BIOTÉCNICAS DA REPRODUÇÃO EM

ANIMAIS SILVESTRES

ADRIANA PIRES NEVES

ANIMAIS SILVESTRES• Extinção – exploração do meio-ambiente• Manejo de populações – garantia mínima de diversidade genética• Zoológicos – espaço limitado

Criopreservação de gametasÉ possível manter 95% da variabilidade

genética durante cerca de 400 anos, ou 50 gerações, quando se tem um manejo adequado do material genético (WILSON, 1997).

Reprodução assistidaConservação do habitat natural

Métodos mais utilizados

Zoológicos e criatórios em cativeirodas 274 espécies raras de mamíferos

mantidas em zoológicos, somente 10% possuem populações auto-sustentáveis e que conseguem manter sua variabilidade genética de tamanho suficiente a evitar a depressão endogâmica

Conservação animal ex situ

Indisponibilidade de espaço físico – impossibilita a manutenção de uma grande quantidade de indivíduos de uma mesma espécie, o que leva à depressão endogâmica.

Inapropriados para animais que necessitam de uma grande quantidade de espaço para sobreviver

Zoológicos

Viabilidade por tempo indefinido Coleta de sêmen – eletroejaculação, massagem

da ampola e VA Recuperação de espermatozóides do epidídimo

de animais mortos – em humanos, bovinos, equinos, gazelas, macacos, cervos, javalis, felinos selvagens, etc.

Criopreservação de sêmen

Os espermatozóides podem ser isolados de duas formas: 1) fluxo gerado pela injeção de meio de congelação no canal deferente em direção ao epidídimo; 2) cortes na região do corpo do epidídimo ou dissecação, seguida de cortes e pressão manual na região da cauda do epidídimo

Criopreservação de sêmen

Mais utilizada em animais domésticos Processo de vitrificação com mais sucesso em

animais selvagens A vitrificação - transição direta da fase líquida

para a sólida, sem a formação dos cristais de gelo que danificam a célula.

Criopreservação de oócitos e embriões

Não permitem aumento da variabilidade genética

É importante pois pode causar a extinção de espécies

Criopreservação de células somáticas para TN (clonagem)

Fêmeas ovulam uma x ao anoCio dura apenas 24-72hMachos com estacionalidade

reprodutiva

Panda gigante

Inseminação artificial, em cativeiro (http://www.panda.org.cn/english/)

Detecção de cio através de hormônios na urina das fêmeas

Apenas 1000 a 2000 na natureza

Panda gigante

Medidas extremas: Mostrar videos de outros pandas acasalando(http://edition.cnn.com/2006/WORLD/asiapcf/01/25/

panda.passion/index.html) Viagra

(http://news.bbc.co.uk/2/hi/asia-pacific/2246588.stm) Taxa atual: 1 cria a cada 2 anos “Diplomacia do Panda”

Panda gigante

Cópula: de 30s a 5 minDuração da gestação: 95-160 dias2009- primeiro filhote nascido de IA com sêmen

congelado

Panda gigante

Equideos

• Cavalo de Przewalskii• Habitat: Mongolia• Descoberta por Nikolai Przewalski em 1881• Extinto na natureza em 1966

Cavalo de Przewalskii

• 66 cromossomos (cavalo doméstico tem 64)• Pode produzir híbridos• Final dos anos 50 – apenas 50 Przewalski

existiam• 1977- Fundação para proteção do cavalo

Przewalski (Rotterdam, Holanda) (http://www.treemail.nl/takh/index.htm)

Cavalo de Przewalskii

• Visando troca de diferentes genéticas entre zoológicos no mundo

• Criação em cativeiro (reproduz-se normalmente, mas IA acelera o processo)

• Necessita anestesia geral e eletroejaculação (Collins et al., 2006)

• Parâmetros seminais = vol 19,9 ± 7,1• Conc: 2,0 ± 0,6• Motilidade: 52,7 ± 3,4

Cavalo de Przewalskii• A partir de 1992, começam a ser liberados

exemplares no seu habitat natural• Criada a Reserva Khustain Nuruu National Park• 50.600ha• Cavalos reintroduzidos reproduziram com sucesso

Cavalo de Przewalskii• A partir de 1992, começam a ser liberados

exemplares no seu habitat natural• Criada a Reserva Khustain Nuruu National Park• 50.600ha• Cavalos reintroduzidos reproduziram com sucesso

Zebras• Reprodução em cativeiro é

possivel (https://www.princeton.edu/~dir/pdf_dir/2011_Nunez_Zebra%20Repro_book%20Chpt.pdf)

• As zebras fêmeas mais jovens podem ser sujeitas a aborto em cativeiro

• Ciclo estral – trabalhos feitos em fêmeas abatidas

Zebras• Barros et al. (2014) – análise de dinâmica folicular

em criatório no Maranhão• Intervalo interovulatório: 37,0±1,7 dias• Ausência de ondas foliculares • Diâmetro fol. Pré-ovulatório: 36,2 ± 0,3mm• Induzido com hCG, 31,6mm

Camelídeos• Contém 2 subfamílias: Camelinae (Camelideos do

Velho Mundo) and Laminae (Camelideos do Novo Mundo).

• Selvagens, mas domésticos...• Utilidades: leite, transporte...e corrida...

Camelídeos• Baixa eficiência reprodutiva• Folículos de 15 a 40mm• Gestação 13 meses• 8 meses de lactação

Camelídeos• Ovulação induzida pela cópula (ou manipulação

cervical)• Provavelmente algum fator no plasma seminal

Camelídeos• Coleta de sêmen por eletroejaculação (necessitam

anestesia)• Melhor com VA (desenvolvida por Bravo et al. 2000)• Necessita para IA induzir a ovulação

Brasil- Projeto Mata Ciliar• Trabalho de Educação Ambiental• Há 26 anos – visa proteger margens de rios,

nascentes, etc.• Centro Brasileiro para Conservação de Felinos

Neotropicais (1997)

Brasil- Projeto Mata Ciliar• Abriga 70 animais de espécies ameaçadas de extinção• Onça, onça parda, jaguatirica, gato do mato, etc• Jaguatirica fruto de TE (desde 2007)• Fertilização in vitro – centro cirúrgico e laboratório anexos• www.mataciliar.org.br