o no, espinulosos, curvados o circinados en el ápice, más de 50 pm de largo,

2-3 pm diám.. Ascos cilíndricos, 8-esporados, 45-55 x 4-6 pm. Ascosporas oblicuamente uniseriadas,

bicelulares, incoloras, elipsoidales a oblongas, espinulosas, 5-7 x 3-4 pm. Sobre corteza.

Anamorfo: Acremoníum sp. sensu Samuels (1976).

Material estudiado: Romero ¡6/22-4 II-82; 14/22-4 V-82; 9/22-8 XI-81; 26/4-13 V-83;

l4/22-4 V-83; 5/22-8 VIII-82; l l, 18, 22/22-8 V-83 (BAFC).

Observaciones:

El material fue encontrado sobre corteza y sobre Schizopora sp. y coincide con la descripción

de Samuels (1976). Sus muestras estaban sobre Stereum 5p., Polyporus 5p., Myxomycetes y sobre

corteza, madera y tejidos herbaceos. También describió Acremonium sp. como estado anamorfo,

obtenido en cultivo.

La especie se ha citado por primera vez para la Argentina (Romero, 1987).

56

SORDARIALES

CONIOCHAETACEAE

15 a- Coniachaeta pulveracea (Ehrh.) Munk, Dansk. Bot. Arkiv, ¡2: ll, 1948.

(Fig. S: D-F)

Peritecios subglobosos, 200-300 pm diám., más o menos cónicos, negros, pilosos, gregarios

o solitarios, superficiales a ligeramente inmersos. Pelos hifales no setosos, ondulados, castaños. conos

25-30 pm long., extremos redondeados, 2-2,5 pm diám. Pared de “textura angularis” formada,

externamente, por células poligonales de paredes conspicuas, castañas; internamente, por células más

alargadas de paredes delgadas e incoloras. Ascos cilíndricos, pie corto, ápice romo, octosporados,

70-80 x 10-12 pm. Ascosporas uniseriadas, a menudo ubicadas transversalmente dentro del asco,

unicelulares, anchamente elipsoidales, al principio verdosas, castaño oscuro casi negras al madurar,

con surco germinativo, 9-15 x 7-10 pm. Sobre madera descortezada.

Anamorfo: desconocido

Material estudiado: Romero 12/4-13 XI-81; 38/4-13 11-82; 10/4-13 V-82; 4, 19/22-8 V-82;

6, 9, 10, 16, 17, 24, 25, 34/4-13 VIII-82; 12/4-13 XI-82 ; 33, 34 /4-l3 V-83; 10/22-4 VIII-82

(BAFC).

Observaciones:

De acuerdo con v. Arx & Müller (1954) Rosellinia pulveracea (Ehrh.) Fckl. var. platysporella

57

Speg., es sinónimo de esta especie. El material de Spegazzini, procedente de Paraguay, está sobre

madera descortezada de Citrus aurantium L. (por el momento no se verificó la sinonimia).

En cuanto a nuestro país, recientemente, Lorenzo (l993) describió 3 especies de este género,

que crecen sobre estiércol de ciervo colorado, liebre europea y caballo para las provincias de Río

Negro, Neuquén y Santa cruz.

La especie se cita por primera vez para nuestro país.

LASIOPHAERIACEAE

16 a- Chaetosphaeria myriocarpa (Fr.) Booth, Mycol. Pap. 68: 5, 1957.

Para la lista de Sinónimos ver Gams & Holubová-Jechová (1976).

(Fig. 5: G; K-L)

Peritecios negros, gregarios, superficiales, subglobosos, papila ostiolar cónica, pared lisa. a

veces con conidióforos sobre ella, pequeños, ¡00-155 urn diám. Ascos cilíndricos, paredes delgadas,

sin aparato apical, 45-55 x 4-5 um. Ascosporas cilíndricas con extremos redondeados, a veces

extremos ligeramente más agudos, uniseptadas, incoloras, lisas, 5-7 x 2-3 um. Sobre madera

descortezada.

Anamorfo: Chlon'dium clavaeforme (Preuss) Garns & Hol.-Jech., Stud mycol. l3: 31, 1976.

Colonia delicadamente pilosa, formada por los conidióforos sobre madera y/o sobre peritecios.

Conidióforos mononematosos, erectos. castaño claro apicalmente, oscureciéndose hacia la base,

proliferantes percurrentes, 35-120 x 2-3 um. Célula conidiógena enteroblástica, fialídica afinándose

58

hacia el ápice, simple, a veces ramificada, collarete notorio a menudo más oscuro. Conidios ovoides

base truncada, incoloros o levemente pigmentados, pequeños 2-3 x 1,5-2 pm. Sobre madera

acompañando a los peritecios.

Material estudiado: Romero 15, 18,20/22-4 VIII-82; 3/22-4 XI-82; l, 29/22-4 V-83; 9/22-8

VIII-82 (BAFC).

Observaciones:

Estas colecciones coinciden con la descripción de Gams & Holubová-Jechová (op. cit).

La especie se cita por primera vez para la Argentina.

l7 b- Chaetosphaeria preusii Gams & Hol.-Jech., Stud. mycol. 13: 34, 1976.

(Fig. 5: G; H-G)

Peritecios negros, gregarios, superficiales, papila ostiolar pequeña, pared lisa o con algunos

conidióforos asociados, l30-l90 pm diám. Ascos cilíndricos, paredes delgadas, sin aparato apical,

40-55 x 3-4 pm. Ascosporas elipsoidales, uniseptadas, incoloras, lisas, 5-7 x 2-2,5 pm, al madurar

septo muy marcado llegando a partirse. Sobre madera descortezada.

Anamorfo: Chloridium preusii Gams & Hol.-Jech., Stud. mycol. 13: 35, 1976.

Colonia delicadamente pilosa formada por los conidióforos. Conidióforos erectos, castaño claro

observados con lupa, castaños olivaceos con luz transmitida, proliferación percurrente, (35) 50- 150 x 3-4

pm. Célula conidiógena enteroblástica, fialídica, collarete no muy marcado. Conidios elipsoidales,

apiculados, incoloros, 2,5-3,5 x l,7-2,5 pm. Sobre madera acompañando a los peritecios.

59

Material estudiado: Romero 18/4-l3 VIII-81; 20/22-4 II-82; 18/22-8 VIII-82; 18,

35/22-8 XI-82 (BAFC).

Observaciones:

Este material coincide con la descripción de Gams & Holubová-Jechova (op. cit.), excepto por

la ausencia de una mata hifal densa sobre la cual están los peritecios.

Estas dos especies, Chaetosphaeria myriocarpa y C. preusii, son muy afines. Según señalan

Gams & Holubová-Jechová (op. cít.: 35 y 37) la partición de las ascosporas en C. preusii y sus

anamorfos, diferencian ambas especies. Sin embargo, también indican que Chloridíum clavaeforme

es muy semejante a Chloridium preusii y que se distinguen porque los conidios de esta última son

completamente incoloros. Sus descripciones están basadas en datos de cultivos. Considero que estos

taxones no están claramente delimitados; por ejemplo el fenómeno de partición de las ascosporas

podría deberse a un problema de madurez; inclusive, ellos señalan que en algunas muestras nunca fue

observado y las diferencias de pigmentación de los conidios parece ser muy poco rotunda (en una es

“ligeramente pigmentada" y en la otra “incolora”). Posiblemente un estudio más exhaustivo del grupo

revele la sinonimia entre ambas especies. Hasta que ésto suceda se mantienen los límites establecidos

por dichos autores.

La especie se cita por primera vez para la Argentina,

l8 c- Melanochaeta sp.

(Fig. 5: A-C)

Colonia pilosa, oscura casi negra, formada por peritecios entre mata de conidióforos.

Peritecios solitarios, negros, piriformes, con una papila cónica, anclados al sustrato por una capa

estromática delgada de la cual parten hifas hacia el interior de la madera, 150-200 x 200-300 pm..

Pared lisa con brillo metálico, con algunas hifas oscuras capitadas, de ápices ensanchados y casi

incoloros, ¡00-200 pm long.. Ascos cilíndricos, anillo apical inconspicuo, I', 65-80 x 7,5-10 pm.

Ascosporas fusiformes, 1-3 septadas, células del medio castañas oliváceas con una gútula, las de los

extremos con un tinte oliváceo claro, lisas, 12-17 x 3,5-4 um. Sobre madera.

Anamorfo: Entre los peritecios, se han encontrado conidióforos, células conidiógenas e hifas

capitadas características del género Sporochisma. Pero al hallar sólo unos pocos conidios sueltos no

fue posible establecer de que especie exactamente se trata. Por otro lado, en otras muestras, se ha

encontrado Sporochisma nigroseptatum Rao & Rao. (ver descripción más adelante en

Deuteromycetes).

Material estudiado: Romero 18/ 22-4 11-82 (BAFC).

Observaciones:

Probablemente estemos frente a una especie nueva o frente a la necesidad de una revisión de

las especies registradas en los géneros Melanochaeta Müller et al., Chaetosphaería Tul. y

Chaetosphaerella Müller & Booth y las relaciones con sus anamorfos respectivos.

En el siguiente cuadro se resume la historia nomenclatura] y taxonómica de las especies

relacionadas con este ejemplar:

61

ResumendeIahistorianomenclaturalytaxonómicadelasespeciesrelacionadasconelejemplar

determinadocomoMelanochaetasp.

Spbaeriaphaeostrona

Dur.&Hont.1846

Chaetosphaeríaphaeostrona (Dur.&Mont.)Fch.1870 Chaetoaphaerellaphaeootrona (D.&H.)MüllerüBooth

1972

OedEIÍlIninas

MüllerhBooth

Hughes1958

Booth,1958enSivanesan1976

Sphaeríahelipsíla

Berk.hBr.1875

V

Chaetoaphaeriahelipoila (Berk.hBr.)Petch.1917

Chaetospbaeriafuera

Cbaetoaphaeriafnsíspora

Fck.1870

hr.exHMh19fl

Chaetoaphaeríaaotearoae

Chaetosphaeríacoelestína

Hughes1966

v.Hohnel1909

Chaetosphaerellafusca (Fch.lMüllerhBooth

19'72

Chactosphaerellafusíspora

Sivanesan' 1976

Belanochaetaaotearoae

Helanachaetabelípaila

(Hughes)Mülleretal.

—=sensúHüller

(Bert.&Br.)Mülleretal.—L——etal. 19691969

I OedelíuldidyluldesconocidoSporochianalírabile._¡

1969

AIAIOBFDS:deacuerdocon:

Ñ7

Sporochísuasaccardoi

Müllereta1.1.69

Sporochjslasaccardoí

1072Hughes1966

S.nírahíleyChalaraMülleráSaluels1982cl

*Sivanesan(1976)transfiereChaetosphaeriafusisporaLar.exMunk,aChaetoshaerellafusisporaSiv.,aclarandoademásqueelnombredeLar.exMunkes¡legítimoporserunhomónimoposteriordeQnaetgsphaeriafusispora(Kaw.)Hino,portalrazónSivanesanproponeChaetcgphaerellaIu_sispora_

comounnombrenuevo.

Nuestro material primero fue determinado como Chaetosphaerella fusispora Siv.,

encontrándolo parecido en la forma, color y tamaño de las ascosporas (incluso con los dibujos de

Munk (1952) de los materiales de Larsen). Pero debido a la presencia de las hifas capitadas sobre el

peritecio y de unos pocos conidios viejos sueltos de Sporochisma, como vemos en el cuadro,

característico de Melanochaeta, hizo replantear su ubicación. Sin embargo, no es posible una

determinación satisfactoria con ninguna de las dos especies hoy reconocidas en el género

Melanochaeta, porque ambas poseen ascosporas considerablemante mayores (el doble) y distinto

número de septos.

Por todo lo antedicho, hasta no hacer una verificación de los tipos de todas estas especies

involucradas y estudios en cultivo de sus anamorfos se mantiene este ejemplar sin identificación

específica.

Por último, cabe discutir la posición taxonómica de este grupo de especies. Por un lado, Müller

et al. (1969) ubicaron al género Melanochaera en Melanogrammaceae, Diaporthales. Por el otro, Ban

(1990) no lo incluye en ningún orden, pero, al hacer comentarios sobre la familia Lasiophaeriaceae

menciona qué especies del hemisferio sur del gro. Melanochaeta tienen como anamorfos a

Sporochisma, y sí incluye a Chaetosphaerella en la clave de Lasiophaeriaceae, Sordariales. Eriksson

& Hawkworth (1991: 41) interpretan que Barr (op. cit) incluye a Melanochaeta en dicha familia y

esperan recopilar más información sobre este tema.

63

NlTSCHKlACEAE

19 a- Nitschkia broomeiana (Berk.) Nannf. Sv. Bot. Tidskr. 69 (l): 60, 1975.

Para la sinónimos ver Nannfeldt (op. cit).

(Fig. 6: A-D)

Ascomas negros, subglobosos, superficiales, externamente espinosos, sin ostíolos, con

“quellekórper”, generalmente en grupos pequeños; peridio de “textura angularis”, células con poros

de Munk. Ascos claviformes, pared delgada, multiesporados, 76-90 x 16 pm. Ascosporas alantoides,

levemente curvadas, uniseptadas, incoloras, oblicuamente poliseriadas, 6-ll x 1,5-2 pm. Sobre

madera y corteza.

Anamorfo: desconocido.

Material estudiado: Romero 38/4-l3 VIII-81; 36/4-13 lI-82, lO/22-8 V-82; 33/4-13 V-83

(BACF).

Observaciones:

Se trata de una especie cosmopolita. Spegazzini (1880: 135) la determinó sobre madera

descortezada de Eucalyptus globulus Labill. en La Plata, como Fracchiaea heterogenea Sacc..

Nannfeldt (1975: 60) propuso la presente combinación y dió una lista completa de los

sinónimos en la cual incluyó F. eucalyptina Berl. y F. heterogenea Sacc.

Barr (1990) no los considera sinónimos y separa, en su clave, a Nitschkia de Fracchiaea por

el tamaño de los ascomas, la presencia/ausencia de setas, subículo y por la longitud y forma del

64

“quellkorper”. Por el momento, hasta la aparición de un trabajo específico sobre el grupo, se sigue

a Nannfeldt (0p. cit.).

20 b- Nitschkia variabilis Romero & Samuels, Sydowia 43: 241, 1991.

(Fig. 6: E-G; Lám. VI: 1-5)

Ascomas subglobosos, 600-900 um diám., superficiales, cupulados al colapsarse, tapizados por

un tomento castaño iridiscente, hifas del tomento 2,5-4 pm diám., rectas u onduladas, castaño claro,

con septos gruesos de color castaño oscuro. Peridio 50-l00 pm de espesor, células formando una

“textura angularis”, con poros de Munk notorios. Ascos claviformes, estipitados, con 32 ascosporas

triseriadas, pared delgada, tempranamente delicuescente, ápice simple, 80-120 x 10-15pm. Ascosporas

básicamente elipsoidales pero también elíptico-fusiformes, ovales, a veces asimétricas, reniformes,

unicelulares, l-2 gutuladas, al principio incoloras, más tarde castaño claro, lisas, 6-10 X 3-5 um.

Sobre madera descortezada

Anamorfo: desconocido.

Material estudiado: Romero 7/22-8 VIII-81; 28, 35/22-8 Il-82; 38/22-8 V-82; 6/22-4

VIII-82 (Holotipo BAFC 32032; ISOTIPO BPI); ll/22-4 XI-82; 7, 21, 35/22-4 V-83 (BAFC).

Observaciones:

Esta especie se caracteriza por la gran variación en la forma de sus ascosporas y su color

castaño. Las ascoporas de la mayoría de las especies de esta familia son uniformes en su morfología

e incoloras (Nannfeldt, 0p. cit.). Esta peculiaridad se presenta también en N. confertula (Schw.)

65

Nannf., la cual posee esporas variables en forma y de color gris humo (Nannfeldt & Santessen, 1975)

pero los ascos de dicha especie norteamericana contienen sólo 8 esporas. Por otro lado, los ascocarpos

de una colección de N. confertula citada por Nannfeldt (Ravenel, Fungi caroliniani 54, como Sphaeria

euomphala Berk. & Curt., BPI!) son glabros y están sentados sobre un subículo escaso.

Posteriormente al trabajo de Nannfeldt (op. cit.), Funk (1979) incorporó otra especie dentro

de este género, N. molnarii, sobre ramas de Pseudotsuga menziesii (Mirb.) Franco y sobre Tsuga

heterophylla (Rafi) Sarg. en Canadá. Esta especie canadiense se diferencia de la nuestra por tener

ascos octosporados, esporas alantoides incoloras unicelulares o, a veces, uniseptadas y los ascocarpos

no están cubierto por tomento. También describe picnidios que pueden estar junto con los ascomas

o permanecer sobre el subículo después de la desaparición de los ascomas. Las células de la pared de

los picnidios también presentan poros de Munk.

En cuanto a la ubicación genérica, vale lo dicho en las observaciones de N. broomeiana.

XYLARIALES

BOLlNlACEAE

2l a- Camarops rostratus Romero & Samuels, Sydowia 43: 228, 1991.

(Fig. 6: H-J; Lám. VII)

Estromas negros, subglobosos o elipsoidales con el eje longitudinal paralelo a las fibras de

la madera, inmersos, superficie marcada por 7-22 protuberancias cilíndricas perforadas por el canal

66

ostiolar, al quebrarse se observa una zona más clara alrededor de dicho canal. Zona externa (corteza)

40-50 pm de espesor, extendiéndose por la superficie de la madera, células 6-10 pm diám. formando

una “textura angularis" en la parte superior y hacia los laterales se disponen en empalizada, con

paredes son oscuras y la capa de células más externa pigmentadas de castaño oscuro, excepto en la

zona del ostíolo donde son incoloras. Células corticales dentro de la madera, menos organizadas, más

pequeñas y más oscuras. Zona interna de “textura intricata”, hifas 2,5-3 um, paredes castaño

oliváceo, depósitos de material amorfo blanco amarillento de 7,5-30 x 10-40 pm esparcidos

principalmente entre la zona de los cuellos; se observaron fragmentos de madera entre la zona de los

vientres. Peritecios subglobosos, 200-500 pm diám., profundamente inmersos en la madera, pared

membranácea, 15-25 pm de espesor, de “textura angularis”. Ascos cilíndricos, 8-esporados. ápice

truncado, a veces parece tener un anillo inconspicuo. Ascosporas cilíndrico-elipsoidales, unicelulares,

castaño claro, bigutuladas, con poro basal inconspicuo, 6-7(9) x 3-4 pm. Paráfisis excediendo la

longitud de los ascos en 50-90 pm, l,5-2,5 pm diám., septadas, no constreñidas en los septos, paredes

delgadas, poco ramificadas, célula apical flamiforme o claviforme, abundantes. Sobre madera

descortezada.

Anamorfo: desconocido.

Material estudiado: Romero 9/22-4 XI-81 (Holotipo BAFC 32012).

Observaciones:

Camarops rostratus se diferencia de todas las especies del género, principalmente por la

presencia de protuberancias estromáticas robustas. Dichas protuberancias le confieren a la superficie

un aspecto muy particular y parecen formarse como excrescencias del estroma.

Camarops lutea (Albb. & Schw.) Nannf. (Nannfeldt, 1972), posiblemente sea la especie que

67

más se asemeja a nuestra nueva especie. Su proximidad está dada porque ambas poseen estromas

pulvinados, peritecios polistictos y fragmentos de elementos xilemáticos incluídos en el estroma. En

cambio, difieren, por ejemplo, en que éstos últimos son más numerosos en C. lutea, ya que Nannfeldt

(1972:347) comentó las dificultades para efectuar cortes del estroma con micrótomo. Nuestro material

no presentó resistencia al ser seccionado. El también señaló (1972: 347) que los estromas jóvenes de

C. lutea aparecen cubiertos por cristales microscópicos. En vez de dichos cristales, en C. rastratus se

halló material amorfo en el estroma.

Otra especie afín, es C. pugillus (Schw.) Shear, según la descripción dada por Nannfeldt

(19722349). Se pudo comprobar que nuestro ejemplar se diferencia de C. pugillus, al estudiar material

depositado en BPl, citado por Nannfeldt. Se observó que en estas colecciones los estromas están

completamente inmersos en la madera, la corteza estromática es apenas erumpente y los cuellos

periteciales, poco emergentes, están rodeados por tejido estromático.

CLYPEOSPHARIACEAE

Ceratostomella Sacc.

Observaciones:

Arx & Müller (19542355) sinonimizaron el género Ceratostomella Sacc. con Endoxyla Fuck..

Examinando el holotipo de Endoxyla macrostoma Fuck. (K !), especie tipo del género de acuerdo con

l-Iolm (1975) y con Cannon et al.(l985), y un isotipo de Ceratostomella vestita Sacc. (NYBG l).

especie tipo del género Ceratostomella (Saccardo, 1878), se concluye que Ceratostomella Sacc. y

Endoxyla Fuck. no son congenéricos. Se compararon, además, algunos ejemplares depositados en l)

el Herbario de Kew: E. operculata Fr., E. fraxíni Ellis & Everhan, Sphaeria paralella Fr., holotipo,

E. paralella (Fr.) Fuckel, E. populi Romell y Sphaeria ampullasca Cke., Cerastostomella ampullasca

68

(Cke) Sacc., Sphaería cirrhosa Pers., Ceratostomella cirrhosa (Pers.) Sacc.; 2) en el IMI 53939: C.

vestita Sacc. y 3) BPI: C. cirrhosa (Pers.) Sacc., y ninguno de ellos sugiere afinidades entre dichos

géneros.

Estas ideas han sido confirmadas por Untereiner (comunicación personal), quién ha realizado

una revisión del género Endoxyla (1993) y, en consecuencia, ha estudiado algunas especies del género

Ceratostomella. Según Untereiner, las especies de Endoxyla se caracterizan por tener peritecios

oscuros inmersos, con cuellos cortos casi no emergentes; puede haber un estroma muy poco

desarrollado, ascos cilíndrico-claviformes, con estípite largo, con aparato apical inconspicuo,

inamiloide, ascosporas elípticas, cilíndn'cas o alantoides, castañas, unicelulares o septadas, con un poro

germinativo. Reconoce las tres especies incluídas por Fuckel: E. macrostoma, E. paralella y E.

operculata y dos especies nuevas. Todas ellas creciendo sobre madera descortezada de gimnospermas

y E. macrostoma y E. operculata que también crecen sobre Quercus y Acer. En cambio, las especies

de Ceratostomella estudiadas hasta el momento parecen caracterizarse por crecer sobre madera

descortezada y descompuesta de angiosperrnas (Acer, Betula, Quercus en Norteamérica), tiene

peritecios con vientres esféricos inmersos y cuellos largos, emergentes y surcados; ascos cilíndricos

cortamente estipitados, truncados en el ápice, libres en la cavidad peritecial en la madurez, con aparato

apical pequeño e inamiloide; ascosporas incoloras septadas, espinulosas o facetadas en corte

transversal.

En cuanto a su posición taxonómica, Barr (1989) rescata la familia Clypeosphaeriaceae Winter

y ubica en ella al género Ceratostomella Sacc. . Eriksson & Hawksworth (1989: 65) siguen a Barr

(op. cit.) y por primera vez. colocan el género (1991 a: 6]) en su lista de familias y géneros aceptados

y no como sinónimo de Endoxyla Fckl.. Luego (1991 b: 60) incluyen dicha familia en el Orden

Xylariales.

69

Sobre la base de estos criterios se determinaron las siguientes muestras:

22 a- Ceratostomella ampullasca (Cke.) Sacc. Syll. Fung. 1:409, 1882.

(Fig. 6: K-M; Lám. VI: 6)

Peritecios negros, con cuello largo, glabros; vientres inmersos a veces superficiales, esféricos,

250-300 pm diam.; cuellos largos, 0,8-2 mm long., cilíndricos, surcados. Ascos ampuliformes,

abruptamente pedicelados 10-15 um, aparato apical pequeño, I', 35-50 x 7-l0 um en la parte

esporífera. Ascosporas ligeramente fusiformes, asimétricas, bigutuladas, incoloras, con estrías

longitudinales suaves, 8-]2 x 3,5-4 um. Parálisis no se observaron. En madera descortezada muy

seca y friable, vientres inmersos y madera en corte transversal, vientres superficiales.

Anamorl'o: desconocido.

Material estudiado: Romero lO, 27/4-13 VIII-81; 4, 7/22-4 XI-8l; 9, 19/22-4 II-82; 6,

14/22-4 V-82; 28/22-8 VIII-81; 37/22-8 lI-82; 12, 14/22-8 V-82; 29/4-13 XI-82; 14, l9, 22/22-4

VIII-82; 12, 14 /22-4 Xl-82; l, 22,25/22-4 II-83; 16, 35/22-4 V-83; 9, 37/22-8 VIII-82; 23, 35,

40/22-8 XI-82; l7, 34, 40/22-8 II-83; 23, 28, 37, 40/22-8 V-83 (BAFC).

Observaciones:

Estos materiales se determinaron como C. ampullasca (Cke.) Sacc., confirmados

posteriormente por Untereiner. Sin embargo, dicha autora piensa que esta especie es conespecífica con

Endoxyla laevirostris Munk y semejante a Endoxyla excelsior (Mouton) Munk (ambas especies

descriptas por Munk 1965) y ninguna de ellas perteneciente al género Ceratostomella Sacc. Se

70

mantiene el nombre de Ceratostomella ampullasca hasta que se publique el trabajo de Untereiner.

La especie se cita por primera vez para la Argentina.

23 b- Ceratostomella cirrhosa (Pers.) Sacc. Syll. Fung. l: 408, 1882.

(Fig. 7: A-C; Lám. VI: 8)

Peritecios negros, con cuellos prominentes, negros, brillantes, vientres castaños negruzcos,

esféricos, 350-600 um diám., a veces muy inmersos, otras superficiales cubiertos por hifas de 2,5 um

diám., castañas; pared peritecial 30-50 um de espesor, células de 7-13 x 3-5 um, de paredes castañas,

delgadas, engrosándose y oscureciéndose hacia afuera, de estas últimas células surgen las hifas

cobertoras. Ascos subcilíndricos, con anillo apical I', pared apical levemente más gruesa, maduración

secuencial, surgiendo de “croziers”, 40-55 x 4-6 um. Ascosporas 0-1 septadas, a veces 2 septadas,

incoloras, con estrías longitudinales, generalmente con 2-gútulas muy notorias a veces 4,6-8 x 3-5 pm.

Parálisis no se observaron. Sobre madera.

Anamorfo: desconocido.

Material estudiado: Romero l, 9, 22/22-4 VIII-81; 12/22-4 XI-81; 6, 32, 37/22-4 V-82; 5,1

5, 31/22-8 XI-81; 10/22-8 II-82; 3, l l, 32, 40/22-8 V-82; 13, 20/4-13 VIII-82; 13, 32/4-13 V-82; 9,

22, 38, 39 /22-4 VIII-82; 14, l7, 19, 20, 23/22-4 XI-82; l, 5, 25, 38/22-4 II-83; l9, 25, 29 /22-4

V-83; 4, 15 (ascosporas más grandes y uniseptadas), 23/22-8 VIII-82; 20, 28, 40 (en la 40 se

observan ascosporas con 4-gútulas)/22-8 XI-82; 39/22-8 11-83; 7, 39/22-8 V-83 (BAFC).

71

Observaciones:

La determinación de algunos de estos materiales fue confirmada también por Untereiner. La

muestra 12/22-4 XI-81 parece estar algo inmadura y, en consecuencia, las medidas de peritecios, ascos

y ascosporas son algo menores; en cambio, en la 40/22-8 XI-82 son mayores e incluso con ascosporas

4-gútuladas y en la 15/22-8 VIII-82 las ascosporas son uniseptadas. Estas variaciones en la presencia

y número de tabiques y de gútulas en las ascosporas, ya fueron señaladas por Untereiner (com.

personal) y Müller & Arx (1962: 202).

Además de las hifas que cubren los peritecios, también se observan hifas sobre la madera.

La especie se cita por primera vez para la Argentina.

24 c- Ceratostomella hyalostoma (Munk) Untereiner, Mycologia 85 (2): 307, 1993.

Endoxyla hyalostoma Munk, Bot. Tidsskr. 61: 62, 1965.

(Fig. 7: K-O; Lám. VI: 7)

Micelio superficial conspicuo, formado por hifas castañas, ligeramente onduladas. Peritecios

negros, vientres inmersos, 200-350 pm diám., cuellos largos, 700-900 um long., hirsutos; pared

peritecial pseudoparenquimática, formada por células de paredes delgadas y castañas, de las cuales

surgen los pelos hifales que cubren tanto cuello como vientre. Ascos clíndricos, cortamente

pedicelados, paredes muy delgadas, ápice romo, sin aparato apical, maduración sucesiva, octosporados,

25-35 x 5-7 pm. Paráfisis tabicadas, tabiques notorios. célula apical flamiforme, 2-3 um diám,

excediendo en 3-5 p el largo de los ascos. Ascosporas elipsoidales, unicelulares, incoloras,

bigutuladas, levemente verrugosas, 4-6 x 2-3 um. Sobre madera descortezada.

72

Anamorfo: desconocido.

Material examinado: Romero 6/22-4 11-82(BFC).

Observaciones:

La determinación de este material fue confirmada por Unterenier. El material argentino se

parece, especialmente por la ornamentación de las ascosporas, pero difiere en el aspecto general y,

en particular, por poseer el cuello hirsuto. Esta última característica de acuerdo con Untereiner, nunca

fue observada en el género Ceratostomella Sacc.. Sin embargo, C. cirrhosa suele tener, al menos, el

vientre tapizado densamente por hifas. Por otro lado, debido a las observaciones realizadas sobre los

materiales tipo de Endoxyla, explicadas anteriormente, coincido plenamente con Untereiner (1993) que

no es una Endoxylaerl..

La especie se cita por primera vez para la Argentina.

25 d- Endoxyla avocetta (Cke. & Ellis) Romero & Samuels, Sydowia 43: 231, 199].

Bas.: Sphaeria avocetta Cooke & Ellis, Grevillea 8: 15, 1879.

Sin.: Ceratostoma avocetta (Cooke & Ellis) Sacc. Syll. Fung. l: 216, 1882.

(Fig. 7: G-J; Lám. VIII)

Peritecios globosos a subglobosos, 350-500 um diám., negros, solitarios, con vientre inmerso,

a veces superficiales, tapizado con micelio, hifas 2,5-5 um diám.; cuello cilíndrico, central, ápice

levemente curvado, 300-700 x 90-120 um. Pared peritecial 25-40 pm de espesor, células formando

textura prismátíca a angularis. Ascos cilíndricos, octosporados, ascosporas uniseriadas, flotando

73

libremente, anillo apical I ', 72 x 5-7,5 pm. Ascosporas elipsoidales, unicelulares, l-2-gutuladas,

castañas, lisas, con un poro basal inconspicuo 9-12 x 3-4 um. Paráfisis cilíndricas, no ramificadas,

pared delgada, excediendo el largo de los ascos en 75-90 um, 3-6 pm diám., afinándose hacia el ápice,

abundantes. Sobre madera.

Anamorfo: desconocido.

Material estudiado: Romero 10/4-13 VIII-81; l9. 2], 30/22-4 XI-Sl; 7, 9, 19/22-4 V-82;

6/22-8 VIII-81; 20, 24, 26, 27/22-8 XI-81; 2, 18, 20/22-8 11-82; 4, 19, 24/22-8 V-82; 6/4-l3

VIII-82; 39/4-13 XI-82; 39, 40/4-13 Il-82; 36/4-13 V-83; lO, 11/22-4 VII-82; 5/22-4 "-83;

9/22-4 V-83; 2, 9/22-8 VIII-82; 8/22-8 XI-82; 17/22-8 11-33; 32/22-8 V-83 (BAFC).

Observaciones:

Nuestro material coincide con el ejemplar de la colección de J.B. Ellis, USA, N. Jersey:

Newfield, Jan ¡876, depositado en el BPI ! bajo el nombre de Ceratostoma avocetta y anotado como

“app. part of type coll.” por C. L. Shear. Por tal razón no dudamos de que se trata de un isotipo.

Según Cannon & Hawksworth (1982), Ceratostoma Fr. es un sinónimo de Melanospora Corda,

mientras que Ceratostoma Sacc. es un sinónimo de Arxiomyces Cannon et al. (Cannon & Hawksworth,

1983). Sphaeria avocetta no es una especie melanosporacea y no puede ser ubicada ni en

Melanospora ni Arxíomyces.

Nuestra primera idea fue incluirla en la familia Gnomom'aceae Winter (Diaporthales) por las

siguientes razones: a) los ascos flotan libremente y b) por la presencia de un anillo apical tipo

Diaporthales. En lo que se refiere al tipo de ascoma, es muy semejante al de Gnomoniella Sacc. Sin

embargo, el material fue enviado a Barr quién sugirió ubicarlo en este género. Por el momento, hasta

la publicación de Unteriener sobre los géneros Endoxyla y Ceratostomella, seguimos a Barr (com. pers.).

74

DlATRYPACEAE

26 a- Diatrypella sp.

(Fig. 7: D-F)

Estromas subperidénnicos, erumpentes, oblongos a circulares, externamente negros,

endostroma blanco. Ostíolos negros, surcados, apenas elevándose de la superficie del estroma.

Peritecios subglobosos a cilíndricos, en l ó 2 hileras, inmersos en el endostroma. Ascos polisporados,

claviformes con un pedicelo largo y delgado, 58-75 x 9-13 pm. Ascosporas alantoides, unicelulares,

castañas claras, pequeñas 5-7,5 x l,5-2,5 pm. Sobre madera.

Anamorfo: Para algunas especies de este género se han descripto conidiomas picnidiales con

células conidiógenas proliferantes y simpodiales (Glawe, l983, 1989).

Material estudiado: Romero 11/22-8 V-82 (BAFC).

Observaciones:

El género Diatrypella es fácil de reconocer porque se caracteriza por tener ascos polisporados

en peritecios con ostíolos y estromas típicos de la familia Diatrypaceae. Lamentablemente, no

contamos con un trabajo monográfico que nos permita determinar las especies. Recientemente, Rappaz

(1987) estudió las especies octosporadas de los otros géneros de la familia. Pero todavía no existe un

estudio sobre el género Diatrypella que recopile la información dispersa sobre especies.

75

TRICHOSPHAERIACEAE

Barr (1990) considera que la familia Trichosphaeriaceae Winter 1885, no puede ser incluída

en el orden Hypocreales por 3 razones que sí la ubican en Xylariales: l- el ascoma no se colapsa, 2­

la estructura del peridio y 3- el tipo de “centrum” con parálisis angostas y apicalmente libres.

27 a- Debaryella gracilis Munk, Dansk Bot. Ark. 17(1): 194, 1957.

(Fig. 8: A-C; Lám. IX: 1-2)

Peritecios anaranjados rojizos, casi color madera hasta confundirse con ella, globosos,

inmersos, asomando sólo el cuello, a semiinmersos sólo la base del vientre inmersa, 150-250 pm

diám., con cuello corto 100-200 pm long., ostiolados; perídio céreo, 20-30 pm de espesor,

internamente formado por células incoloras, rectangulares, externamente por células subglobosas, de

paredes gruesas, castañas amarillentas. Ascos claviforme-fusiformes, estipitados, anillo apical notorio,

I', 120-140 x 7-]0 pm. Ascosporas tetraseriadas en el ápice, biseriadas al descender, fusiformes,

levemente curvadas, incoloras, 3-6 septadas, 30-35 x 3-3,5 pm. Sobre corteza, a veces semi-inmerso

sobre Hymenochaete sp. y sobre madera tanto en corte transversal como longitudinal.

Anamorfo: desconocido.

Material estudiado: Romero 10/4-13 VIII-81; 10/22-4 VIII-81; 12/22-4 XI-81; ¡4,

38/22-4 II-82; 8/22-8 VIII-82 (BAFC).

Observaciones:

Estas colecciones coinciden con la descripción de Munk (19572194) excepto en el color del

76

peritecio, siendo casi “blanco-incoloro” en fresco para dicho autor y anaranjado rojizo en nuestras

muestras, aunque ambos observamos que se confunde con el color de la madera. A pesar de esta

diferencia, consideramos utilizar este nombre para nuestros ejemplares.

Esta especie, más aún este género, es bastante conflictivo en cuanto a su posición taxonómica.

Originalmente fue descripto por von Hoehnel (19042274) ubicándolo en el Orden Hypocreales.

Posteriormente, Munk (19542228en 1957:194) emendó el género y sugirió que por sus características

ecológicas y por la morfología del asco, se lo ubique en Diaporthaceae (Diaporthales), subf.

Rhamphorioideae, pero aclaró que su peridio es muy peculiar. Barr (1978), en su trabajo, "The

Diaporthales in North America" lo menciona en su lista de géneros excluidos de Diaporthales

diciendo que quizás pertenezca a la familia Trichosphaeriaceae, Xylariales. Eriksson & Hawksworth

(1990:179) acepatan el Orden Trichosphaeriales propuesto por Barr (1983), con una sola familia,

Trichosphaeriaceae Winter ¡885 y colocando en su lista de géneros a Debaryella indicando su

afinidad incierta. Barr (1990), en su reciente trabajo sobre la clase Hymenoascomycetes, no conserva

el Orden Trichosphariales y no cita el género Debaryella.

A mí modo de ver, el aparato apical del asco de nuestro material y el illustrado por Munk

(¡957) es muy parecido al de las Diaporthales, pero el peridio es semejante al de algunos miembros

del Orden Hypocreales.

Lamentablemente, todavía no pudimos estudiar el tipo del género.

Esta especie se cita por primera vez para la Argentina.

28 b- Porosphaerella setosa Romero & Samuels, Sydowia 43: 232, l99l.

(Fig. 8: D-G; Lám. X: 1-6)

Peritecios piriformes a cónicos, 340-500 x 200-300 pm, papilados, setosos, negros, solitarios

o gregarios, superficiales; setas castañas oscuras casi negras, rígidas, aseptadas, no ramificadas, ápice

agudo, 48-90 pm long., 6 pm diám. en la base. Pared peritecial de 25-35 pm de espesor, con “textura

angularis” formada por células de paredes gruesas y castaño oscuro. Ascos clavifonnes, octosporados,

ascosporas biseriadas, anillo apical conspicuo, I', 90-120 x 10-15 (20). Ascosporas elipsoidales,

bicelulares, generalmente tabique central, a veces células desiguales, levemente constreñidas en el

septo, l-2-gutuladas, pared verrugosa, castañas, con un poro en cada extremo, 10-15 x 4,5-5 (6) pm.

No se observaron paráfisis. Sobre madera descortezada y cara interna de corteza.

Anamorfo: desconocido.

Material estudiado: Romero 20/22-4 11-82; 25/22-4 V-82; l5 /22-8 XI-81; 8, 9, 26,

35/22-8 V-82; 15/22-4 VIII-82; 16, 21/22-4 V-83; 2, 37/22-8 VIII-82; 18/22-8 XI-82; 34/22-8

11-83; lO, 30 (Holotipo BAFC 32015)/ 22-8 V-83 (BAFC).

Observaciones:

Porosphaerella setosa parece ser afín a P. cordanophora Müller & Samuels, por poseer ascos

con anillo apical conspicuo y ascoporas castañas, bicelulares y con un poro en cada extremo. Se

diferencian porque los peritecios de P. cordanophora son glabros y sus ascosporas no son

constreñidas. El anamorfo de P. cordanophora es Cordana sp. y aparece asociado con sus peritecios

(Müller & Samuels, 1982 b).

29 c- Ramphoria delicatula Niessl, Verhand. Naturs. Vereins in Brünn 14: 46, 1876.

(Fig. 8: M-O; Lám. IX: 6-8)

78

Peritecios piriformes, negros, gregarios, superficiales, 150-200 x 250-300 pm, con cuello corto

y robusto, 60-80 x 63-78 pm, colapsándose longitudinalmente. Ascos cilíndricos, cortamente

estipitados, ápice engrosado, octosporados, 90-120 x 8-10 pm. Parálisis abundantes, ramificadas,

septadas, 2-3 pm diám. Ascosporas uniseriadas, oblongas elipsoidales, muricadas, con una gútula por

célula, levemente constreñidas en los septos, incoloras, 10-15 x 6-7 pm; germinando por varias de sus

células a1 mismo tiempo, confiriéndole a la espora un aspecto aracnoide. Sobre madera.

Anamorfo: desconocido.

Material estudiado: Romero 30/22-4 II-82; 20/228 V-82; 16, 18, 29, 31/4-13 V-83

(BAFC).

Observaciones:

Esta especie parece no haber sido citada desde su diagnosis original. Sivanesan (1976) revisó

el holotipo al realizar un estudio comparativo de distintas especies del género, mostrando en una tabla

las medidas de las ascosporas y la cantidad de septos tranversales y longitudinales. Nuestras medidas

son un poco menores que las dadas por Sivanesan (16-25 x 7-10) pero Niessl (1876) en su diagnosis

original también da un rango menor, sobre todo en la longitud, 12-18 x 9-10 pm.

La especie se cita por primera vez para la Argentina.

30 d- Ramphoria pínformis (Pers.: Fr.) v. Hóhnel, S. B. K. Akad. Wiss. Wien. Math. Nat.

Klasse Abt. l: 122, l9l3.

(Fig. 8: H-K; Lám. IX: 3-5)

79

Peritecios piriforrnes, negros, gregarios, más o menos inmersos a casi superficiales, 160-250

x 300-360 um, con cuello corto y robusto, 60-80 x 63-78 um, colapsándose longitudinalmente,

adquiriendo aspecto piramidal. Ascos cilíndrico-claviformes, estipitados, 130-190 x 8- 10um. Paráfisis

abundantes, ramificadas, septadas, 2-3 um diám. Ascosporas primariamente 8, irregularmente

biseriadas, claviformes, con 7-12 septos transversales y 1-2 longitudinales, levemente constreñidas en

los septos, 16-27 um largo, 4-5 pm diám. en el ápice, 2 um diám hacia la base, incoloras, brotando

en numerosas esporas secundarias, elípticas, pequeñas, 2 x l um, aún dentro del asco. Sobre madera.

Anamorfo: Müller y Samuels (1982 a) han observado que esta especie produce conidióforos

y conidios característicos del género Phaeoísaria.

Material estudiado: Romero 16, 19/22-4Xl-81; 30/22-4 lI-82; 5, 37/22-4 V-82; 9/22-8 II-82;

19/22-8 V-82; 6/4-13 VIII-82; 29/4-13 XI-82; 5/4-13 II-83; 6, 8, 32/4-13 V-83; 10/22-4 II-83; 9, 10,

20, 38/22-4 V-83; 2/22-8 XI-82; 22/22-8 II-83; 28/22-8 V-83. (BAFC).

Observaciones:

Se conserva la ortografía original de Fries: R. pirtformis y no R. pynformís (art. 73, Voss et

al. 1983, ICBN).

R. piriformis (Fr.) v. Hóhnel parece ser afín a R. tenella Sacc., la cual ha sido también

coleccionada sobre madera de Eucalyptus viminalis en Australia. Pero Saccardo (1891: 913) no

menciona la brotación de las ascosporas, característica de R. piríformis. También hay citas de R.

piriformis sobre ramas descortezadas de Quercus sp.

Sivanesan (1976) comparó 9 especies de este género, en cuanto al tamaño y tabicamiento de

las ascosporas, incluyendo una especie argentina: R. antarctíca Speg., aunque no examinó el tipo.

Estudiando el holotipo (LPS 2336) de R. antarctica, se observó que Spegazzini (1887: 231), bajo este

80

nombre, describió y dibujó los peritecios de Melanospora caulinicola (Fuck) Müller & v. Arx y los

ascos y ascosporas de Pleospora sp.. Por lo tanto, R. antarctica Speg. es un “nomen dubium” y debe

ser rechazado.

La especie se ha citado por pn'mera vez para la Argentina (Romero, 1987).

31 e- Tn'chosphaerella ceratophora (v. Hóhnel) Müller, Beit. Kryptog. der Schw. 11(2): 574.

1962.

Neorehmia ceratophora v Hóhnel, Sitzung. K. Ak. Wiss. Wien. Math. Nat. K]. lll (10):

988, 1902.

Para la lista de sinónimos, ver Müller & v. Arx, 1962.

(Fig. 9: D-G)

Peritecios solitarios o gregarios, casi incoloros. setosos en su pane superior, 50-75 pm diám.

Setas ramificadas, negras, 15-45 x 2-5 pm. Ascos cilíndricos, 15-25 x 3-4 pm. Ascosporas al

principio bicelulares, incoloras, partiéndose al nivel del septo originando ascos ló-esporados, l-2 pm

diám. Sobre madera.

Anamorfo: Tritirachíum oryzae (Vinc.) Hoog. (Müller & Samuels 1982 a).

Material estudiado: Romero 32/4-13 XI-Sl; 23/4-13 V-82; 6/4-13 V-83 (BAFC).

Observaciones:

Munk (¡957) describió esta especie sobre tocón de Picea abies (L.) Karsten.

La especie se ha citado por primera vez para la Argentina.

81

32 f- Tfichosphaerella decipiens Bomm, Rouss. et Sacc. Syll. Fung. 9: 604, 1891.

Para la sinonimia, ver Müller & v. Arx 1962: 572.

(Fig. 9: A-C)

Peritecios gregarios globosos, amarillo claro translúcido, casi incoloros, setosos en la parte

superior, 25-80 pm diám. Setas negras, rígidas, con extremos agudos, 60-70 x 3-5 pm. Ascos

cilíndricos, primariamente octosporados, posteriormente ló-esporados, 25-32 x 3-5 pm. Ascosporas

al principio bicelulares y luego rápidamente partiéndose por el septo, biseriadas o irregularmente

unisen'adas, más o menos rectangulares a ovoides, incoloras, 4 x 2-3 wn. Sobre corteza interna.

Anamorl‘o: desconocido.

Material estudiado: Romero 23/22-4 XI-81; 14/22-8 XI-81; 35/22-8 11-82; 9?/4-l3 Xl-82;

14/22-4 VIII-82; 38/22-4 V-83. (BAFC).

Observaciones:

Nuestro material coincide con las descripciones de Munk (1957) y Dennis (1978), aunque las

medidas son menores.

Dennis (op. cit.) encontró esta especie sobre madera descortezada de angiospermas, a menudo

asociada con Peniophora sp. y señaló que las medidas del material británico tendían a ser menores

que las colecciones continentales. Munk (op. cit.) la encontró sobre madera en descomposición de

Quercus 5p..

La especie se ha citado por pn'mera vez para la Argentina (Romero, 1987).

XYLARIACEAE

33 a- Hypoxylon caries (chh.) Sacc., Syll. F. l: 393, 1882.

Sphaeria caries Schw., Trans. Amer. Phil. Soc. Phila. ser.4: 194, 1832.

H. balansae Speg., Fungi Guar., Anal. Soc.Cient. Argent. 26: 30-31, 1888.

Para las ilustraciones ver Miller ¡961, figs.l 16 y 144.

Estroma aplanado, efuso, orbicular a linear, irregular, negro, carbonáceo. Peritecios papilados,

ovoides, 0,3-0,S mm diám., bases inmersas en la madera. Ascos cilíndricos, 55-70 x 4-6 pm pie 20-30

pm long.. Paráfisís filiformes, ramificadas. Ascosporas oblongas con extremos redondeados, castaño

claras, 9-12 x 3-5 pm. Sobre madera descortezada.

Anamorfo: desconocido.

Material estudiado: Romero 7/22-4 V-82 (BAFC).

Observaciones:

Este material coincide con la descripción de Miller (1961). Spegazzini (1909) la citó para la

Argentina, en la Pcia. Buenos Aires, en Isla Santiago y, también para Paraguay (1888).

34 b- Hypoxylon serpens (Pers.:Fr.) Kickx, Flore Crypt. Louvain: 115, 1835.

Para la lista completa de sinónimo e ilustraciones, figs. ll3 y l4l ver Miller (1961:

77-77).

Estroma superficial, orbicular a elíptico, pequeño a ampliamente efuso, variando con las

83

irregularidades del sustrato, negro, superficie lisa o muy suavemente marcada por las papilas de los

peritecios. Peritecios globosos a ovoides por presión. Ascos cilíndricos, estipitados, 75-100 x 6-9 pm,

pie 40-60 pm long. Paráfisis filiformes, abundantes. Ascosporas oblongas, inequilateralmente elípticas

con extremos obtusos, castañas, ¡0-15 x 5-7 pm. Sobre madera y corteza.

Anamorfo: Geniculosporium sp. sensu Ellis l97l: 229.

Material estudiado: Romero 12, l7, 18/22-4 Xl-82; 6/22-4 II-83 (BAFC).

Observaciones:

Estas colecciones coinciden con la descripción de Miller (op. cit.).

Se cita por primera vez para la Argentina.

35 c- Hypoxylon stygium (Lév.) Sacc., Syll. Fung. l: 379, 1882.

Para la lista de sinónimos e ilustraciones figs. 156, 170, ver Miller 196]: 9].

Estroma erumpente-superficial, pulvinado a casi efuso, a veces con los peritecios casi libres

de estromas, negro, muy duro y carbonáceo, superficie marcada por las papilas ostioladas en el centro

de pequeños discos anulares. Peritecios muy pequeños, 100-300 pm diám., globosos a ovoides. Ascos

cilíndricos, estipitados, 40-60 x 3,5-4 um, pie 15-20 pm long. Paráfisis filiformes, abundantes.

Ascosporas uniseriadas o diagonalmente uniseriadas, oblongas a naviculares, castañas claro a oscuro,

5-8 x 2,5-3 pm. Sobre madera.

Anamorfo: desconocido.

Material estudiado: Romero 6/22-4 V-83 (BAFC).

Observaciones:

Esta muestra coincide con la descripción Miller (op. cit.).

La especie se cita por primera vez para nuestro país.

Loculoascomycetes

CHAETOTHYRIALES

HERPOTRICHELLACEAE

36 a- Capronia pilosella (Karst.) Müller et. al., Trans. Br. Mycol. Soc. 88: 68, 1987.

Para la lista de sinónimos, ver Müller et al. (op. cit.).

(Fig. 9: J-N; Lám. X: 7-10)

Ascomas peritecioides ocráceos amarillentos, setosos en 1a zona ostiolar, subglobosos,

pequeños 90-150 pm diám, esparcidos. Pared 7-10 pm de espesor, de “textura angularis”. Setas

castaño oscuro, de extremos agudos, rectas o a veces sinuosas, de paredes conspicuas sobre todo en

la base, 30-50 x 3-5 pm. Ascos octosporados, claviforme-fusiformes, bitunicados, pared apicalmente

gruesa, con un anillo I', 45-55 x 10-12 pm. Ascosporas elíptico- fusiformes, ligeramente curvadas,

extremos redondeados, 1-3 septadas, castaño claro, 10-15 x 4-5 pm. Sobre madera.

Anamorfo: Cladosporium 5p., cf. Heteroconium chaetospira (Grove) Ellis, de acuerdo con

Müller et al. (op. cil.)

85

Material estudiado: Romero 7/22-8 V-83; 8, 40 /22-8 V-82 (BAFC).

Observaciones:

Estos materiales coinciden con la descripción dada por Barr (l972: 615) bajo el nombre de

Herpotrichiella pilosella (Karst.) Munk. Müller et al.(op. cít.) realizaron la presente combinación,

aportando además una descripción del estado anamorfo en cultivo y mencionan como sustratos,

maderas descortezadas de Alnus, Betula, Carpínus, Nothofagus (de Nueva Zelanda), Salíx y Quercus.

Barr (1987) en su clave de la familia Herpotrichiellaceae caracteriza al género Capronia por

tener ascos polispóricos. En cambio, Müller et al. (op. cít.) confeccionan una clave con 24 especies

del género en la cual incluyen tanto especies polispóricas como octospóricas. Esta clave fue la seguida

para la determinación de nuestros materiales.

C. coronata Samuels parece ser una especie afín con C. pilosella (Karst.) Müller et aL.

Difieren en el tamaño de las ascosporas (menores en C. coronata) y en el estado anamorfo: Exophiala

sp. para C. coronata y Cladosporíum sp. para C. pílosella. Las medidas de nuestro material coinciden

más con las de C. pilosella y por otro lado, a lo largo de este estudio no ha aparecido el anamorfo

Exophiala 5p.; en cambio, se ha encontrado Cladosporium sp., aunque no asociado con el teleomorfo.

Por estas razones consideramos que este material pertenece a C. pilosella.

Ninguno de los autores que han descripto el género y/o sus especies, han hecho mención del

aparato apical del asco (Barr 1972, 1987, Spooner 1981, Müller et aL, entre otros). Eriksson (198])

al caracterizar la familia Herpotrichiellaceae Munk, describiendo la especie tipo Herpotrichiella

moravica Petr., dice que los ascos no tienen anillo ni zonación. En nuestro material fue posible

observar con el microscopio de campo claro, con CID (Nonnanski, Lám. X: 7) y dibujar un aparato

apical pero no definir exactamente el tipo. Con epifluorescencia se observó perfectamente el anillo

86

apical (Lám. X: 8, 9, 10). Posteriomente se procedió a observar con esta técnica otros materiales de

ésta y otras especies del género y se confirmó así la presencia de este anillo en todos los materiales

estudiados (Caprom'a pleiospora (Mount.) Sacc., Rossdhu, s/tallos muertos de Rubusfructicosus agg.,

7-9-1980, Spooner, K!; Herpotrichiella pílosella (Karst.) Munk, Arhigton Coun, Devon, Reino Unido,

2-9- 1978,Hockley Woods, ¡0-10-1976, Kl; Caprom'a (Herpotrichiella) pilosella, Mynyold, Kl, Dyfed,

29-5-1987; Chaetomastia hispidula encarpetado en Herpotrichiella 3p., IMI 141499).

La especie se cita por primera vez para la Argentina.

MELANOMMATALES

DlDYMOSPHAERlACEAE

37 a- Delitschia corticola Romero & Samuels, Sydowia 43: 244, 1991.

(Fig. 9: H-I; Lám. XI: l-4)

Ascomas peritecioides con vientres globosos, negros, 400-800 um díám., superficiales,

solitarios, con cuello central, no ramificado, cilíndrico, 100-130 x 400-700 pm; cubiertos por un

tomento castaño iridiscente, hifas del tomento 2-2,5 pm diám.. Pared 30-50 um de espesor, “textura

angularis”. Ascos cilíndricos, 180-240 x 12-15 um, bitunicados, 8-esporados, ascosporas uniseriadas.

Ascosporas eilíptico-fusifonnes, 20-24 x 9-11 pm, bicelulares, constreñidas en el septo, cada célula

con un surco germinativo longitudinal completo, lisas, castaño oscuro casi negras. Pseudoparáfisis

trabeculares, filiformes, muy delgadas 0,6-1 pm diám., septadas, cuerpos de Woronin visibles, con

87

anastomosis. Sobre corteza.

Anamorfo: desconocido.

Material estudiado: Romero 21 (Holotipo BAFC 32035), 36 / 22-8 V-82 (BAFC).

Observaciones:

Luck-Allen & Cain (1975) restringen el género Delitschia a las especies coprófilas, excluyendo

a D. gymnospora Munk, principalmente, por ser lignícola y además por poseer surcos germinativos

más cortos que lo usual en el género y por la falta de vaina gelatinosa en las ascosporas. Nosotros no

coincidimos con el criterio de excluir esta especie por aparecer sobre otro sustrato. Utlizando la clave

propuesta por Luck-Allen & Cain (op. cit.), esta especie nueva es semejante a D. arestospora

Luck-Allen & Caín, especie coprófila que posee ascosporas menores y que se desarticulan aún dentro

del asco. Otra especie afín podría ser D. xanthodera ya que también tiene un cuello robusto y está

cubierta por un tomento, pero éste es de color anaranjado oscuro.

En cuanto a nuestro país, recientemente, Lorenzo (1993) describió dos especies coprófilas de

este género sobre estiércol de guanaco (Sta. Cruz) y de caballo (Río Negro).

MELANOMMATACEAE

38 b- Melanomma pulvis-pyrius (Pers.) Fuck., Symb. Myc.: 159, 1869.

Para los sinónimos ver Chesters, 1938: 118.

(Fig. lO: A-C; Lám. XI: 5)

Ascomas peritecioides globosos a subglobosos, 210-460 x 180-370 pm diám., gregarios,

papilados o con cuello, carbonáceos, esparcidos, al principio inmersos, finalmente superficiales. Ascos

cilíndricos a cilíndrico-claviformes, octosporados, bitunicados, ápice grueso, 100-120 x 8-10 pm.

Pseudoparáfisis trabeculares abundantes, muy delgadas y entremezcladas. Ascosporas

elíptico-fusiformes, al principio bicelulares, gutulosas, incoloras, de pared gruesa, con septo medio,

posteriormente aparece en cada célula un septo secundario, siendo en la madurez 3-septadas, castañas

y de paredes más delgadas. Sobre corteza interna.

Anamorfo: forma picnidial, que de acuerdo con Chesters (1938) podría tratarse de

Aposphaeria agminalis Sacc.. Boise (1985) aisló la misma forma picnidial que 1a descripta

originalmente por Chester, a partir de ascosporas de un ejemplar de Melanomma pulvis-pyrius sobre

madera descortezada procedente de EEUU leg. Barr, pero señala que por el tipo de célula conidiógena

no pertenece a1 género Aposphaeria.

Material estudiado: Romero 38/4-13 V-83 (BAFC).

Observaciones:

Para la determinación de esta muestra se siguió a Barr (1987:20).

Hasta e1 momento no se han encontrado registros anteriores de la especie para nuestro país.

PLEOSPORALES

BOTRYOSPHAERIACEAE

39 a- Botryosphaeria obtusa (Schwein.) Shoem., Can. J. Bot. 42: 1298, 1964.

Sphaeria obtusa Schwein., Trans. Am. Phil. Soc. 4: 220, 1832.

(Fig. lO: D-I-l; Lám. XI: 6)

Ascomas negros, inmersos, uni a multiloculares. Ascos bitunicados, claviformes, 90-110 x

7-10 pm. Pseudoparáfisis celulares, abundantes. Ascosporas in‘egulannente biseriadas, anchamentes

fusiformes, incoloras, lisas, 20-25 x 7-10 pm. En corteza, especialmente de rebrotes.

Anamorfo: Sphaeropsís sp. (Shoemaker 1964): picnidios inmersos, negros, generalmente

uniloculares, peridio “textura angularis“. Células conidiógenas holoblásticas, cilíndricas, simples o

ramificadas. Conidios ovalados, castaños oscuros, paredes estriadas, 20-24 x 9-10 pm. En corteza.

especialmente de rebrote, acompañando al estado perfecto.

Material estudiado: Romero 4, 5, 8, 9 (Ts.), lO (anamorfo)/22-4 Xl-81; 2, 9/22-4 V-82; 7,

31/22-8 XI-81; 19/4-13 XI-82; 2, 20/4-13 11-83; 6/22-4 II-83 (BAFC).

Observaciones:

Estas colecciones coinciden con la descripción de Sivanesan (1984). La especie está citada

tanto como agente causante de cancros y “dieback” de Malus sp. y Viris sp. y como saprófito en

madera y corteza muerta (Sivanesan, op. cit.). Shoemaker (1964) y Laundon (1973) estudiaron las

90

diferencias taxonómicas entre esta especie y B. stevensii, siendo dos especies afines que causan

cancros, manchas foliares, pudríción de frutos de Malus sp., Vitis sp. y Quercus sp., y citándolas para

Norteamérica y Nueva Zelandia.

En cuanto a nuestro país, Spegazzini (1909, 1912, 1914) describió varias especies de

Botryosphaería para la Pcia. de Bs. As. que según Farr (1973) han sido transferidas a otros géneros.

40 b- Botryosphaeria ríbis Grossenb. & Duggar, Tech.Bull. N.Y.Agr. Exp. Stn. ¡8: l29, l9l l.

(Fig. 10: I-J)

Anamorfo: conidiomas estromáticos, solitarios o botn'osos, inmersos. Conídios de dos tipos,

producidos en lóculos separados, macroconidios fusiformes originados en células conidiógenas

fialídicas percurrentes, simples, incoloras, ¡6-23 x 5-7 pm y microconidíos alantoides, incoloros, 2-3

x l pm.. En corteza, especialmente de rebrote.

Material estudiado: Romero 27/4-13 VIII-81; 4, 9/22-4 XI-81; 2/22-4 V-82; 22/22-4 Xl-82

(BAFC).

Observaciones:

Para la determinación de estos materiales se siguió a Sivanesan (1984). Señala que el anamorfo

ha recibido el nombre de Dothiorella sp. y que, de acuerdo con Sutton (1980), el nombre es

Fusicoccum. Pennycook y Samuels (¡985) aislaron a partir de conidios y ascosporas de

fructificacíones en frutos de kiwi y describieron B. dothidea (anamorfo: Fusicoccum aesculí Corda),

B. parva (anamorfo: F. parva Pennycook & Samuels) y F. luteum Pennycook & Samuels. Todos con

91

ontogenia fialídica, célula conidiógena proliferante percurrente y primer conidío formado

holoblásticamente. Por tal razón proponen una modificación del concepto del género Fusicoccum

considerado hasta ese trabajo, con conidiogénesis holoblástica.

Igual que la especie anterior, también ésta está citada como agente causal de cancros y

“dieback”, en ramas y frutos de diversos árboles y plantas, tanto en regiones templadas como

tropicales.

En cuanto a nuestro país, Frezzi (1952) describió B. ribis, en su forma sexual y asexual, y los

síntomas que ocasiona en Chamaecyparis lawsoniana, proveniente del Delta, Pcia. de Bs. As. y en

su forma asexual en Persea gratissima (palta), proveniente de Córdoba. Asimismo, aisló esta especie

de Eucalyptus sp. de 7-8 años, de Córdoba. Realizó pruebas de patogenicidad en palta, eucalipto y

plátanos y propuso un tratamiento.

En la muestra número 4/22-4 XI-8l aparecieron ambas especies (B. obtusa y B. ribis) aunque

B. ribis sólo en su estado asexual, y en la muestra 2/22-4 V-82 se halló el estado asexual de B. ribis,

microconidios, y el estado sexual de B. obtusa.

4l c- Botryosphaeria rhodina (Cooke) v. Arx. Genera of Fungi spo-rulating in cuture: 143, 1970.

(Fig. lO: K-N)

Anamorfo: Lasiodiplodia theobromae Pat., Bull. Soc. Fr. 8: 136, 1892.

Conidiomas simples o botriosos, globosos, estromáticos, ostiolados. Célula conídiógena

holoblástica, cilíndrica a lageniforme, incolora. Conidios inicialmente incoloros, unicelulares, ovoides,

con base truncada, al madurar castaños oscuros, uniseptados, septo grueso casi negro,

92

longitudinalmente estriados, 20-23 x 9-12 pm. Sobre corteza.

Material estudiado: Romero l/22-4 V-82 (BAFC).

Observaciones:

Este ejemplar coincide con la descripción de Sivanesan (1984).

La especie se cita por primera vez para nuestro país.

DACAMPIACEAE

42 a- Man'stroma polyspora Romero & Samuels, Sydowia 43: 246, 1991.

(Fig. ll: A-D; Lám. XII)

Ascomas pulvinados, de contorno más o menos circular, l mm diám., negros, con varios

lóculos (3-8), 120-250 pm diám., pared locular pobremente desarrollada, ostiolados. Pared del ascoma

18-25 pm de espesor, “textura angularis”. Ascos obclavifonnes, con un pie corto lateral, 40-66 x 12-13

pm, poliesporados, pared apical gruesa, bitunicados, con dehiscencia fisitunicada. Ascosporas

elíptico-fusiformes, unicelulares, egutuladas, incoloras, lisas, 3-4 (5) x 0,6-l,2 pm. Pseudoparál'isis

celulares, formadas por filamentos septados, gutulados, ramificados, libres apicalmente. Sobre madera

transversalmente cortada.

Anamorfo: desconocido.

Material estudiado: Romero 27 (Holotipo BAFC 32036), 324-13 V-82; 29/4-13 Xl-82;

3214-13 V-83 (BAFC).

93

Observaciones:

Debido a la presencia de las numerosas pseudoparáfisis del tipo celular entre ascos bitunicados,

ha sido posible relacionar a Moristroma con las Pleosporales (sensu Barr 1987) pero, en cambio, fue

difícil asignarlo a una familia. No pudimos observar el “peridio de 3 capas del ascoma” utilizado por

Barr (1987: 99) para caracterizar a la familia Dacampiaceae.

Las pseudoparáfisis y ascos de M. polyspora son muy semejantes a las de Loculohypoxylon

grandineum (Berk. & Rav.) Barr (Ellis & Everhart, Fungi Columbiani 324, BPI!; ver Barr 1976),

especie que fue incluída por Barr (1987) en Dacampiaceae. Como en Loculohypoxylon grandineum

y Immotthia hypoxylon (Ellis & Everhart) Barr (Dacampiaceae), los ascomas de M. polyspora están

inmersos en tejido estromático. Pero en M. polyspora son pluriloculares, estando los lóculos

adyacentes separados por una capa delgada de tejido mientras que los ascomas de L. grandineum y

I. hypoxylon son uniloculares; sin embargo, varios ascomas de L. grandineum pueden estar conectados.

HYSTERlACEAE

43 a- Gloniopsis australis (Duby) Sacc. Syll. Fung. II: 774, 1883.

Hysteríum australe Duby, Extr. Mem. Soc. Phys. et Hist. Nat XVI: 32, 1862.

(Fig. ll: J-M)

Histeriotecios elongados, negros, con una hendidura longitudinal central, 1 mm long.. Ascos

cilíndrico-claviformes, bitunicados, 75-100 x 16-17 um. Ascosporas muriformes, elípticas,

constreñidas en el septo medio, incoloras, 20-25 x 8-10 pm, a menudo rodeadas por una vaina

94

gelatinosa gruesa. Sobre madera.

Anamorfo: desconocido.

Material estudiado: Romero 1/22-8 VIII-81; 1/22-8 XI-81; 30/22-8 II-82; 9/22-4 XI-82;

36/22-4 V-83 (BAFC).

Observaciones:

Estas colecciones coinciden con la descripción de Gloniopsís australis (Duby) Sacc. A su vez,

ésta concuerda con la de G. praelonga (Schw.) Zogg. Zogg (1962) sinonimizó la subespecie G.

australis ssp. vinealis Sacc. et Br. con G. praelonga (Schw.) Zogg pero no incluyó en su lista a la

especie G. australis (Duby) Sacc. Considero que G. australis es también sinónimo de G. praelonga

pero ante la imposibilidad de estudiar el tipo de ésta, no se puede confirmar la sinonimia.

Spegazzini (1909: 439) citó por primera vez para la Argentina a G. australis (Duby) Sacc.

sobre distintas especies arbóreas en la provincia de Buenos Aires (LPS 1237 y 1239).

Otra especie citada (Spegazini, 1902: 74), también sobre ramas descortezadas de Euycalyptus

globulus Labill, es Gloniopsis argentinensis Speg. Esta especie (Holotipo LPS 1200 l) difiere de G.

australís por poseer ascos y ascosporas mayores y las ascosporas son más elípticas con los extremos

más redondeados.

44 b- Glonium abbreviatum (Schw.) Lohman, Bull. Torr. Bot. Club 64: 64, 1937.

Hysteríum abbreviatum Schw., Trans. Amer. Phil. Soc. N. ser.IV: 141-316, 1834.

Glonium microsporum Sacc. 1875 fide Zogg, 1962: 60.

Glonium microsporum var. minor Speg., Anales Mus. Nac. Bs. As. 17 (ser.3,t.10): 130, 1908.

Tipo: Argentina, Misiones: San Pedro, 11-1907, Spegazzini (Holotipo, LPS 1262!).

95

Para la lista completa de sinónimos ver Zogg 1962.

(Fig. l 1: E-H)

Histeriotecios negros, elongados, simples, lisos, con una hendídura longitudinal, 0,4-0,8 mm

long.. Ascos cilíndricos, bitunicados, 40-50 x 4-5 pm. Ascosporas uniseriadas, incoloras, uniseptadas,

levemente constreñidas, 7-8 x 3 pm. Sobre madera.

Anamorfo: Lohman (1931) obtuvo en cultivo picnidios del tipo Sphaeronaema a partir de la

germinación de las ascosporas.

Material estudiado: Romero 2/22-4 V-82; 15/22-8 VIII-81; 20/22-8 V-82; 6/413 XI-82;

29/413 V-83; 14/22-4 VIII-82; 5, 12 MB/22-4 11-83;3, 5/22-4 V-83; 17/22-8 VIII-82; 12/22-8 XI-82;

l/22-8 II-83; 34/22-8 XI-83 (BAFC).

Observaciones:

Zogg (1962) dió una lista completa de hospedantes para esta especie, entre los cuales figura

Eucalyptus sp..

Spegazzini (1902: 74), citó esta especies, bajo el nombre G. microsporum Sacc., por primera

vez para la Argentina, sobre madera en descomposición, en Santa Catalina, Buenos Aires. Estudiando

una colección de San Pedro, Misiones, Spegazzini describió (19082130) G. microsporum var. minor,

debido, probablemente a que los histeriotecios eran más pequeños. Se analizó este ejemplar (LPS

1262) y se lo comparó con nuestro material, comprobándose que son muy semejantes. Las medidas

de ascos y ascosporas coinciden. El tamaño de los histen'otecios varía según los autores, a saber:

0,5-0,75 x 0,3 mm (Saccardo 1883: 736), 0,25-0,5 x 0,2-0,25 mm (Spegazzini op. cít.), l x), l-O,4

96

mm (Zogg 1962: 60), 02-l,2 x 0,1-0,35 mm (Müller in Müller & v. Arx 1962: 244). Las medidas

dadas por Spegazzini quedan así incluídas en el rango de variación del tamaño de los histeriotecios.

Por lo tanto, la variedad propuesta no se justifica y se la sinonimiza con esta especie.

45 c- Hysterium angustatum Albertini & Schweinitz: Mérat, Nouvelle Flore de Paris 1:153,

182].

(Fig. 11: N-P)

Histeriotecios negros, elongados, simples, rectos o sinuosos, lisos, con una hendidura

longitudinal, 0,6- l ,50 mm long. Ascos bitunicados, claviformes, cortamente pedicelados, octosporados,

60-90 x 8-12 um. Ascosporas uni- o biseriadas, elíptico-cilíndricas, extremos redondeados o

levemente agudos, rectas o ligeramente curvadas, triseptadas, castañas, tabiques más oscuros; las

ascosporas jóvenes comienzan con un septo central, luego los otros dos y con una gútula por célula,

16-20 x 5-7 pm. Sobre corteza.

Anamorfo: desconocido.

Material estudiado: Romero 3, 4/22-4 VIII-82; 3/22-4 11-83;40/22-4 V-83 (BAFC).

Observaciones:

Zogg (l949) describió esta especie sobre distintas especies de Eucalyptus de Porto Alegre,

Brasil.

Se cita por primera vez para la Argentina.

97

LOPHlOSTOMATACEAE

46 a- Lophiostoma fuckelii Sacc. Fl. Ital. tab. 254, 1878.

Para los sinónimos ver Holm & Holm: 17, 1988.

(Fig. 12: I-L; Lám. XIII: 1)

Ascomas peritecioides negros, densamente esparcidos, semiinmersos. 0.2-O.3 mm diám.,

papila pequeña circular en sección. Ascos bitunicados, claviformes, 75-80 x 9-10 um. Pseudoparáfisis

celulares, ramificadas, espaciadamente septadas, con anastomosis. Ascosporas fusiformes, uniseptadas,

levemente ensanchadas a ambos lados del septo, incoloras, con 2 gútulas en cada célula, con apéndices

terminales cortos difíciles de observar, más visibles en azul de algodón al lactofenol al colorearse la

espora y los apéndices no, 15-19 x 4-5 um. Sobre corteza y madera.

Anamorfo: desconocido. De acuerdo con Holm & Holm (op. cit.), Leuchtman obtuvo

picnidios en cultivo a partir de cepas monospóricas de 5 especies: L. caulium, L. macrostomum, L.

semiliberum, L. sp. y Lophiotrema nucula. Estos fueron semejantes y afines a los géneros

Pleurophomella y Aposphaeria.

Material estudiado: Romero 24, 39/4-13 11-82;4, 8, 16, 19, 26, 28, 32, 37/4-13 V-82; 6/22-4

V-82; 2, 7, 36/22-8 XI-Sl; 9/22-8 V-82; 29/4-13 XI-82; 8/4-13 11-83; 9,21/4-13 V-83; 20/22-8

VIII-82; 27/22-8 V-82 (BAFC).

Observaciones:

Se deteminaron estas colecciones siguiendo a Holm & Holm (1988). La mayor dificultad fue

98

observar los apéndices terminales, pero justamente este inconveniente fue tomado como un carácter,

ya que dichos autores mencionan que la mayoría de las veces estos apéndices pasan desapercibidos

en esta especie.

Según Holm & Holm (op. cít.) la familia Lophíostomataceae no es omnívora; hay especies

casi exclusivamente sobre madera o corteza de árboles deciduos y arbustos, otras muestran una

preferencia notable por herbáceas, especialmente, por monocotiledóneas y, finalmente, unas pocas son

más amplias en su dieta. En este último grupo incluyen a L. fuckelii, siendo uno de sus principales

hospedantes Rubusfructicosus; también ha sido hallada sobre roble y sobre varias herbáceas. Esta es

la primera vez que se la cita sobre Eucalyptus viminalis.

En cuanto a su distribución geográfica parece ser que hasta el momento se la consideraba

europea (Suecia, Gran Bretaña, Alemania y Suiza).

La presente descripción también coincide con la de Chesters & Bell (1970).

Esta especie se cita por primera vez para la Argentina.

47 b- lophiostoma myriocarpum Fckl. Symb. Myc. 156, 1870.

Para los sinónimos ver Holm & Holm 1988: 20.

(Fig. 12: D-F; Lám. XIII: 5-6)

Ascomas peritecioides negros, esparcidos, semiinmersos, erumpentes, 0,3-0,4 mm diám., papila

discreta y aplanada. Ascos bitunicados, cilíndricos, octosporados, 70-90 x 7-9 um. Se observaron

“croziers”. Pseudoparañsís celulares ramificados, septadas espaciadamente, abundantes. Ascosporas

fusifonnes, 3-septadas, incoloras, con una gútula por célula, 25-30 x 4-5 tun. Sobre corteza.

99

Anamorfo: desconocido.

Material estudiado: Romero 4, 10/22-4XI-Sl; 38/22-8 V-82; 24, 34/4-13 VIII-82; 36/22-8

XI-82 (BAFC).

Observaciones:

Estos ejemplares sólo difieren de la descripción de Holm & Holm (0p. cit.) en las medidas de

ascos y ascosporas, siendo las presentes algo menores.

Dichos autores dudan de la ubicación de esta especie en este género; podria ser ubicada en

Lophiotrema por la forma del asco pero no por el peridio.

Está citada para Suecia, Noruega, Alemania, Austria, Suiza y Hungría; en cuanto a sus

hospedantes: corteza y madera de Populus alba, Fraxinus 5p., Sambucus sp. y Dryas octopetala. Se

cita por primera vez sobre Eucalyptus víminalís y para la Argentina.

Nota: Cabe destacar que Spegazzini describió ll especies, teoricamente pertenecientes al

género Lophíostoma; algunas muestras procederían de Italia y otras de la Argentina. Según Fan (1973)

la mayoría podrían ser especies de Navícella que, de acuerdo con Barr (1987:131), es un género

ubicado en la familia Massariaceae, Orden Melanommatales. Obviamente todo este material debe ser

revisado; incluyendo ejemplares de Lophiotrema, género muy semejante a Lophiostoma.

48 b- Lophiostoma semiliberum (Desm.) Ces. & De Not., Comm. Soc. Crit.ltal. l: 220, 1863.

Para los sinónimos ver Holm & Holm l988: 23.

(Fig. l2: A-C; Lám. XIII: 2-4)

Ascomas peritecioides negros, densamente esparcidos, numerosos, semiinmersos, 0.4-0.8 mm

diám., papila robusta, 0,2 mm de altura, lateralmente aplanada, con aspecto de “boca de sapo”. Ascos

bitunicados, claviformes cuando jóvenes, más cilíndricos al madurar, octosporados, 100-130 x 7-9 um.

Pseudoparáfisis celulares, abundantes, ramificadas, espaciadamente septadas, con anastomosis, l um

diám, ápice ligeramente más ensanchado 1,5pm diám. Ascosporas fusiformes, uniseptadas, levemente

ensanchadas alrededor del septo, incoloras, con 2-4 gútulas en cada célula, 23-28 x 4-5 um. Sobre

madera.

Anamorfo: ver especie anterior.

Material estudiado: Romero 19/22-4 XI-82 (BAFC).

Observaciones:

Este material coincide con la descripción de Holm & Holm (1988), salvo en lo que respecta

al sustrato. Está citada en tallos de distintas gramíneas pero parece no haber sido mencionada sobre

madera de especies arbóreas. Este hecho hizo dudar de la determinación de la muestra en cuestión y

por momentos se pensó que se estaba en presencia de L. macrostomum. Dichos autores señalan que

parecen ser dos especies muy cercanas y que se diferencian, principalmente, por la falta de apéndices

terminales en las ascosporas de L. semiliberum. También dibujaron las ascosporas de L. semílíberum,

curvadas mientras que en nuestros materiales son rectas. Observando los esquemas de los aspectos

101

generales de los ascomas de ambas especies de Holm & Holm (op. cit.: 39) y los dibujos de las

ascosporas de L. semiliberum de Chesters & Bell (1970: 6), nos inclinamos más a adjudicarle este

nombre a nuestro material. Por otra parte, la papila en forma de cresta de L. macrostomun, también

conocida con los nombres: Lophiostoma angustilabrum o L. crenatum; parece ser algo muy distinto

a la papila redondeada con aspecto de “boca de sapo” del material en consideración.

La especie se cita por primera vez para la Argentina.

LEPTOSPHARIACEAE

49 a- Ophiobolus rubellus (Pers.:Fr.) Sacc., Fungi Gallici III: 324, 1881.

Para los sinónimos ver Shoemaker 1976: 2390.

(Fig. 12: G-H)

Ascomas peritecioides esparcidos, inmersos sólo asomando papila ostiolar púrpura oscura.

Ascos cilíndricos, ápice engrosado atravesado por un canal, octosporados, 90-l20 x 8-9 pm.

Ascosporas paralelas en un fascículo, cilíndricas, multitabicadas, incoloras, castañas oliváceas al

envejecer, casi del mismo largo que los ascos, 1,5-2 pm diám. Sobre madera descortezada.

Anamorfo: desconocido.

Material estudiado: Romero l5/22-4 VIII-82 (BAFC).

Observaciones:

l-lasta el momento, se ubica este ejemplar bajo este nombre a pesar de la confusión

nomenclatura] y taxonómica que existe entre distintos investigadores.

102

Los nombres genéricos involucrados son: Raphídophora Fr. et Mont., 1849, Ophiobolus Ries,

1853, y Leptospora Rabenh., 1857. De acuerdo con Saccardo (1883) Raphidophora y Ophiobolus son

sinónimos y el primero no se puede usar por ser un homónimo de un género de Acam‘haceae.

Shoemaker (1976) conserva 0. rubella: (Pers.:Fr.) Sacc., 1881 y a Leptospora rubella

(Pers.:Fr.) Rabenh., 1857 lo considera sinónimo.

Contrariamente, Walker (1980) rescata como nombre correcto de esta especie a Leptospora

rubella (Pers.:Fr.) Rabenh. y coloca a Ophíobolus rubellus (Pers.:Fr.) Sacc. como un sinónimo de la

misma.

Con respecto a las posiciones de los géneros, Barr (1987) ubica al género Leptospora en la

familia Dacampiaceae (Orden Pleosporasles) y al género Ophíobolus en Leptospharíaceae

(Pleosporales). Caracteriza a L. rubella (Pers.:Fr.) Rabenh., por la presencia del cuello y la coloración

rojiza del mismo.

Por otra parte, se revisaron 26 ejemplares del herban'o LPS, la mayoría de ellos son especies

ubicadas en Ophiobollus y tres en Rhaphidophora. Los materiales LPS 864 (de Argentina) y 865 (de

Italia) determinados ambos como Raphidophora rubella (Pers.: Fr.) Fckl., se ajustan a la descripción

de Shomaeker (1976) de Ophiobolus rubellus (Perstr) Sacc. En cambio, nuestro material coincide

más con LPS 861 (de Italia) ubicado también como Rhaphídophora rubella (Pers.:Fr.) Fckl., teniendo

ascos no tan largos y delgados como LPS 864 y 865.

Para aclarar esta situación necesitaríamos más material y una revisión de todos los nombres

y taxones involucrados.

103

PLEOSPORACEAE

50 a- Pleospora penicillus (Schm.) Fck. var. ambigua Crivelli, Diss. Eth N ° 7318: 75, 1983.

Para la lista de sinónimos, ver Crivelli 1983: 74-75.

(Fig. 13: M-Q)

Ascomas peritecioides negros, globosos 140-200 (300) um diám.. setosos, generalmente

colapsados en la madurez; setas negras, de extremos agudos, más densamente distribuidas alrededor

del ostíolo donde son más cortas 30-40 um long., las más alejadas 50-l00 um long., 2, 5-3 um diám.,

más anchas en la base 4-5 um diám. Peridio “textura angularís”, formada por células de paredes

castañas, 5-10 um diám. Ascos claviformes a cilíndricos, octosporados, 50-80 x 10-13 um. Ascosporas

al principio uniseriadas, posteriormente biseriadas, fusiformes a elipsoidales oblongas, muriformes,

5-7 septos transversales con septos longitudinales en las células centrales formando cruces (septo

tipo-vulgaris fide Wehmeyer op. cit.) y a veces también en las células distales, generalmente rectas

a levemente curvadas, castañas, ¡7-20 x 6-9 um. Sobre madera .

Anamorfo: De acuerdo con Crivelli (op. cit.) otros autores han citado, por un lado a

Camarosporium y por otro, a Phoma, para la especie P. penícillus, pero para esta variedad, por él

propuesta, no aclara si se conoce o no su anamorfo.

Material estudiado: Romero 9, 18/22-4 VIII-81; 6, 16, 28/22-4 XI-8l; 14, 2], 39/22-4 11-82;

25, 6, 9/22-8 VIII-81; 2, 6, 31, 35/22-8 XI-81; l, 2, 20/22-8 11-82; 2, 6, 8, lO, l3/4-l3 VIII-82; 7,

24/4-l3 XI-82; 6, 16, l7, 18, 20, 21, 30, 32/4-13 V-82; 4, lO, ll, 14/22-4 VIII-82; ¡3, 18/22-4 11-83;

6, lO, 34, 38/22-4 V-83; 1/22-8 VIII-82; 5, 8, 35/22-8 VIII-82; l7, 33/22-8 II-83; 38/22-8 V-83 (BAFC).

104

Observaciones:

Estos materiales coinciden con la descripción de Crivelli (op. cit.) y con la de Wehmeyer

(196)] como Pleospora ambigua; la única diferencia es que las medidas de nuestros materiales son

algo menores. Ambos autores la citan para países de Europa y Wehmeyer, además, para EEUU; hasta

el momento no se han encontrado registros para la Argentina.

Otra especie semejante es P. delicatula pero suele aparecer sobre hojas y las ascosporas son

diferentes en forma y tabicamiento.

La especie se cita por primera vez para la Argentina.

51 b-Kirschsteiniothelia aethiops (Berk. & Curtis) Hawksw., Bot.J. Linn. Soc. 91: 185, 1985.

Para los sinónimos ver Hawksworth 0p. cit.

(Fig. 13: A-F)

Ascomas peritecioides negros, región ostiolar castaño ocrácea, formada por pelos hifales de

extremos libres, cónicos, 300-600 pm diám., solitarios o en grupos, esparcidos, superficiales,

mezclados con conidióforos. Peridio 40-60 um de espesor, “textura angularís” de células poligonales,

5-8 um diám., las más externas más pigmentadas, paredes más gruesas, algunas terminando en hifas

cortas castañas oscuras. Hamatecio ligeramente amiloide. Ascos anchamente subcilíndricos,

cortamente pedicelados, bitunicados, octosporados, 70-120 x 17-18 pm. Pseudoparáfisis celulares

abundantes, filiformes. 1-2 pm diám. apicalmente, septadas. Ascosporas elíptico-fusiformes,

uniseptadas, generalmente la célula superior más grande que la inferior, castañas, aparentemente lisas

pero, con mucho aumento, ornamentadas con verrugas delicadas, 25-30 x 7-8 pm. Sobre madera.

Anamorfo: Dendryphiopsis atra (Corda) Hughes, Canad. J. Bot. 31: 655, 1953.

105

Colonia efusa, negra, pilosa. Conidióforos macronematosos, mononematosos, ramificados en

el ápice, distinguiéndose un estípite y un ramillete apical. Estípite recto o flexuoso, erecto, castaño

oscuro, hasta 500 pm long., 8-12 um diám., tipo de ramificación semejante a un dicasio. Célula

conidiógena monotrética, integrada, terminal sobre el estípite o sobre ramas. Conidios solitarios,

cilíndricos u obclavados, castaño oliváceos, 2-4 (5) septados, lisos, pared gruesa, a veces levemente

cur-vados, en cadenas cortas, 40-75 x 13-16 um. Generalmente sobre madera, pocas veces en

corteza.

Material estudiado: Romero 4, 23/22-4 II-82; 37/22-4 V-82; 23/22-8 II-82; 4, 38/22-4

VIII-82; 10, 20, 30, 39/22-4 V-83; 2, 7, 13 /22-8 VIII-82; 3, 7, 10/22-8 IX-82; 3, 7 (teleomorfo)

/22-8 V-83 (BAFC).

Observaciones:

Esta especie ha sido descripta en un rango amplio de madera descortezada incluyendo, entre

otros, Pinus sp., Quercus sp., Salix sp., etc. pero no encontramos registros sobre Eucalyptus sp. En

cuanto a su distribución geográfica, existen citas de regiones templadas. Hawksworth (1985 a, b)

estudió materiales de teleomorfos procedentes de Austria, Bélgica, Inglaterra, Escocia, Checoslovaquia,

Alemania, Canadá, Estados Unidos y Nueva Zelandia y menciona una cita de Francia y otra de

Dinamarca. No hay datos procedentes de Sudamérica. Esta es la primera vez que se cita para la

Argentina.

De acuerdo con Hawksworth (op. cit.), el anamorfo se encuentra generalmente acompañando

a los ascomas. Sin embargo, durante estos muestreos, el estado anamorfo ha prevalecido sobre el

teleomorfo, encontrándolo en 17 de las 18 muestras.

Con respecto a la reacción amiloide del hamatecio, Hawksworth aclara que en la mayoría de

106

las colecciones por él estudiadas, dió negativa, y que esta variación en dicha reacción, ya fue

observada anteriormente por otros investigadores.

52 b- Kirschsteiniothelia maritima (Linder) Hawksw., Bot. J. Lin. Soc. 91: 193, 1985 a.

Para los sinónimos ver Hawksworth (op. cít.)

(Fig. 13: G-J; Lám. XIII: 7-8)

Ascomas peritecioides negros, solitarios o en grupos, en forma de cojines, pequeños [00-200

pm diám., superficiales en la madurez, quedando sólo pane de la base inmersa, ostíolo plano negro.

Peridio 35-50 pm de espesor, “textura angularís” de células poligonales, 4-6 pm diám., las más

externas más pigmentadas, con paredes más gruesas, incluyendo en las capas más externas células

xilemáticas de paredes muy gruesas y con su luz ocluída por células fúngicas. Hamatecio inamiloide,

formado por pseudoparáfisis celulares abundantes, ramificadas, septadas. Ascos claviformes,

cortamente pedicelados, bitunicados, octosporados, 40-60 x 8-14 pm. Ascosporas elíptico-elongadas,

uniseptadas, septo no necesariamente en el centro, castañas, aparentemente lisas, lS-l9 x 4-5,5 um.

Sobre madera.

Anamorfo: desconocido.

Material estudiado: Romero 40/4-13 VIII-82; 23/4-13 [1-83 (BAFC).

Observaciones:

Estos materiales coinciden con la descripción de Hawksworth (op. cit.) excepto que dicho autor

no menciona nada de la inclusión de células de la madera (fibras?) en el peridio.

107

Esta es la primera vez que se cita para la Argentina.

Estas dos especies, K. aethíops y K. maritima, estuvieron ubicadas en el género Microthelia,

como M. incrustans y M maritima, respectivamente. Hawksworth (1985 b) realizó un estudio muy

completo sobre las especies y nombres que se han adjudicado (200 epítetos) a dicho género. Discutió

cronológicamente los géneros involucrados, confeccionó una clave de géneros, confeccionó una lista

de nombres y especies excluidas, e hizo descripciones en los casos necesarios.

Con respecto a Sudamérica, Spegazzini describió dos especies procedentes de Chile en el

género Microthelia, M. araucana y M. puyae. Saccardo (1913) transferió ambas a Dídymosphaeria.

Hawksworth (1985 b) consideró a M. araucana Speg. sinónimo de Didymosphaeria rubicola Berl. y

postula que si M. puyae Speg. tiene ascos bitunicados, debe ser transferida a Venturía.

Discomycetes

HELOTIALES

HELOTIAC EAE

53 a-Bisporella discedens (Karst.) Carpenter, Mycotaxon II (l): ¡24, ¡975.

Para los sinónimos ver Carpenter (op. cit.).

(Fig. 14: A-E)

Apotecios solitarios o en grupos pequeños, sésiles, en seco blancos, los más jóvenes cerrados

y pequeños, los maduros con himenio amarillo, exteriormente blanco-amarillento, margen incurvado.

céreos, hasta l mm diám. Excípulo de “textura intricata gelatinoso, formado por hifas con paredes

gruesas gelatinizadas y luz pequeña, 70-110 um de espesor en el centro 50-60 um lateralmente, no

muy diferenciado en excípulo externo e interno. Ascos cilíndn'cos, extremo más o menos agudo, 50-60

x 4-5 um, 8-esporados. Paráfisis cilíndricas, filiformes, septadas, simples o ramificadas cerca de la

base. Ascosporas biseriadas, fusiformes, incoloras, uniseptadas, l gútula por célula, 7-9 x l,5-2 um,.

Sobre corteza.

Anamorfo: sobre las células más externas del excípulo del apotecio se observan células

conidiógenas “fialídicas” de tipo Chalara. Células conidiógenas fialídicas, castañas, 20-25 x 2 um.

Conidios incoloros, rectangulares, unicelulares, pequeños l-2 x l-l,5 pm. Carpenter (op. cil.) también

observó estas células conidiógenas y piensa que probablemente podría asignarle el nombre

Cystodendron Bubák, afín a Chalara. pero no afirma que se trate de una relación teleo-anamorfo,

hasta que se efectúen estudios de cultivo.

Material estudiado: 36/22-4 XI-82. (BAFC).

Observaciones:

Este material coincide con la descripción de Carpenter (op. cit.). Además se lo comparó con

los ejemplares clasificados como B. discedens depositados en el herbario de la Universidad de Cornell,

Estados Unidos (CUP). De estos ejemplares, el más semejante al nuestro, es el CUP 52695 que figura

como un isotipo de Trichopeziza aurea Rick, el cual fue considerado sinónimo por Carpenter.

Exsisten colecciones de esta especie, procedentes de Brasil, Colombia, Venezuela, República

Dominicana, Pto. Rico, Haití, Isla de Guadalupe y Filipinas (estudiadas por Carpenter) y de México,

109

Jamaica. Pero se cita aquí por primera vez para la Argentina.

54 b-Claussenomyces atrovirens (Pers.) Korf et Abawi, Canad. J. Bot. 49: 1882, 1971.

Para la lista completa de sinónimos, ver Dennis 1956: 168.

(Fig. 14: F-L)

Apotecios solitarios o en grupos pequeños, sésiles, verde oliváceo oscuros a casi negros, en

seco negros, margen incurvado, céreos, hasta 2 mm diám. Excípulo externo de “textura intricata”,

apretada, verde oscuro. Excípulo interno de “textura intricata”, gelatinoso. Ascos claviformes, 60-90

x 7-8 pm, al principio 8-esporados. Ascosporas biseriadas, cilíndrico-fusiformes o curvadas, 5-8 (9- lO)

septos transversales, 1-3 septos longitudinal-oblicuos, 13-25 x 2-4 pm, brotando en innumerables

esporas bacilares, l-l,5 pm, las cuales llenan el asco. Sobre madera y corteza.

Anamorfo: desconocido.

Material estudiado: Romero 6/4-13 XI-81; l8, 29, 39/22-4 11-82; 6, 17, 37/22-4 V-82;

5/22-8 VIII-81; 35/22-8 Il-82; 36/22-8 V-82; 4, lO/4-l3 VIII-82; 31/4-13 V-83; 4, 9/22-4 Xl-82;

6, 38/22-4 V-83 (BAFC).

Observaciones:

Estas colecciones coinciden con las descripciones de Korf y Abawi (1971) y con la de Dennis

(1978).

Esta especie se ha citado por primera vez para la Argentina (Romero, 1987).

110

ORBILIACEAE

55 a-Hyalim'a scolecospora Beaton apud Beaton & Weste, Trans. Br. Mycol.Soc. 70(1): 77, 1978.

(Fig. 14: M-T)

Apotecios amarillo claro translúcidos, céreos, sésiles, con una zona de fijación central, margen

dentado, O2,-0,6 mm diám. Dientes uiangulares con vértices redondeadas, formados por hifas de

paredes delgadas, incoloras, refringentes, 3-4 pm diám. Excípulo levemente diferenciado en dos capas,

de “textura angularís”, compuesto por células grandes de paredes delgadas, 10-15 pm diám., que

disminuyen progresivamente hacia el margen donde las células más externas dan origen a las hifas

que conforman los dientes. Himenio cubierto por una delgada capa de material amorfo que, al

separarse, queda en los ápices de ascos y paráfisis. Ascos cilíndrico-claviformes, 8-esporados, 25-35

x 3-5 pm. Paráfisís cilíndricas, ensanchadas en el ápice, l-l,5 pm diám., 2-3 septadas, con resto de

mucílago en el ápice. Ascosporas filiformes, sigmoideas, en fascículos espiralados, incoloras, 10-15

x 0,5 pm (fue difícil observar ascosporas libres). Sobre corteza interna.

Anamorfo: desconocido.

Material estudiado: Romero 9, 14, 24, 29 /22-4 V-82; 8 /22-4 VIII-82; ¡9/22-8 V-83; ll,

27, 39/22-4 XI-82 (BAFC).

Observaciones:

Beaton & Weste (op. cit.) encontraron el ejemplar australiano en corteza caída de

Eucalyptus 5p..

lll

Esta especie se ha citado por primera vez para la Argentina (Romero, 1987).

56 b- Orbilia delicatula (Karsten) Karsten, Notiser ur Sállskapets pro Fauna et Flora Fennica

Forhandlinger ll: 248, 1870.

Para los sinónimos, ver Spooner 1987: 167-168; de acuerdo con este autor, se trata de 0.

xanthostigma (Fries) Fries sensu Boudier 1906 y otros autores que siguieron a Boudier, pero no en

el sentido original de Fries 1821. Por lo tanto, 0. xanthostigma es un nombre confuso y además, no

hay material auténtico de Fries.

(Fig. 15: J-M)

Apotecios superficiales, esparcidos o gregarios; disco anaranjado brillante, 1-3 mm diám.;

receptáculo ceroso, en forma de plato, sésil, base de fijación central, concoloro con el disco, márgenes

apenas incurvado, lisos contorno circular a levemente ondulado. Excípulo “textura angularis”, 70-100

um de espesor, compuesto por células poligonales, 2-10 pm diám., hacia el himenio disminuyen su

diám. 5-10 pm. Himenio de 30-40 um de espesor. Ascos cilíndricos, afinándose hacia abajo, ápice

truncado y base bifurcada, 35-45 x 3-4 pm. Paráfisis filiformes, delgadas, 1,5 um diám., abruptamente

ensanchadas en el ápice 4-5 um diám. (capitadas), rara vez con incrustaciones, sobrepasando el largo

de los ascos. Ascosporas generalmente uniseriadas, unicelulares, reniformes, incoloras, diminutamente

ornamentadas en la cara dorsal, con gútulas polares, 2,5-3 x l um. Sobre corteza y madera.

Anamorfo: desconocido.

Material estudiado: Romero 38/22-4 V-83; 9/22-8 VIII-82; 20/22-8 XI-82. (BAFC).

112

Observaciones:

Estas colecciones se corresponden con la descripción de Spooner (op. cit.). Las ascosporas

reniformes facilitan su determinación por ser únicas en el género.

Se cita por primera vez para la Argentina.

57 c- Orbilia inflatula (Karsten) Karsten, Nots. Sallsk. pro Fauna et Flora Fennica Forhandlingar

l l: 248, ¡870.

(Fig. 15: A-D)

Apotecios superficiales, esparcidos; disco anaranjado brillante, (0,3-0,4) 0,6-l,3 mm diám.;

receptáculo ceroso, en forma de plato, sésil, con una base de fijación central ancha, concoloro con

el disco, márgenes lisos a levemente ondulado, usualmente con hifas basales de anclaje, blancas.

Excípulo “textura angularis”, 65-95 pm de espesor, compuesto por células poligonales, 2-10 pm

diám., células más externas aplanadas de donde surgen las hifas de anclaje 3-4,5 pm diám.. Himenio

de 25-30 pm de espesor. Ascos cilíndricos, ápice truncado, 28-30 x 4-5 pm. Parálisis delgadas,

cilíndricas. Ascosporas cilíndricas, a veces dispuestas en 2 estratos de 4 esporas cada uno, incoloras,

lisas, 5-6 x 0,5 um. Sobre corteza y madera.

Anamorfo: desconocido.

Material estudiado: Romero 27/4-13 V-83; 6/22-4 XI-82; 3/ 22-4 V-83; ¡7/22-8 Xl-82.

(BAFC).

113

Observaciones:

Estos ejemplares coinciden con la descripción de Spooner (1987: 176-177). Según dicho autor,

esta especie se la encuentra, a menudo, asociada a pirenomicetes estromáticos. Se la ha citado para

Europa, Norteamérica, India, Pakistán, Australia y Venezuela, siendo ésta la primera cita para la

Argentina.

58 d-Orbilia sp.

(Fig. 15: E-I; Lám. XIII: 9)

Apotecios superficiales, esparcidos; disco anaranjado brillante, 0,5-l mm diám.; receptáculo

ceroso, en forma de plato, sésil, con una base de fijación central ancha, concoloro con el disco,

márgenes lisos a levemente ondulados. Excípulo externo “textura angularis”, 70- 100 pm de espesor,

compuesto por células poligonales, 2-10 pm diám.. Excípulo medular “textura globulosa", 250-350

pm de espesor, compuesto principalmente por células grandes 30-50 pm diám. y entre ellas otras

menores de 12-20 um diám.. Subhimenio 40-50 um de espesor. Himenio de 30-40 um de espesor.

Ascos cílíndricos, ápice truncado y base bifurcada, 35-40 x 5-7 pm. Paráfisís delgadas, 2,5 pm diám.,

del mismo largo que los ascos, célula apical abruptamente ensanchada 4-5 pm diám. Ascosporas

filifonnes, sigmoideas, incoloras, lisas, 7-8 (lO, 12) x 0,5 um. Sobre corteza, tanto en cara externa

como interna.

Anamorfo: desconocido.

"Material estudiado: Romero 2, 8, 22, 24, 31/4-13 XI-81; l, 4, 5, l6, 17, 29/4-13 Il-82; 4,

7, 9, 21, 25/4-l3 V-82; l, 4, 5/22-4 VIII-81; 7, 15, 21, 23, 27, 33/22-4 XI-81; 4, 6, 8, 9, l4, 23, 26,

114

28. 30, 33, 39, 40/22-4 11-82; ll, 16, 29, 37, 38/22-4 V-82; 4, lO, 12, 15, 40/22-8 XI-81; 5, 8, lO,

15, 22, 31, 34, 38/22-8 11-82; 38/22-8 V-82; 7, 19, 22/4-13 XI-82; l, 6, l8, 33/4-13 11-83; 7, 2], 26,

28, 30/4-l3 V-83; 16 MB, 31/22-8 11-83; 20, 21, 33/22-4 V-83; 35, 40/22-8 XI-82; 40/22-8 11-83

(BAFC).

Observaciones:

Posiblemente se trate de una especie nueva. A través de la búsqueda bibliográfica (Spegazzini

¡881, 1888; Saccardo 1889, 1901, l9l3; Svrcek, 1954, 1974; Dennis 1954, 1970, l978; Haines &

Egger, 1982; Spooner 1987, entre otros) no se ha encontrado ninguna descripción de una especie que

coincida satisfactoriamente con estos ejemplares. Quizás la más cercana sea 0. fimicola Jeng & Krug,

procedente de Venezuela. Según la descripción hecha por estos autores (1977) y las fotos presentadas,

se asemejan en el tipo de asco y disposición de las ascosporas en su interior, pero no se puede

apreciar bien en las fotos la forma de las mismas, y la definen como “subulada, algo curvada de un

lado”. Si entendemos por “subulada”: forma linear delicada con extremos agudos (de acuerdo con el

diccionario McGraw-Hill), ésta no es la morfología encontrada en nuestros materiales, la mayoría de

’Ilas veces no son lineares, todo lo contrario, describen una “s Por otro lado, difieren en color,

excípulo y habitat. 0. fimicola tiene apotecios castaños claro, mientras que, los apotecios aquí

considerados son anaranjados. El excípulo de la especie venezolana tiene “textura angularis” cuyas

células externas se disponen más o menos en hileras; en cambio, nuestros materiales presentan un

excípulo típicamente “angularis” en la corteza y una región medular particular de “textura globulosa”

formada por células de 2 tamaños mezcladas, adquiriendo un aspecto de encaje. Por último 0.fimicola

es una especie c0prófila, sobre estiércol de burro, siendo ésta la segunda especie conocida en este

habitat, en el género.

115

LECANORALES

Dactylosporaceae

59 a-Dactylospora lurida Hafellner, Beih. Nova Hedwigia 62: 120, 1979.

(Fig. 16: A-E)

Apotecios castaños oscuros casi negros, sésiles, disco plano o convexo, epitecio castaño, borde

negro verdoso, incurvado cuando jóvenes, hasta 2 mm diám. Excípulo de “textura globulosa a

angularis", 35-45 pm de espesor. Himenio con gelatina himenial fuertemente amiloide. Ascos

claviformes, bitunicados, capas más externas fuertemente amiloides dejando en el centro un poro

inamiloide (se observa muy bien en vista apical), 8-esporados, 45-50 x 12-15 pm. Parálisis septadas,

simples o ramificadas en el ápice, células terminales ensanchadas, aspecto moniliforme, coloreadas.

Ascosporas oblongas, bicelulares, castañas, 7-12 x 3-5 pm. Sobre madera, poca veces en corteza.

Anamorfo: desconocido.

Material estudiado: Romero 10/4-13 VIII-81; 22/22-4 VIII-81; 16, 21/22-4 XI-81; 20/22-4

II-82; 6/22-8 VIII-81; 4, 20, 35/22-8 XI-81; 10, 28, 35/22-8 11-82; 40/22-8 V-82; 6/413 VIII-82;

9/4-13 XI-82; 5/22-4 XI-82; 5, 18,38/22-4 II-83; 2, 7, 23 37/22-4 V-83. (BAFC).

Observaciones:

Estas colecciones coinciden con la descripción de Hafellner (op. cit.). La reacción amiloide

es muy evidente y oscura, visible a ojo desnudo al colocar un apotecio sobre un porta en una gota del

116

reactivo de Melzer.

Se cita por primera vez para la Argentina.

Spegazzini describió dos especies que también se ubican en este orden y familia, Karschia

andicola Speg. y K.fuegiana Speg.. Hafellner estudió los holotipos de estas dos especies (LPS) y los

transfirió a Poerschia andicola (Speg.) Hafell. y Buellia fuegiana (Speg.) Hafell., respectivamente.

PATELLARIALES

Patellariaceae

60 a- Patellan'a atrata Fr., Syst. Mycol.2: 158, 1822.

Lecanidion australe Speg., An.Mus.Nac.Hist.Nat.Bs.As. 23: 104, 1912.

Para la descripción y las ilustraciones, ver Dennis 1978.

Anamorfo: desconocido.

Material estudiado: Romero 24/22-4 VIII-81 (BAFC).

Observaciones:

Spegazzini (1912) citó esta especie como L. australe sobre corteza de E. globulus, en la

Provincia de Buenos Aires.

117

61 b-Rhizodiscinia lignyota (FL) Hafellner, Beiheff. Nova Hed. 62: 195, 1979.

Para la lista de sinónimo ver Hafellner, op. cit.

(Fig. 16: P-T)

Apotecios negros, sésiles, disco plano o convexo, hasta 2 mm diám. Excípulo de “textura

angularis", 90-170 um de espesor, compuesta por células más o menos rectangulares, 5-7 x 7-12 um,

de paredes castañas, dispuestas en hileras casi perpendiculares a la superficie del apotecio; hacia el

sustrato terminando en hifas castañas, 2,5 um diám., hacia el subhimenio con hifas de paredes gruesas

y castaño oliváceo. Himenio con gelatina amiloide. Ascos claviformes, bitunicados, 8-esporados,

30-45 x 10-12 um. Paráfisis cilíndricas, levemente ensachadas en el ápice, a veces flexuosas,

ramificadas, septadas, ápices curvados sobre los ascos. Ascosporas elíptico-claviformes, bicelulares,

castañas oscuras, célula superior ligeramente más ancha que la inferior, 8-12 x 3-3,5 pm. Sobre

madera, poca veces en corteza.

Anamorfo: desconocido.

Material estudiado: Romero 3/22-4 II-82; 8, 37/22-4 V-82; 7/22-8 XI-8l; 6/22-8 lI-82;

21/224 XI-82 (BAFC).

Observaciones:

Estos materiales coinciden con la descripción de Hafellner (1979). Se ha citado por primera

vez para 1a Argentina (Romero, 1987)

118

OSTROPALES

STICTACEAE

62 a- Stictis radiata Pers., Obs. Mycol. 2: 73, 1799 ssp. radiata Sherwood, Mycotaxon 5: 234,

1977

Para los sinónimos y las ilustraciones ver Sherwood (op. cit.)

Apotecios inmersos, 0,4-1 mm diám, margen grueso blanco pruinoso entero o lacerado; disco

profundamente inmerso ocráceo pálido; capa cristalina prominente. Parál'isis numerosas, filiformes,

ramificadas irregularmente, amiloides. Ascos cilíndricos, ápice grueso 3,5 pm de espesor con canal,

120-250 x 5,5-6 um. Ascosporas filiforrnes, multiseptadas, 4-6 tun long. cada célula, incoloras, tan

largas como los ascos, 2-2,5 um diám.. En madera.

Anamorfo: desconocido. Según Sherwood (1977), se han informado picnidios para esta

especie pero ella no lo ha podido confirmar. Por otro lado, Johnston (1983) en su trabajo “Stíctis and

its anamorphs in New Zealand”, describió S. radiata, pero aclaró que no encontró el anamorfo en la

naturaleza pero obtuvo un micelio estéril a partir de la germinación de ascosporas.

Material estudiado: Romero 17/22-4 VIII-81; 15/22-4 VIII-82. (BAFC).

Observaciones:

Sherwood (op. cit.) transfirió Stictis intermedia Speg. a Stictís radiata ssp. intermedia, al

estudiar el holotipo (LPS) de San José de Flores, Bs. A5.. De acuerdo con esta autora se diferencia

de la ssp. radíata por tener perifisoides cortos, no ramificados, una reacción amiloide intensa del

119

himenio y ascoporas más angostas, con células más cortas y no afinándose hacia 1a base.

PEZIZALES

SARCOSOMATACEAE

63 a-Plectam’a platensis (Speg.) Rifai, Verh. Kon. Ned. Akad. Wet. Afd. Nat. 2, 57 (3): 29, 1968.

Urnula platensis Speg., An. Mus. Hist. Nat. Bs. As. 2(3): 310, 1889.

(Fig. 16: F-K; Lám. XIII: lO-l l; Lám. XIV: 1-2)

Apotecios gregarios, sésiles a subestipitados, 8-15 mm diam; disco profundamente cóncavo,

castaño oscuro a casi negro; receptáculo cupuliforme, margen irregularmente crenulado, anclado a1

sustrato por un micelio castaño verdoso oscuro, superficie externa con crestas verticales prominentes.

Excípulo externo 50-150 um de espesor, “textura angularis", compuesta por células rectangulares,

7-15 x 15-28 um. Excípulo medular bien desarrollado, “textura intricata”, embebida en una matriz

gelatinosa, hifas 2,5-4 um diám.; hacia el himenio hifas más apretadas y pigmentadas formando una

línea negra debajo del subhimenio. Subhimenio 80-100 um de espesor. Himenio 400 um de espesor.

Ascos cilíndricos, afinándose hacia la base, de paredes gruesas, 8-esporados, 380-400 x 11-12 um.

Parálisis ramificadas, septadas. Ascosporas elipsoidales o subfusiformes, asimétricas, ornamentadas

con 9-11 estrías transversales, algunas anastomosadas, cubriendo una sóla de las caras, incoloras,

20-25 x 10-12 um. Sobre corteza.

Anamorfo: Para algunas especies de este género se ha citado (Paden 1972, Hughes 1978) y

120

comprobado en cultivo las relación entre dichas especies con las de Conoplea Pers. Aunque en esta

oportunidad no se ha comprobado la posible relación, se describe a continuación un ejemplar

determinado como Conoplea fusca Pers., infiriendo que pueda ser el estado anamórfico de P.

platensis.

Conoplea fusca Pers. Mycol. eur. l: 12, 1822.

Colonia castaña, pulverulenta. Conidióforos macronematosos, hasta 440 pm long., 3-5 um

diám., sinuosos, ramas en ángulos agudos, castaños, equinulados. Conidios unicelulares, elipsodales

a ovoides, castaños, lisos o finamente equinulados. con poro germinativo visible, 6-8 x 4-5. Sobre

corteza.

Material estudiado: Romero 17/4-13 VIII-81; 22/4-13 XI-Sl; 22/413 V-82; 3, 5, 9, l2, l7,

21, 24, 25, 35/22-4 VIII-81; 3, 7, l3, 15, 16, 17, 20, 21, 22, 28, 30, 3], 32/22-4 XI-81; 16/22-4 V-82;

l, 40/22-8 VIII-81; 6, 8, 9, lO, ll, 13, 15, 17, 18, 19, 26, 32, 35, 38/22-8 XI-81; 4, 8, ll, 19 /22-8

II-82; 3, 22/22-8 V-82; 17/413 VIII-82; 4, lO, 20, 38/4-13 Xl-82; 28/4-13 II-83; 33 (anamorfo C.

fusca), 4/413 V-83; 6, 8, 24/22-4 V-82; 8, 13, 16, 17, 18, 38, 39/22-4 II-83; 2, 4, 8, 13, 17, 21, 25,

34, 40/22-4 V-83; lO, ¡6, 20, 24, 32, 34/22-8 VIII-82; 13, 16, 27. 30, 38/22-8 XI-82; 4, l l, 36/22-8

11-83; l, l7, 27, 38/22-8 V-83 (BAFC).

Observaciones:

Rifai (¡968) ha señalado que P. platensis está siempre asociada con Eucalyptus sp., ya sea en

ramas caídas, restos en descomposición o sobre carbón. Le Gal (1958) la ha citado sobre Quercus

suber L. y sobre Eucalyptus globulus Labill. en Marruecos.

El anamorfo, Conoplea fusca Pers., también ha sido recolectado sobre corteza de Eucalyptus

5p., en Australia por Hughes (1978), además de estar sobre hojas muertas de pastos. En este mismo

121

trabajo, Hughes halló apotecios de Plectam’a campylospora (Berk.) Nannf. in Korf, en tres colecciones

de Conoplea novae-zelandiae Hughes, y menciona que este discomicete puede ser el estdo ascógeno

de Conoplea. Paden (1972) obtuvo en cultivo estados imperfectos de Plectania nannfeltii Korf,

Conoplea juniperí var. robusta Hughes, y comenta que el grupo “Plectania Taxonomic species I”

(procedente de Isla Vancuver, British Columbia) tiene como estado imperfecto a C. fusca.

DEUTEROMYCOTINA

HYPHOMYCETES

l- Allescheriella cyanea Cabral & Romero, Mycotaxon 34 (2): 434, 1989.

(Fíg. 17: A-D)

Conidioma resupinado, formado por manchas pequeñas que confluyen en extensiones grandes

con márgenes indefinidos, superficie iridiscente, lisa o tuberculada, con lupa, aspecto de cristales de

azúcar debido a los conidios en masa; en fresco azul verdoso oscuro (M & P, Pl.38 L-7) con márgenes

blancos, en seco verde (“Juniper" M & P, 31 H-4). Micelio escaso, más o menos paralelo al sustrato,

compuesto por hifas de paredes delgadas, sin fíbulas, de donde surgen los conidióforos y por hifas

delgadas con fïbulas. Conidióforos mononematosos, micro a semínematosos, simples o ramificados,

flexuosos, incoloros. Células conidiógenas monoblásticas, integradas, discretas, terminales,

ocasionalmente intercalares, cilíndricas. Conidios solitarios, esféricos, 13-20 pm diám., subesféricos

o anchamente elipsoidales, 13-15 x 17-22 (28) um, levemente pigmentados, pared muy gruesa 3-4 um

diám., con varias capas concéntricas, contenido granulosos, con 2-3 gútulas grandes, con reacción

dextrinoide fuerte. Sobre madera y corteza.

Teleomorfo: desconocido.

Material estudiado: Romero 32/4-13 XI-81; l, 20, 25, 35/4-13 V-82; 3, 4, 18, 32/22-4 XI-81;

4 (Holotipo BAFC 30830),8, 9, l4, 18, 38/22-4 lI-82; 3, 4, lO, ll, 21, 32/22-4 V-82; 28/22-8

VIII-81; l, 5, l5, 20, 25, 26, 30, 40/22-8 XI-Sl; l, 3, 13, 14, 28, 29, 32, 37, 39/22-8 II-82; 4, 9, l l,

123

16, l8, 22, 29, 38, 40/22-8 V-82; lO, 18, /4-l3 VIII-82; 12, 26, 29, 32/4-13 Xl-82; 2], 35/4-13

11-83; 9, lO, l2, 24, 27, 28, 29, 30, 31, 34, 35, 36/4-13 V-83; 4, 9, ll, 38, 39/22-4 VIII-82; 12,

39/22-4 Xl-82; l, lO, 12, 2], 22, 23, 28, 38/22-4 11-83;6, 9, ll, 12, 14, ¡5, l7, 20, 21, 36/22-4 V-83;

3, 9,'28/22-8 VIII-82; ll, 30, 40/22-8 XI-82; 5, 8, l7, l9, 22, 30/22-8 11-83; 3, 7, 23, 33, 37/22-8

V-83 (BAFC).

Observaciones:

A pesar de la falta de formación de esporodoquios y de la presencia de fíbulas, lo ubicamos

en el género Allescheriella sensu Hughes (l9Sl a) y Ellis (l97l) por su ontogenia y morfología

conidial.

2- Bloxamia truncata Berk. et Br., Ann. Mag. Nat. Hist. l3: 468, 1854.

(Fig. 17: E-G)

Esporodoquios esparcidos o gregarios y confluentes, con forma de disco, negros, 140-180 um

(500 um) diám. Células conidiógenas enteroblásticas naciendo de un estroma superficial compuesto

por hifas muy apretadas entre sí formando una empalizada, cilíndricas a subcilíndricas, |2-l8 um long.

Conidios enteroblásticos, solitarios o en cadenas frágiles, cuboides, con ápendice redondeados y

truncados en la base, unicelulares, incoloros, lisos, 2 x 1,5 um. Sobre madera.

Colonia en MA de crecimiento muy lento, l-l,5 cm en 20 días, apretada, elevada, blanca, de

superficie y contorno irregular, con surcos, de aspecto aterciopelado; aproximadamente al mes

aparecen los esporodoquios, negros, circulares, solitarios o confluentes. También creció y fructificó

124

en ME y N, y en APG solamente produjo micelio.

Teleomorfo: desconocido.

Material estudiado: Romero 20/4-13 XI-81; 36/22-8 V-82; (BAFC y BAFC cult. 2802).

Observaciones:

Este material coincide con la descripción de Nag Raj y Kendrick (1975).

Este género y especie se han citado por primera vez para la Argentina (Romero, 1983).

3- Candelabrum brocchiatum Tubaki, Trans. Mycol. Soc. Japan 16 (2): l34, l975.

(Fig. 17: H-J; Lám. XIV: 3-8)

Micelio inmerso en el sustrato. Conidióforos macronematosos, mononematosos, incoloros,

hasta 50 pm long., 2 pm diám. Célula conidiógena terminal, monoblástica, ramificada

dicotómicamente o raramente tricotómicamente, a su vez cada rama se vuelve a dividir varias veces

en todas las direcciones, quedando así formado el conidio multicelular. Conídio solitario, color

arena-ocre pálido con lupa, esférico, 80-100 pm diám., células terminales con proyecciones

dicotómicas pequeñas, incoloro con luz transmitida. Sobre corteza, pocas veces sobre madera.

Teleomorfo: desconocido.

Material estudiado: Romero l, 23/22-4 VIII-81; 20, 26, 33, 35 /22-4 II-82; 5/22-4 V-82;

5/22-8 XI-81; 8, 9, 32, 35/22-4 VIII-82; l2, 17, 22, 30, 36/22-4 XI-82; 25, 26, 29/22-4 V-83; 7,

39/22-8 V-83 (BAFC).

125

Observaciones:

Estas colecciones coinciden con la descripción de Tubaki (1975 b). Dicho autor describió esta

especie sobre madera-balsa sumergida en el Lago Sengari, Japón. Posteriormente también la recolectó

sobre hojas sumergidas, sobre ramitas húmedas en pudrición y sobre tallos muertos de Cyathea

boninsimensis, de Japón. También fue encontrada sobre tallos muertos de helechos arborscentes en

Nueva Zelandia. Tubaki (op. cít.) concluye que esta especie parece tener una distribución en áreas del

Pacífico en condiciones aero-acuáticas.

En nuestro caso la hemos encontrado en cortezas, no muy húmedas e incluso la recolectamos

en verano.

C. brocchiatum Tub. se cita por primera vez para la Argentina pero Gamundí et al. (1977) ya

registraron la presencia del género en nuestro país, describiendo la especies C. spinolosum v. Bev. en

hojarasca de Nothofagus dombeyi, en la Península de Quetrihué (Neuquén) y en el Lago Gutierrez

(Río Negro).

4- Ceratosporella deviata Subramanian, Proc. Indian Acad. Sci. 46: 327, 1957.

(Fig. 18: A-D)

Colonia efusa, castaño oscuro, afieltrada. Conidióforos macronematosos, mononematosos,

cilíndricos, no ramificados, castaños, 80-200 x S um, con proliferación percurrente, célula basal 8-10

um diám., longitud variable. Célula conidiógena monoblástica, terminal. Conidios holoblásticos,

solitarios, formados por una célula basal turbinada o piriforme, castaña, 10-16 x 5-8 um y por 2-3

brazos, 4-6 septados, más claros en el ápice, 25-40 x 5-7 um. Sobre madera en corte transversal.

126

Teleomorfo: desconocido.

Material estudiado: Romero 15/22-4 XI-81 (BAFC).

Observaciones:

Este material coincide con la descripción de Ellis (1976: 106). El género parece ser muy afín

a Triposporium Corda, del cual se diferencia por la falta de una célula pie (Hughes, 1951 b: 22-23).

Una revisión exhaustiva, probablemente dará como resultado la fusión de ambos géneros.

Este género y especie se han citado por primera vez para la Argentina (Romero, 1983).

5- Chalara hughesü Naj Raj & Kendrick in Naj Raj & Hughes, N.Z. J. Bot. 12: 118, 1974.

Para las ilustraciones, ver Naj Raj & Kendrick (op. cit.: 82, fig. 25 B) y Gamundí et al. (1977:

106).

Colonia superficial, efusa, castaña cubierta por una masa de conidios amarillenta.

Conidióforos castaños, reducido a 1-2 células o ausentes. Célula conidiógena enteroblástica,

ampuliforme o lageniforme, castaña; vientre elipsoidal a subcilíndrico, 10 16 x 6-7 pm; collarete

cilíndrico, 20-30 x 2-3 pm. Conidios en cadenas, cilíndricos, extremos obtusos, l-septados, incoloros,

12-17 x 2-2,5 pm. Sobre corteza.

Teleomorfo: desconocido.

Material estudiado: Romero 7/22-4 V-83; l7, 19 /22-8 V-83 (BAFC).

Observaciones:

Estas colecciones coinciden con la descripción de Naj Raj & Kendrick (1975).

127

El género Chalara ha sido citado por primera vez para nuestro país por Gamundí et al. (¡977)

describiendo 3 especies, siendo una de ellas C. hughesii N. Raj & Kendrick, en hojarasca de N.

dombeyi de Neuquén y Río Negro. Arambarri et al. (198]) describieron otras 4 especies, siendo dos

de ellas nuevas, también en hojarasca de N. dombeyi y en las mismas provincias. Posteriormente,

Arambarri y Spinedi (¡984) describieron C.fiuidiodes en hojarasca de N. pumilio de San Martín de

Los Andes, Neuquén.

6-Chloridium virescens var. virescens (Pers. ex Pers.) Gams et Holubová-Jechová, Stud. Mycol.

l3: l9, 1976.

(Fig. 18: G-J)

Colonia efusa, pilosa, gris verdoso. Conidióforos macronematosos, mononematosos, no

ramificados, castaños, inicialmente 30-60 pm long., alcanzando más de lOOpm por proliferaciones

percurrentes, 2-3 pm diám.. Célula conidiógena monofialídica, con varios puntos conidiogénicos en

el interior del collarete; collarete 2-3 x 1,5-2 pm. Conidíos unicelulares, en cabezuelas, elipsoidales,

incoloros, 2-3 x 1,5-2 pm. Sobre madera y corteza.

Teleomorfo: Chaelosphaeria vermicularioides (Sacc. & Roum.) Gams & Hol.-Jech. (1976).

Material estudiado: Romero lO, 17/22-4VIII-81; 5/22-411-82; 15,26, 38/22-4 V-82; 25/22-8

V-82; 7/4-13 VIII-82; 33/4-13 11-82; 12, 22/22-4 VIII-82; 18, 30/22-4 XI-82; 9/22-8 VIII-82; 18,

35/22-8 XI-82; 7, 22, 32/22-8 V-83 (BAFC).

Observaciones:

Nuestros ejemplares coinciden con la descripción de Gams y l-Iolubová-Jechová (1976: 19).

Esta especie y variedad se han citado por primera vez para la Argentina (Romero, 1983).

Arambarri et al. (1981) citaron el género por primera vez para nuestro pais, describiendo la especie

C. ligm'cola en hojarasca de Nothofagus dombeyi, en Península de Quetrihué, Neuquén.

7-Cladosporium cladosporioides (Fresen.) de Vries, Cont. to the knowledge of the genus

Cladosporium Link ex FL: 57, 1952.

Para la descripción y las ilustraciones ver Ellis (1971: 319).

Teleomorfo: desconocido.

Material estudiado: Romero 19/4-13 II-83; 22, 30, 36, 39, 40/22-4 V-83 (BAFC).

Observaciones:

Especie muy cosmopolita que ha sido considerada colonizadora secundaria de distintas plantas

y aislada de aire, suelo, productos textiles, etc. (Ellis, 1971).

En nuestro país ha sido citada en distintas oportunidades por Cabral (1982: de hojas de E.

viminalis), Gamundí et al. (1983), Venedikian (1984: de hojas vivas de Pinus taeda) y Lopez et al.

(1990: de postes de luz creosotados de Eucalyptus 5p.). Cabral y Collantes (1992) consideran que es

una especie epifila, ruderal e inespecífica.

Recientemente, Ribichich (1993) estudió la formación de cavidades microscópicas, en las

paredes celulares de los elementos xilemáticos, por hongos productores de uno de los tipos de

pudrición blanda (tipo l). C. cladosporoides fue una de las especies empleada en sus ensayos,

129

obteniendo resultados negativos como formadora de dichas cavidades. Utilizó para esas experiencias

láminas de madera (de 20-25 um de espesor) de Eucalyptus grandis. Por otro lado, Wang & Zabel

(¡990) la citan como especie causante de pudrición blanda.

8- Cladosporium chlorocephalum (Fresen.) Mason & Ellis, Mycol. Pap. 56: 123-126.

Para las ilustraciones ver Ellis (197]: 309).

Colonia efusa, castaño oliváceo. Conidióforos macronematosos, con cabezuela, pie castaño

oscuro casi negro, hasta 700 um long., 8-]0 pm diám., apicalmente, por debajo de la cabeza de

conidios. Cabeza conidial esférica, verde olivácea, 40-70 um diám. Células conidiógenas poliblásticas.

Conidios castaño pálido a castaño oliváceo, lisos o verrugosos, unícelulares, elipsoidales a

limoniformes, 6-14 x 4-9 um, a veces esféricos 3-7 u diám.; ramo-conidios 0-2-sepatados, 8-30 x 4-6

um (más comunes en cultivo). Sobre madera.

Teleomorfo: desconocido.

Material estudiado: Romero ll, 36/22-8 XI-81 (BAFC)

Observaciones:

Esta especie se cita por primera vez para la Argentina. De acuerdo con Ellis (op. cit.) está

presente en Europa y EEUU.

9- Clonostachys araucaria Corda, Flore Ilustrée de Mucédinées d’ Europe, 1840.

(Fig. 18: F)

130

Colonia pulverulenta, blanca con tinte rosado. Conidióforos macronematosos, erectos,

incoloros, septados, paredes delicada-mente omamentadas, ramificado l-2 verticiladamente, hacia los

ápice ramificación penicilada. Células conidiógenas enteroblás-ticas, incoloras, dispuestas en grupos

de 2-4, obclaviformes, con collarete, lO-l4 x 2-4 pm. Conidios producidos en cadenas largas y

dispuestos en varias hileras sobre aquellas, tri o tetraradiadas en vista transversal, unicelulares,

elipsoidales, ligeramente asimétricos con un lado más plano, levemente apiculados en el extremo

proximal, incoloros, 5-7 x 2,5-3 um. Sobre corteza.

Teleomorfo: Samuels (1988) describió varios anamorfos de distintas especies de Nectria

bajo el nombre de Clonostachys sp.

Material estudiado: Romero 27/4-13 VIII-81 (BAFC).

Observaciones:

El género Clonostachys Corda fue propuesto con la especie C. araucaria Corda como tipo.

Nuestro ejemplar coincide más con la forma y dimensiones del conidio de C. araucaría que con los

de la otra especie del género, C. compactiuscula (Sacc.) Hawks. & Gams, según los comentarios de

Hawksworth y Punithalingham (1975). Pero, de acuerdo con dichos autores, no hay material de Corda

ni en el Herbario PR ni en K y la mayon’a de las colecciones inglesas determinadas como C.

araucaria son, en realidad, C compactiuscula.

En consecuencia, se decide utilizar este nombre y posteriormente se hará una revisión para ver

si el material argentino coincide con la descripción y dibujos de Corda y si podría elegirse como un

lectotipo de C. araucaria.

El género y especie se citan por primera vez para la Argentina.

131

lO- Corticomyces xenasmatoides Romero & Lopez, Mycotaxon 34 (2): 431, 1989.

(Fig. 18: K-M)

Conidioma resupinado, efuso, aracnoide y pruinoso, con aspecto xenasmatoide, blanco

grisáceo. Micelio escaso, hifas delgadas, 0.5-],5 pm diám., con fíbulas. Conidióforo ausente. Células

conidiógenas blásticas, cilíndricas o no diferenciadas de las células vegetativas, 10-20 pm long.

Conidios holoblásticos, terminales, elipsoidales, incoloros, O-septados,paredes delgadas, lisos, a veces

gutulados, con separación rexolítica, 6-9 x 4-7 pm. Sobre corteza y madera.

Teleomorfo: desconocido.

Material estudiado: Romero 27/4-13 II-82; 16/4-13 V-82; 7/22-8 XI-81; 15, 35, 37/22-8

11-82; 16/4-13 VIII-82; 8, 21/4-13 V-83; 29, 30/22-4 XI-82; 5 (Holotipo BAFC 30827),37/22-4 V-83;

1, 11, 17/22-8 V-83. (BAFC).

Observaciones:

Se aisló y cultivó esta especie en ME, presentando las mismas características que en la

naturaleza.

Debido a que no se encontró ninguna especie anamórfica de Basidiomycetes comparable a la

nuestra, decidimos proponer este género y especie nueva. Tampoco hallamos algo semejante entre las

especies de Basidiomycetes que producen clamidosporas en cultivo, ya que los conidios de

Corticomyces, no poseen ni una pared gruesa ni contenido gutuloso, como para ser considerados

esporas de resistencia.

132

l l- Dactylaria chrysospenna (Sacc.) Bhatt et Kendrick, Cand. J. Bot. 46: 1257, 1968.

(Fig. 18: N-O)

Colonia efusa, amarillo-verdoso claro. Conidióforos macronematosos, mononematosos,

septados, levemente pigmentados, hasta 120 pm long. Célula conidiógena poliblástica, integrada,

terminal, algunas veces ensanchada, denticulada, 7-l2 (17) x 3-4 pm; dientes cilíndricos, 1,5-3 x l pm.

Conidios holoblásticos solitarios, fusiformes, l-septados, incoloros, lisos, 18-22 x 3-4 pm. Sobre

corteza.

Teleomorfo: desconocido.

Material estudiado: Romero 3/4-13 II-82; 5, 9. 19, 20, 24/22-4 II-82; 19/22-8 Il-82; l/4-l3

XI-82; 17, 26,38/22-8 VIII-82; 12, 18,22/22-4 XI-82; 33/22-4 11-83; 7, 28/22-4 V-83; 40/22-8

VIII-82; 29/22-8 XI-82; 16, 18/22-8 V-83 (BAFC).

Observaciones:

Estos materiales coinciden con la descripción de Ellis (1976: 172).

En cuanto a nuestro país, la especie se ha citado por primera vez (Romero, 1983). Gamundí

et al. (1983) ya citaron el género con otras especies al estudiar la micoflora de la hojarasca de

Nothofagus dombeyi.

133

12-Dictyochaeta novae-guineensis (Matsushima) Romero, Bol. Soc. Argent. Bot. 22 (1-4): 76, 1983.

Codinaea novae-guineensis Matsushima, Microfungi, Solomon Islands and Papua, New

Guinea: 14, 1971.

(Fig. 19: A-E)

Colonia efusa, gris claro, pilosa laxa, basalmente pruinosa, formada por setas largas y

conidióforos cortos que llevan conidios en manojos blancos. Setas erectas, rectas o flexuosas, castaño

oscuras, ápice redondeado, 130-250 x 3,5 pm, rara vez fértiles. Conidióforos macronematosos,

mononematosos, erectos, más o menos flexuosos, no ramificados, castaño claros, 3-5 septados, 30-82

x 3-4 pm. Célula conidiógena polifialídica, terminal, 19-27 x 3 pm, generalmente con un collarete

terminal, ocasionalmente con 1-2laterales, levemente pigmentada. Collarete infundibuliforme, 2 x 3,4

pm. Conidios enteroblásticos, acropleurógenos, incoloros, falcados, 1-septados, con un apéndice en

cada extremo 5-10 pm long., 11-14 x 2-3 pm. Sobre corteza.

Teleomorfo: desconocido.

Material estudiado: Romero 3, 4/4-13 XI-81; 2, 3, 39/4-13 II-82; 19, 31/4-13 V-82; 36/22-4

II-82; 12, 36/22-4 V-82; 18/22-8 II-82; 40/22-8 V-82; 3, 16/4-13 XI-82; 35/4-13 II-83; 7, 9, 10, 13,

26/4-13 V-83; 17/22-4 VIII-82; 7, 27, 30/22-4 XI-82; 1, 2/22-4 V-83; 29/22-8 V-83 (BAFC).

Observaciones:

Gamundí et al. (1977: 95) y Kirk (1982: 58) verificaron la sinonimia de Codinaea con

Dictyochaeta, por lo cual se ha propuesto la nueva combinación.

Spegazzini (1923) propuso este género al describir una especie, D.fuegíana, sobre hojas caídas

134

de Nothofagus betuloides de Pto. Garibaldi, Magallanes, Chile. Godeas et al. (1977) estudiaron el

holotipo. Gamundí et al. (op. Cir.) también la recolectaron en Río Negro sobre hojarasca de N.

dombeyi y N. betuloides.

El material descripto difiere de la descripción original de Matsushima (1971: 14) porque: l)

los conidios son algo menores, ll-l4 pm long. vs 13-20 pm y 2) las setas son en su mayoría estériles

mientras que en el material citado por dicho autor, son casi siempre fértiles. Esta especie se ha citado

por primera vez para la Argentina (Romero, 1983).

13- Drepanospora pannosa Berk. & Curtis Grevillea 3: 105, 1875.

Helicosporíum linderi Moore, Mycologia 46: 90, 1954.

(Fig. 20: A-B)

Colonia efusa, verde oliváceo-castaño, agamuzada. Conidióforos macronematosos,

mononematosos, erectos, no ramificados, fuscos, septados, ISO-200 pm long.. Célula conidiógena

poli- o monoblástica, intercalar, denticulada. Conidios holoblásticos, espiralados, castaño claro,

pleurógenos, diám. del espiral 20-40 pm, filamento multiseptado diám. 3-5 pm, naciendo sobre dientes

laterales conspicuos de 2,5-5 x 1,6-2 pm, no higroscópicos. Sobre madera y corteza.

Teleomorfo: Tubeufia helicoma (Phill. & Plow.) Pirozynski, de acuerdo con Goos (1989:370).

Material estudiado: Romero 10/4-13 V-82; l/4-l3 XI-82; 2/4-13 V-83; 16/22-8 V-83

(BAFC).

135

Observaciones:

Estos ejemplares coinciden con la descripción de Moore (1954: 90) quién describió esta

especie como Helicosporium linderi Moore. Esta determinación fue confirmada por el Profesor RD.

Goos en 1983. Posteriomente, en su revisión de todas las especies conocidas asignadas al género

Helicosporium (Goos, 1989), rescata el género Drepanospora Berk. & Curtis, separándolo del primero

por tener conidios no higroscópicos, de paredes gruesas e incoloras u oscuras, mientras que en

Helicosporium son higroscópicos, incoloros y de paredes delgadas. Basándose en estas características

sinonimiza Helicosporíum linderi Moore con Drepanospora pannosa.

El género y la especie se han citado (Romero, 1983) por primera vez para la Argentina, como

Helicosporium linderi.

14- Edmundomasom'a pulchra Subram., J. Indian Bot. Soc. 37 (3): 401-407, 1958.

(Fig. 19: F-J)

Colonia efusa, pilosa, negro-verdosa. Conidióforos macronematosos, surgiendo en grupo de

un pequeño estroma, castaño oscuros, erectos, septados, 300-450 x 7 pm, afinándose hacia el ápice,

la última célula funciona como célula conidiógena o da origen a varias células conidiógenas; el

conidióforo prolifera después de haber dado el primer conidio y luego de sucesivas proliferaciones

adquiere aspecto de rosario. Células conidiógenas incoloras que se tornan castañas en la madurez,

generalmente apicales pero también surgen de otras células del conidióforo, laterales, subglobosas a

elongadas-obpiriformes, lageniformes. Conidios enteroblásticos, típicamente en forma de clava, 16-20

x 7-8 um, 3-septados, castaños, con una gútula en cada célula, a menudo se desprenden llevando en

136

la base a la célula conidiógena. Sobre corte transversal de madera.

Teleomorfo: desconocido.

Material estudiado: Romero 1/22-4 VIII-81; 23/22-4 II-82; 28/22-4 V-82 (BAFC).

Observaciones:

Estos materiales coinciden con la descripción de Subramanian (1958: 401-404).

El género y la especie se han citado por primera vez para la Argentina (Romero, 1983).

15- Endophragmiella pallescens Sutton, Mycol. Pap. 132: 62, 1973.

(Fif. 20: C-E)

Colonia efusa, castaña, pilosa. Conidióforos macro-mononematosos, simples, erectos. ca 140

p long., 4-5 um diám., septados, castaño oscuros en la base, aclarandóse hacia el ápice, terminando

en células conidiógenas incoloras. Célula conidiógena monoblástica, terminal, percurrente con 1-3

anelaciones, ápice truncado. Conidios solitarios, terminales, elipsoidales, llevando en su base restos

de la célula conidiógena, castaños, 1-2 septos, lisos, 15-18 x 7-8 um. Sobre corteza y basidiocarpo

de Corticiaceae.

Teleomorl'o: desconocido.

Material estudiado: Romero 5, 6 /22-8 VIII-82 (BAFC).

Observaciones:

Estas colecciones coinciden con las descripciones de Sutton (1973) y de Hughes (1978 b).

137

La especie se cita por primera vez para la Argentina.

16- Endophragmiella unisepta (Ellis) Hughes, N. Z. J. Botany l7, 1979.

Endophragmia unisepta Ellis, Mycol. Pap. 72: 28, 1959.

(Fig. 20: F-I)

Colonia efusa, negra. Conidióforos macronematosos, mononematosos, simples o en grupos,

erectos, rectos o flexuosos, rara vez ramificados, castaño oscuro, aclarándose hacia el ápice, 150-240

x 5-7 pm, afinándose hacia el ápice. Célula conidiógena terminal, monoblástica, percurrente,

subcilíndrica, con varias anelaciones. Conidios solitarios, terminales, ovoides, llevando en su base una

porción de la pared de la célula conidiógena, lisos, castaños, célula inferior ligeramente más clara.

15-20 x 8-10 pm. Sobre madera.

Teleomorfo: desconocido.

Material estudiado: Romero ll, 22/4-13 XI-81; 2, 25/4-¡3 V-82; 7/22-4 V-82; l/4-l3

VIII-82; 7, 2], 25/4-13 XI-82; 10/22-4 VIII-82 (BAFC).

Observaciones:

Estos ejemplares coinciden con la descn'pción de Hughes (1979).

La especie se cita por primera vez para la Argentina.

138

17- Eversia subopaca (Cke. & Ellis) Crane & Schoknecht, Mycologia 69: S39, 1977.

(Fig. 21: J-K)

Micelio escaso. Colonia en manchas circulares, pulverulentas, castañas, color de chocolate,

con borde verde claro muy delgado. Conidiofóros semimacronematosos, mononematosos, simples o

ramificados, rectos o flexuosos, castaños, 15-28 x 3-4 pm. Células conidiógenas holoblásticas,

terminales, con proliferaciones percurrente, llevando hasta 7 anillos gruesos, castaño oscuro. Conidios

cilíndricos, compuestos por 4 brazos multicelulares, apretados orientados hacia abajo, con un eje

central, solitarios, castaños, lisos, 25-27 x lO-ll tun. cada brazo 3-4 pm diám. Sobre madera.

Teleomorfo: desconocido.

Material estudiado: Romero 18/22-8 Xl-82. (BAFC).

Observaciones:

Nuestro ejemplar coincide con la descripción de Morgan-Jones (1978). El estudió colecciones

procedentes de EEUU, sobre maderas descortezadas. Schoknecht & Crane (1977) describieron esta

especie basándose en muestras de EEUU, de Italia y de Japón.

El género y la especie se citan por primera vez para la Argentina.

18- Fibulochlamys ferruginosa Romero & Cabral, Mycotaxon 34 (2): 430, 1989.

(Fig. 21: A-C)

139

Conidiomas resupinados, 2-3 cm long., con lupa tienen aspecto de cristales de azúcar, en seco

ferruginoso claro (m & P, Pl. 12, lO-K, “Chinese Gold”). Micelio incoloro, fíbulado. Hifas

cilín-dricas, 3-4 pm diám.. Conidióforos ausentes o micronematosos, poco o nada ramificado. Células

conidiógenas cilíndricas, terminales, generalmente asociada con una fíbula basal, o intercalares.

Conidios holotálicos, amarillo claro, globosos, 12-18 pm diám., piriformes o elipsoidales, ¡0-12 x

20-23 um o algunas veces pedicelados, a menudo con un umbón en cada extremo como resultado de

un ensanchamiento subapical de la célula conidiógena, O-septados, pared gruesa, 2-3 pm de espesor

cuando maduros, con l-3 gútulas oleosas, con reacción dextrinoíde. Sobre corteza y madera.

Teleomorfo: desconocido.

Material estudiado: Romero 25 (Holotipo BAFC 30826)/22-4 VIII-81; 24/4-13 VIII-82.

(BAFC).

Observaciones:

A pesar de que un gran número de Basidiomycetes poseen “clamidosporas”, ya sea asociadas

con su basidiocarpo o en cultivo, es raro encontrar “clamidosporas” solas en la naturaleza. Debido a

que en esta oportunidad fueron encontradas sin estar asociadas con ningún basidiocarpo, consideramos

pertinente describirlas como un género-forma nuevo.

Lopez (1984) describió e ilustró este taxón como Allescheriella de acuerdo con Kendrick &

Watling (1979). Pero por su ontogenia conidial holotálica, lo consideramos un género nuevo.

Por otro lado, esta especie nos recuerda a las especies de Pagidospora Drechsler, un género

nematófago, pero difiere de éste por la falta de estructuras de capturas que en nuestro material no se

observaron. Según Drechsler (1960) la presencia de dichas estructuras es la característica principal de

Pagidospora.

140

19- Glomerulomyces fibulosus Romero & Lopez, Mycotaxon 34 (2): 432, 1989.

(Fig. 21: D-H)

Conidioma efuso, farináceo, blanco atizado a crémeo. Hifas incoloras, con fi'bulas, 2,5-5 pm

diám.. Conidióforos semimacronematosos, simples o ramificados, con fïbulas, 30-40 x 2-4 pm.

Célqlas conidógenas mono-poliblásticas, elipsoidales, incoloras, 8-10 x 4-5 pm. Conidios

holobiásticos, esféricos, 6-10 pm diám., aseptados, incoloros, brotando en varias direcciones formando

una cabeza compacta globosa, 20-25 pm diám. Sobre corteza y madera.

Teleomorfo: desconocido.

Material estudiado: Romero 35 (Holotipo BAFC 39829) /4-l3 VIII-82; 28/4-13 V-83

(BAFC).

Observaciones:

Debido a que la cabezuela tiene, a primera vista, aspecto de bulbillo, esta especie recuerda a

miembros de los géneros Papulaspora, Burgoa y Aegerita.

Papulaspora es, generalmente, considerado un anamorfo de Ascomycetes (Carmichael et al.

1980) pero, en cambio, nuestros materiales poseen fíbulas por lo tanto pertenecen a un anamorfo de

Basidiomycetes.

En cambio, Aegerita y Burgoa se consideran, anamorfos de Peniophora sp. flde Hughes

(1958), de Subulícystídium longisporum (Eriksson, J. et al. 1984) y de Sistrotema sp. fide Weresub

et Leclair (1971). Pero nuestros materiales difieren de Aegerita, porque éste se caracteriza por poseer

un propágulo prosénquimatoso formado por hifas radialmente dispuestas y agrandadas apicalmente

141

(Kendrick & Watling, 1979) y de Burgoa, porque la estructura conidial, en el presente caso, no es la

de un bulbillo en sentido estricto. En Glomerulomyces se forma la cabeza a medida que brotan las

células en forma independiente las unas de las otras, mientras que en Burgoa se forma un estructura

“pseudoparénquimatica” que Weresub et Leclair (op. cít.) denominaron “bulbillo”. Al hacer los

preparados microscópicos, las cabezuelas de Glomerulomyces se disgregan fácilmente y las células

que la componen (conidios) quedan libres y no asociadas como en un parénquima.

20- Gonytrichum chlamydosporium Barron 8LBhatt., Mycopath. Mycol. appl. 32: 126, 1967 var.

chIamydosporium Gams & Hol.-Jechová, Stud. mycol 13: 86, 1976.

(Fig. 21: I)

Colonia pilosa, castaña, con una masa de conidios verde seco sobre cada. Conidióforos

erectos, sin ramificaciones, septados, castaños oscuros, 100-350 x 4-5 um, célula basal cónica, porción

fértil 50-150 um long., con 3-6 verticilos de 2-4 células conidiógenas. Células conidiógenas

enteroblásticas, fialídicas, castaño pálido, delgadas, 5-15 x 2,5-3 pm, afinándose hacia el ápice.

Conidios unicelulares, acumulándose en cirros verdes, incoloros con luz transmitida, ovoides, 2-3 x

1-2 um. Sobre madera y corteza.

Teleomorfo: Chaetosphaería chloroconia Gams & Hol.-Jechová (1976).

Material estudiado: Romero 9/22-4 XI-81; 29/22-8 V-82 (BAFC).

Observaciones:

Nuestras colecciones coinciden con la descripción de Gams & Holubová-Jechová (1976).

142

Según estos autores, Barron & Bahtt. describieron clamidosporas multicelulares, castañas y de paredes

gruesas, en cultivo. Todos los especímenes revisados por Gams & Holubová-Jechová (op. cit.), estaban

asociados con la forma perfecta mencionada.

La especie se cita por primera vez para nuestro país. Anteriormente, Cabello (1983) aisló

Gonytrichum macrocladum (Sacc.) Hughes, de suelo de Cnel. Suárez, Pcia. de Bs.As.

21- Gyrothrix podosperma (Corda) Rabenhorst, Deutschl. Krypt. fl. l: 72, l844.

(Fig. 22: H-I)

Colonia verde oliváceo, pilosa. Micelio superficial castaño oliváceo. Setas erectas, con tronco

principal liso o levemente ornamentado, 3-4 pm diám., castaño oscuro, l20-160 pm long., con 4-6

ramificaciones subdicotómicas, más delgadas, verrugosas, l pm diám. en el ápice, extremo casi

incoloro. Conidióforos micronematosos, rastreros, ramificados, castaño oliváceos. Célula conidiógena

enteroblástica, castaño claro, obclaviforme a lageniforme, 8-9 pm de alto cuando jóven, llegando a 20

pm posteriormente, 3-4 pm diám. en la base, l pm diám. en el ápice. Conidios unicelulares, en

manojos, formando agregados blancos en la base de las setas, visibles con lupa, cilíndricos a

fusiformes, rectos a levemente curvados. apiculados, incoloros, 10-12 x 1,5-2 pm. Sobre corteza en

cara interna.

Teleomorfo: desconocido.

Material estudiado: Romero 8/4-13 V-82; 7/4-13 V-83 (BAFC).

143

Observaciones:

Para su determinación se utilizaron las claves de Pirozynski (1962: lO), Ellis (l97l: 358) y

Cunningham (1974: 127-128).

Hasta el momento Gyrothrix podosperma no ha sido citada sobre Eucalyptus 5p.; en cambio,

ha sido hallada sobre hojas y tallos de Carex riparía, Eugenia jambolana y Persea carolinensis.

Cunningham (1974) citó otra especie del género, Gyrothríx macroseta sobre ramitas de

Eucalyptus 3p., en Norte América.

Rambelli et al. (198]) describieron e ilustraron dos especies nuevas de este género, en

hojarasca de bosque lluvioso tropical de “Tai”, en Costa de Marfil, Africa.

En cuanto a nuestro país, Gamundí et al. (1977) describieron Gyrothrix pediculata en hojarasca

de Nothofagus dombeyi (Neuquén).

La especie se cita por primera vez para la Argentina.

22- Haplotn'chum curtisíi (Berk.) Hol. Jechová, Ceska Mycol. 30: 3-4, 1976.

(Fig. 22: A-D)

Conidíoma resupinado, elástico, márgenes indefinidos, ferruginoso, más claro hacia los bordes.

Micelio formado por hifas hasta 10 um diám, de paredes gruesas hasta l pm de espesor, de las cuales

surgen los conidióforos. Conidióforos erectos, ramificados en ángulo recto, castaño claro, afinándose

ligeramente hacia el ápice. Células conidiógenas poliblásticas, terminales ensanchadas o intercalares,

denticuladas. Conidios holoblásticos, esféricos o subesféricos lO-lS pm diám., solitarios o raramente

en cadenas cortas, castaño dorado claro, pared gruesa, levemente ormamentados. Sobre corteza.

144

Teleomorfo: Botryobasidium vagum (Berk. & Curt) Rogers (Kendrick & Watling, l979).

Material estudiado: Romero 35/4-13 XI-81; 3, 19/4-13 11-82; lO, 26, 32, 39/22-4 XI-81;

30/22-4 II-82; 9, 35/22-4 V-82; 12/22-8 VIII-81; 40/22-8 XI-81; 15/22-8 V-82; 6, l4/4-l3 VIII-82;

29, 33, 35, 39/4-13 lI-82; 7, 28, 31/4-¡3 V-83; 20, 34, 37/22-4 VIII-82; l2/22-4 XI-82; l, 9, 12, 14,

23, 29/22-4 11-83;3, 9,13/22-4 V-83; 37/22-8 VIII-82; 9/22-8 VIII-82; 3 l/22-8 XI-82; 15/22-8 11-83;

l, 7 ll/22-8 V-83 (BAFC).

Observaciones:

Estas colecciones coinciden con la descripción de Holubová- Jechová (1976).

La especie se ha citado por primera vez para nuestro país (Romero et aL, 1989).

23- Haplotn'chum gracile (Linder) Hol. Jechová, Ceska Mykol. 30: 3-4, 1976.

(Fig. 22: 13-0)

Conidioma efuso, algodonoso o aterciopelado, flojo, márgenes irregulares, amarillo claro.

Micelio escaso, de hifas con septos simples, 6-9 pm diám., ligeramente amarillo, paredes algo gruesas.

Conidióforos erectos, poco ramificados. Células conidiógenas poliblásticas, ensanchadas, terminales

o intercalares, con dientes cilíndricos hasta 1,5 pm long.. Conidios holoblásticos, elipsoidales, lisos

o ligeramente ornamentados, amarillo pálidos, truncados en la base, 8-9 x lO-l4 pm. Sobre corteza.

Teleomorfo: desconocido.

Material estudiado: Romero 18/22-4 XI-8l; 38/22-4 II-82; l, lO, 32, 38/22-8 11-82; 26,

38/22-8 V-82; l3/4-l3 V-83; 2, l8, 19, 20/ 22-4 XI-82; l5, l9/22-4 V-83; 20, 26/22-8 XI-82; 3,

145

12, 26, 39/22-8 V-83 (BAFC).

Observaciones:

Nuestros materiales coinciden con la descripción de Holubová-Jechová (1976) .

La especie se ha citado por primera vez para la Argentina (Romero et aL, ¡989).

24- Helicomyces roseus Link, Ges. Naturf. Freunde Berlin Mag. Neues-tern Entdeck. Gesammten

Naturk.,3: 2l, 1809.

Helicomyces fuscopes Linder, Ann. Missouri Bot. Gard. 18:15, l93l (flde Goos, 1985).

(Fig. 23: A-B)

Colonia efusa, formando una capa rosada, delgada . Micelio inmerso en el sustrato, oscuro,

ramificado, ligeramente ondulado, 3-5 um diám.. Conidióforos macronematosos, mononematosos,

incoloros o levemente pigmentados, erectos o curvados, simples, l-3 septados, 20-37 x 2,5-2,4 um.

Célula conidiógena mono- o poliblástica, terminal, con 1-4 dientes. Conidios holoblásticos,

espiralados, incoloros, acrógenos, multiseptados; filamento conidial 2,5-3 pm diám., afinándose hacia

ambos extremos, naciendo excéntricamente, 20-25 pm diám. Sobre madera.

Teleomorfo: Tubeufla cylindrothecia (Seaver) v. Hóhnel, de acuerdo con Barr (1980).

Material estudiado: Romero 9/4-13 VIII-81; 2, 7, 32/4-13 XI-81; lO, 23/4-l3 11-82; lO.

36/4-l3 V-82; 23/22-4 XI-81; 30/22-4 11-82; 13/4-13 11-83; 19/22-4 11-83; l, 32, 34, 40/22-8 II-83

(BAFC).

146

Observaciones:

El material 9/4-13 VIII-81 fue determinado por el profesor R. D. Goos, de la Universidad de

Rhode Island. Las otras colecciones fueron determinadas por comparación. Estos ejemplares coinciden

con la descripción de Helicomyces fuscopes Linder (1931: 15), excepto en que los conidios son

menores y que la colonia es rosada y no blanca. Posteriormente, Goos en su revisión del género

Helicomyces (1985), sinonimizó de H. fuscopes con H. roseus Link, y en su descripción sí consideró

que la colonia varía de blanco a rosado. En cuanto a sustratos y distribución geográfica, da una lista

amplia de maderas descortezadas, desde herbáceas a arbóreas (no menciona Eucalyptus) y, cita su

distribución desde Europa a América del Norte, Central (Cuba) y del Sur (Brasil, Colombia) y a

Japón, India y Tasmania.

La especie se ha citado por pn'mera vez la para la Argentina (Romero, 1983).

25- Helicosporium aureum (Corda) Linder, Ann. Miss. Bot. Gard. 16: 279, 1929.

(Fig. 23: E)

Colonia verde amarillento, pequeña, poco desarrollada, formada por conidióforos, micelio

escaso. Conidióforos macronematosos, mononematosos, castaños oscuros, erectos, simples, ISO-200

x 3-4 pm, afinándose hacia el ápice, la última célula más o menos lageniforme. Célula conidiógena

poliblástica, con proliferación simpodial, denticulada o con proyecciones diverticuladas, intercalar.

Conidios pleurógenos, espiralados, incoloros, lO-l4 pm diám., filamento l-l,5 pm diám. Sobre

corteza.

Teleomorfo: Tubeufia scopula (Cke.& Peck) Barr.(Barr, ¡980).

147

Material estudiado: Romero 23/22-4 VIII-81 (BAFC).

Observaciones:

Este ejemplar coincide con la descripción de Goos (1989); es la primera vez que se cita para

nuestro país.

26- Myrothecium cinctum (Corda) Sacc., Syll. Fung. 4: 751, 1886.

Myrothecium striatisporium Preston, fide Tulloch (1972).

Para los sinónimos ver Tulloch (1972: 18).

(Fig. 23: F)

Esporodoquios oscuros, 300-600 um, rodeados de pelos marginales blanco-grisáceos, cubierto

por una masa de conidios negra, húmeda. Pelos marginales flexuosos, simples, a veces ramificados,

septados, ornamentados con verrugas castañas, 8-18 x 2-3,5 pm. Conidióforos ramificados, formando

una masa compacta. Células conidiógenas enteroblásticas, en grupos de a 2-4, claviformes, a veces

cilíndricas, con paredes lisas o verrugosas, oscureciéndose hacia la base, con collarete oscuro, l0-20

(30) x 2-3 um. Conidios unicelulares, oliváceos, ampliamente o estrechamente fusiformes, 6-14 x

2,5-4,5 pm, con un extremo agudo y otro truncado a veces más oscuro, pared con estrías

longitudinales, a veces en espiral y con ananastomosis. Sobre madera.

Teleomorfo: desconocido.

Material estudiado: Romero l7/22-4 VIII-81.(BAFC).

Observaciones:

Nuestro material coincide con la descripción de Tulloch (1972). Esta especie también se

conoce con el nombre M. striatisporium Preston. Tulloch (op. cit.) en su trabajo monográfico del

género, luego de examinar todos los especímenes y cultivos de Myrothecium con esporas estríadas,

concluyó que es mejor retener un sólo epíteto específico para los Myrothecium con dichas esporas ya

que únicamente había diferencias en el tamaño de las mismas.

De acuerdo con esta autora es una especie omnívora, particularmente en pastos, ciperáceas y

suelo, y con distribución geográfica muy amplia, como así lo demuestra la cantidad de material

examinado procedente de muchos países.

Para nuestro país, Cabello (1986 a y b) la citó en la lista de los hongos aislados de suelos en

la Pcia. de Bs. As., al realizar un estudio sobre la variación vertical y estacional de dichos hongos en

la región interserrana. Spegazzini encontró otras especies del género, Myrothecium rorídum Tode: Fr.,

en hojas de Populus sp. de Bs. As. (1898), M. verrucaria (Alb.&Schw.) Ditm.: Fr., de Bs. As. (l9l9)

y Tucumán (1896) y M. pulchellum Speg. de Paraguay (1886). Esta última especie fue sinonimizada

con Myrothecíum carmichaelli Grev. (Tulloch, op. cit.). Por otro lado, cabe destacar que el género

Myrotheciella Speg. también ha sido sinonimizado con Myrothecíum, fide Tulloch.

Bollenbacher & Fulton (1963) demostraron la capacidad celulolítica de esta especie mediante

ensayos de pérdida de fuerza en fibras de algodón. Trabajaron con 5 aislamientos a partir suelo de

Arkansas, EEUU..

Tulloch (op. cit.) y Samuels (1988: 324) describen otras especies del género como anamorfo

de algunas especies de Nectria.

27- Neta patuxentica Shearer & Crane, Mycologia 63: 241, l97l.

(Fig. 23: C-D)

Colonia laxa, oscura, con masa conidial blanca basal, pulverulenta. Hifas septadas, incoloras

al principio, luego castaño muy oscuro, 2-3 pm diám., ramificación dicotómica, con anastomosis

formando una red aracnoide laxa. Conidióforos incoloros o ligeramente amarillentos, simples, rectos

o flexuosos, septados, con crecimiento indeterminado, surgiendo lateral o terminalmente del micelio

jóven mezclándose con micelio muy oscuro. Célula conidiógena poliblástica, integrada, lateral,

ligeramente pigmentada, simpodial, denticulada, hasta 20 pm long. x 2-4 pm, generalmente adosadas

a hifas vegetativas oscuras. Conidios ligeramente alantoides, 12-15 x 4-5,5 pm, incoloros, uniseptados,

generalmente con 2 gútulas por célula, producidos sucesiva y acrógenamente sobre dientes. Sobre

madera.

Teleomorfo: descconocido.

Material estudiado: Romero l/4-l3 Xl-82. (BAFC).

Observaciones:

Este material coincide con las descripciones de Shearer & Crane (1971) y Sutton (1973:

81-82). Los primeros autores, aislaron, la especie de madera sumergida, en EEUU. Sutton la encontró

sobre madera de Salix sp. parcialmente inmersa en agua estancada, en Manitoba.

El género y la especie se citan por primera vez para la Argentina.

150

28- Periconia círcinata (Mangin) Sacc., Syll. Fungorum 18: 568, 1906.

(Fig. 24: D-K)

Colonia pilosa castaño oscuro, formada principalmente por conidióforos, micelio escaso.

Conidióforos macronematosos, mononematosos, simples, distinguiéndose un estípite negro brillante y una

cabezuela castaña fumosa. Estípite circinado a levemente curvado en el ápice, l-4 septos, castaño oscuro,

hasta 200 um long., 6-8 pm diám. debajo de la cabezuela, 8-10 pm en la base. Célula conidiógena mono

o poliblástica, ovoide, castaño claro, 5-7 pm diam. Conidios holoblásticos, unicelulares, en cadenas,

esféricos, 7-13 pm diám., castaño oscuro, con espinas cilíndricas. Sobre cortela.

Colonia en ME, al comienzo blanca, luego gris, posteriormente casi negra, reverso sepia

oscuro a negro, creciendo 3,5 cm en 10-15 días. Micelio formado por hifas castañas, ramificadas, de

paredes lisas u ornamentadas, 2,5-6 um diám. Los conidios pueden formarse en: (l) conidióforos

macronematosos iguales a los de la muestra, (2) en el extremo de una hifa vegetativa, solitarios o en

cadena y (3) en células conidiogénas directamente sobre las hifas. En la base de los conidióforos y

en gran parte de las hifas aparecen gotas de mucílago (?) irregulares, de distinto tamaño. En cuanto

a las mediciones de las estructuras no presentan variaciones con respecto a las de la muestra.

Teleomorfo: desconocido.

Material estudiado: Romero 40/4-13 VIII-81; 29/4-13 II-82; 29/22-8 V-82; l4/4-l3

VIII-82; 39/22-8 11-83 (BAFC; BAFC cultivo 2481).

Observaciones:

Nuestros materiales coinciden con las descripciones de Mason y Ellis (1953: 77) y Ellis (1968:

151

167), excepto que algunos conidióforos no son circinados, los conidios son algo menores (15-22 um

diám., Mason & Ellis, op. cit.:77) y la ornamentación es más conspicua.

29- Periconia minutissima Corda, Icon. Fung. l: 19, l837.

(Fig. 24: A-C)

Colonia castaño oscuro a negro, pilosa, formada exclusivamente por conidióforos, no

observándose micelio superficial. Conidióforos macronematosos, mononematosos, simples o

surgiendo de a dos, negros brillantes, tabicados, 180-300 x 6-13 pm, ramificados en el ápice en 2 o

3 ramas que nacen por debajo de un septo, ramas cilíndricas, curvadas, con 2-3 ramificaciones

secundarias, con los conidios dispuestos en una cabezuela compacta, esférica, castaña. Célula

conidiógena monoblástica o poliblástica, discreta, sobre el eje principal o sobre ramas. Conidios

holoblásticos, unicelulares, esféricos, 4-7 pm diám., verrugosos, castaños, en cadenas de 2-3 conidios.

Sobre madera.

Teleomorfo: desconocido.

Material estudiado: Romero l7 /22-4 VIII-81; 2, 8, 9 /22-4 XI-Sl; 14/ 22-4 V-82; 4 / 22-4

V-82; 3 / 22-8 VIII 81; 38 / 22-8 XI-81; 23/22-8 11-82 (BAFC).

Observaciones:

Nuestras colecciones coinciden con la descripciones de Mason y Ellis (1953: 88) y Ellis (197 l:

349).

Durante este estudio, la mayoría de las veces, se las encontró, en corte transversal de madera.

152

La especie se ha citado por primera vez para la Argentina (Romero, 1983).

30- Pen'conia lateralis Ellis ct Everhart, J. Mycol. 2: 104, 1886.

(Fig. 24: L-O)

Colonia inconspicua, pilosa, formada por conidióforos esparcidos. Conidióforos levemente

curvados, castaños, 340-400 pm long., ápice setiforme y estéril, 3-5 pm diam, parte media 8-10 pm

diam., en la base lO-lS pm diám.. Células conidiógenas subapicales. laterales, en su mayoría sobre

ramas laterales cortas. Conidios holoblásticos, unicelulares, castaño claro, en cadena, esféricos, 7-10

pm diám, verrugosos. Sobre madera.

Teleomorfo: desconocido.

Material estudiado: Romero 2, 9/22-4 XI-81 (BAFC).

Observaciones:

Nuestros materiales coinciden con la descripción de Ellis (1971: 351).

La especie se cita por primera vez para la Argentina (Romero, 1983).

31- Periconia tirupatiensis Subram., J. Indian Bot. Soc. 34: 356-357.

(Fig. 25: A-C)

Colonia formada por conidióforos en grupos grandes con los estípites densamente apretados

153

entre sí, ramificados, castaños, a menudo verrugosos hacia la base, hasta 200 pm long., 5-6 pm diám..

Células conidiógenas poliblásticas, terminales o intercalares. Conidios unicelulares, castaño,

verrugosos, esféricos, 5-8 pm diám.. Sobre madera en corte transversal.

Teleomorfo: desconocido.

Material estudiado: Romero 20/4-13 VIII-82 (BAFC).

Observaciones:

Nuestro ejemplar coincide con la descripción de Ellis (1976: 356).

Esta especie se cita por primera vez para la Argentina.

32- Phaeoisaria clematidis (Fuckel) Hughes, Canad. J. Bot. 36: 795, 1958.

(Fig. 25: D-E)

Colonia negra, efusa, pilosa. Sinemas negros, cubiertos en la parte superior por los conidios

de color gris en masa. Conidióforos macronematosos, sinematosos. Célula conidiógena poliblástica,

cilíndrica o claviforme, castaño claro, con numerosos dientes delgados. Conidios holoblásticos,

unicelulares, incoloros, lisos, fusiformes a elipsoidales, 4-9 x l,5-2,5 pm. Sobre madera.

Teleomorfo: desconocido.

Material estudiado: Romero 9/22-4 VIII-81; 16, 19/22-4 XI-81; 31/22-8 II-82; 4/22-8

V-82; 6/22-4 V-83; ¡7/22-8 lI-83 (BAFC).

Observaciones:

Nuestros materiales coinciden con la descripción de Ellis (197]: 214).

El género y la especie se ha citado por primera vez para nuestro país (Romero, 1983).

33- Pleurotheciopsis websterii Cazau, Arambarri & Cabello, My-cotaxon 46: 238, 1993.

(Fig. 25: F-H)

Colonia efusa, pilosa, castaña. Micelio escaso. Conidióforos macronematosos,

mononematosos, rectos, a veces flexuosos, cilíndricos, no ramificados, septados, paredes lisas, castaño

a castaño oscuro en la base, aclarando hacia el ápice, base ensanchada 15-20 pm diám., en la parte

superior 6-7 um diám. Célula conidiógena terminal, poliblástica, percurrente, simpodial, cilíndrica,

levemente pigmentada a incolora, de paredes delgadas; pared externa se fractura durante la formación

del primer conidio y la célula conidiógena crece a través de dicha fractura. Conidios en cadenas

acrópetas cortas, simples, 4-5 septados, incoloros, lisos, fusifonnes, 20-26 x 7-8 pm. Sobre corteza.

Teleomorfo: desconocido.

Material estudiado: Romero 37/22-4 VIII-82 (BAFC).

Observaciones:

Nuestro ejemplar coincide con la descripción de Cazau et al. (1993) excepto en que los

conidios son menores. El rango de longitud de los mismos, dado por dichas autoras, es 32-38 pm. Su

colección está sobre corteza muerta y procede de Río Santiago, Pcia. Bs.As.

155

34- Spadicoídes atra (Corda) Hughes, Canad. J. Bot. 36: 805, 1958.

(Fig. 26: A)

Colonia pilosa, castaño oscuro casi negro. Conidióforos agrupados o esparcidos,

macronematosos, mononematosos, erectos, rectos, castaños, simples, en pequeños grupos, 50-600 x

3-4 pm. Célula conidiógena politrética, integrada, terminal e intercalar, determinada, cilíndrica, 7-21

pm long. Conidios solitarios, acropleurógenos, elipsoidales, unicelulares, lisos con extremos

redondeados, castaños, 4-8 x 3-4 pm. Sobre madera.

Teleomorfo: desconocido.

Material estudiado: Romero 34/22-8 XI-Sl; 6/22-4 II-82; 18/22-8 II-82; 32, 36/4-13 V-83;

31/22-4 11-83; 6, 27/22-4 V-83 (BAFC).

Observaciones:

Nuestros ejemplares coinciden con la descripción de Hughes (1973).

La especie se ha citado por pn'mera vez para nuestro país (Romero, 1983).

Hughes (1978 a) la cita sobre madera muerta de Nothofagus truncata, de Nueva Zelandia.

35- Spadicoides bina (Corda) Hughes, Canad. J. Bot. 36: 806, 1958.

(Fig. 26: E-G)

Colonia pilosa, castaño oscuro. Conidióforos macronematosos, mononematosos, erectos,

156

rectos, castaños, simples, en pequeños grupos, 80-600 x 4 wn. Célula conidiógena politrética,

integrada, terminal e intercalar, determinada, cilíndrica, 6-27 um long.. Conidios solitarios,

acropleurógenos, elipsoidales, 8-10 x 4-5 um, lisos, con extremos redondeados, castaños, con un septo

negro, grueso. Sobre madera y corteza interna.

Teleomorfo: desconocido.

Material estudiado: Romero 25/ 4-13 XI-Sl; 9/22-4 V-82; 23/22-8 "-82; 8/22-8 XI-82

(BAFC).

Observaciones:

Nuestras colecciones coinciden con la descripción de Hughes (1973).

La especie se ha citado por primera vez para nuestro país (Romero, 1983).

36- Spadicoides klotzschii Hughes, Fungi Canad. N°8, 1973.

(Fig. 26: C-D)

Colonia negra, velutinosa, efusa. Conidióforos agrupados o esparcidos, rectos o ligeramente

curvados, castaño oscuro aclarándose hacia el ápice, 55-220 x 5-6 um, célula basal bifurcada, hasta

12 um diám., célula apical ligeramente hinchada. Células conidiógenas intercalar y terminal,

politrética, 9-22 um long.. Conidios cilíndricos de extremos redondeados, castaño, 2-septados, septos

gruesos y negros, a veces levemente más angostos en el medio, ligeramente apiculados en la base,

10-16 x 4-5 pm. Sobre madera.

Teleomorfo: desconocido.

157

Material estudiado: Romero 19/22-8 XI-82 (BAFC).

Observaciones:

Nuestro ejemplar coincide con la descripción de Hughes (1973) excepto en la medida de los

conidios, que son mayores en nuestra colección. La especie parece ser muy cercana a S. obovata

Hughes y difiere, justamente en el tamaño de los conidios, que en de S. obovata son mayores, y

semejante a los de nuestro ejemplar. Sin embargo, la similitud sólo se da en la medida; en cambio,

en la forma, se parecen mucho más a S. klotzschii.

La especie se cita por primera vez para nuestro país.

37- Spegazzinia tessarthra (Berk. & Curt.) Sacc. Syll. Fung.4: 758, 1886.

Para la descripción y las ilustraciones ver Ellis (l97lz566).

Teleomorfo: desconocido.

Material estudiado: Romero 18/22-4 II-82 (BAFC).

Observaciones:

Esta especie ha sido aislada varias veces en nuestro país. Cabral (1979, com. pers.) la obtuvo

de estiércol de caballo. Godeas (1983, com. pers.) la aisló de hojas de Nothofagus 5p., Río Pipo,

Tierra del Fuego. Martinez ( 1989, com. pers.) de suelo (INTA, Pergamino, Bs.As.) con rotación

trigo-soja-maíz cultivado con labranza conservacionista sin fertilizantes donde se colocó una trampa

de celulosa.

Recientemente, Godeas & Arambarri (¡993) la aislaron y describieron en hojarasca y madera

158

de Nothofagus pumilio, de Tierra del Fuego.

38- Sporochisma nigroseptatum Rao & Rao, Mycopath. Mycol. appl.24: 82, 1964.

(Fig. 26: H-K)

Colonia negra, pilosa, formada por conidióforos mezclados con hifas capitadas nacidas de un

estroma pequeño. Hifas capitadas rectas a levemente curvadas, 3-6 septadas, 150-240 pm long., célula

apical más o menos claviforme, 10-15 x 12-16 pm, ligera-mente pigmentada, rodeada de una cubierta

de mucílago (?), por debajo del ápice 5 pm diám., ensanchándose en la base 7-8 pm diám., castaño

más oscuro. A veces proliferan a través del ensanchamiento apical y vuelven a dar otro

ensanchamiento. Conidióforos solitarios, erectos, castaño oscuro, hasta 300 pm long., llevando en el

ápice la célula conidiógena enteroblástica, subcilíndrica a lageníforme, distinguiéndose un vientre de

18-20 pm long., oscuro y un collarete más claro de 140-198 x 15-16,5 pm, laciniado en el extremo.

Conidios en cadenas cortas (4), frágiles. cilíndricos, lisos, 5-septados, 36-66 x 13-15 pm, castaños,

las 2 células terminales muy cortas y más claras que las centrales, septos engrosados y casi negros.

Sobre corteza.

Teleomorfo: desconocido.

Material estudiado: Romero 33/22-4 VII-82; 36/22-4 XI-82 (BAFC).

Observaciones:

Estas muestras coinciden con la descripción de Nag Raj & Kendrick (1975) excepto en que

el rango de longitud alcanzado por los conidios de las presentes colecciones es mayor, 33-66 pm.

159

S. nigroseptatum Rao & Rao parece estar muy relacionada con S. saccardoi Mason & Hughes

apud Hughes (1949), de la cual se diferencia porque los conidios tienen los septos más gruesos y bien

negros. Sería conveniente hacer una revisión de todas estas especies ya que las diferencias (en tamaño

y color) entre estos taxones no parecen ser muy significativas y probablemente estemos en presencia

de una sola especie.

La especie se cita por primera vez para la Argentina.

39- Sporidesmium adscendens Berk., Ann. Nat.Hist. 4: 291, 1840.

Clasterosporium adscendens (Berk.) Sacc., Syll. Fung. 4: 394, 1886.

(Fig. 27: A-C)

Colonia negra, hirsuta, formada casi exclusivamente por conidios, micelio escaso. Conidios

multiseptados, constreñidos en los septos, flexuosos, obclaviformes, ápice redondeado, base cónica

truncada, castaño oscuro rojizo aclarándose hacia el ápice, 170-440 um x ll-l7,5 (15) um, en la parte

más ancha, 5-10 pm diám. en el ápice de los conidios más largos y hasta 12,5 um en el ápice de los

conidios más cortos. Sobre corteza.

Teleomorfo: desconocido.

Material estudiado: Romero 8/22-8 XI-Sl (BAFC).

Observaciones:

La muestra no es muy abundante, los conidios se hallan libres y no se observaron células

conidiógenas. Comparando las descripciones de S. vagum y S. adscendens realizadas por Ellis (1958:

160

30.1-33 y l97l: l 18-119) resulta difícil diferenciar las dos especies. Sólo se separan por la tonalidad

de color de sus estructuras (S. vagum es más claro) y por sus medidas, sobre todo en el diámetro de

la zona más ancha del conidio (l l-l4 pm en S. vagum y 14-20 en S. adscendens). Existe una especie

sobre Eucalyptus sp. de Nueva Guinea, S. eucalypti (Ellis 1976: 88) que se caracteriza por poseer

conidióforos y conidios completamente distintos en cuanto a morfología y al grado de pigmentación

(muy pálidos).

La especie se cita por primera vez para nuestro país. Anteriormente, Arambarri et al. (l981)

citaron el género, describiendo S. rubi en hojarasca de Nothofagus dombeyí de Neuquén.

40- Sporotrichum aurantiacum (Bull.: Fr.) Fr., Syst. Mycol. 3: 423, 1832.

Para la descripción ver Stalpers, 1984.

(Fig. 27: D-E)

Teleomorfo: Pycnoporellus metamorphosus (Fuck.) Stalpers (1984).

Material estudiado: Romero 25/22-8 XI-81 (BAFC).

Observaciones:

Stalpers (1984) describió esta especie detalladamente dando una diagnosis completa de ambos

estados, anamorfo y teleomorfo. Nuestro material concuerda con su descripción, excepto por la

ausencia de clamidosporas y cristales y por la reacción dextrinoide de los conidios de nuestras

colecciones, (reacción no mencionada por Stalpers, op. cit.).

161

41- “Sporotrichum” azureum Wright & v. Arx apud v. Arx, Persoonia 7(2): 127-128, 1973.

(Fig. 27: F-I)

Teleomorfo: desconocido.

Material estudiado: Romero (BAFC 30832)

Observaciones:

Wright y v. Arx lo describieron por primera vez para nuestro país (v. Arx, 1973) . Kendrick

y Watling (1979) sugirieron que debería ser ubicado en el género Allescheríella. De acuerdo con

Stalpers (¡984) esta especie no pertenece ni a Sporotrichum ni Allescheriella, y piensa que merece

un género nuevo (com. pers.). Por lo tanto decidimos mantener este nombre genén'co hasta que

Stalpers publique su revisión.

42- Tetraploa aristata Berk. & Br., Ann. Mag. nat. Hist., 5: 459.

Para la descripción ver Ellis (197]: 52).

(Fig. 28: D)

Teleomorfo: desconocido.

Material estudiado: Romero 4, 23/22-4 XI-81; 27/4-13 V-83; lO, 32/22-8 V-83 (BAFC).

162

Observaciones:

Esta especie es de amplia distribución geográfica y generalmente se encuentra en hojas y tallos

de diversas plantas, entre las que predominan las gramíneas (Ellis, op. cit.).

Esta es la primera vez que se cita para la Argentina. Cabe destacar que Fernandez & Pozner

(1989) realizaron un estudio palinológico en la localidad tipo del suelo enterrado Puesto Berrondo,

Río Salado, Bs. As. y el registro palinológico mostró una palinoflora rica acompañada con hongos

propios de la microflora edáfica, entre ellos, encontraron conidios que se ubicaron en el género

Tetraploa sp.

43- Torula herbarum (Pers.) Link ex S. F. Gray, Nat. An. Arrang. Br. P1. 1:557, 1821.

Para la descripción y las ilustraciones, ver Ellis: 337, 1971.

Teleomorfo: desconocido.

Material estudiado: Romero 28, 31/4-13 V-82; 25/4- 13XI-81; 12/22-4V-82; 15/22-4 VIII-82

(BAFC).

Observaciones:

Arambarri et al. (19812355) describieron esta especie en hojarasca de N. dombeyi, Neuquén.

44- Trichodenna hamatum (Bon.) Bain., Bull. trimest. Soc. mycol. Fr. 22: 131, 1906.

Para la descripción y las ilustraciones ver Rifai (1969) y Godeas et al. (1977 a y b).

Teleomorfo: Doi describió (1967-68-75) varias veces el estado conidial “Trichoderma-type”

al realizar estudios de distintas especies de los géneros Hypocrea y Podostroma.

163

Material estudiado: Romero 21/4-13 XI-81; 2, 22, 27/22-4 XI-81; 31/22-8 XI-81 (BAFC).

Observaciones:

Esta especie ya ha sido aislada y descripta para nuestro país (Godeas et. aL, 1977 a y b).

Posteriormente, Martinez (com. pers.), la aisló de suelos tanto en Pergamino como en Delta.

45- Trichoderma hara'anum Rifai, Mycol. Pap. 116: 38, 1969.

Para la descripción ver Rifai, op. cit.

Teleomorfo: idem especie anterior.

Material estudiado: Romero 20, 39/4-13 Xl-81; 9/22-4 V-82; 9/4-l3 11-83; ¡4/22-4 V-83

(BAFC).

Observaciones:

Esta especie ha sido aislada y descripta en distintas oportunidades para nuestro país (Godeas

et. aL, 1977 a; Lopez et al. 1990; entre otros.)

46-Trichoderma viride Pers. ex S.F. Gray, Nat. An. Arrang. Br. Pl. 12560, 1821.

Para la descripción ver Rifai, 1969.

Teleomorfo: idem especie anterior.

Material estudiado: Romero 31/4-13 V-82; 12/4-13 lI-83; 12/22-4 II-83; l, 2, 18, 38/22-4

V-83; 38/22-8 V-83 (BAFC, BAFC cultivo ll34).

164

Observaciones:

Especie muy común sobre madera. Spegazzini (1887: 303) 1a citó para 1a Argentina, sobre

madera de Nothofagus sp. en Tierra del Fuego. Godeas et al. (1977: 9) estudiaron dicho material y

Martínez (com. pers.) la aisló de suelo de Delta.

47- Venniculariopsiella immersa (Desm.) Hóhnel, Ber. dtsch. Bot. Ges. 36: 317, 1918 var. immersa

Bender, Mycol. 24: 412, 1932.

Para 1a lista completa de sinónimos ver Nag Raj. 1983.

(Fig. 28: A-C)

Conidioma esporodoquial, setoso, superficial a semiinmerso, negro, cubierto por los conidios

en masa blanco translúcido; estroma formado por células prismáticas, de paredes castañas, dispuestas

en hileras. Setas simples, erectas, septadas, castaño oscuro, aclarándo hacia el ápice, paredes lisas,

ocasionalmente asperuladas, hasta 700 pm long. x 10-12 pm diám. en la base, 4-7 pm diám. hacia el

ápice. Conidióforos ramificados, dispuestos en empalizada densa. Célula conidiógena enteroblástica,

subcilíndrica a lageniforme, con el ápice recurvado, incolora, 13-18 x 2-3 pm, 1-1,5 pm diám. en el

ápice. Conidios unicelulares, cilíndricos, ápice obtuso, base truncada con una protuberancia corta,

curvados a rectos, incoloros, 10-21 x 2-3 pm. Sobre corteza y madera.

Teleomorfo: desconocido.

Material estudiado: Romero 2/4-13 VIII-81; 3/22-4 XI-81; 7/22-8 VIII-81; 4/22-8 XI-81;

3/4-13 VIII-82; 24/4-13 V-83 (BAFC).

165

Observaciones:

Nuestras colecciones coinciden con la descripción de Nag Raj (1983). El examinó materiales

sobre hoja de Quercus ¡lex y Q. coccífera, procedentes de Francia y en hojarasca de Loranthus sp.,

procedente de India.

Sutton (l978) describió otra variedad bajo el nombre 0ramasia hirsuta var. ramosa basándose

en un material procedente de Florida, EEUU, también sobre hojas muertas de Quercus virginianae.

Además cita 0. hírsuta var. hirsuta para Brasil sobre Eucalyptus grandis y Eucalyptus sp. entre otros

hospedantes, siempre en hojarasca; sobre laurus sp. de Azores; sobre corteza de Salix sp. y sobre hoja

de Rhododendron sp. de Reino Unido.

El género y la especie se citan por primera vez para el país.

COELOMYCETES

48 a- Microsphaeropsis pseudoaspera Sutton, Nova Hedwigia 25: 170, 1974.

Para las ilustraciones ver Sutton 1974 y 1980.

Picnidios solitarios o agrupados de a 2-3, globosos, ostiolados, inmersos, castaño oscuro, hasta

230 pm diám.; pared compuesta por una capa externa de células elongadas de paredes castañas y

gruesas y una capa interna de células isodiamétricas de paredes delgadas, incoloras o levemente

pigmentadas. Células conídiógenas enteroblásticas, fialídicas, ampuliformes, 3.5-5 x 2-4 um. Conidios

elípticos a subglobosos, castaño claros, unicelulares, lisos o ligeramente ornamentados, 3-4 x 2,5-3

um. Sobre madera en corte transversal.

Teleomorfo: desconocido.

166

Material estudiado: Romero lO/4-l3 VIII-82.(BAFC).

Observaciones:

Esta especie se cita por primera vez para la Argentina y su descripción coincide con la de

Sutton (op. cit.), quien la describió sobre ramas muertas de Eucalyptus sp. de Portugal. También

describió otras dos especies, M. conielloides Sutton y M. globulosa (Camara) Sutton y menciona a M.

callísta (H. Syd.) Sutton, las tres sobre hojas de Eucalyptus globulus y E. pauciflora.

Cabral (1982) aisló M. callista a partir de hojas de Eucalyptus viminalis, de Pcia. Bs. As.

Venedikian (com. pers.) aisló M. olivacea de hojas vivas de Pinus taeda.

49 b- Pestalotiopsis leprogena (Speg.) Steyaert, Darwiniana 12(2): 159, 196].

Pestalozzía leprogena Speg., Anal. Mus. Nac. BsAs. 23: ll9, 1912.

Para las ilustraciones ver Steyaert (op. cit.).

Conidiomas acervulares linear-fusiformes, observándoselos desde arriba, negros. Células

conidiógenas anelídicas, cilíndricas, incoloras. Conidios claviformes, afinándose hacia la base, a veces

ligeramente curvados, l7-24 x 7-8 um, tetraseptados, las 3 células medias coloreadas, 13-15 pm long.,

las 2 superiores castaño oscuro fuligineo, la inferior castaño oliváceo, células terminales incoloras,

cónicas, 3-4 pm long., la apical con 3 setas (raro 4) divergentes, 19-22 pm long., la basal con l

pedicelo frágil 5-8 pm long.. Sobre la cara interna de la corteza.

Teleomorfo: desconocido.

Material estudiado: Romero 9/4-13 II-82 (BAFC).

167

Observaciones:

Para la determinación de esta muestra se siguió a Guba (1929 y 1932) y a Steyaert (1961).

Spegazzini la describió sobre frutos de Musa sapientum y M. pedicellata, en La Plata, Buenos

Aires.

Generalmente, las especies de este género están descriptas sobre hojas y muy pocas sobre

talluelos; este hecho dificultó su determinación ya que no tenemos caracteres macroscópicos

comparables.

Recorriendo la clave de Guba (196]), sus descripciones y las de Steyaert (op. cít.) surge la

necesidad de una revisión del género como también lo sugirió Sutton (1980).

50 c- Waydora typica (Rodway) Sutton, Trans. Br. Mycol. Soc. 67 (2): 243-249, 1976.

Pulvinaria typica Rodway, Pap. Proc. R. Soc. Tasmania: 110, 1917.

(Fig. 28: E-H)

Conidioma estromático, erumpente, pulvinado a globosos, carbonáceo, negro, de 600-900 pm,

dividido verticalmente en 3-8 segmentos como gajos de naranja; cada lóculo estromático tiene una

pared bien diferenciada, llS pm de espesor que consta de 4 capas: la más externa de 13-22 pm de

espesor, compuesta por un pseudoparénquima de células de pared gruesa, castaño oscuro; la capa

siguiente de 45-85 pm de espesor, formada por un prosénquima de células de pared muy gruesa,

gelatinizada, pálidamente coloreada. lumen pequeño; una tercera capa más interna, de l3-21 um de

espesor, compuesta por células más o menos isodiamétricas, de paredes delgadas, castañas; finalmente,

un estrato delgado de células pequeñas, incoloras, de donde nacen los conidióforos; cada lóculo posee

168

un ostíolo. Conidióforos ramificados, septados, cilíndricos, afinándose gradualmente hacia el ápice,

incoloros, lisos, 20-33 x 1,5 um. Células conidiógenas enteroblásticas, fialídicas, integradas,

determinadas, incoloras, afinándose hacia el ápice, con un collarete pequeño. Conidios aseptados,

incoloros, lisos, levemente alantoides, 4-7 x l um. Sobre corteza.

Colonia en ME y MA crece rápidamente, 2 cm diám. en 24 horas, al principio blanca

filamentosa, luego aparecieron estromas jóvenes, inmaduros y a los 8 días maduraron, dando estromas

de características exactamente iguales a la muestra original: a los l9 días apareció un cirro blanco en

forma de gota. En ME tardó más de un mes en dar conidios.

Teleomorfo: desconocido.

Material estudiado: Romero l/4-l3 V-83 (BAFC).

Observaciones:

Este ejemplar concuerda con la descripción de Sutton et al. (1976).

Es la primera vez que se ha citado este género y especie para la Argentina (Romero, 1983).

En Brasil fue encontrada sobre pecíolo, hoja y cápsula de distintas especies de Eucalyptus (Sutton,

op. cít.).

169

FIGURASY

LAMINAS

Fíg. l: A-C: Erostella minutissíma. A: aspecto general, B: paráfisis. C: ascos sobre hifas ascógenas;D-H Jaltaea slachybotryoides. D: aépecto general, E: ápice ramificado de un cuello, F: paráfisis, G:ascos sobre hifas ascógenas, H: ascosporas; J-L: Pleurostoma ootheca. l: aspecto general, J : grupode pcritecios, K: ascosporas. L: un asco en vista frontal (izq.) y otro en vista lateral.(Co:corteza).

"I'm"'¡Il "ru.-¡ Ir.'l

Fig. 2: A-D: Gnomouiella dimorphospora. A: aspecto general, B: paráfisis, C: ascosporas. D: asco;E-G: Gnomoniella Iignicola. E: aspecto general, F: asco, G: ascosporas; H-K: Diaporthe aff. waodii.H: aspecto general, I: conjunto de ascos jóvenes, J: asco y paráfisis. K: ascosporas.

Fig. 3: A-H: Valsa ambiens ssp. leucostomoides. A: aspecto general, B: corte longitudinal de unestroma teleomórfico, C: corte long. de uno anamórfico, D: Ascos, E: ascosporas, F-G: conidíóforosy células conidiógenas, H: conidios; I-L: Hypocrea nigricans f. nign'cans. I: aspecto general, J : cortelong. del estroma, K: detalle de capas en a, L: asco; M-Q: Hypomyces aureonitens. M: aspectogeneral, N: detalle de los peritecios sobre el subículo, O: asco, P: ascosporas, Q: detalle de la papilaostiolar. (eT: estromas teleomórficos, eA: estromas anamórficos, e: estroma, P: peritecios, Co: corteza,M: madera, cp: cavidad picnidial s: subículo).

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Fig. 4: A-C: Hypomyces ochraceus. A: Peritecio, B: asco, C: ascosporas; D-G: Nectria aureo-fulva.D: aspecto general, E: células del estroma y de pared peritecial, F: ascos en distintos estados dedesarrollo, G: ascosporas; H-K: Nectriopsís oropensoídes. H: peritecio, I: pelos periteciales, J: asco,K: ascosporas; L-M: Hypomyces rosellus. L: aspecto general de los peritecios sobre el subículo, M:ascosporas; N-P: Nectn'a ochroleuca. N: aspecto general, P: asco, O: ascosporas.

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'\Ao*.1;\..¡b-h­¡1.9.

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100 pm

Fig. 5: A-C: Melanochaeta sp. A: aspecto general de peritecios acompañados de hifas capitadas yconidióforos de Sporochisma sp. sobre la madera. B: aspecto general de peritecios inmersos en unbasidiocarpo, C: asco; D-F: Coniochaeta pulveracea. D: aspecto general. E: peritecio, F: asco; G:aspecto general de peritecios de Chaerosphaeria 5p., note la relación de tamaño con el de C. cirrhosa(Q); H-J: Chaetosphaeria preussii. H: asco, l: ascosporas,J: conidióforos; K-L: Chaetosphaeriamyriocarpa. K: asco. L: conidióforos.

¿x f‘¿(sam

h “Ji G

Fig. 6: A-D: Nitschkia broomeiaua. Azaspecto general, B: detalle celular de la pared del ascoma,la flecha señala: poros de Munk. C: asco, D: ascosporas; E-G: Nitschkia variabilis. E: aspectogeneral, F: asco. G: ascosporas; H-J: Camarops rostratus. H: aspecto general, l: asco y paráfisis,J: ascosporas; K-M: Ceratostomella ampullasca. K: aspecto general, L: asco. M: ascosporns.

Fig. 7: A-C: Ceratostomella círrhosa. A: aspecto general, B: asco. C: ascosporas; D-F: Diatrypellasp. D: aspecto general, E: asco, F: ascosporas; G-J: Endoxyla avocetta. G: aspecto general, H:paráfisis, I: asco en Melzer (bB: burbuja de De Bary), J: ascosporas (PG: poros germinativos); K-O:Ceratostomella hyalostoma. K: aspecto general, L: peritecio; M: detalle celular en la zona del cuello.N: ascos y paráfisis. O: ascosporas.

¡W

B-C 10 pm

Fig. 8: A-C: Debaryella gracilis. A: aspecto general. note relación de tamaño y color delos peritecioscon los de C. ampullasca (gg), B: asco, C: ascosporas ; D-G: Porosphaerella setosa. D: aspectogeneral, E: seta, F: asco. G: ascosporas; H-K: Rhampharia pinjformis. H: aspecto general, I: ascocon ascosporas primarias, J: detalle del mismo, K: asco con esporas secundarias. L: ascosporasbrotando; M-O: Rhamphoria delicatula. M: aspecto general. N: asco. O: ascosporas germinando.

¿Vb

“5%:5?Mill4%., ¡y

«a.5%Er;fiQ

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Fig. 9: A-C: Trichosphaerella decipiens. A: peritecio, B: seta, C: aseos ; D-G: Trichosphaerellacerataphora. D: peritecios. E: seta. F: detalle celular dela pared peritecial. G: ascos; H-I: Delitschiacorticola. H: aspecto general, I: asco y una porción de una pseudoparáñsis (note cuerpos de Woronin:CW, surco germinativo en las ascosporas SG); J-N: Caprom’a pilosella. J: aspecto general. K: detalleen la zona ostiolar. L: seta, M: asco. N: ascosporas.

Fig. 10: A-C: Melanomma pulvis-pyrus. A: aspecto general, B: asco maduro. C: porción apical deasco joven. D-H: Botryosphaeria obtusa. D: aspecto general. E: corte long. de un lóculo teleomórfico.F: asco, G: detalle. H: asc05poras; l-J: Botryosphaeria ribis. l: células conidiógenas, J: conidios.K-N: Botryosphaería rhodína. K: corte long. de un lóculo anamórflco. L: detalle celular de K.mostrnado elementos edtériles entre células conidiógenas. M: células conidiógenas con conidios enformación, N: conidios. (sz lóculos teleomóficos. lA: anamórficos).

Fig. ll: A-D: Moristroma polyspora. A: aspecto general en vista apical. B: en vista lateral, C: asco;D: filamento interascal; E-H: Glom'um abbreviatum. E-F: aspecto general, G: asco, H:pscudoparáfisis. J-M: Glom'opsis australis. J: aspecto general. K: asco. L: ascospora, M:nscospomcon vaina; N-P: Hysten'um angustatum. N: aspecto general O: asco. P:ascosporas.

Fig. 12: A-C: Lophiostoma semiliberum. A: aspecto general, B: aseos en distintos estadíos ypseudoparáfisis, C: ascospora; D-F: Lophiostoma myriocarpum. D: aspecto general, E: ascos endistintos estadios y pseudoparáfisis. F: ascospora; G-H: Ophiobolus rubellus. G: corte long. de unascoma. H: asco; I-L: Loplu'ostoma fuckelii. I: aspecto general. J: asco, K: pseudoparáfisis. L:ascosporas con apéndices terminales (flechas, Co: corteza. M: madera).

Fig. 13: A-F: Kirschsteiniothelia aethiops. A: aspecto general de ascomas y conidióforos, B: detallede papila ostiolar, C: ascos y pseudoparáfisis, D: ascospora, E: conidióforos,]? porción apical delmismo llevando células conidiógenas y conidios; G-J: Kirschsteiniothelia maritima. G: aspectogeneral, H: corte longitudinal, I: detalle cellular de Ia pared del ascoma que incluye células de lamadera (cm), J: detalle de una de ellas ocluída con hifas, K: ascos y pseudoparáfisis, L: ascosporas;M-Q: Pleospora penicillus var. ambigua. M: aspecto general, N: detalle de la pared con setas, 0:detalle en la zona ostiolar, P: asco, Q: ascosporas.

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Fig. 14: A-E: Bisporella discedens. A: aspecto general, B: corte long. esquemático de un apotecio,note conidióforos de Chalara sobre él (flecha). C: detalle una porción del excípulo (ex) de paredesgruesas, gelatinosas con conidióforos de Chalara, D: asco y paráfisis, E: ascospora. F-L:Claussenomyces atrovirens. F: aspecto general. G: corte long. esquemático de un apotecio. H: detalledel excípulo, l: asco con ascosporas primarias y paráfisis. J: asco con esporas secundarias. K: detalledel asco con ascosporas primarias. L: ascosporas primarias. M-T: Hyalínia scolecospora. M: aspectogeneral. N: detalle de un apotecio'visto de arriba.mostrando borde dentado. O: visto de abajo, P: cortelong. esquemático de un apotecio, Q: detalle del corte (Hi: himcnio. exM: excípulo medular, exC:cortical), R: detalle de un diente, S: detalle del himenio. note resto de material amorfo (flecha), T:ascosporas.

Fig. 15: A-D: Orbilía inflatula. A: aspecto general, note micelio de anclaje (ma), B: detalle de uncorte long.. C: ascos. D: ascosporas; E-l Orbilia sp. E: aspecto general. F: corte long. de un apotecio,G: detalle del excípulo. H: asco y paráfisis, l: ascosporas; J-M: Orbilia delicatula. J: aspecto general.K: corte long. de un npotccio, L: asco y paráfisis, M: ascosporas.(Hi: himenio, ex: cxcfpulo, ma: m.de anclaje, exM: excípulo medular. exE: excípulo externo).

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Fig. 16: A-E: Dactylospora lurlda. A: aspecto general (note cuello de Ceratostomella 5p.), B: cortelong. de un apotecio. C: ascos y paráfisis, con epitecio. D: representación esquemática de la reacciónamiloide del asco en forma de capuchón y muy fuerte rodeando el poro, E: ascosporas; F-O:Plectania platensis. F: aspecto general, G: corte long. de un apotccio. H: detalle de excípulo externo.l: de excípulo medular, J: asco, K: ascospora, L: paráfisi. M: conidióforo, N: detalles, O: conidios;P-T: Rhizodiscinia Iignyota. P: aspecto general. Q: corte long. de un apotecio. R: detalle de excípulo.S: detalle de hímenio. T: ascosporas.((Hi: himenio. ex: excípulo, to: tomento. exM: excípulo medular.exE: excípulo externo, pG: poro germinalivo).

Fig. l7: A-D: Allescheriella cyanea. A: micclio. conidióforos, células conidiógcnns y conidiosjóvenes. B: conidio adherido a la célula conidiógcnn, C: conidios libres. D: micelio ñbuludo; E-G:Blaxamia lruncata. E: aspecto general. F: Conidióforos y células conidiógcnas. G: conidios; H-J:Candalabrum brocchiatum. H: nscpcclo general de los conidios (flecha Q.) sobre cl suslrulo. nolcrelación de tamaño con el peritecio dc C. cirrhm'a (C.c.), l: conidióforo con dos conidios. J: (lclullc(lc parte dc un conidio. nolc lu células ¡mis externas con proyecciones cspiuusus.

Fig. 18: A-D: Ceratosporella devíata. A: condióforo. B: célula conidiógena con proliferación. C: cél.conidiógena con un conidio joven, D: conidios; F: conidióforo y conidios libres de Clonostachysaraucaria. G-J: Chlorídium virescens var. virescens. G: conidióforo, H: célula conidiógenaenteroblástica. I: detalle de cabezuela de conidios sobre la célula conidiógena, J: conidios; K-M:Corticomyces xenasmatoides. K: células conidiógenas con conidios jóvenes, L: conidios libres. M:micelio fibulado; N-O: Dactylaria chrysosperma. N: conidióforo con célula conidiógena denticulada,O: célula conidiógena llevando conidios.

Fig. 19: A-E: Dictyochaeta novae-guineensís. A: aspecto general, B: detalle. b: seta, a: célulaconidiógena, C: detalle de célula conidiógcna con manojo de conidios, D: detalle de una polifiálide,E: conidios; F-J: Edmundomasonia pulchra. F: aspecto general, G: conidióforo. H: detalle de unápice de un conidióforo. I: conidios llevando fiálides en sus bases. J: conidios.

Fig. 20: A-B: Drepanospora pannosa. A: conidióforos con células conidiógenas denticuladas. B:conidio adherido a la célula conidiógena; C-E: Endophragmiella pallescens. C: conidióforo, detalledel ápice. E: conidios; F-l: Endophragmiella uniscpta. F: conidióforos, G: ápice dc conidióforo consucesivas proliferacioncs, H: detalle de células conidiógenas. l: conidio.

Fig. 21: A-C: Fibulochlam ysferruginosa. A: células conidiógenas en distintos estados de desarrollos,B: conidióforo con un conidio joven. C: conidios. D-H: Glomerulomycesfibulosus. D: conidióforoscon conidios en cabezuelas blobodad. compactas. E: célula coniógcna con conidio brotando, F:conidios agrupados, G: conidios brotando, H: conidio; I: conidióforo con células conidiógenas enverticilos y conidios en hileras de Gonytn'chum chlamydosporium var. chlamydosporium. J-K:Eversía subopaca. J: conidióforos con células conidiógenas con varios anillos (flechas) y conidiosjóvenes, K: conidio.

Fig. 22: A-D: Haplotrichum curtisíi. A: conidióforos con células conidiógenas denyiculada, B:conidios adheridos a las células conidiógcnas, C: conidios también con dientes conidiogénicos. D:conidio; E-G: Haplotrichum gracile. E: conidióforo. F: detalle, G: conidios; H-I: Gyrothrixpodosperma. H: células conidiógenas acompañadas de una seta. I: detalle de células conidiógenas yconidios.

Fig. 23: A-B: Helicomyces roseus. A: conidióforos con células conidiógenas apicalmente denticuladas.una de ellas con un conidio joven, B: con un conidio maduro; C-D: Neta patuxentica. C: aspectogeneral. D: detalle de ambos micclio (m. castaño y el m. casi incoloro portador de célulasconidiógenas denticuladas con conidios; E: conidióforo de Helicosporíum aureum. F: conidios deMyrothecíum cinctum.

Fig. 24: A-C: Periconia minutíssima. A: conidióforo, B: ápice del conidióforo ramificado conconidios en cadenas, C: conidios; D-K: Periconia circinata. D: aspecto general, E: detalle de unconidióforo, F: conidios, G-K: obtenidos en cultivo: G y K: células conidiógenas sobre hifasvegetativas, H: micelio. I y J: conidióforos. L-O: Periconia lateralis. L: aspecto general, M:conidióforos. N: detalle. O: conidios.

Fig. 25: A-B: Periconia tirupatiensis. A: aspecto general. B: distinalas células conidiógcnas conconidios en formación, C: conidios; D-E: l’hacoisaria clematídis. D: aspecto general, E: detalle. F-H:Pleurotheciopsis wcbsterii. F: conidióforo, G: detalle de ápices de conidióforos. H: conidios.

Fig. 26: A: conidióforos y conidios de Spadicoides atra. B-D: Spadícoides klotzschii. B: conidióforo.C: detalle de un ápice. D: conidios; E-G: Spadicoides bína. E: aspecto general. F: conidióforo, G:conidios. H-K: Sporochisma nigroseptatum. H: aspecto general, I: detalle de hifa capítada, J: detallede conidióforo, K: conidios.

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Fíg. 27: A-C: Sporidesmium adscendens. A: aspecto general de los conidios. B: un conidio, C:detalle de otro conidio; D-E: Sporotrichum aurantiacum. D: conidióforo. E: conidios. F-I:Sporotrichum azureum. F: conidióforos. G: conidio joven, H: micclio ñbulado. I: conidios.

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Fig. 28: A-C: Vermiculariopsiella immersa vanimmersa. A: aspecto general. B: conidióforos ycélulas conidiógenas, C: conidios. D: conidios de Tetraploa aristata. E-J: Waydora typica. E: aspectogeneral, F: corte long. de un estroma, G: detalle del corte. note las diferentes capas a b c, H: detallede a b c. I: conidióforos. J: conidíos.

Lám. I: Erostella minutissima. l: aspecto general, 2: ramillctes de ascos apicalmente sobre hifasascógenas, note restos de paredes ascales ya desprendidos (flecha), 3: conjunto de aseos y paráfisis,4: paráfisis superando el largo de los ascos, 5: detalle de un grupo de ascos todavía sobre la hifaascógena. (fotos 2, 3, 4 c/CF, 5 C/DIC). (Escalas: l = 200 pm; 2 y 3 = lO pm; 4 y 5 = 5 pm.)

Lám. II: Jattaea stachybotryoídes. l: aspecto general, 2: conjunto de hifas ascógenas, 3: paráfisis,dos ascos sobre células ascógenas, 4: conjunto de hifas ascógenas llevando aseos en distintos estadosdc desarrollo, 5: un asco con ascosporas y tres ascos jóvenes. (fotos 2, 3, 4, 5 c/CF). Las flechasindican las células elipsoidales que dun origen a los uscos. (Escalas: l = 50 pm; 2, 3, 4 y 5 = lO pm.)

Lám. III: Pleurostoma ootheca. l: grupo dc uscos sobre hiles ascógenas (note “pie” en formación,parte del septo en la base del asco y parte en la hifu uscógena flecha; EPF); 2: conjunto de aseos sobrehifas ascógcna (CF); 3: asco en vista frontal (note cngroszuniento subupicul, flecha, DIC); 4: asco envista lateral (note cngrosumicnlo subupicul, flecha, DIC); 5: aseos libres (CF); 6: asco y ascosporas(notc engrosamicmo subapicul dc frente flecha, CF). (Escalas: l, 3 y 4 = 5 pm; 2, 5 y 6 = lO pm.)

Lám. IV: Pleurostoma ootheca. l: hifa ascógena llevando varios ascos (note engrosamiento subapicalflecha izq. y la partición del septo y comienzo de formación del “pie” flecha derecha; 2: un estadiomás avanzado; 3: base de un asco ampliada: “pie” ya formado, note la estructura compleja del septobasal del asco y el extremo de la hifa ascógena (exHA); 4: grupo de ascos, uno de ellos abierto(flecha, DIC); 5: idem con EPF; 6: ascos sobre hifas ascógenas c/DIC; 7: idem c/EPF; 8: ascos libresc/DIC, 9: idem con EPF, 10-11: ascos libres (EPF). (Escalas: l, 2, 4, 5 y lO = 5 pm; 3 = 6 pm; 6,7,8y9=10pm; ll=4pm.)

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Lám. V: 1-7: Gnomoniella dimorphospora. l: aspecto general, 2: un peritecio en corte longitudinal,3: detalle de la pared peritecial, 4: asco en CF, 5: asco en DIC, 6: asco en EPF, 7: asco en DIC; 8:un asco de Diaporthe aff. woodii; 9-11: Gnomoníella lignicola. 9: aspecto general, 10: cortelongitudinal de la porción apical de un peritecio, 11: ascos, note aparato apical (CF). (Escalas: l =350 pm; 2 = 65 pm; 3 = 25 pm; 4, 5, 6, 7 y 8 = lO pm; 9 = 600 pm; lO = 30 pm; ll = 20 pm.)

Lám. VI: 1-5: Nitschkia variabilis. l: aspecto general, 2: corte long. de un ascoma, 3: detalle cellularde la pared del ascoma, note los poros de Munk (flecha), 4: ascos maduros, 5: asco joven; 6: ascosde Ceratostomella ampullasca. 7: asco de Ceratostomella hyalostoma. 8: asco (a) y una espora (b)de Ceratostomella cirrhosa. (Escalas: l = 800 pm; 2 = pm; 3 y 6 = lO pm; 4 = 40 pm; 5 = 22 pm;7=6pm;83= l2pm;8b=4pm.)

Lám. VII: 1-14: Camarops rostratus. l: vista apical del aspecto general, 2: vista lateral del mismo,3: corte long. de un estroma visto con lupa, 4: idem visto con microscopio, 5: células de la maderainvadidas por hifas correspondiente a zona A de foto 4, 6: textura en zona C de foto 4, 7: detalle dezona B de foto 4, 8: detalle de zona D de foto 4; 9: Detalle de la zona ostiolar, 10: detalle en zonaA de foto 9, ll: detalle mostrando cristales incluídos (flechas), 12: hamatecio, 13: ascos, 14: asco, laflecha señala aparato apical. (Escalas: l, 2 y 3 = 1 mm; 4 = 200 pm; 5, 6, 7, l3 y 14 = 10 pm; 8, lOy ll :20 pm;9=50pm; 12:25 pm.)

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Lám. Vlll: Endoxyla avocetta. l: aspecto general cn vista apical, 2: cn vista lateral, 3: hamatecio,4: ascos jóvenes y paráfisis, 5: asco, 6: asco, note aparato apical (flecha, 3-4-5 c/CF). (Escalas: l y2 = 100 pm; 3 = 35 pm; 4 = 12 pm; 5 = 18 pm; 6 :10 pm.)

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Lám. lX: 1-2: Debaryella graci­Iis. l: corte long. de un peritecio(c/DIC), 2: detalle dc pupila ostio­lar (c/DIC); 3-5: Rhamphoriapiriformis. 3: asco con ascosporusprimarias, 4: ascospora brotando,5: uscos con esporas secundarias.6-8: Rhamphoria delicatula. 6:hamutccio c/CF, 7: asco c/DIC, 8:asco c/CF. (Escalas: l = 62 pm;2 = 40 pm; 3, 4, 5, 7, 8 = lO pm;6 = 20 pm.)

Lám. X: 1-6: Porosphaerella setosa. l: aspecto general, 2: corte long. de un peritecio, 3: detallecelular de la pared y una seta, 4: asco, 5: detalle aparato apical del asco (flecha), 6: ascosporas. 7-10:Capronia pilosella. 7: ascos c/DIC; 8: idem c/EPF, 9-10: detalle de ascos con anillos apicales (flechas)en distintas vistas, c/EPF. (Escalas: l = 300 pm; 2 y 3 = 25 pm; 4, 5 y 6 = 15 pm; 7, 8, 9 y lO =lO pm)

Lám. XI: 1-4 Delitschia corticola. l: aspecto general, sólo se aprecian los cuellos (flechas), el restoestá cubierto por tomento (to), 2: ascos en distintos estadios de desarrollo y pseudoparáfisis, note“croziers” (flechas), 3: asco, 4: detalle de ascosporas, note surcos genninativos (flechas); 5: ascos ypseudoparáfisis de Melanomma pulvis-pyrus; 6: Conidio de Botryosphaeria obtusa. (Escalas: l =250pm;2= l5 pm;3=30pm;4y6= lOpm;5=20pm.)

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Lám. XII: Moristroma polyspora. 1: aspecto general, 2: corte long. de un ascoma, 3-4: detalle, 5: unasco con pared externa rota, note proyección de la pared interna (flecha), 6-7; ascos y filamentosinterascalcs (fl; 2-6 c/DIC). (Escalas: 1 = l mm; 2 = 100 pm; 3, 4, 6 y 7 = 15 pm; 5 = 10 pm.)

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Lám. XIII: 1: asco de Lophiostoma fuckelii. 2-4: Lophiostoma semiliberum. 2: ascos ypseudoparáfisis, c/DIC. 3: asco con capa externa rota quedando como un capuchón apical (flecha),c/DIC, 4: idem, c/CF. 5-6: Lophiostoma myriacarpum. 5: acso, note restos de la capa externa del ascoen la base y en ápice (flechas), 6: ascosporas (c/CF). 7-8: Kirschsteiniothelia maritima. 7: ascos yseudoparáfisis, c/DIC, 8: célula de la madera invadida por hifas; 9: ascospora de Orbilia sp., c/EPI.10-11: Plectania platensis. 10: apotecios jóvenes; ll: apotecios maduros. (Escalas: l, 2, 3, 4, S, 7 y8:10pm;6=15 pm;9= lOpm; lO= lOmm; ll = 15mm)

Lám. XIV: 1-2: ascosporas de Plectania platensis. 3-8: Candelabrum brocchiatum. 3: conidióforollevando dos conidios, 4: detalle de uno de ellos, 5: detalle dc la base del conidio unido al conidióforo,6: un conidio desprendido, 7-8: detalle de las proyecciones espinosas de las células más externas delconidio (flechas) (MEB). (Escalas: 1, 2, 5, 7 y 8 = 5 pm; 3 = 20 pm; 4 = 25 pm; 6 = 10 pm.)

DISCUSION Y CONCLUSIONES

Como consecuencia de este estudio de micromicetes xilófilos sobre tocones de Eucalyptus

viminalis, se han descripto, ilustrado y/o citado 115 especies. Así, se han incorporado a la micota

argentina 42 especies de Ascomycotina y 32 de Deuteromycotina, y se ha confeccionado una clave

con todas estas especies constituyendo un destacable aporte para nuestro país.

Además se ha propuesto el género nuevo Moristroma ubicándolo en la familia

Dacampiaceae con la especie M. polyspora, orden Pleosporales dentro de la clase

Loculoascomycetes . En esta misma clase se ha descripto una especie nueva para la ciencia del

orden Melanommatales, Delitschia corticola. Por otro lado, dentro de la clase Hymenoascomycetes

también se han propuesto dos especies nuevas del orden Calosphaeriales: Erostella minutissíma

y Jattaea stachybotryoídes; dos del orden Diaporthales: Gnomoniella dimorphospora y G.

ligm'cola; una del orden Sordariales: Nitschkía variabilis; una especie nueva en el orden Xylariales:

Camarops rostrata. En los que se refiere a Discomycetes, se ha descripto una posible especie

nueva del género Orbílía en el orden Leotiales.

Durante este estudio se ha señalado que no era correcta la sinonimia de Ceratostomella con

Endoxyla. Recientemente, Untereiner (1993) confirmó que son dos géneros distintos. Por otro lado,

a pesar de haber propuesto la transferencia de Sphaeria avocetta al género Endoxyla se tiene la idea

de incluirla en la familia Gnomoniaceae, en el orden Diaporthales. Untereiner (0p. cít.) cita a Endoxyla

avocetta como una especie excluida del género y comenta que nuestra sugerencia de incluirla en

Diaporthales es más apropiada.

170

Los estudios realizados con microscopio de fluorescencia pusieron en evidencia estructuras que,

debido principalmente a su tamaño tan pequeño, son muy difíciles de observar e interpretar. Así, gracias

a esta técnica, pudimos confirmar la presencia de un engrosamiento subapical y lateral en los ascos de

Pleurostoma ootheca, sus hifas ascógenas, un tabique muy grueso cuando todavía los ascos jóvenes están

unidos a las células ascógenas, una posterior separación esquizolítica de los ascos, y la formación de un

“pie” filamentoso delgadísimo en la base del asco después de su liberación. Todas estas estructuras se

describen por primera vez para esta especie. Podríamos especular que el engrosamiento lateral en el asco

esté relacionado con el mecanismo de apertura del mismo y quizás actúe como un opérculo o, por el

contrario, que haya perdido dicha función ya que los ascos se desprenden como una unidad. De

confirmarse lo primero, sería el pn'mer caso en Pyrenomycetes sensu lato.

Otro caso interesante fue el de Capronia pilosella. Es la primera vez que se ha observado el

anillo apical en el asco tanto en esta especie como también en C. pleiospora y otros materiales de C.

pílosella depositados en el herbario de Kew.

También, no podemos dejar de mencionar que la presencia y forma de las ascosporas de

Orbilia sp. fueron reveladas por medio de esta técnica. Al estudiar los materiales con el microscopio

común muchas veces se pensó que los ascos estaban inmaduros y no poseían esporas.

Con respecto a Deuteromycetes, se han propuesto tres géneros nuevos de Hyphomycetes:

Corticomyces, Glomerulomyces y Fíbulochlamys con sus respectivas especies: C. xenasmatoídes, G.

flbulosus y F. ferruginosa y una especie nueva: Allescheriella cyanea, todas ellas anamorfos de

Basidiomycetes. Se ha realizado la combinación nueva de la especie Codinaea novae-guineensis al

género Díctyochaeta.

171

En la mayoría de las especies estudiadas, principalmente las pertenecientes a Ascomycetes,

queda planteada la necesidad de estudios monográficos o de revisión tanto al nivel mundial, como

sudamericano o para nuestro país. Se decidió en muchos de los casos, justamente una ubicación

temporaria de las especies bajo un nombre determinado, hasta la aparición de dichas monografías y/o

revisiones.

INDICE DE TAXONES FUNGICOS

Este índice se confeccionó ordenando alfabéticamente por epíteto específico y género.

Se utilizan los siguientes atributos y símbolos:-Los géneros se indican en letra mayúscula. (Ej.: MICROTHELIA)-Los géneros que corresponden a una o varias especies descriptas se indican en mayúsculay negrita. (Ej: GLONIUM)-Nombre sin ningún atributo indica una especie citada en el texto. (Ej.: abbreviatum,Hysterium)-Nombre en negrita indica una especie descripta en este trabajo. (Ej.: abbreviatum,Glonium)-Nombre y número subrayados indican una especie encontrada durante este estudio pero nodescn'pta en el trabajo. (Ej.: atrata, Patellaria)-Número sin ningún atributo indica la página en que se menciona la especie. (Ej.: 96)-Número en negrita y subrayado indica la página de la descripción de la especie. (Ej.: 25)-Número seguido por asterisco indica la página en el sistema de clasificación. (Ej.: 21*)-Número seguido por “c” sin ningún atributo indica la página de la clave donde sólo semenciona la especie. (Ej.: 27c)-Número seguido por ambos en negrita, indica la página de la clave donde sedetermina la especie. (Ej.: 36c)-Número seguido por # indica la página del cuadro de Melanochaeta sp. (Ej. 63#)-Número en bastardilla y negrita indica la página de la sección Conclusiones donde unaespecie se cita. (Ej.: 168)

abbreviatum, Glonium 20*, 29c,fiabbreviatum, Hysterium 95abortiva, Gnomoniella 44ACREMONIUM 26c, 34c, 56adscendens, Clasterosporium 160adscendens, Sporidesmium 23*, 33c, M, 16]AEGERITA 141aesculi, Fusicoccum 91aethiops, Kirschteiniothelia 20*, 30c, 37c, fi, 108agminalis, APOSPHAERIA 89ALLESCHERIELLA 22*, 3lc, m, 124, 140, 162,171ambiens ssp. leucostomoides, Valsa 18*, 28c, 32c, ¿1, 49ambigua, Pleospora ¡05ambigua var. ambigua, Pleospora 20*, 30c, 1Mampullasca, Ceratostomella 19*,27c, 68, E, 7lampullasca, Sphaeria 69andicola, Karschia ll7andicola, Poetschia ll7

173

angustatum, Hysterium 20*, 29c,flangustilabrum, Lophiostoma 102annulata, Cytospora 28c, 32c,fiantarctica, Rhamphoria 80aotearoae, Chaetosphaeria 62#aotearoae, Melanochaeta 62#apiculatum, CladobotJyum 52APOSPHAERIA 30c, 89, 98araucana, Microthelia 108araucaria, Clonostachys 22*, 35c, m, 131arestospora, Delitschia 88argentinensis, Gloniopsis 95aristata, Tetragloa 23*, 34€, 1_2armeniacus, Hypomyces 52ARXIOMYCES 74atra, Dendryphiopsis30o,37c,fiatra, Spadicoides 22*, 35c,Matrata Patellaria 21*, 24c, matrovirens, Claussenomyces21*, 24c,Laurantiacum, Sporotrichum 23*, 31c,Laaurea, Trichopeziza 109aureo-fulva, Cucurbitaria 54aureo-fulva, Nectria 18*,28c, fi, 55aureonítens, Hypomyces 18*,26c, flaureum, Helicosporium 22*, 34c, l4_7australe, Lecanidion 117australiae, Cytospora 49australe, Hysterium 94australis, Gloniopsis 20*, 29c, a, 95australis ssp. vinealis, Gloniopsis 95avocetta, Ceratostoma 73, 74avocetta, Endoxyla 19*, 27c, E, 74, 170avocetta, Sphaeria 73, 74, 170azureum, Sporotrichum 23*, E2balansae, Hypoxylon 83bina, Spadicoides 22*, 36c,MBISPORELLA 21*, 24c,fl, 109BLOXAMIA22*, 32c,mBOTRYOBASIDIUM 31c, 145BOTRYOSPHAERIA20*, 29c, 30c,fl, fl, 91,gbrocchiatum, Candelabrum 22*,33c,fibroomeiana, Nitschkia 19*, 25o, _6_4,66BUELLIA 117BURGOA 141, 142callista, Microsphaeriopsis 167CALOSPHAERIA 39, 41

174

CAMAROPS 19*, 29c, fi, 67, 68CAMAROSPORIUM 104

campylospora, Plectania 122CANDELABRUM 22*, 33c, m, 126candollei, Pleurostoma 42CAPRONIA 20*, 30c, 8_5,86, 87, 171caries, Hypoxylon 19*, 27c, Qcaries, Sphaeria 83carmichaelli, Myrothecium 149caulinicola, Melanospora 81caulíum, Lohiostoma 98ceratophora, Neorehmia 81ceratophora, Trichosphaerella 19*,25c, 26c, Qceratosperma, Valsa 48CERATOSPORELLA 22*,34c,mCERATOSTOMA 74, 75CERATOSTOMELLA 19*,27c, 28c, 68, E, fl, B, 73, 74, 170cinctum, Myrothecium 22*,33c,flcircinata, Periconia 22*,35c,mcírrhosa, Ceratostomella 19*,27c, 28c, 69, fl, 74cirrhosa, Sphaeria 69CLADOBOTRYUM 26c, 34c, Q, 52, 53CLADOSPORIUM22*. 30c, 33c, 85, 86,Q, mcladosporioides, Cladosgorium 22*, 33c, 1_29CLASTEROSPORIUM 160CLAUSSENOMYCES21*, 24c, mclavaeforme, Chloridium 26c, 36c, fi, 60clematidis, Phaeoisaria 22*, 32c, 1_54CLONOSTACHYS 22*, 35c, m, 131CODINAEA 134, 171coelestina, Chaetosphaeria 62#compactiuscula, Clonostachys 131confertula, Nitschkia 65conielloídes, Microsphaeropsis 167CONIOCHAETA 19*,25c, flCONOPLEA 24c, 35c, m, 122COOKEINA lOCORDANA 78cordanophora, Porosphaerella 78CORIOLUS 50coronata, Capronia 86CORONOPHORA 41, 42corticola, Delitschia 20*. 29c, 8_7,170CORTICOMYCES 22*, 31c, m, 171crenatum, Lophiostoma 102CUCURBITARIA 54

curtisii, Haplotrichum 22*,3lc, mcyanea, Allescheriella 22*, 31c, m, 171cylindrothecia, Tubeufia 34o, 146CYSTODENDRON 109CY'I'I‘ARIA lO

CYTOSPORA sp 28c, 32c, fi, 49CHAETOMASTIA 87CHAETOSPHAERELLA 61, 62#, 63CHAETOSPHAERIA 19*, 26c, 36o, fi, Q, 60, 61, 62#, 128, 142chaetospira, Heterocomium 85CHALARA 22*, 37c, 62#, 109,m, 128CHLORIDIUM22*, 26c,36c,fi, Q, m 129chlamydosporium var.chlamydosporium, Gonytrichum 22*, 36c,mchlorocephalum, Cladosporium 22*, 33c,mchloroconia, Chaetosphaeria 360, ¡42CHROMOCREA 49chrysosperma, Dactylaria 22*,36c,QDACTYLARIA 22*, 36c, l_33DACTYLOSPORA21*, 24c,mDEBARYELLA 19*, 26c, 7_6_,77decipiens, Trichosphaerella 19*, 25c, 26c, 8_2delicatula, Orbilía 21*, 25c,mdelicatula, Pleospora 105delicatula, Rhamphoria 19*,28c,EDELITSCHIA 20*, 29c, 8_7,88, 170DENDRODOCHIUM 280, 54dendroides, Cladobotryum 26c, 34c, ü, 53DENDRYPHIOPSIS30o,37c,fideviata, Ceratosporella 22*,34c,mDIAPORTHE l8*, 27c, fi, 47DIATRYPELLA 19*, 28c, E, 75DICTYOCHAETA 22*, 37c, Q4, 171DIDYMOSPHAERIA 108

didymum, Oedemium 62#dimorphospora, Gnomoniella 18*,27c, Q, 44, 170discedens, Bisporella 21*, 24c, fl, 109dothidea, Botryosphaeria 92DOTHIORELLA 32c, 91DREPANOSPORA 22*, 34c, fi, 136EDMUNDOMASONIA22*, 37c,aENCHNOA 39ENDOPHRAGMIELLA22*,37c,EZ, aENDOXYLA 19*, 27c, 68, 69, 70, 7_2_,E, 75, 170EROSTELLA 18*, 27c, ;8_, 39, 170eucalypti, Sporidesmíum 16]eucalypti, Valsa 48

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eucalypticola, Cytospora 48eucalyptina, Cytospora 49eucalyptina, Fracchiaea 64euomphala, Sphaeria 68EVERSIA22*,34€,fiexcelsior, Endoxyla 70EXOPHIALA 86FIBULOCHLAMYS 22*, 31o,m, 171ferruginosa, Fibulochlamys22*,3lc, fi, 171fibulosus, Glomerulomyces22*,3lc, fi, 171fimicola, Orbilia 115FRACCHIAEA 66fraxini, Endoxyla 69fuckelii, Lophíostoma 20*. 30c, 28, 99fuegiana, Buellia ll7fuegiana, Dictyochaeta 134fuegiana, Karschia 117fusca, Conoplea 24c, 35c, m, 122fusca, Chaetosphaerella 62#fusca, Chaetosphaeria 62#fuscopes, Helicomyces 146, 147FUSICOCCUM 30c, 32c, afusidioides, Chalara 128fusispora, Chaetosphaeria 62#fusispora, Chaetosphaerella 62#, 63GENICULOSPORIUM 28c, 84GLIOCLADIUM 26c, 5], 55globulosa, Microsphaeropsis 167GLOMERULOMYCES 22*, 3lc, m, l4l, 142,171GLONIOPSIS 20*, 29c, fi, 95GLONIUM 20*, 29c, 9_5,96GNOMONIELLA 18*, 27c, Q, 44, fi, 45, 46, 74, 170GONYTRICHUM 22*, 36c, fi, 143gracile,Haplotríchum22*,3lc, figracilis, Debaryella 19*,26c, Egrandineum, Loculohypoxylon 94gymnospora, Delitschia 88GYROTHRIX 22*, 36c, m, 144hamatum Trichoderma 23*, 35c, l_63HAPLOTRICHUM22*,3lc, M, fiharzianum Trichoderma23*, 35c, fihelicoma, Tubeufia 34o, l35HELICOMYCES 22*, 34c, ¡46, l4_7HELICOSPORIUM 22*, 34c, ¡35, l36, mhemipsila, Chaetosphaeria 62#hemipsila, Melanochaeta 62#

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hemipsila, Sphaeria 62#herbarum Torula 23*, 33c, l_63HERPOTRICHIELLA 86, 87HETEROCOMIUM 85

heterogenea, Fracchiaea 64hirsuta var. hirsuta, Oramasia 166hirsuta var. ramosa, Oramasia 166híspidula, Chaetomastia 87hughesii, Chalara 22*, 37c,fi, 128HYALINIA 21*, 25c,mhyalostoma, Ceratostomella 19*,27c, Bhyalostoma, Endoxyla 72HYMENOCHAETE 76HYPHODERMA 44, 45HYPOCREA 18*, 29c, 350, Q, 50, 163HYPOMYCES 18*,26c, 34c,fl, Q, 52, QHYPOXYLON 19*,28c, Q, fihypoxylon, Immotthia 94HYSTERIUM 20*, 29c, 94, 95, flimmersa var. immersa, Vermicularíopsiella 23*, 33c, 16_5IMMOT'I'HIA 94incrustans, Microthelia 108inflatula, Orbilia 21*,25c,mJAFNEADELPHUS 11

JA'I'I'AEA 18*, 27c, Q, 39, 40, 41, 170juniperi var. robusta, Conoplea 122KARSCHIA 117KIRSCHTEINIOTHELIA 20*, 30c, 37c,fi, M, 108klotzschii, Spadicoides 23*, 37c, fi, 158laevirostris, Endoxyla 70lateralis, Periconia 22*, 36o, 1_53LASIODIPLODIA 29c, 32c, 2LECANIDION 117

leprogena, Pestalotiopsis 23*, 32c, Mleprogena, Pestalozzia 167LEPTOSPORA 103LEUCOSTOMA 50leucostomoídes, Valsa 49lignicola, Chalara 129lignicola, Gnomoniella 18*, 27c, fi, 46, 170lignyota, Rhizodiscinia 21*, 24c,mlinderi, HeliCOSporium 135, 136LOCULOHYPOXYLON 94longisporum, Subulicystidium 141LOPHIOSTOMA 20*, 29c, 30c, fi, 98, 2, 100,10_1,101, 102LOPHIOTREMA 98, 100

178

ludens, Calosphaeria 4llurida, Dactylospora 21*, 24c, ll_lutea, Camarops 67, 68luteum, Fusicoccum 9]macrocladum, Gonytrichum 143macroseta, Gyrothrix 144macrostoma, Endoxyla 68, 69macrostomum, Lophiostoma 98, lOl, 102manihotis, Diaporthe 47maritima, Kirschteiniothelia 20*, 30c, m, 108maritima, Microthelia 108MELANOCHAETA 19*, 260, _6_O,61, 62#, 63MELANOMMA 20*, 30o, Q, 89MELANOSPORA 74, 81metamorphosus, Pycnoporellus 31c, 161MICROSPHAEROPSIS 23*, 32c, M, 167microsporum, Glonium 95microsporum var. minor, Glonium 95, 96microtheca, Jattaea 40, 4lMICROTHELIA 108minima, ErosTtela 39minus, Oedemium 62#minutissima, Erostella 18*, 27c, gg. 171minutissima, Periconia 22*, 36c, _LS_2mirabile, Sporochisma 62#molnarii, Nitschkia 66moravica, Herpotrichiella 87MORISTROMA 20*, 30c, a, 94, 170mucida var. rostellata, Sphaeria 4], 42myriocarpa, Chaetosphaeria 19*,26c, 360,fi, 60myriocarpum, Lophiostoma 20*, 29c, 52MYROTHECIELLA 149MYROTHECIUM 22*, 33c,fl, 149nannfeltii, Plectania 122NAVICELLA lOONECTRIA 18*, 19*, 28c, 35o, fi, fi, 13], 149NECTRIOPSIS 19*.26c, 34o,fiNETA22*,36c,flnigricans, Chromocrea 49nigricans f. nigricans, Hypocrea 18*, 29c, Q, 50nigroseptatum, Sporochisma 23*, 37c, 6], fi, 160NITSCHKIA 19*,25c,fi, fi, fi, 170nothofagi, Gnomoniella 45novae-guineensis, Dictyochaeta 22*, 37c, m, 171novae-guíneensis, Codinaea l34, 171novae-zelandiae, ConOplea l22

179

nucula, Lophiotrema 98obovata, Spadicoides 158obtusa, Botryosphaeria 20*, 30c, 32c,a, 92obtusa, Sphaeria 90ochraceus, Hypomyces 18*,26c, flochroleuca, Nectria 20*, 29c, fi, 57OEDEMIUM 62#olivacea, Microsphaeropsis 167ootheca, Coronophora 43, 44ootheca, Pleurostoma 18*,25c, fl, 42, 17]ootheca, Sphaeria 41, 42operculata, Endoxyla 68, 69OPHIOBOLUS 20*, 30c, M, 103ORAMASIA 166ORBILIA21*,26c,m, m, m, 115,171oropensoides, Nectriopsis 19*,26c, 34o,fioryzae, Tritirachium 25c, 26c, 8lPACHYTRYPE 39PAGIDOSPORA 140pallescens, Endophragmiella 22*, 37c, 1_37pannosa, Drepanospora 22*, 34c, 1g, 136PAPULOSPORA 141

paralella, Endoxyla 68, 69paralella, Sphaeria 68parva, Bottyosphaeria 91parva, Fusicoccum 91PATELLARIA21*, 24o,Mpatuxentica, Neta 22*, 36c, 15_0pediculata, Gyrothrix 144penicillioides, Gliocladium 26c, 51penicillus, Pleospora 104penicillus var. ambigua, Pleospora 20*, 30c, MPENIOPHORA 82, 141PERICONIA22*,35c,36c,fi, fl, ÉPESTALOTIOPSIS 23*, 32c, l_67PESTALOZZIA 167

PHAEOISARIA 22*, 27c, 32c, 80,15_4phaeostroma, Chaetosphaeria 62#phaeostroma, Chaetosphaerella 62#phaeostroma, Sphaeria 62#PHOMA 104PHOMOPSIS 46pilosella, Capronia 20*, 30c, g 86, 87, 171pilosella, Herpotrichiella 86, 87piriformis, Rhamphoria 19*,27c, fi, 80platensis, Plectania 21*, 24c, 35c, m, 121

platensis, Umula 120PLECTANIA 21*, 24c, 35c,m, l2lpleiospora, Capronia 87, 171PLEOSPORA 20*, 30c, 8], MPLEUROPHOMELLA 98PLEUROTHECIOPSIS22*,37c,fiPLEUROSTOMA l8*, 25c, 39, fl, 42, 171podosperma, Gyrothrix 22*, 36c,m, 144PODOSTROMA 163POETSCHIA ll7POLYPORUS 56polyspora, Moristroma 20*, 29c,a 94, 170populi, Endoxyla 68POROSPHAERELLA 19*,26c, fl, 78praelonga, Gloniopsis 95preussii, Chaetosphaeria 19*, 26c, 360,Q, 60preussii, Chloridium 26c, 36c, ¿2, 60pseudoaspera, Microsphaeropsis 23*, 32c,Mpseudonigricans, Hypocrea 50pugillus, Camarops 68pulchellum, Myrothecium 149pulchra, Edmundomasonia 22*,37c,Mpulveracea, Coniochaeta 19*,25c, flpulveracea var. platysporella, Rosellinia 57pulvis-pyrus, Melanomma 20*, 30c, Q, 89puyae, Microthelia l08PYCNOPORELLUS 3lc, 161pyriformis, Rhamphoria 81radiata Stictis ll9radiata ssp. intermedia, Stíctis l 19radiata ssp. radiata, Stictis 21*,24c,mRAPHIDOPHORA 103RHAMPHORIA 19*, 27c, E, Q, 80, 81RHIZODISCINIA 21*, 24c, l_18rhodina, Botryosphaeria 20*, 29c, 32c,gribis, Botryosphaeria 20*, 30c, 32c, 21, 92ROMELLIA 39.

roridum, Myrothecium 149ROSELLINIA 59rosellus, Hypomyces 18*, 26c, 34c, fi, 53roseum, Gliocladium 28c, 55roseus, Helicomyces 22*, 34c, _lfi, 147rostratus, Camarops 19*,29c, fi, 67, 68, 170rubella, Leptospora 103rubella, Raphidophora 103rubellus, Ophiobolus 20*, 30c, l_02, 103

181

rubi, Sporidesmium 16lrubicola, Didymodphaeria 108saccardoi. Sporochisma 62#, 160SCHIZOPORA 56schweintzii, Hypocrea 50scolecospora, Hyalinia 21*, 25c,mscopula, Tubeufia 34c, l47SCUTELLINIA lO

semiliberum, Lophiostoma 20*, 29c, 98, l_01_,102serpens, Hypoxylon 19*, 28c, Qsetigerum, Hyphoderma 44, 45setosa, Porosphaerella 19*,26c, fl, 78SISTOTREMA 141

SPADICOIDES22*,36c, 37o,fi, El, ¡58SPEGAZZINIA23*, 34c, mSPHAERIA 41, 42, 62#, 66, 73, 74, 83, 90SPHAEROPSIS 30lc, 32c, ESPHAERONAEMA 29o, 96spinolosum, Candelabrum 126SPOROCHISMA 23*, 27c, 37c, 61, 62#, 63, fl, 160SPORIDESMIUM 23*, 33c, M, 161SPOROTRICHUM 23*, 3lc, l_6]_,162stachybotryoides, Jattaea 18*,27c, Q, 40, 41, 170striatisporium, Myrothecium 148, 149STEREUM 56

stevensii, Botryosphaeria 9|STICTIS 212*, 24c, _l_l_8,119stygium, Hypoxylon 19*,28c, fisubopaca, Eversia 22*,34c,QSUBULICYSTIDIUM 141

tenella, Rhamphoria 81TETRAPLOA23*, 35c, fl, 163tessarthralsmgazzinia 23*, 34c, ¿6theobromae, Lasiodiplodia 29c, 32, 92tirupatiensis, Periconia 22*,36c,fiTOGNINIA 39TORULA23*, 33c,fiTRICHODERMA 23*, 29o, 35c, 50, “¿3, MTRICHOPEZIZA 109TRICHOSPHAERELLA 19*, 25c, 26c, 8_l, 82TRIPOSPORIUM 127TRITIRACHIUM 25o, 81truncata, Bloxamia22*,32c,mTUBEUFIA 34c, ¡35, 146, 147typica, Pulvinaria 166typica, Waydora 23*, 33c, l_66

182

unisepta, Endophragmia 136unisepta, Endophragmiella 22*, 37c,mURNULA 120

vagum, Botryobasidium 31o, 145vagum, Sporidesmium [60, 16]VALSA 18*, 28c, 32c, fl, 48, 49variabilis, Nitschkia 21*, 25c, fi, 170VENTURIA 108

vermícularioides, Chaetosphaeria 36c, 128VERMICULARIOPSIELLA23*,33o,fivermcaria, Myrothecium 149vestita, Ceratostomella 68, 69virescens var. virescens, Chloridium 22*, 36c, mviride Trichoderma 23*, 35c, MWAYDORA 23*, 32c, Mwebsterii, Pleurothecíopsis22*, 37c,fiWEGELINA 39woodii, Diaporthe l8*, 27c, fi, 47xanthodera, Delitschia 88xanthostigma, Orbilia 112xenasmatoides,Corticomyces22*,3lc, m, I7I

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PARTE II

Algunas consideraciones ecológicas dedicha comunidad

INTRODUCCION

El factor más importante que afecta la distribución y el ciclo de vida de los hongos es su

condición heterotrófica. Para su crecimiento en todas sus formas, deben encontrar compuestos

orgánicos ya elaborados en su ambiente inmediato. Estos organismos varían ampliamente en su

capacidad para acceder y utilizar compuestos carbonados de distinto tipo y localización. Esta variación

tiene indudables consecuencias ecológicas, ya que los tipos de compuestos orgánicos que un hongo

pueda usar afectará, inevitablemente, muchos aspectos de su comportamiento, incluyendo su modelo

de establecimiento en una fuente natural de nutrientes, sus interrelaciones con otros organismos, su

contribución al ecosistema y el habitat que pueda ocupar (Cooke & Rayner, 1984). Esto explica

porque cada material particular alberga cierto tipo de hongos y, hasta se ha intentado utilizar esta

información para encontrar bases para una clasificación de los hongos en categorías ecológicas.

Antes de continuar, consideramos necesario plantear las definiciones de habitat, “substratum” y

sustrato de Cooke & Rayner (1984), reafirmadas por Rayner & Boddy (1988). HABITAT: se usa para

describir el lugar donde vive un hongo y, en consecuencia, tiene algunas connotaciones ambientales

físico-químicas. SUBSTRATUM: se refiere al medio dentro del habitat que sostiene físicamente al hongo

durante su desarrollo. SUSTRATO: es un constituyente bioquímico específico del sustratum.

En nuestro caso estudiaremos el habitat “tocón” y los hongos que se desarrollan en los

“sustrata” corteza y madera, y quedará para futuras investigaciones qué tipo de sustrato (celulosa,

lignina, etc.) están degradando. Los hongos son, probablemente. los principales agentes responsables

de la degradación de la celulosa y la lignina, y cumplen así una función vital en el ciclo del carbono

y en el proceso de humificación. Es por esta razón que la biodegradación fúngica de la madera ha sido

intensamente estudiada, particularmente en el hemisferio norte. Numerosos científicos se han inclinado

201

hacia este tema refiriéndose en su mayoría a Basidiomycetes, debido a la importancia económica de

las grandes extensiones boscosas y las plantaciones comerciales.

Los tocones pueden considerarse (Rayner & Body, 1988) como estadios intermedios entre la

madera de árboles vivos en pie y la madera muerta o utilizada con fines comerciales (tablones, troncos

estibados, astillas, etc.). Intermedios, porque poseen su sistema radicular intacto y por poseer tejidos

vivos que permanecen funcionales por períodos de tiempo variables. Los tocones de angiospermas son

capaces de producir rebrotes permitiéndoles así persistir por lapsos indefinidos lo que constituye la

base del manejo de la explotación forestal.

La colonización del tocón puede proceder hacia las raíces y las regiones basales o estar

restringida a la vecindad de las superficie de corte. Esta última situación, es la que nos interesa en

relación con el presente trabajo. Experiencias de inoculación en Fagus sylvatíca y Quercus robur

revelaron que la colonización estaba fuertemente localizada a unos 5-10 cm de profundidad desde el

punto de inoculación en la superficie de corte después de los 6-12 meses (Rayner, 1979).

En términos generales, si un tocón sobrevive, el modelo de su colonización podría ser

comparable a aquel que se desencadena al producirse una herida en árboles en pie (Rayner & Boddy,

1988).

¿Qué hongos están asociados con la colonización de los tocones?

La mayoría de los estudios llevados a cabo hasta el momento se han referido a especies

pertenecientes a Basidiomycetes. Sólo en la década de los ’70 los micromicetes xilófilos han adquirido

particular relevancia, como lo evidencia la exhaustiva lista bibliográfica de Steward et al. (1988), que

recopilan l 150 especies distribuidas en 269 géneros de Deuteromycetes y Ascomycetes, o la lista de

202

Hyphomycetes lignícolas de EEUU de Wang (1977). También, teniendo en cuenta este grupo, se han

encarado trabajos desde otros puntos de vista, por ejemplo, estudios de sucesión y colonización

(Morton y Eggins, 1976, Kaárik 1967, 1973) tanto en árboles vivos (Good y Nelson 1962) como en

troncos estibados (Henningson 1967 a,b), en tocones (Meredith 1959, Rayner l977 a,b), postes y

estacas (Corbett y Levy 1963). Recientemente, se destaca el manual para la identificación de hongos

en postes utilizados con fines comerciales realizado por Wang & Zabel (1990).

Uno de los trabajos pioneros en el estudio de colonización en tocones fue el realizado por

Ka’áriky Renerfeld (1957) en las coníferas Picea y Pinus y, posteriormente, el de Meredith (¡959).

Meredith (1960), en particular, destacó los cambios notorios en la composición micótica con el tiempo.

En el caso por ella estudiado aparecían primero algunas especies del género Ceratocystis

(Ascomycetes) y tres especies de Aphyllophorales, en una segunda etapa apareció Hypholoma

fasciculare, y en una tercera Tricholomopsis rutilans. Con respecto a tocones de angiospermas, se han

estudiado colonizaciones sobre Betula pendula, Fagus sylvatica y Quercus robur (Rayner, 1977 a,b).

Estos trabajos se han efectuado tanto con hongos pertenecientes a Basidiomycetes como a

Ascomycetes y Deuteromycetes. Entre los Ascomyetes, predominaron especies de Xylariaceae. Entre

los Deuteromycetes, la especie Botrytís cinerea colonizó extensamente los tocones a los tres meses.

Rayner (op. cit.) también observó cambios en la composición micótica al tratar los tocones con sulfato

de amonio, apareciendo otros hongos como Coryne sarcoides, Pezizella sp. e Hypoxylon serpens.

Hasta el momento no se han encontrado publicaciones extranjeras de estudios sobre tocones

de Eucalyptus. Lopez (1984) realizó una reseña de los trabajos en los que se encararon otros aspectos

tales como estudios en estacas de Eucalyptus regnans; sobre resistencia de maderas al ataque fúngico;

aislamientos de hongos en árboles en pie.

203

Los aspectos cuantitativos del estudio de las comunidades fúngicas en la madera no registran

muchos antecedentes. El cálculo de índices de riqueza, diversidad y de equitatividad, y el uso de

técnicas de análisis multivariado en temas fúngicos es bastante reciente. Nims et al. (1991) procesaron

los datos por medio de métodos de clasificación (fenogramas) y de ordenamiento (análisis de

correspondencia) con el fin de estudiar la variación en la composición liquénica epifítica en relación

con la contaminación ambiental con SO2 en la región NE de Italia. Rollinger & Langenheim (1993)

utilizaron otro método de ordenamiento (análisis de componentes principales) y calcularon los índices

de diversidad de Hill y de equitatividad para estudiar la variación en la composición de hongos

endofíticos de Sequoía sempervirens en distintos puntos geográficos, desde el sur de Oregon hasta la

costa central de California, EEUU.

En lo que se refiere a nuestro país, los primeros trabajos en donde se utilizaron estas técnicas

con fines ecológicos en hongos fueron Cabral (1982), Blumenfeld (1983) y Lopez (1984). Cabral llevó

a cabo un estudio de la dinámica de las poblaciones fúngicas de la filosfera de Eucalyptus vimínalís.

Blumenfeld realizó un estudio de Basidiomycetes xilófilos en bosques implantados de Pinus elliom'

y Pinus taeda. Lopez efectuó un análisis florístico y ecológico de Basidiomycetes xilófilos en

plantaciones de Eucalyptus viminalís. Justamente, este último generó la idea de estudiar en el mismo

lugar y habitat la comunidad de Ascomycetes y Deuteromycetes.

Es así que se consideró de interés iniciar una investigación con el objetivo de analizar la

composición de la comunidad de micromicetes xilófilos sobre Eucalyptus viminalís. De este modo se

contribuye así al conocimiento del biodeterioro fúngico de la madera, ya iniciado en el país por

Deschamps (1980), Blumenfeld (1983) y Lopez (1984).

MATERIALES Y METODOS

l- Elección y lugar del muestreo:

Se seleccionaron plantaciones comerciales de Eucalyptus viminalis Labill. que reunían las

condiciones necesarias: monoespecificidad, extensión apropiada y suficiente número de árboles de

edades conocidas establecidos en condiciones ambientales homogéneas. En consecuencia, se realizaron

los relevamientos en campos de la firma Fiplasto S.A. en las localidades de Ramallo y Gobernador

Castro, Provincia de Buenos Aires (Gráfico l). Esta zona pertenece a la Provincia Pampeana, Distrito

Pampa Occidental (Cabrera, 1971) y está adyacente a la selva marginal que recorre las márgenes del

río Paraná.

La estación experimental de INTA de San Pedro nos facilitó los datos: temperaturas medias

mensuales, precipitaciones mensuales (Gráfico 2) y humedad relativa media mensual y evaporación

(Gráfico 3) de estas localidades durante los años de los muestreos.

2- Diseño de muestreo:

Se siguió el diseño de muestreo realizado y propuesto por Lopez (1988). Así, se eligieron tres

lotes de árboles talados en tres años consecutivos (esta especie arbórea comienza a explotarse a los

8 años de edad). Uno de ellos ubicado junto al camino Ramallo-Siderúgica, consta de 18.632 plantas,

fue talado en 1980 y lo denominaremos durante este estudio “campo 1 Los otros dos, se encuentran

a unos 80 km hacia el sur de éste y a lO km de Gobernador Castro. Ambos constan de 13.969

ejemplares y distan entre sí unos 400 metros (Gráfico l). El que será nominado “campo 2” fue talado

205

GRAFICO 1

Lugar geográfico y ubicación de los campos.

Sitios de muestreos

Sitio 1o = campo1 ÉSitio 20 = campo 2 ‘x,Sitio30: campo3 2\

\\2Ig:

lslna

F

,’

Gráfico gentileza de la Dra. Lopez (1984).

GRAFICO 2

Temperatura media mensual y precipitación mensual durante los muestreos.

RATURAMEDIA°c

TEMPl

200­

PRECIPITACIUNmm

* muestreos

. período de muestreo

o promedios de 10 años

HUMEDADRELATIVAMEDIAMENSUALO

GRAFICO 3

Humedad relativa media mensual y evaporación durante los meses de muestreos.

100. 1oO muestreos l­

La

4 P8

4 "7

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l' \\ II \‘oso 4 I, \\ II \\ 7-6\

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o I n a o o a 'I v v v v y v 1 Ñr I T 1 ñ v v I r I I

J J A S O N D E F M A M J J A S O N D E F M A M

M E S E S

Gráficos gentileza de la Dra. Lopez (1984).

EVAPORAClONmmO

en 1979 y el “campo 3” en 1978. En la lámina I se observan vistas generales de estos dos campos

(fotos A y B) y de dos tocones sin rebrotes (foto C). De esta manera, al comenzar este estudio (agosto

1981), los tocones de los campos l, 2 y 3 tenían uno, dos y tres años de talados respectivamente. Los

tres presentaban tocones sin rebrotes y tocones con número y tamaño variable de rebrotes.

Se realizó un muestreo por estación (4 = I P V O) durante dos años (2) y por campo (3),

llevando a cabo así, 24 muestreos en total (4 x 2 x 3). Se ensayó un diseño de muestreo tomando

tocones al azar. Previamente, en el laboratorio, con tablas de números al azar se sortearon hileras y

árboles, y se confeccionaron mapas para la ubicación de los tocones a ser inspeccionados. Si el tocón

sorteado no existía se tomaba el siguiente en la hilera. Luego del primer muestreo, donde se censaron

50 tocones, se estableció que el tamaño mínimo muestral (número de censos) fuera igual a 40 tocones

por campo.

En cada censo se inspeccionó el tocón y los rebrotes, registrándose presencia y número de

rebrotes y la posición en la que aparecía cada colonia: madera, corteza externa, corteza interna y

madera y corteza de rebrote.

Como ya señalamos las especies motivo de este estudio son micromicetes que, como tales, son

casi microscópicas, dificultando su detección en el campo y pudiendo pasar fácilmente inadver'tidas.

Por tal razón, además de recoger trozos de madera y corteza donde se observaba alguna colonia a

simple vista o con la ayuda de una lupa de mano, se tomaron trozos de las mismas al azar y, por otro

lado, se examinaron también las muestras de madera y corteza con especies de Basidiomycetes

recolectadas por Lopez (1984), ya que se realizaron los muestreos al mismo tiempo.

Los muestreos se efectuaron durante la segunda semana de agosto, noviembre, febrero y mayo

desde 198] hasta 1983.

Se recolectaron en total 2000 muestras. En el campo, cada trozo de sustrato se colocó en bolsa

206

FOTO BVista general del campo 3

.r.‘

.Cu:¿ya1.3.331...í

LAMINA l

FOTO CAspecto genera! de dos toconcs sin

rebrotes

FOTO AVista general del campo 2

de polietileno y, posteriormente, en el laboratorio fueron pasados a sobres de papel absorbente. El

tratamiento de las colecciones para su identificación y descripción ya fue explicado en Materiales y

Métodos de la parte I: Estudio Floristico.

3 - Análisis Estadístico:

Para describir las variaciones de la comunidad fúngica con las estaciones, con el tiempo

transcurrido después del talado y con el lugar físico de cada campo, denominados sitio l, 2 y 3, se

recurrió al análisis de las frecuencias, mediante un método de ordenamiento y un método de

clasificación. También a partir de los datos de frecuencia se calcularon los índices de diversidad, de

equitatividad y de riqueza.

3.1. Tablas de frecuencias:

Se confeccionaron planillas para cada muestreo que constaban del listado de especies por los

40 tocones censados; en ellas se anotó en qué posición del sustrato se hallaba cada especie en el censo

que estaba presente. La figura l muestra los códigos utilizados para los distintos sustratos:

207

Coex = cara externa de la corteza; Coin = cara interna de la corteza; ML = madera cortada

longitudinalmente y en posición lateral en el tocón; MT = madera en corte transversal, en la parte

superior del tocón que quedó expuesta después del talado; CoR = corteza de rebrote; MR = madera

de rebrote.

Ejemplo de una planilla:

Fecha: AGO-8] Año de Tala: 1980 N° de campo: l

Estación: Invierno Tiempo de talado: l ano. N° de Muestreo: l

ESPECIES CENSOS

1 2 3 4 . . . . . . 12 . . . . . . . . . 20 . . . . . . . . . 40

especie i Coi ML MR Coexespecie j MT CoR

Sobre la base de estos datos se calculó la frecuencia porcentual de cada especie, de la siguiente

manera:

f ___N ° de censos en gue la esmcie i estaba presente x 100N° de censos totales (:40)

Las frecuencias así obtenidas se volcaron en matrices básicas para ser analizadas mediante el

método de ordenamiento: Análisis de Correspondencia (AC) y un método de clasificación no

paramétrico: “Multi response Procedure non-parametric” (MRPP).

Se confeccionó un histograma con las frecuencias totales en función de los relevamientos (24

censos) y una tabla con las frecuencias de cada especie (= n° de veces presente) en cada tipo de

sustrato considerado según figura l.

3.2. Análisis de Correspondencia (AC):

El Análisis de Correspondencia (AC) es un método de ordenamiento que permite graficar los

individuos (cada censo) y las variables (especies), superpuestas en un mismo diagrama de tal manera

que se puede analizar sus interrelaciones. Las proximidades entre columnas y entre filas son medidas

por coeficientes de distancia (Lebart et al. 1977, Greenacre 198]) . En este caso se utilizó el Sistema

de Programas “NTSYS” versión 1.60 y dentro de éste, el programa “Correspondence analysis"

(CORRESP).

Se volcaron las frecuencias de las especies en una matriz básica de datos en donde las

columnas (censos) representan los relevamientos y las filas (variables), las especies. Las frecuencias

expresan el porcentaje de tocones en que fue registrada cada especie. En un primer momento se aplicó

el análisis de correspondencia a una matriz con todas las especies (130). Los resultados de éste,

mostraron gráficos distorsionados. De acuerdo con Matteucci & Colma (1982) el grado de distorsión

depende de la naturaleza de los datos, y uno de los factores que influye es la presencia de muchas

especies raras. Por tal razón, se eliminaron las especies que habían aparecido en sólo uno de los 24

209

relevamientos, quedando así una matriz de 86 especies por los 24 censos.

3.3. Método de Clasificación no Paramétrico (MRPP):

A partir de los resultados del AC, formamos grupos de censos que fueron sometidos a prueba

mediante este método. Debido a que los datos no cumplían con los requisistos para efectuar un análisis

discriminante se aplicó un procedimiento no paramétrico. Se utilizó el Sistema de Programas

“PC-ORD”, y dentro de este, se llevó a cabo el análisis con el programa “Multi-response Permutation

Procedures” (MRPP).

Con este objetivo se confeccionó otra matriz básica de datos reducida (Tabla 3) a 24 especies

que se seleccionaron teniendo en cuenta las variables (= especies) de mayor contribución a los

primeros ejes del análisis de correspondencia, y conservando las 24 columnas (relevamientos).

3.4. Riguezal Diversidad, Quitatividad:

La diversidad presenta dos componentes: el número de especies y la abundancia relativa de

las mismas. Muchas investigaciones sobre diversidad están basadas sólo en el número de especies (=

riqueza florística). Sin embargo, por lo general, las comunidades presentan un número alto de especies

raras y pocas o escasas especies abundantes y en un número bajo de especies comunes (= abundancia

alta). Por lo tanto para tener una medida de la diversidad es conveniente utilizar índices que combinen

ambos componentes (Magurran, 1988). En este tipo de estudio, se utiliza el índice de Equitatividad,

210

el cual es considerado un componente básico de la diversidad (Molinari, 1989). La equitatividad se

define como el grado en el cual las abundancias de las especies de una muestra o comunidad son

iguales; es un atributo fundamental de cualquier muestra multiespecífica.

Se calculó el índice calibrado de equitatividad, G ¿l (Molinari, 1989) mediante las fórmulas:

G ¿l = (arcs. F2_¡/90)x Fu (l)

G 2_. = (F 2..)3 (2)

donde F ¡J = (NZ-l) / (Nl-l) Indice de equitatividad de Alatalo

donde N2 = inversa del índice de diversidad de Simpson

donde Nl = e H'donde H’= índice de diversidad de Shannon-Wiener

Si F2“,> raíz cuadrada de 1/2, se utiliza la fórmula (l)

y si F ¡,__,S raíz cuadrada de l/2, se utiliza la fórmula (2)

Se calcularon los índices de l- Riqueza y 2- de diversidad de Shannon-Wiener y 3- de

Simpson, cuyas fórmulas son:

l- Indice de Riqueza, R = N° de especies.

2- Indice de Diversidad de Shannon-Wiener: l-I = - (Z pi ln pi)

3- Indice de Diversidad de Simpson: = Z p¡2

Siendo pi = free. de la especre x en el censo l .sumatoria de frecs. de las espeCIes del censo l

211

Ambos índices de diversidad y el de equitatividad fueron sometidos a pruebas de homocedacia

(BIOM, Homov, Sokal & Rohlf, 1979) y de distribución normal (Statgrafics, versión 4.0, Test de

Kolmogorov-Sim). Se obtuvieron resultados positivos en ambas pruebas. Por lo tanto, se procedió a

realizar ANOVA de un factor (BIOM, Nestan,Sokal & Rohlf, 1979) de los respectivos índices para

comprobar si había diferencias significativas entre ellos comparando: l) los campos l, 2 y 3 (= sitios);

2) las estaciones y, 3) los tiempos transcum'dos de talado. Posteriormente, se efectuaron los

correspondientes contrastes (BIOM, Mc-Pair Tukey-Kramer).

3.4.1. Análisis de la rigueza en relación con los parámetros climáticos.

Se compara la variación del índice de riqueza con los datos de temperatura, precipitaciones,

humedad relativa y evaporación de los gráficos l y 2. Se calcularon ocho índices de riqueza, uno para

cada fecha en que se hizo el muestreo y que corresponde a una estación determinada, contando el

número de especies total entre los tres sitios.

212

l- Composición micótica:

RESULTADOS

La micota presente en las 2000 muestras coleccionadas a partir de los 960 tocones examinados

(24 relevamientos x 40 toconcs) está compuesta por 130 especies, un 53,85 % pertenecientes a las

clases Ascomycetes y un 46,15 % a Deuteromycetes.

A continuación se presenta la lista de las especies componentes de esta comunidad, con las

siglas correspondientes a cada una de ellas, en orden alfabético, que fueron utilizadas en los distintos

análisis (A = Ascomycetes; D = Deuteromycetes; DB = anamorfo de Basidiomycetes):

©00\IO\LII-bb)¡\)—

M-PWN—O\OW\IC\M-BWN'—‘O

Acremonium sp.Allescheriella cyaneaAlternaria sp.Bloxamia truncataBotryosphaeria obtusaBotryosphaeria rhodinaBotryosphaeria ribisBrachysporum britanicumCamarops rostratusCandelabrum brocchiatumCapronia pilosellaCeratostomella ampullascaCeratostomella sp.Ceratostomella cirrhosaCeratostomella hyalostomaCeratosporella deviataCiboria sp.Claussenomyces atrovírensCladosporium chlorocephalumCladosporium cladosporoídesClonostachys araucariaConiochaeta pulveraceaCorticomyces xenasmatoidesCytospora sp.Chalara hughesii

ACREMOALLCYAALTERNBLOTRUBOTOBTBOTRHOBOTRIBBRAB RICAMROSCANBROCAPPILCERAMPCERATOCERCIRCERHYACERDEVCIBORICLAATRCLACHLCLACLACLOCOMCONPULCORXENCYTOSPCHAHUG

DDBDD

U

UUUUUU

W

>>>>

>>>>>

>>

213

262728293031

3233343536373839404l4243

4546474849505 l

525354

555657585960616263

6566676869

Chalara sp.Chaetosphaeria myriocarpaChaetosphaeria preussiiChloridium vírescens var. virescensDactylaria chrysospermaDactylospora luridaDebaryella gracilisDelitschia corticolaDiatrypella sp.Diaporthe woodiiDictyochaeta novae-guinensisDrepanospora pannosaEdmundomasonia pulchraEndoxyla avocettaEndophragmiella pallecensEndophragmiella uniseptaEpicoccumfulfuraceumErostella minutíssimaEutypella sp.Eversia subopacaFibulochlamysferruginosaGibberella sp.Glonium abbreviatumGloniopsis australisGlomerulomycesfibulosusGnomoníella dimorphosporaGnomoniella lignicolaGnomoniella sp.Gonym'chum chlamydosporiumvar. chlamydosporiumGyrothrix podospermaHaplotríchum curtisiíHaplotrichum gracileHaplographium sp.Helicosporíum aureumHelicomyces roseusHyaloscypha sp.Hyalinia scolecosporaHypomyces aureonitensHypoxylon cariesHypocrea nigricans f. nigricansHypomyces ochraceusHypoxylon sp.Hypomyces rosellusHypoxylon serpens

CHALARCHAMYRCHAPRECHLVIRDACCHRDACLURDEBGRADELCORDIATRYDIAWOODICNOVDREPANEDMPULENDAVOENDPALENDUNIEPIFUREROMINEUTYPEEVESUBFIBFERGIBEREGLOABBGLOAUSGLOFIBGNODIMGNOLIGGNOMNI

GONCHLGYRPODHAPCURHAPGRAHAPLOGHELAURHELROSHYALOSHYASCOHYPAURHYPCARHYPNIGHYPOCHHYPOXYHYPROSHYPSER

UUUUUU

UU

DB

UUUUUUU

WW

>

>>>>>

>>>

>>>

>>>>>>>>>

214

707]727374767778798081

8283848586878889909]9293949596979899100lO]102103l04105106107108¡08109l lO

l l l

l 12

l 13

1 14

Hypoxylon stygiumHysterium angustatumJattaea stachybotryoidesKirschsteiniothelía aethiopsKirschsteíniothelia maritimaLophiostoma fuckelííLophíostoma myriocarpumLophiostoma semilíberumMelanochaeta sp.Melanomma pulvis-pyrusMicrosphaeropsis pseudoasperaMonodyictis sp.Moristroma polysporaMyrothecium cinctumNectria aureo-fulvaNectria ochroleucaNectriopsis oropensoídesNeta patuxenticaNígrospora sp.Nitschkía broomeianaNitschkía variabilisOphíobolus rubellusOrbilia delicatulaOrbilia ínflatulaOrbilia sp.Patellaria atraíaPenicillium sp.Periconía circinataPericonia lateralísPericomia minutissimaPericom'a tirupatensísPestalotiopsis leprogenaPhaeoisaria clematídísPleurostoma oothecaPleospora penícillus var. ambiguaPlectania platensisPleurothecíopsís websteriíPorosphaerella setosaRhamphoria delicatulaRhamphoria pirtformisRhizodiscinia lignyotaSpadícoides atraSpadicoides bínaSpadicoides klotzschíiSpegazzinia tessarthra

HYPSTYHYSANGJATSTAKIRAETKIRMARLOPFUCLOPMYRLOPSEMMELANOMELPYRMICPSEMONODIMORPOLMYRCINNECAURNECOCHNECORONETPATNIGROSNITBRONITVAROPHRUBORBDELORBINFORNSPNPATATRPENICIPERCIRPERLATPERMINPERTIRPESLEPPHACLEPLEOOTPLEPENPLEPLAPLEWEBPORSETRHADELRHAPIRRHILIGSPAARTSPABINSPAKLOSPETES

UUUUUUU

U

>>>>>>>>>>

>

>>>

>>>>>>>

>>>

>>>>

215

115116ll7118ll912012]122123124125126l27128129

130

Sporodesmium adscendensSporotrichum aurantiacumSporotrichum azureumSporochisma nígricansStílbella sp.Slictis radiata ssp. radiataTetraploa aristataTorula herbarumTrichosphaerella ceratophoraTrichosphaerella decipiensTrichoderma hamatumTrichoderma harzíanumTrichoderma virideValsa ambiens ssp. leucostomoídesVermículariopsella immersavar. ímmersa

Waydora typica

2- Tablas de frecuencias:

SPOADSSPOAURSPOAZUSPONIGSTILBESTIRADTETARITORHERTRICERTRIDECTRIHAMTRIHARTRIVIRVALAMB

VERIMMWAYTYP

Total:

UUUUUUUUUU

WW

UU

S 69

En la Tabla l se presentan las frecuencias de cada especie, ordenadas alfabéticamente por sus

siglas, en cada muestreo o relevamiento, que a su vez corresponden a un tiempo transcurrido de talado

y a una estación. Los relevamientos se ordenaron en cuanto al tiempo transcurrido posterior a la tala

y según la fecha de muestreo: por ejemplo, el 1° muestreo se hizo en agosto 198]; por lo tanto los

tocones talados en 1980 tenían 1 año de talados; los talados en 1979, 2 años y en ¡978, 3 años. De

esta manera:

N° l = un año después de Ia tala y al l" invierno (I)

N° 2 = un año y tres meses (1,3) y a primavera (P)

N" 3 = un año y seis meses (1,6) y a verano (V)

216

Frecuencias de las especies

TABLA 1

DICNOV

5.0

5.0

2.5

5.0

2.5

2.5

2.5

12.52.5

7.

5.0

5.0

2.5

TABLA 1

TABLA 1

HYPSER HYPSTYHYSANG

JATSTA

2.5

10.0

5.0

5.0

2.5

TABLA 1

TABLA 1

mN

md

md

0.a

md

I<>tz

OPHHUBORBDEL

ORBINFOHBSPN

PATA“?

PENICIPEHCIR PERLAT RHADEL

2.5

2.5

10.0

TABLA 1

TRIVIFl

2.5

2.5

2.5

7.5

2.5

TABLA 1

*deltatiempo:tiempotranscurridodespuésdeltalado;enañosymeses.

TABLA 1

N° 4 = un año y nueve meses (1,9) y a otoño (O)

y, así sucesivamente hasta que el N° 24 corresponde a cuatro años y nueve meses (4,9) y a otoño (O).

También se indica el año de tala y el sitio (l, 2 y 3).

Debido a los distintos años de tala y al transcurrir los 2 años de muestreos, tenemos tiempos

repetidos:

ler año de Muestreo 2doaño de Muestreositio l, tala 1980 l año 2 años

sitio 2, tala 1979 2 años 3 años

sitio 3, tala 1978 3 años 4 años

Al examinar la tabla l, observamos que hay 44 especies que aparecieron una sola vez durante

los 24 relevamientos y con muy baja frecuencia 2,5 o 5. En contraste con ellas, a pesar que no hay

especies que hayan estado en todos los relevamientos, hay algunas que aparecieron en la mayoría de

ellos. Por ejemplo, Allescheríella cyanea y Plectania platensís, a las cuales le siguen, en una menor

proporción: Ceratostomella ampullasca, C. cirrhosa, Claussenomyces atrovirens, Endoxyla avocetta.

Erostella minutíssima, Haplotrichum curtisii, Orbilia sp., Pleospora penicillus var. ambigua. Una sóla

especie mostró una “preferencia” por uno de los sitios: Pleurostoma ootheca que sólo aparece en el

sitio l, tanto en el primero como en el segundo año de muestreo, aparentemente con una frecuencia

más alta, en promedio, en el segundo (Él de F = 3,125 vs. 17(2de F: 5,833) y en ambos años su

frecuencia mayor, fue en el invierno.

217

3- Tabla de frecuencias de especies en cada tipo de sustrato:

En la tabla 2 se muestran las frecuencias de algunas de las especies en cada tipo de sustrato,

considerando aquellas que han aparecido por lo menos dos veces durante el estudio.

TABLA N° 2

Frecuencias de especies en cada sustrato.

(Coex: cara externa de la corteza; Coin = cara interna de la corteza; MT = madera en corte

transversal; ML = madera en corte longitudinal y posición lateral; RCO = corteza de rebrote; RM =

madera de rebrote; t = total de frecuencias en corteza, en madera y en rebrote respectivamente).

Lista de Corceza uadeLa RebroteEspec1es ex 1n t T L t Co M t

l Acremonium sp. 5 1 6 1 1 2 0

2 Allescheriella cyanea 10 1 11 39 75 114 1 8 9

3 Botryosphaeria obtusa 3 3 1 1 8 1 9

4 Candelabrum brocchiatum 12 3 15 5 5 10 0

5 Ceratostomella ampullasca 2 2 11 24 35 0

6 Ceratostomella cirrhosa 2 2 27 30 57 0

7 Claussenomyces atrovirens 4 1 5 7 7 14 O

8 Cladosporium Cladosporoides 1 1 5 5

9 Coniochaeta pulveracea 3 2 5 7 8 15 0

10 Corticomyces xenasmatoides 6 6 7 10 17 0

11 Chalara hughesii 2 2 4 2 2 0

12 Chalara sp. 4 1 5 0 0

13 Chaetosphaeria myriocarpa 0 3 5 8 0

218

TABLA2 (continuación)

Lista de Corteza Made RebroteEspecies ex in t T L t Co M t

14 C. virescens var. virescens 3 1 4 7 9 16 1 1

15 Dactylaria chrysosperma 8 l 9 7 9 16 0

16 Dactylospora lurida 1 1 12 10 22 5 5

17 Debaryella gracilis 0 1 4 5 0

18 Dictyochaeta novae-guineensis-ló 4 20 1 4 5 1 2 3

19 Drepanospora pannosa 3 3 l 1 0

gg Edmundomasonia pulchra 0 2 1 3 0

21 Ehdoxyla avocetta 1 1 17 19 36 0

22 Endophragmiella unisepta 2 1 3 4 4 8 1 1

23 Erostella minutissima 24 5 29 14 20 34 1 1

24 Fibulochlamys ferruginosa 2 2 1 2 3 0

25 Glonium abbreviatum 1 1 9 4 14 0

26 Gloniopsis australis 1 1 4 4 0

27 Gnomoniella dimorphospora 0 4 9 13 O

28 Gnomoniella lignicola 1 1 2 7 9 0

29 Haplotrichum curtisii 27 l 28 1 12 13 0

33 Haplotrichum gracile 4 1 5 2 21 23 0

31 Helicomyces roseus 4 l 5 l l 0

32 Hyalinia scolecospora 4 5 9 0 0

33 H. nigricans f. nigricans 2 1 3 18 8 26 0

34 HYsterium angustatum 3 3 1 1 0

35 Jattaea stachybotryoides 3 l 4 4 l 5 0

36 Kirschsteiniothelia aethiops 2 2 10 10 20 0

37 Lophiostoma fuckelii 13 2 15 2 6 B 1 1

38 ” myriocarpum 1 1 1 1 3 3

219

TABLA2 (continuación)

Lista de Corteza Mide'a RebroteEspec1es ex in t T L t Co t

39 Mbristroma polyspora O 3 3 1 1

40 Néctriopsis oropensoides 6 6 1 4 5 O

41 Nitschkia broomeiana 2 2 2 1 3 O

42 Nïtschkia variabilis 0 3 6 9 1

43 Orbilia delicatula 3 0 8 4 12 0

44 Orbilia inflatula 4 4 3 3 0

45 Orbilia sp. 53 4 57 8 15 23 1 3

46 Penicillium sp. 6 1 7 0 0

47 Periconia circinata 2 2 2 3 5 0

48 Periconia lateralis 0 2 2 0

49 Periconia minutissima 0 9 9 0

50 Phaeoisaria clematidis 1 1 5 6 11 0

51 Pleurostoma ootheca 3 3 4 9 13 0

52 P. penicillus var. ambigua 1 1 27 28 55 O

53 Plectania platensis 87 B7 11 13 24 8 8

54 Porosphaerella setosa 3 3 7 4 11 0

55 Rhamphoria delicatula O 3 5 8 0

56 Rhamphoria piriformis O 17 9 26 0

57 Rhizodiscinia lignyota 0 8 6 14 0

58 Spadicoides atra 1 1 3 4 7 0

59 Spadicoides bina 2 2 2 1 3 1

60 Tetraploa aristata 4 4 1 1 0

61 Torula herbarum 2 2 2 2 1

62 Trichosphaerella ceratophora 0 2 2 0

63 Trichosphaerella decipiens 1 1 2 3 5 0

220

TABLA2 (continuación)

Lista .de Corteza Madera RebroteEspec1es ex in t T L t Co M t

64 Trichoderma hamatum 3 3 l 1 0

65 Trichodema harzianum 3 1 4 1 1 2 0

66 Trichoderma Viride 4 4 3 3 0

67 V.ambiens ssp.1eucostomoides 2 1 3 1 1 2 0

68 V. immersa var. immersa l 1 2 1 2 3 2 1 3

4- Análisis de Correspondencia:

En el gráfico 4 se representa la distribución de los 24 censos (= relevamientos) y en el gráfico

5 la de las especies en el plano de los ejes I y II.

Hacia los valores positivos de eje I (tasa de inercia porcentual = 15.36) se ordenan los censos

l 2 3 4 13 14 15 16 y hacia los valores negativos del mismo eje están los restantes censos con la

excepción del censo 6 que se halla, a su vez, en valores muy negativos del eje II (tasa de inercia

porcentual = 8.33) (Gráfico 4). Se observa que el eje I es un eje unipolar con especies con altas

contribuciones (0,3 a 0,6) al extremo positivo del mismo: ENDUNI (Endophragmiella unisepta),

EROMIN (Erostella minutíssima), HELROS (Helicomyces roseus), LOPFUC (Lophiostomafuckelii),

MORPOL (Moristroma polyspora), TRICER (Trichosphaerella ceratophora), VALAMB (Valsa

ambiens ssp. leucostomoides), como se observa en las tablas C y D de las contribuciones absolutas

y de las correlaciones cuadradas (ver al final de este capítulo) y al extremo negativo las especies

contribuyen con valores menores (0,2 a 0,3): CANBRO (Candelabrum brocchíatum), CERAMP

(Ceratostomella ampullasca), CERCIR (Ceratostomella cirrhosa), CHAMYR (Chaetosphaeria

myríocarpa), CHLVIR (Chloridium virescens var. virescens), DACCHR (Dactylaria chrysospenna),

221

HAPGRA (Haplotríchum gracile), KIRAET (Kirschsteiniothelia aethiops), PLEPLA (Plectania

platensís), PORSET (Porosphaerella setosa), RHILIG (Rhizodiscínia lignyota). Con repecto al eje II,

la de mayor contribución (0,6) hacia el extremo positivo es: BOTOBT (Botryosphaeria obtusa) y hacia

el extremo negativo, algunas con valores = 0,6 y otras 0,7, son: BOTRIB (B. ribis), CIBORI (0,7)

(Cíboria 5p.), PERMIN (0,7) (Periconía minutíssíma), PLEPLA (Plectam'a platensís), STILBE

(Stilbella 5p.), y TRIHAM (Trichoderma hamatum).

En el gráfico 5 se observa un ordenamiento de las especies paralelo al de los censos de

acuerdo con los censos de mayor contribución al extremo positivo (0,3-0,5) del eje l: 2 3 4 14 y al

extremo negativo (0,2): 18 22 24 y, al extremo positivo del eje II: 4 16 22 24 y al extremo negativo:

6 (con el valor más alto a este eje = 0,7). Al igual que en el gráfico 4, se aprecia un ordenamiento

de algunas especies hacia los valores positivos del eje I, otras hacia los valores negativos del mismo

eje y otras hacia los valores negativos del eje II. Se señalan las siglas de las especies sobre su punto

correspondiente.

Para mayor claridad en la interpretación del diagrama del ordenamiento de los censos (Gráfico

4), se superpone el ¿i_ti_gde cada censo (Gráfico 4 a), el _tie_m@transcurrido después del talado

(Gráfico 4 b) y la estación en que se realizó cada muestreo (Gráfico 4 c).

Analizando el gráfico 4 a, los censos ordenados en los valores positivos del eje I corresponden

todo’s al sitio l (o). Los dieciséis censos hacia los valores negativos del mismo eje, corresponden a

los sitios 2 (k) y 3 (El), y la mayoría están ubicados en los valores negativos del eje I, excepto los

censos l2 y 6. Hacia el extremo positivo del eje II se observan los censos 22 y 24 correspondientes

al sitio 3 (El) y hacia el extremo negativo el censo 6 correspondiente al sitio 2 (L).

En el gráfico 4 b, se observa la distribución según el tiempo transcurrido después del talado;

muestra a los de un año (o) en los valores más positivos del eje I y los de cuatro años (D) en los

222

GRAFICO‘4a

Ordenamientodelos24censossegúnelAnálisisdeCorrespondencia(AC) Encadapuntosesuperpusounsímbolorepresentandolossitios.

v.N0

O

El

48

ag:

1-.

D

mA

mE]

Referencias:

OSitio1 LSitio2 DSitio3

‘91

GRAFICO4b

Ordenamientodelos24censossegúnelAnálisisdeCorrespondencia(AC) Encadapuntosesuperpusounsímbolorepresentandolostiempostranscurridosdespués deltalado

II

1'.

22D16 18AgL13

(Ó.

FN

Ü

k714;

N1D

1-.

ml

a’<1

Referencias:

o1año L2años ABaños C]4años

‘91

GRAFICO4c

Ordenamientodelos24censossegúnelAnálisisdeCorrespondencia(AC). Encadapuntosesuperpusounsímbolorepresentandolasestaciones.

vi]NAÍ

AS

'21

<1

E18

a”:

1-.

OF

IO.

CD.

Referencias:

oInvierno LPrimaveraAVerano ElOtoño

‘01

i-Í-i_‘__—\”‘_‘-_F-.

--‘-i-'-*-F-v-‘-=-i-i-‘­

GRAFICO5

OrdenamientodelasespeciessegúnelAnálisisdeCorrespondencia(AC).

GYRPODA

'B

DREfANMORPOL‘‘

O

GNOMONORGINFCHALARTRICER

ooORBDELoICAPPILRHADEL' corfim.'

MCNooi-RHILIGGLOFIB0OPFUC

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BLOTRU'

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TRIDEC'' LOPMYR

VEQNM

¡ONCHLrea1marcadaporlalíneadepuntosincluye

tambiénlassiguientesespecies:KIRAET,,

PEQMIN’ BOTFHBCHAMYR,HYPROS,HYASCO,HAPGRA,

BOTOBT-CHLVIR,ACREMO,HYSANG,CANBRO,

BOTRHO,GLOABB,GNODIM,CLACLA, NiTVAR,CERAMP,CERCIR,CHAPRE.

' TRIHAM

-O

STI‘BÏ

Paracadasiglaverlalistadeespeciescorrespondientesenlaspáginas213a216

valores negativos del eje I y en los valores positivos del eje II (censo 22 y 24). En cambio, los de

2 (L) y 3 (A) años muestran un patrón confuso.

En el gráfico 4 c, se observa la distribución de los relevamientos según las estaciones. La

única estación con una disposición más ó menos ordenada, es el otoño (Cl),ubicándose casi todos los

censos correspondientes a dicha estación en los valores positivos del eje II (excepto el n° 8).

Analizando al mismo tiempo la tabla l, en cuanto a la presencia y la frecuencia de cada

especie en cada censo, y el gráfico 5, podemos apreciar que: i- entre las especies ubicadas hacia los

valores positivos del eje I distinguimos siete especies (A: GYRPOD, B: MORPOL, C: TRICER, D=

GLOFIB, E: PLEOOT, F=KIRMAR y G = VALAMB) que aparecieron únicamente en el sitio l.

Cabe destacar que entre ellas, Pleurostoma ootheca, apareció sólo en el sitio l (en casi todos los

censos: l, 2, 3, 4, 14, 15 y 16, menos en el 13) Las demás, cercanas a estas siete, estuvieron presentes

en el sitio l pero también en algunos de los otros dos sitios, o en ambos (sitio 2 y sitio 3), aunque

con frecuencias mayores en los censos del sitio l; ii- en cambio, las especies ubicadas en el extremo

delimitado por los valores positivos del eje II y negativos del eje I, son las que estuvieron en el sitio

3; iii- las que se hallan hacia los valores más negativos del II, estuvieron en el sitio 2 o si estuvieron

también en el 3, su frecuencia más alta fue en el sitio 2.

Si superponemos el gráfico 4 con el 5, se pueden corroborar las relaciones enunciadas en el

párrafo anterior, entre el ordenamiento de las especies y el ordenamiento de los censos. Así

observamos que las especies están graficadas según su presencia-ausencia y su frecuencia en un

determinado censo.

223

-1--{-*-‘-=-i-l-í-i-u-'-¡-_--’»-_

SuperposicióndeGráficos4y5

u GYRPOD

DREPANMOHábL

CHALARmesa

MADE"GLOFIB

momo-6

'EDUNI

MR133

BLGTHU'

PHCIRPLEOOT

KIRMARHELROS2

m:6

ORBSPN

PNIG15TRIHAR

PLEPLADAVOFlBFEFIa

GLOAUSEDMPUL

TETA:¡IJATSTA

TRIDECLOPMYH

f-I

g

un

VERINM

FERMINBOTRIB

BOTOBT

CIBOH

6TRIHAM

5- Clasificación de los censos en grupos mediante el MRPP según sitios, tiempo de talado yestaciones:

Con la matriz básica de datos de 24 especies por los 24 censos (Tabla 3) se realizaron los

siguientes contrastes:

A = sitios l vs 2 vs 3B = sitio l vs 2-3C = sitio l vs 2D = sitio l vs 3E = sitio 2 vs 3

F = tiempos después del talado l vs 2 vs 3 vs 4G = estaciones l vs P vs V vs OH = estaciones IP vs VOI = estaciones IO vs VP

censos especies1 . . . . . . . . . . . . . . . . . . . ..24

ALLCYA . . . . . . . . . . . . . . . . . . VERINM

I-‘I-‘l-‘i-‘l-‘HI-‘i-‘J’ HHHl-¡i-‘I-‘i-‘I-‘UJ HHHHI-H-IHHO

Contra

HHHHHHHHU

tstes

NNNNI-‘l-‘l-‘H’ïj ¡wai-‘ibUJNI-‘O NNi-‘I-‘NNI-‘i-‘fl: HNNI-‘i-‘NNl-‘H

NNNMNMNN MNNNMNMN NNNNMNNN NNNNNNNN WWWWNNNN ¡waI-‘ibUJNH MNHHNMHH HNNi-‘l-‘MNH

wwwuwwwu NMMMNNMN wwuwwwww wwuwwuuw ¡hippie-mutuo.) ¡DWNi-‘ithI-l NNI-‘I-‘NNi-‘H HNNHHNNH

224

TABLA3

Frecuenciasdelasespeciesseleccionadasparaelanálisisdegrupos.

PLElPLE PENIPLA

PLEVERSITIO

IMM:EST.-ED.

1o.o0.o0.o0.o0.o2.50.o0.o0.o0.o7.50.o2.50.o0.o5.o0.o2.50.o0.o0.o0.o0.o2.5111 22.50.o0.o0.o0.o0.o0.o0.o0.o5.o25.00.o7.5o.o0.o2.50.o2.50.o0.o2.52.55.o0.o1P1 a0.o0.o0.o0.o0.o0.o0.o2.50.o0.o2.50.o5.o5.o0.o2.50.o0.o0.o0.o0.o0.o0.oo.o1V1 410.00.o0.oo.o0.o0.o0.o0.o2.55.o12.50.o5.o20.05.o2.50.o2.50.o0.o2.50.o0.o0.o1011a5.o0.o0.o5.o0.o0.o2.50.o0.o2.525.00.o0.o5.o0.o10.012.52.50.o0.o0.o0.o0.o2.51I2 1410.02.50.o0.o0.o0.o0.o2.52.57.57.50.o0.o2.52.52.55.o10.00.o0.o0.o0.o2.50.o1P2 155.05.o0.o0.o0.o0.o2.52.50.o0.o7.52.50.o2.50.o5.o0.o2.50.o0.o0.o0.o2.50.o1V2 16|30.00.o0.o5.o0.o0.o0.o0.o2.50.o10.02.50.o5.o2.50.o__2p_.9___75.kq0.o0.o2.50.o0.o2.5192W

60.o0.o5.o7.50.o0.o5.o0.o0.o0.o0.o0.o0.o0.o0.o0.o5.o22.50.o0.o0.o0.o0.o0.o2I2 e10.012.50.o2.510.00.o0.o0.o0.o0.o12.52.52.50.oo.o0.o7.532.50.o0.o0.o7.50.o2.52P2 715.00.o10.02.50.o2.52.512.50.o0.o0.o5.o2.50.o0.o0.o7.515.02.50.o0.o0.o0.o0.o2v2 a17.55.o2.57.52.50.o7.50.o0.o2.52.50.o0.o2.50.o0.o7.52.52.5....1712.50.o10.010.00.o0.o5.o10.00.o2.57.50.o0.o0.o0.o0.o10.07.52.52.50.o0.o0.o0.o2|3 1a5.o0.o12.512.50.o5.o5.o7.50.o0.o2.510.00.o0.o0.o0.o0.o25.00.o.... 1917.52.50.o10.00.o0.o0.o2.50.o0.o5.o2.50.o0.o0.o0.o5.o17.50.o0.o0.o0.o0.o0.o2V3 20'25.00.o7.57.5o.o0.o0.o5.o0.o0.o5.o5.o0.o0.o0.o0.o10.0gg;5.o0.oo.o0.o0.o0.o203;

D2.50.00.00.00.00.00.00.00.00.00.00.00.00.00.00.05.05.00.00.00.00.00.02.53I31020.05.02.57.52.50.00.00.00.00.02.50.00.07.50.00.010.035.02.50.00.02.50.02.53P3 1127.50.00.02.52.50.00.02.50.00.02.510.00.00.00.00.07.510.00.00.00.00.00.00.03V3 1222.50.00.010.00.00.02.50.00.00.02.55.00.02.50.00.00.05.010.00.00.00.00.00.0303 215.00.00.07.50.00.02.52.50.00.05.02.50.02.50.00.07.515.05.00.00.00.00.00.03|4 ü7.50.00.07.50.00.05.02.50.00.02.55.00.00.00.00.00.012.52.50.00.00.00.00.0SP4 2315.00.00.02.50.00.00.00.00.00.00.010.00.00.00.00.05.07.52.50.00.00.00.00.03V4 2412.50.05.05.00.00.07.55.02.50.00.010.00.02.50.00.02.510.05.00.00.00.00.00.0304

Se indica la significancia para cada contraste según el MRPP, a un nivel de confianza p=0,05:

A=sitioslstvs3 SB = sitio l vs 2-3 SC = sitio l vs 2 SD = sitio l vs 3 SE = sitio 2 vs 3 NS

F = tiempos después de talado l Svs 2 vs 3 vs 4

G = estaciones I vs P vs V vs O SH = estaciones IP vs VO SI = estaciones IO vs VP NS

Así vemos en cuales de los grupos que formamos hay o no diferencias significativas. Estos

resultados coinciden con los del AC. Por ejemplo, hay diferencias significativas entre el grupo de

censos del sitio l vs. los de los sitios 2-3 (contraste B). Y coherentemente con el AC, la diferencia

entre el grupo de censos del sitio 2 y los del sitio 3 (E) no es significativa, correspondiendo, en el AC,

a los 16 puntos del lado negativo del eje I y justifica que el patrón no fuera claro. También se observa

que hay diferencias significativas entre los grupos de censos de los sitios l, 2 y 3 (A) y, entre los del

sitio l vs el 2 (C) y, entre los del l vs el 3 (D); lo cual refuerza la separación de los censos del sitio

l de los de los otros dos.

Por otro lado, con respecto al tiempo transcurrido después del talado (F), también observamos

que hay diferencias significativas entre los grupos de censos considerados de l año (relevamientos l,

2,3 y 4), 2 años (5,6,7, 8 y 13, 14, lS, 16,), 3 años (9, lO, ll, 12 y l7, 18, l9, 20) y 4 años (21,

22, 23, 24).

En cuanto a las estaciones I vs P vs V vs O (G), hay diferencias significativas, y al comparar

juntos los inviernos con la primavera vs. verano-otoño (H) también pero no hay diferencias al

contrastar invierno-otoño vs primavera-verano (I).

225

6- Riqueza, Diversidad y Equitatividad:

En la Tabla 4 se transcribieron los valores de Riqueza (R), de NT = suma de frecuencias de

cada relevamiento, del índice de diversidad de Shannon-Wiener = H’, de Simpson, de Nl. N2, FLl y

de equitatividad, G 2., para los 24 relevamientos (= censos). Estos se representaron en el gráfico 6.

En ellos se observa que los índices de diversidad son semejantes en todos los muestreos y, los de

equitatividad son, además, bastante bajos (considerando l, Eq. máxima, O,eq. mínima); el valor más

alto fue el del censo lO siendo = 0,367.

Los índices de diversidad (l-l' y Simp.) y el de equitatividad (GU) de los 24 relevamientos se

organizaron de las siguientes maneras (a partir de la Tabla 4):

Tratamiento A) en los distintos sitios:

i-los valores de H’:

sitios l

2,48 (l)2,43 (2)2,36 (3)

H’(censos) 2,66 (4)3,3l(13)3,00(14)2,72(15)3,38(16)

><I lI 2,79250

ii-los valores de Simpson:

sitios l

0,094 (l)0,118 (2)0,1]8 (3)

2

2,64 (5)2,98 (6)2,85 (7)3,14 (8)2,60(l7)2,83(18)3,0309)2,99(20)

2,88250

2

0,105 (5)0,058 (6)0,067 (7)

3

2,47 (9)3,10(10)3.050 1)3,3002)3,04(21)2,97(22)2,77(23)3,41(24)

3,013750

3

0,121 (9)0.062( lO)0,067(l l)

226

TABLA4

Valoresderiqueza(R),delasumatotaldefrecuencias(NT),deIndicedediversidaddeSharon-Wiener(H'),deSimpson(SIMP),

yequitatividadde(Gm)ydelosfactoresN1,N2.,F,¿,1ylaraízcuadradade1/2.

GRAFICO6

Representacióngráficadelos24índicesde:riqueza(R),diversidaddeShanon-Wiener(H’),Simpson(S)yequitatividad(Gm),(unoparacadacenso).

censos

Simp.(cen.) 0,091 (4)0,041(13)0,065( 14)0,083(15)0,044(16)

X = 0,081750

iii-los valores de GZ":

sitios l

0,0130 (1)0,0072 (2)0,0088 (3)0,0081 (4)0,0127( 13)0,0082( 14)0,0089(15)0,0086( 16)

GzI (cen.)

R = 0,009437

0,06] (8)0,095( l7)0,084(18)0,067( 19)0,06 l (20)

0,074750

2

0,282 (5)0,0124(6)0,0117 (7)0,347 (8)0,0084(17)0,316 (18)0,350 (19)0,0102(20)

0.167213

Tratamiento B) en las estaciones:

i- los valores de H’:

estaciones I

2,48 (1)2,64 (5)2,47 (9)3.3 1( 13)2,60(17)3,04(21)

H’(censos)

><I II 2,756667

P

2,43 (2)2,98 (6)3,10(10)3,00(14)2,83(18)2,97(22)

2,885000

0,046(12)0,058(21)0,059(22)0,080(23)0,038(24)

0,066375

3

0,302 (9)O,367( 10)0,340 (1 1)0,094 ( 12)0,0102(21)0,0121(22)0,0087(23)0,0126(24)

0,132750

V

2,36 (3)2,85 (7)3.05(1 1)2,72(15)3,03(19)2,77(23)

2,796667

O

2,66 (4)3,14 (8)3.30(12)3,38(16)2,99(20)3,41(24)

3, 146667

i- los valores de Simpson:

estaciones

Sim.(cen.)

I

0,094 (1)0,105 (5)0,121 (9)0,04103)0,09507)0,058(21)

0,085667

iii- los valores GZ":

estaciones

GZJ(cen.)

X =

I

0,0130 (1)0,282 (5)0,302 (9)0,0127( 13)0,008 (17)0,0102(21)

0,104717

P

0,1 18 (2)0,058 (6)0,06200)0,065(l4)0,08408)0,059(22)

0,074333

P

0,0073 (2)0,0124 (6)0,367 (10)0,0082( 14)0,3 16 (18)0,01 21(22)

0, 120500

V

0,1 18 (3)0,067 (7)0,067( 11)0,08305)0,067( 19)0,080(23)

0,080333

V

0,0088 (3)0,0117 (7)0,340 (11)0,008905)0,350 (19)0,0087(23)

0,1211350

O

0,091 (4)0,061 (8)0,0460 2)0,04406)0,06 1(20)0,038(24)

0,056833

O

0,0081 (4)0,347 (8)0,0094( 12)0,008606)0,0102(20)0,0126(24)

0,065983

Tratamiento C) Por tiempo transcurrido después de talado:

i-los valores de H’:

tpo. en años

H’(cen.)

><1 II

l año

2,48 (1)2,43 (2)2,36 (3)2,66 (4)

2,4825

2 años

2,64 (5)2,98 (6)2,85 (7)3,14(8)3,3103)3,0004)2,7205)3.3806)

2,9212

3 años

2,4 7(9)3,1000)3,050 1)3,30( 12)2,6007)2,8308)3,0309)2,99(20)

3,0025

4 años

3,04(21)2,97(22)2,77(23)3,41(24)

3,0475

228

ii-los valores de Simpson:

tpo. en años 1 año

0,094 (l)0,1 18 (2)0,118 (3)

Sim.(cen.) 0.091 (4)

X = 0,105250

iii-los valores de GZ":

tpo. en años l año

0,0130 (1)0,0073 (2)0,0088 (3)

G2_l 0,0081 (4)(cen.)

Í = 0,009300

2 años

0,105 (5)0,058 (6)0,067 (7)0,061 (8)0,04103)0,06504)0.08305)0,04406)

0,065500

2 años

0,282 (5)0,0124 (6)0,0117 (7)0,347 (8)0,0127 (13)0,0082 (14)0,0089 (15)0,0086 (16)

0,086438

3 años

0,121 (9)0,062( 10)0,067( 11)0,046( 12)0,09507)0,084( 18)0,067( 19)0,061 (20)

0,75375

3 años

0,302 (9)0,367 (10)0,340 (l l)0,009402)0,0084(l7)0,316 (18)0,350 (19)0,0]02(20)

0,2122875

4 años

0,058(2 l )0,059(22)0,080(23)0,038(24)

0,058750

4 años

0,0102(21 )0,01 21(22)0,0087(23)0,0126(24)

0,010900

Los ANOVA arrojaron diferencias no significativas en los tratamientos A (i, ii, iii) y B (i, ii,

iii) (con un nivel de confianza = 0,05) y diferencias significativas, en el tratamiento C (i,ii,iii)

(p = 0,05):

229

Las cifras unidas por una línea muestran diferencias NS.

l 3 2 4

X = 2,4825 2,9212 3.0025 3,0475

-ii: 4 2 3 l

X: 00587 00655 00754 0.1053

-ii: 3 2 4 l

X: 02129 00864 00109 0.0093

Al analizar estos valores, se observa que hay diferencias significativas entre los índices de

diversidad (para ambos, H’ y Simp.) correspondientes a los relevamientos de tocones de un año versus

los de 2, 3 y 4 años y también las hay entre los índices de equitatividad correspondientes a los

relevamientos de tocones de tres años vs. uno y cuatro años.

En el histograma N° l se observa la variación de la suma de las frecuencias de todas las

especies por muestreo (NT)a través de los 24 relevamientos, mostrando que dichas frecuencias fueron

aumentando hasta alcanzar un pico máximo en el otoño que corresponde al muestreo N° 16 y luego

vuelven a disminuir sin llegar al nivel del principio, para finalizar con un pico bastante alto,

nuevamente en un otoño.

En el siguiente cuadro se presentan los índices de riqueza total (RT) para cada fecha de

muestreo, considerando los tres sitios como si fueran uno:

230

HISTOGRAMA l

Representación de los 24 Índices de riqueza (R;Ü) y de frecuencias totales (NT;').Para cada uno se indica la estación correpcndiente.É

pÍO

VliÍ

I q.__._1_‘,__1__._4_.__

fiP

250T 50

ill

0‘PVo I91011121314'15'161718192021222324

678

45

CENSOS

años 1981 1982 1981

meses ago nov feb. may. ago . nov feb. may.

estnes. I P V 0 I P V O

RT 37 55 46 59 57 57 38 63

En el gráfico 7 se comparan la variación de los ocho índices de riqueza total (RT) con las

temperaturas y precipitaciones del mes anterior al mes en que fue realizado cada muestreo y en cuanto

a la humedad relativa (gráfico 8) se tuvo en cuenta la del mes coincidente con el muestreo.

231

DISCUSIONES

I) Con respecto a la composición micótica se aprecia a través de la lista que hay un ligero

predominio de las especies englobadas en Ascomycetes (69) frente a las reunidas en Deuteromycetes

(60).

Dentro del grupo de Ascomycetes hay un mayor número de especies pertenecientes a

Pyrenomycetes (56,02 % del total), luego a Loculoascomycetes (24,89 %) y por último, a

Discomycetes (18,09 %). Dentro de los primeros el orden Xylariales (según el sistema de clasificación

adoptado) fue el mejor representado en cuanto al n° de especies, 18, siguiéndole Hypocreales con 7,

Sordariales con 6, Diaporthales con 4 y Calosphaeriales con 3. Dentro de los Loculoacomycetes el

orden con mayor n° de representantes fue Pleosporales con 14 especies y dentro de Discomycetes fue

l-lelotiales con 8, pero no podemos dejar de mencionar que si bien Pezizales estuvo representado por

una única especie, Plectam’a platensis, ésta fue una de las más permanentes y de mayor frecuencia

a lo largo de todo el estudio. En cambio de las 8 especies de Helotiales sólo podemos decir lo mismo

de una de ellas, Orbilia sp.

En un estudio de colonización de tocones de Betula pendula, Quercus robur y Fagus sylvatica,

Rayner (1977 a,b) también encontró un predominio de Xylariales, pero en esa oportunidad se trataba

de especies xilariaceas “sensu stricto”; Xylaria hypoxylon fue importante sobre B. pendula y F.

sylvatica; Hypoxylon multiforme sobre B. pendula, Hypoxylon serpens sobre F. sylvatica y Q. robur.

Mientras que en este estudio, si bien algunas de estas especies estuvieron presentes, como por ejemplo,

H. serpens, no fue importante su frecuencia.

ll) Analizando la variación en cuanto a la permanencia de las especies (tabla I) a lo largo de

los 24 censos establecemos las siguientes categorías:

232

a- Especies permanentes: aquellas presentes en 24 a 19 censos: Allescheriella cyanea,

Erostella minutissima, Endoxyla avocetta, Haplotrichum curtisii, Orbilia 3p., Plectania platensis.

b- Especies frecuentes: aquellas presentes en 18 a lO censos: Ceratostomella ampullasca, C.

cirrhosa, Claussenomyces atrovirens, Chloridíum virescens var. virescens, Dactylaría chrysosperma.

Dactylospora lurida, Dictyochaeta novae-guineensis, Glonium abbreviatum, Haplotrichum gracíle,

Hypocrea nigricans f nigricans, Lophíostoma fuckelii, Pleospora penicillus var. ambigua,

Porosphaerella setosa, Rhamphoria piríformis.

c- Especies escasas: aquellas presentes en 9 a 5 censos: Botryosphaen’a obtusa, Coníochaeta

pulveracea, Corticomyces xenasmaloides, Endophragmiella unisepta, Gloníopsis australis,

Gnomoniella dimorphospora, G. lígm'cola, Helicomyces roseus, Jattaea stachybotryoides,

Kirschteiniothelia aethiops, Nectriopsis oropensoides, Nitschkía varíabilis, Orbilia inflatula,

Phaeoisaria clematidís, Periconia círcinata, P. minutissima, Pleurostoma ootheca, Rhizodiscínía

lignyota, Spadicoides atra, Trichosphaerella decipiens, Tríchoderma viride, Vermicularíopsella

immersa var. immersa.

d- Especies raras: aquellas presentes en 4 a l censo: Acremom'um sp., Alternaria 5p.,

Bloxamia truncata, Botryosphaeria ribis, B. rhodina, Camarops rostratus, Caprom'a pilosella,

Candelabrum brocchiatum, Ceratosporella deviata, Ceratostomella hyalostoma, Cladosporium

cladosporioides, Cladosporíum chlorocephalum, Clonostachys araucaria, Chalara hughesii,

Chaetosphaería myriocarpa, Chaetasphaería preussii, Debaryella gracilis, Delitszchkia corticola,

Diaporthe woodii, Diatrypella sp., Drepanospora pannosa, Edmundomasonia pulchra, Epicoccum

fulfuraceum, Endophragmiella pallescens, Eutypella sp., Eversía subopaca. Fibulochlamys

ferruginosus, Gibberella sp., Glomerulomyces flbulosus, Gnomom'ella 5p., Gonytrichum

chlamydosporium var. chlamydosporium, Gyrothrix podosperma, Haplographíum sp., Helicosporíum

233

aureum, Hyalinía scolecospora, Hyaloscypha sp., Hypomycesaureo-nítens, H. ochraceus, H. rosellus,

Hypoxylon 5p., H. caries, H. serpens, H. stygium, Hysterium angustatum, Kirschteímiothelia maritima,

Patellaria atrata, Lophíostoma myríocarpum, L semiliberum, Microsphaeropsis pseudoaspera,

Melanochaeta sp., Melanomma pulvis-pyrus, Monodyictis 3p., Moristroma polyspora, Myrothecíum

cinctum, Nectria aureofidva, N. ochroleuca, Neta patuxentica, Nigrospora sp., Nitschkia broomeiana,

Orbilia delicatula, Ophiobolus rubellus, Periconia lateralis, P. tirupatensis, Penícillium 5p.,

Pestalotiopsis leprogena, Pleurotheciopsís websterii, Ramphoria delicatula, Spadicoides bina, S.

klotzschii, Spegazzinía tessarthra, Sporochísma nigroseptatum, Sporidesmium adscendens,

Sporotrichum aurantiacum, Sporotrichum azureum, Stictis radiata ssp. radiata, Stílbella 5p., Tetraploa

aristata, Torula herbarum, Trichoderma hamatum, T.harzianum, Trichosphaerella ceratophora, Valsa

ambiens ssp. leucostomoides, Waydora typica.

III) Como mencionamos en la introducción, Rayner y Boddy (1988) consideran al tocón un

sustrato intermedio entre árbol vivo en pie y madera muerta o cortada. Además, en este caso,

tratándose de una angiospenna tiene la capacidad de originar rebrotes. La zona de corte transversal

podría interpretarse como una gran “herida” que podría funcionar como vía de penetración. De ahí

que resulte interesante analizar la presencia de las especies en la cara externa de la corteza (Coex),

en la cara interna (Coin), en la madera cortada transversalmente (MT), en la madera en posición lateral

(ML) y en la madera y corteza de rebrote (CoR y MR) (Tabla 2). Por ejemplo, la especie

Botryosphaeria obtusa ha aparecido con mayor frecuencia en corteza de rebrote. Hay especies de este

género que están consideradas patógenas; por lo tanto, parece bastante lógica la presencia de dicha

especie en una de las panes vivas que surge del tocón. Otra especie que apareció sólo en rebrote fue

Cladosporium cladosporioides, común en suelos, plantas, aire, con una distribución mundial amplia,

pero recientemente ha sido citada como productor de decoloración de la madera y de pudrición blanda

234

(Wang & Zabel, 1990). Es destacable que C. cladosporíoides apareció sobre la corteza del rebrote

pero con mayor frecuencia en los últimos muestreos o sea en los tocones con mayor tiempo

transcurrido después de la tala (cuatro años y seis meses). Por lo cual podríamos pensar que con el

tiempo podría llegar a establecerse en la madera del rebrote.

Con respecto a las especies que sólo aparecieron en madera en corte transversal o con mayor

frecuencia en esta zona (Allescheriella cyanea), podríamos suponer que llegaron después que las que

están en la cara externa de la corteza, las cuales, a su vez, podrían haber estado antes del corte del

árbol. Las lignícolas con predominio en madera en cone transversal, nos plantean el interrogante de

que sean especies con estrategias de penetración por heridas.

Si observamos las frecuencias en la cara interna de la corteza son generalmente más bajas que

las de la cara externa. Este hecho, probablemente, esté asociado con las condiciones de oscuridad y

de humedad de este habitat.

Algunas especies no mostraron afinidad particular por ninguno de los sustratos mientras que otras

exhibieron alguna preferencia por uno de ellos (corteza o madera o rebrote), por dos o por los tres.

Analizando la presencia de las especies en los distintos sustratos, según sus respectivas

frecuencias totales (total en Co, en M y en R de la tabla 2), en cada uno podríamos estimar su

capacidad para colonizarlos y separarlas en 6 grupos:

GRUPO l: especies exclusivamentes cortícolas: Chalara 5p., Hyalinia scolecospora,

Penicillium sp.

GRUPO 2: especies exclusivamnete lignícolas: Chaetosphaeria myríocarpa, Debaryella

gracilis, Edmundomasonia pulchra, Gnomoniella dimorphospora, Moristroma polyspora, Nitsckhia

variabilis, Pericom'a lateralis, P. minutissima, Rhamphoria delicatula, R. pinformis, Rhizodiscinia

lignyota, Tríchosphaerella ceratophora.

235

GRUPO 3: especies predominantemente cortícolas: Acremonium sp., Candelabrum

brocchiatum, Chalara hughesii, Díctyochaeta novae-guineensis, Drepanospora pannosa, Haplotrichum

curtisii, Helicomyces roseum, Hysterium angustatum, Laphiostomafuckelii, Plectania platensis, Orbília

sp., Tetraploa aristata. Trichoderma hamatum, T. harzianum, T. víride.

GRUPO 4: especies predominantemente lignícolas: Allescheriella cyanea, Ceratostomella

ampullasca, C. cirrhosa, Claussenomyces atrovirens, Coníochaeta pulveracea, Cortícomyces

xenasmatoides, Chlorídium vírescens var. virescens, Dactylaria chrysosperma, Dactylospora lurida,

Endoxyla avocetta, Endophragmiella unisepta, Erostella minutissima, Glonium abbreviatum,

Gloniopsís australís, Gnomom'ellalignícola, Haplotríchum gracile, Hypocrea nigricans f nígricans,

Kirschteiniothelia aethiops, Orbilia delicatula, Periconía círcinata, Phaeoisaria clematídis,

Pleurostoma ootheca, Pleospora penicillus var. ambigua, Porosphaerella setosa, Spadicoides atra,

Trichosphaerella decípiens.

GRUPO 5: especies cortícolas y/o lignícolas pero predominando en rebrotes:

Botryosphaeria obtusa, Cladosporium cladosporioides, Lophiostoma myriocarpum.

GRUPO 6: especies presentes con = frecuencia en CO, M y R: Fibulochlamysferruginosa,

Jattaea stachybotrioídes, Nectriopsis oropensoides, Nitschkia broomeiana, Orbilia inflatula,

Spadicoides bina, Torula herbarum, Valsa ambiens ssp. leucostomoides, Vermiculariopsella ímmersa

var. immersa.

IV) Análisis de Correspondencia:

Analizando los resultados ya enunciados se infiere la existencia de un ordenamiento de los

censos siguiendo un gradiente de tiempo transcurrido después del talado definido por los ejes I y II.

Este gradiente va desde los valores positivos del eje I con un tiempo después del talado = a l año,

236

hacia los valores negativos con un tiempo = a 4 años y 9 meses. Esta distribución coincide con la

obtenida por Lopez (1988) para Basidiomycetes. Ambos grupos fúngicos mostraron un agrupamiento

en función del tiempo transcurrido después de talado, principalmente en el primer año. También

ambos estudios coincidieron en que no es tan clara la delimitación de grupos de censos a medida que

pasa más tiempo.

Asimismo consideramos que los núcleos de especies están asociados con relación a los sitios,

especialmente con el sitio l. Podríamos decir que aquellas especies involucradas con el sitio l (sitio

más joven en cuanto al tiempo transcurrido después del talado), serían especies que se establecieron

primero.

En cuanto a las estaciones no se pudo definir relaciones, excepto la asociación de los censos

correspondientes al otoño y tres especies (A = G. podosperma; B = M. polyspora; C = T.

cerathophora) que sólo aparecieron en esta estación.

Los resultados del análisis no paramém'co también evidencian que el ordenamiento de los

censos es función del tiempo transcurrido después del talado, especialmente por las diferencias

significativas al comparar de a pares los sitios, l vs 2, l vs 3 y no significativas entre el 2 y el 3.

Indicando, aparentemente, que los sucesos más importantes ocurren en el primer año del sitio l.

Además, este análisis mostró diferencias entre los relevamientos de las distintas estaciones y una

tendencia de los inviernos y las primaveras a agruparse separadas del otro grupo conformado por los

veranos y otoños.

V) Riqueza, diversidad y equitatividad:

Los índices de diversidad y de equitatividad también reflejaron diferencias significativas en

237

cuanto al tiempo transcun’ido después de talado y no por estaciones ni por sitios. Además, todos los

índices de equitatividad resultaron bajos, siendo el más alto = 0,367 (máxima equitatividad = l); esto

muestra, como era de esperar, una comunidad con una cantidad grande de especies raras (de baja

frecuencia) y con unas pocas especies con alta frecuencia.

La variación de los índices de riquezas totales con relación a los parámetros climáticos

(gráficos 7 y 8) reflejó un comportamiento ya conocido en otras comunidades fúngicas (Lopez, 1984).

En el gráfico 7 se observa que desde el comienzo (invierno) el número de especies va aumentando

hasta el verano donde las temperaturas más altas y precipitaciones abundantes provocan una

disminución de dicho número; podríamos decir que para algunas especies dichas temperaturas son un

factor limitante que determina su ausencia. Luego se aprecia un aumento notable en el otoño que se

mantiene durante el invierno y la primavera. Nuevamente se detecta la reducción del número de

especies en el verano coincidiendo otra vez con el pico máximo de temperatura. Finalmente, en el

otoño la riqueza vuelve aumentar marcadamente. En cuanto a la humedad relativa (Gráfico 8) los

picos de mayor riqueza coinciden con los de mayor humedad relativa durante los otoños y con los

menores en los veranos. Cabe destacar que el número máximo de especies se registró en el último

otoño que corresponde a los conjuntos de tocones de mayor tiempo transcurrido después del talado.

Este hecho nos permite indicar que el factor tiempo, que trae aparejado cambios en el sustrato (mayor

número de rebrotes, más follaje), tiene un papel relevante en cuanto al número de especies y que si

bien las características climáticas son importantes, influyen en un segundo término.

Todo esto nos lleva a pensar que lo más importante en el desarrollo de esta comunidad fue

el tiempo transcurrido después de talado. Esto podría explicarse, teniendo en cuenta que al comenzar

238

GRAFICO 7

Variación de los 8 Índices de riqueza total (c1RT)con las temperaturas (tT °C)y precipitaciones (APmm) del mes anterior.

nf 1'l ¡g .: i

eo+- ¡F 1' :i ,' X ,e; xfi'""‘fl ,' I¡ mx I \ '

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GRAFICO 8

Variación de los 8 índices de riqueza total (a RT)con la humedad relativa ( e HR).

mi Ii HR. I

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“031gma 5'II

r-————<-————-—-+———_-_

8

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8'U" 0' 1. < 0'

el estudio, el sitio l era el más recientemente talado, con 13.000 tocones casi sin rebrotes o éstos muy

pequeños, que quedan así muy expuestos a radiación solar, altas T°C, sequedad o, por lo contrario,

a heladas, T°C muy bajas. En cambio, los otros dos sitios taiados l y 2 años antes que el sitio l, ya

contaban con tocones rebrotados, de mayor porte, con diferencias en el follaje, con un microhabitat

ya distinto al campo ubicado en el sitio l. El resultado en estos tocones es una comunidad con una

menor riqueza de especies y menor diversidad.

239

CONCLUSIONES

Finalmente, podemos afirmar que en los tocones de Eucalyptus víminalis, del NE de la Pcia.

de Buenos Aires, hay un predominio de Ascomycetes de los ordenes del grupo “Pyrenomycetes sensu

lato", luego le siguen los Loculoascomycetes y posteriormente Discomycetes. Dentro de los

Deuteromycetes, hay un número muy elevado de Hyphomycetes con respecto a los Coelomycetes.

Con respecto al tiempo que cada especie estuvo presente a lo largo de los 24 censos,

clasificamos a seis de ellas como permanentes , a catorce como frecuentes, a veintidós como escasas

y a ochenta y cinco especies como raras.

Según su frecuencia de aparición en los distintos sustratos, (total en Co, en M y en R)

separamos a las especies en 6 grupos: GRUPO l: especies exclusivamente cortícolas (tres especies);

GRUPO 2: especies exclusivamente lignícolas (doce especies); GRUPO 3: especies

predominantemente cortícolas (quince especies); GRUPO 4: especies predominantemente

lignícolas (veintisiete especies); GRUPO 5: especies cortícolas y/o lignícolas pero predominando

en rebrotes (tres especies); GRUPO 6: especies presentes con = frecuencia en CO, M y R (nueve

especies).

Aunque consideramos que los parámetros climáticos influyen secundariamente sobre dicha

comunidad, se concluye que el otoño es la estación más favorable para el establecimiento del mayor

número de especies en la zona estudiada.

De acuerdo con lo discutido sobre la coincidencia del ordenamiento de los censos y las

240

especies, podríamos especular que las especies relacionadas con el sitio l, es decir, con los tocones

de menor tiempo de exposición, o con los de primer año de muestreo, serían las pioneras en esta

comunidad.

Todos los análisis y técnicas aplicadas nos indican que lo más importante en la estructura de

esta comunidad fue el tiempo transcurrido después del talado y que el primer año de exposición del

tocón se diferencia de los siguientes.

Se trataría de una distribución de poblaciones fúngicas según los distintos microhabitats

generados en las distintas “edades” de los tocones.

241

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APENDICE

Tablas del Análisisde Correspondencia

O

Indice de Gráficosy Tablas

Tabla B: Matriz de correlacionesContribucionesTabla A:cuadradas de los censosabsolutas de los censos

Ejes 1

001100200002300000001101000000000000000000000000000011001000401110000201000000000000000000000000110010000111000214000000000000000000000000000000000117001200000100000101000000000000000000000000153410000010231112111212O.I.DIuDDIIlIIOOOOIloIO

000000000000000000000000

123456789

000100100001300000000100000000000000000000000000000000011000300010000101000000000000000000000000110010000001000103000000000000000000000000000000000105011100000000000001.....o..................000000000000000000000000021200000000110001000001

IIoOocoIIlOIcOoloOoooCUI000000000000000000000000

Los censos con mayor importancia son 2 3 4 14.

123456789

Tabla D: Matriz de correlacionescuadradas de las especies.

Contribuciones abso­lutas de las especies

Tabla C:

0010101211100030000000000000000000110000110020300000000000000000050001410010100000000000000000000006030000070011ooo.0..o.0..onOa

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Ejes

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246

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000000000000000000000000000000000000000000000000000000

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111000000000003014300000110100100103101101111000006000000000000000000000000000000000000000000000000000000000011422010111011100003110012003000001011100000110001011000000000000000000000000000000000000000000000000000000110011122202000000000210100000011011011100220007200300

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247

001000010000000000000000000000002010011000110110000000000000000201040110010111000000000000000000100030101160002IoOOIlIIo.l.nDO.

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Snbcssnsm¿Tm¿m.Tm¿m¿v.V

Se indican en negrita las especies de mayor importancia responsablesdel ordenamiento.

INDICE DE GRAFICOS Y TABLAS

Gráfico l . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . entre 205-206

Gráfico 2 . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . entre 205-206

Gráfico 3 . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . entre 205-206

Lámina I . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . entre 206-207

Tabla 1 . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . entre 216-217

Tabla 2 . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 218

Gráfico 4 . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . entre 221-222

Gráfico 4a . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . entre 222-223

Gráfico 4b . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . entre 222-223

Gráfico 4c . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . entre 222-223

Gráfico 5 . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . entre 222-223

Superposición de Gráficos 4 y 5 . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . entre 223-224

Tabla 3 . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . entre 224-225

Tabla 4 . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . entre 226-227

Gráfico 6 . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . entre 226-227

Histograma l . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . entre 230-231

Gráfico 7 . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . entre 238-239

Gráfico 8 . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . entre 238-239

249