Óleos essenciais e seus compostos puros no...
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APARECIDA SÍLVIA DOMINGUES
ÓLEOS ESSENCIAIS E SEUS COMPOSTOS
PUROS NO CONTROLE DE CÉLULAS
PLANCTÔNICA E SÉSSEIS DE CEPAS DE
Bacillus cereus
LAVRAS – MG
2015
APARECIDA SÍLVIA DOMINGUES
ÓLEOS ESSENCIAIS E SEUS COMPOSTOS PUROS NO CONTROLE
DE CÉLULAS PLANCTÔNICA E SÉSSEIS DE CEPAS DE
Bacillus cereus
Tese apresentada à Universidade
Federal de Lavras, como parte das
exigências do Programa de Pós-Graduação em Microbiologia Agrícola,
área de concentração em Microbiologia
Agrícola, para a obtenção do título de
Doutora.
Orientadora
Dra. Roberta Hilsdorf Piccoli
LAVRAS – MG
2015
Ficha catalográfica elaborada pelo Sistema de Geração de Ficha Catalográfica da Biblioteca
Universitária da UFLA, com dados informados pelo(a) próprio(a) autor(a).
Domingues, Aparecida Sílvia. Óleos essenciais e seus compostos puros no controle de células
planctônica e sésseis de cepas de Bacillus cereus / Aparecida Sílvia
Domingues. – Lavras : UFLA, 2015. 89 p.
Tese(doutorado)–Universidade Federal de Lavras, 2015.
Orientadora: Roberta Hilsdorf Piccoli. Bibliografia.
1. Biofilme. 2. Sanitizante. 3. Citral. 4. Cinamaldeído. I.
Universidade Federal de Lavras. II. Título.
APARECIDA SÍLVIA DOMINGUES
ÓLEOS ESSENCIAIS E SEUS COMPOSTOS PUROS NO CONTROLE
DE CÉLULAS PLANCTÔNICA E SÉSSEIS DE CEPAS DE
Bacillus cereus
Tese apresentada à Universidade
Federal de Lavras, como parte das
exigências do Programa de Pós-Graduação em Microbiologia Agrícola,
área de concentração em Microbiologia
Agrícola, para a obtenção do título de
Doutora.
APROVADA em 25 de fevereiro de 2015.
Dra. Patrícia Gomes Cardoso UFLA
Dra. Maíra Maciel Mattos de Oliveira IFES
Dra. Suzan Kelly Vilela Bertolucci UFLA
Dr. Victor Maximiliano Reis Tebaldi UFLA
Dra. Roberta Hilsdorf Piccoli
Orientadora
LAVRAS – MG
2015
AGRADECIMENTOS
À Universidade Federal de Lavras (UFLA) e ao Departamento de Microbiologia
Agrícola pela oportunidade concedida para realização do doutorado;
À coordenação de Aperfeiçoamento de Pessoal de Nível Superior (CAPES) pela
concessão de bolsa de estudos;
Aos professores do Departamento de Microbiologia Agrícola e Ciência dos
alimentos, pelos ensinamentos transmitidos;
À Professora Dra Roberta Hilsdorf Piccoli pela orientação, compreensão,
paciência, amizade e dedicação sem igual, e seus ensinamentos que foram de
grande relevância para a realização deste trabalho e meu crescimento
profissional;
Ao Instituto Federal de Ciência e Tecnologia do Sudeste de Minas;
Aos meus amigos que fizeram parte desses momentos sempre me ajudando e
incentivando, em especial à Mariana e Letícia, pela contribuição constante
durante todo esse período;
À técnica de laboratório, Eliana;
Aos meus pais, Geraldo e Rita, que sempre primaram pela minha Educação;
Aos meus irmão e sobrinhos, pela compreensão de minha ausência;
Ao meu marido, meu agradecimento profundo e sincero. O tempo todo ao meu
lado, incondicionalmente, compreendendo as minhas ausências constantes.
RESUMO GERAL
Biofilmes microbianos representam um grande problema para as indústrias de alimentos e sua eliminação tem sido alvo de diversas pesquisas.
Assim, a primeira etapa desta pesquisa foi conduzida com o objetivo de avaliar a
atividade bactericida de óleos essenciais de cardamomo, capim – limão, tomilho,
cravo e canela e o dos compostos puros citral (CIT), timol (TIM), α-terpineol (TER), cinamaldeído (CIN) e eugenol (EUG) contra células planctônicas e
sésseis das cepas de Bacillus cereus ATCC 14579, ATCC11778, CCT 2897 e
CCT 7453. As concentrações Mínimas Inibitórias (CMIs) e Concentrações Mínimas Bactericidas (CMBs) foram determinadas por microdiluição em caldo.
Todos os constituintes apresentaram atividade antibacteriana. As soluções de
CIT e CIM, foram os constituintes que apresentaram os melhores resultados no
teste anterior. Estes foram testados contra biofilmes formados sobre aço inoxidável AISI#304. CIT e CIN apresentaram efeito antibacteriano também
contra células sésseis, podendo ser novas alternativas para elaboração de
sanitizantes. A segunda etapa desta pesquisa foi conduzida com o objetivo de avaliar o efeito da exposição do biofilme de B. cereus, durante sua formação, à
concentrações subletais de CIN e CIT. Pelo número de células sésseis após 48
horas de formação, verificou-se que a exposição à concentrações subletais de CIN e CIT afetou a formação dos biofilmes das cepas de Bacillus cereus,
podendo torná-lo mais resistente a estes compostos como também mais sensível,
de maneira cruzada ou não, sendo a ocorrência destes efeitos dependente da cepa
e do composto utilizado.
Palavras-chave: Biofilme. Sanitizantes. Citral. Cinamaldeído. Antimicrobiano.
GENERAL ABSTRACT
Microbial biofilms are a major problem for the food industry and their disposal has been the subject of several studies. So the first step of this research
was conducted in order to evaluate the bactericidal activity of essential oils of
cardamom, lemon grass, thyme, cloves and cinnamon and of pure compounds
citral (CIT), thymol (TIM), α-terpineol (TER), cinnamaldehyde (CIN) and eugenol (EUG) against planktonic cells and sessile of Bacillus cereus strains
ATCC 14579, ATCC11778, CCT 2897 and CCT 7453. The concentration
minimum inhibitory (CMIs) and concentration minimum bactericidal (CMBs) were determined by broth microdilution. All constituents showed antibacterial
activity. The CIT and CIM solutions were the constituents that showed the best
results in the previous test. These were tested against biofilms formed on
stainless steel AISI # 304. CIT and CIN showed antibacterial effect also against sessile cells and may be new alternatives for the preparation of sanitizing. The
second stage of this research was conducted in order to assess the exposure
effect of the biofilm of B. cereus during their training, sublethal concentrations CIN and CIT. By the number of sessile cells after 48 hours of training, it was
found that exposure to sublethal concentrations of CIN and CIT affect biofilm
formation in Bacillus cereus strains can make it more resistant to these compounds as well as more sensitive, the Cross-way or not, the occurrence of
these effects are dependent on the strain, and the compound being employed.
Keywords: Biofilms. Sanitizers. Citral. Cinnamaldehyde. Antimicrobial.
SUMÁRIO
CAPÍTULO 1 Introdução Geral ...................................................... 9
1 INTRODUÇÃO ................................................................................ 9
2 REFERENCIAL TEÓRICO ............................................................ 12
2.1 Como os microrganismos chegam às superfícies industriais e aos
alimentos ........................................................................................... 12
2.2 Biofilmes na indústria de alimentos e segurança alimentar ............ 13
2.3 Estrutura e composição do biofilme ................................................ 16
2.4 Microrganismos envolvidos no processo de adesão e formação do biofilme ........................................................................................ 18
2.4.1 Bacillus cereus .................................................................................. 19
2.5 Adaptação das bactérias a agentes antimicrobianos ....................... 21
2.6 Óleos essenciais ................................................................................. 23
2.6.1 Elettaria cardamomum ...................................................................... 24
2.6.2 Cymbopogon citratus ......................................................................... 25
2.6.3 Thymus vulgaris ................................................................................ 26
2.6.4 Syzygium aromaticum ....................................................................... 26
2.6.5 Cinnamomum cassia ......................................................................... 27
2.7 Constituintes Químicos isolados dos óleos Essenciais ..................... 28
3 CONSIDERAÇÕES FINAIS ........................................................... 30
REFERÊNCIAS ............................................................................... 31
CAPÍTULO 2 Ação antimicrobiana dos óleos essenciais e seus
compostos sobre cepas de Bacillus cereus ........................................ 43
1 INTRODUÇÃO ................................................................................ 45
2 MATERIAIS E MÉTODOS ............................................................ 48
2.1 Óleos essenciais e compostos dos óleos essenciais ............................ 48
2.2 Microrganismos e padronização dos inóculos ................................. 48
2.3 Determinação da concentração mínima inibitória e da
concentração mínima bactericida dos óleos essenciais .................... 49
2.4 Análise Estatística ............................................................................ 50
3 RESULTADOS E DISCUSSÃO ...................................................... 51
4 CONCLUSÃO .................................................................................. 57
REFERÊNCIAS ............................................................................... 58
CAPÍTULO 3 Potencial tolerância biocida e impacto sobre a
resposta adaptativa à concentrações subletais de soluções de três
terpenóides e dois fenilpropanóides, em cepas de Bacillus cereus... 62
1 INTRODUÇÃO ................................................................................ 64
2 MATERIAIS E MÉTODOS ............................................................ 66
2.1 Componentes majoritários ............................................................... 66
2.2 Microrganismos e padronização dos inóculos ................................. 66
2.3 Determinação das concentrações mínimas inibitórias e bactericidas dos componentes sobre células planctônicas ............... 67
2.4 Formação de biofilme por cepas de Bacillus cereus ........................ 68
2.4.1 Classificação da capacidade de formação de biofilme de cepas de B. cereus ............................................................................................ 68
2.4.2 Formação de biofilmes de cepas de B. cereus em cupons de aço
inoxidável .......................................................................................... 69
2.5 Determinação das concentrações mínimas bactericidas dos
componentes majoritários sobre biofilmes de cepas de Bacillus
cereus ................................................................................................ 70
2.6 Formação de biofilme por Bacillus cereus em condições de estresse subletal ................................................................................ 70
2.7 Determinação da concentração mínima bactericida dos
componentes majoritários sobre biofilmes adaptados .................... 72
2.8 Determinação da concentração mínima bactericida do citral e cinamaldeído sobre biofilmes adaptados ......................................... 73
2.9 Análise estatística ............................................................................. 74
2.9.1 Desenvolvimento do biofilme ........................................................... 75
2.9.2 Estudo do comportamento das células após a exposição subletal ... 75
3 RESULTADOS E DISCUSSÃO ...................................................... 76
3.1 Atividade antimicrobiana em células planctônicas ......................... 76
3.2 Formação de biofilme e sua classificação......................................... 77
3.3 Formação de biofilme por Bacillus cereus em condições de
estresse subletal ................................................................................ 79
3.4 Concentração mínima bactericida em biofilmes ............................. 80
3.5 Efeito de exposição do biofilme à concentrações subletais de
antimicrobianos e resistência cruzada ............................................. 82
4 CONCLUSÃO .................................................................................. 86 REFERÊNCIAS ............................................................................... 87
9
CAPÍTULO 1 Introdução Geral
1 INTRODUÇÃO
Os biofilmes microbianos formados por grupos de microrganismos
patogênicos ou deteriorantes tem apresentado expressiva participação nas
contaminações de ambientes industriais e hospitalares. Dentre os
microrganismos de interesse na indústria de alimentos e na saúde destacam-se as
bactérias do gênero Bacillus.
Bacillus cereus pertence ao grupo das bactérias Gram – positivas,
anaeróbias facultativas e formadoras de endósporos. Tem sido amplamente
relatado na literatura científica a presença de B. cereus em alimentos crus e
processados a base de carne, legumes, arroz e produtos lácteos. Está associada a
algumas doenças veiculadas por alimentos: a intoxicação emética e diarreica,
causada por duas toxinas distintas, além de relatos recentes de infecção
neuroinvasiva (RHEE et al., 2015).
Doenças transmitidas por alimentos é um grande problema, com
enormes custos associados. As superfícies de processamento podem transportar
os microrganismos para o alimento, atuando como rota de transmissão de
doenças bacterianas para os seres humanos e animais. Além disso, os
microrganismos patogênicos ocorrem amplamente na natureza, sendo difícil
evitar que entrem em contato com alimentos crus.
A segurança alimentar tem adquirido grande importância no campo da
saúde pública nos últimos anos. A melhoria na segurança dos alimentos é do
interesse da indústria alimentícia, que vem usando cada vez mais agentes
antimicrobianos na cadeia de produção de alimentos como maneira de controlar
o crescimento microbiano, reduzir a incidência de intoxicação alimentar,
deterioração e garantir alimentos seguros para os consumidores.
10
O uso indiscriminado desses agentes, a fim de proporcionar a segurança
dos alimentos, muitas vezes expõem os microrganismos à concentrações
subletais desses antimicrobianos, aumentando a possibilidade de resistência
daqueles pela ativação dos mecanismos de respostas adaptativas e sobrevivência
ao stress, levando ao crescimento em condições ambientais antes impróprias
(DEPOORTER, et al., 2012; VAN BOXSTAEL, et al., 2012).
Nos últimos anos tem crescido a preocupação dos consumidores com os
efeitos negativos dos agentes antimicrobianos tradicionais, expressando o desejo
de que ocorra a redução de conservantes químicos para prevenção e controle de
microrganismos patogênicos em alimentos, o que levaram os pesquisadores e os
processadores de alimentos a procurar aditivos alimentares naturais com um
largo espectro de atividade antimicrobiana (VERRAES et al., 2013).
Neste contexto, estão sendo feitos grandes esforços na investigação de
novos antimicrobianos alternativos à base de compostos vegetais. Uma opção é a
utilização de óleos essenciais como antibacterianos, esses têm boa aceitação por
parte dos consumidores, por ter origem na natureza (NEREYDA, 2011;
SULLIVAN et al., 2012; VERGIS, et al., 2013).
Óleos essenciais (EOS) são líquidos oleosos, aromáticos e voláteis,
obtidos a partir de plantas que têm sido tradicionalmente utilizados para
conservar alimentos. Os óleos essenciais são compostos por vários constituintes
químicos e está bem estabelecido que a maioria deles tem amplo espectro de
atividade antimicrobiana contra bactérias patogênicas e deteriorantes de origem
alimentar. No entanto, em geral, verifica-se que concentrações mais elevadas de
OES são necessárias para se obter os mesmos efeitos antimicrobianos do que os
compostos puros, sendo esses uma alternativa a ser estudada (KLEIN et al.,
2013).
Os óleos essenciais e seus compostos são estudados para serem
utilizados na indústria alimentar. A preocupação atual é a possibilidade indutora
11
de mecanismos de adaptação em microrganismos, se utilizado em doses
subletais como conservantes e desinfetantes. As propriedades antimicrobianas de
α-terpineol, citral, timol, eugenol e cinamaldeído tem sido estudadas (SHEN, et
al., 2015; AZNAR, et al., 2015; VERGIS, et al., 2013; BEVILACQUA et al.,
2010; PRAKASH et al., 2015).
A preocupação atual é a possibilidade indutora de mecanismos de
adaptação em microrganismos, se utilizado em doses subletais como
conservantes e desinfetantes.
Os objetivos deste trabalho foram avaliar a atividade bactericida das
soluções dos óleos essenciais de Elettaria cardamomum, Cymbopogon citratus,
Thymus vulgaris, Syzygium aromaticum e Cinnamomum cassia, e dos compostos
individuais citral, timol, α-terpineol, cinamaldeído, eugenol, sobre células
planctônicas e sésseis de cepas de Bacillus cereus; assim como avaliar a
capacidade de cepas Bacillus cereus de se adaptar às soluções dos compostos
individuais quando expostas à concentrações subletais dessas substâncias.
12
2 REFERENCIAL TEÓRICO
2.1 Como os microrganismos chegam às superfícies industriais e aos
alimentos
O processo de desinfecção e esterilização representa papel fundamental
na área de prevenção e redução de doenças infecciosas na área da saúde. Estes
processos são fundamentais também para a indústria alimentar
(WINKELSTROTER et al., 2013).
O processo de desinfecção e esterilização representa papel fundamental
na prevenção e redução de doenças infecciosas, além de serem fundamentais
para a indústria alimentar (WINKELSTROTER et al., 2013).
Apesar dos avanços nos procedimentos de higiene, do conhecimento do
consumidor, dos tratamentos e processamento de alimentos, as doenças
veiculadas por alimentos contaminados por microrganismos patogênicos ainda
representam uma ameaça significativa para a saúde pública em todo o mundo.
Por isso, há uma pressão constante para atingir processos de higienização
eficientes, a fim de cumprir os requisitos das partes interessadas (CRUZ;
FLETCHER, 2012).
O processo de higienização é realizado em duas etapas distintas e
subsequentes, a limpeza e sanitização. A primeira etapa consiste na limpeza, que
tem como objetivo principal a remoção de resíduos orgânicos aderidos às
superfícies, constituídos principalmente por carboidratos, proteínas, gorduras e
sais minerais. A segunda etapa é a sanitização, que por sua vez tem como
objetivo eliminar microrganismos patogênicos e reduzir o número de
microrganismos alteradores para níveis considerados seguros (ANDRADE,
2008; CRUZ; FLETCHER, 2012). Esse processo é fundamental para evitar que
13
os microrganismos cheguem às superfícies de processamento e aos alimentos,
garantindo a segurança alimentar.
A contaminação de alimentos por microrganismos deteriorantes e
patogênicos custa milhões de dólares por ano para indústria de alimentos. Muitas
destas contaminações podem ser atribuídas a presença de bactérias que são
capazes de ligar às superfícies e são comumente encontradas em equipamentos
de poliestireno, vidro, borracha, aço inoxidável. A natureza dessas estruturas
dificulta o processo de higienização industrial, levando à formação de biofilmes
microbianos. Além disso, os métodos convencionais de limpeza e sanitização
são geralmente ineficientes em superfícies com formação de biofilme bacteriano
(KORENBLUM et al., 2008, MAFU et al., 2011).
2.2 Biofilmes na indústria de alimentos e segurança alimentar
Uma grande variedade de espécies bacterianas que estão presentes nos
ambientes de processamento de alimentos é conhecida por formar biofilmes em
superfícies. Por causa dessa grande diversidade, as comunidades associadas às
superfícies são geralmente múltiplas combinações de diferentes espécies, as
quais interagem de maneiras distintas por constituir uma rede complexa e
dinâmica (YANG , et al,. 2012; WINKELSTROTER et al., 2013).
A maior parte da atividade bacteriana na natureza ocorre não com
células individualizadas crescendo de maneira planctônica (livres, em
suspensão), mas como comunidades sésseis (células microbianas associadas a
diversos tipos de superfície), com diferentes graus de complexidade (WEBB;
GIVSKOVY; KJELLEBERG, 2003). Apesar das diferentes definições do termo
“biofilme” sugeridas por pesquisadores, algumas especificidades se mantém,
como o fato de ser estruturado em comunidade microbiana sésseis, que interage
entre si e com o ambiente, sendo metabolicamente ativa (NIKOLAEV;
14
PLAKUNOV, 2007). Tais interações desempenham um papel fundamental na
formação da arquitetura biofilme e são responsáveis por funções específicas
(REN et al., 2015).
Na maior parte da história da microbiologia, microrganismos foram
essencialmente caracterizados por cultivo de células planctônicas e descritos
com base nas características do seu crescimento em meios de cultura
nutricionalmente ricos. Porém, cerca de 95 a 99% dos microrganismos existem
na forma de biofilmes, alterando entre os estados planctônico e séssil (LYNCH;
ROBERTSON, 2008).
Os microrganismos são frequentemente vistos como seres simples
quando comparados aos organismos superiores. A redescoberta do fenômeno
microbiológico, primeiramente descrita por Van Leeuwenhoek, de que os
microrganismos crescem de forma agregada sobre as superfícies expostas, levou
a estudos que revelaram que este é o modo predominante de vida das bactérias
em todos os nichos ambientais (COSTERTON, 2004). São encontrados
agregados, em camadas únicas ou em disposição tridimensional (STOODLEY et
al., 2002). Quando formados por mais camadas de células, apresentam canais
que possibilitam fluxo de líquido e gases, circulação de nutrientes e eliminação
de compostos (MCLANDSBOOUGH et al., 2006).
Biofilmes podem ser definidos como um complexo ecossistema
microbiológico formado por população microbiana desenvolvida a partir de uma
única espécie ou por comunidades derivadas de múltiplas espécies microbianas
aderidas a superfícies vivas (bióticas) ou inertes (abióticas) (EL ABED, et al.
2011). Um número crescente de estudos têm relatado que os biofilmes
multiespécie parecem ser mais resistentes a atividade antimicrobiana do que de
monoespécies (VAN DER VEEN; ABEE, 2011; GIAOURIs et al., 2013;
SCHWERING et al, 2013; REN et al., 2015;)
15
A fixação em superfícies envolve a superfície celular da bactéria, onde
pode ser encontrados estruturas que facilitam a adesão, como ácidos Teicóicos
ou lipoteicóico, polissacarídeos e, em algumas espécies, a presença de uma
cápsula e vários apêndices. Apêndices, como flagelos ou pili pode estender até
várias vezes o comprimento da célula e é provável que seja a parte da bactéria
que primeiro entra em contato com a superfície na qual o biofilme se instala
(JARRELL; McBRIDE, 2008; FUENTE-NÚÑEZ et al., 2013).
A adesão pelos colonizadores primários constitui a primeira etapa de
formação do biofilme e caracteriza-se por apresentar interações entre a parede
celular dos microrganismos e as macromoléculas da superfície. A velocidade
inicial de formação do biofilme depende da concentração de nutrientes, da
afinidade das moléculas com superfície e das condições ambientais. A adesão
segue alguns passos: ligação inicial reversível da bactéria, desenvolvimento do
biofilme, ligação irreversível e maturação (COSTERTON et al., 2002).
A colonização microbiana das superfícies é um processo que envolve
fenômenos biológicos e físico-químico, possivelmente explicada através de um
modelo de desenvolvimento (MONDS; O’TOOLE, 2009). A formação começa
com o contato da célula com a superfície que desencadeia uma adesão reversível
através de van der Waals, forças eletrostáticas e forças de interações
hidrofóbicas (FUENTE-NUÑEZ et al., 2013). A adesão irreversível resulta da
fixação permanente de apêndices, como pili, flagelos, proteínas denominadas de
adesina e/ou da produção de substância poliméricas extracelulares (EPS)
(BIGGS; PAPIN, 2013).
Após a fase de amadurecimento, as células sésseis são destacadas e em
seu estado planctônico podem colonizar outras superfícies e causar novas
contaminações (CLONTS, 2008). O desprendimento dessas células pode
culminar na disseminação de bactérias patogênicas das superfícies para os
alimentos (WALTER et al., 2013);
16
2.3 Estrutura e composição do biofilme
Biofilmes são associações que aumentam a eficiência em tornar o
microambiente mais favorável aos microrganismos (WATINICK; KOLTER,
2000). As características estruturais, capacidade de coesão, morfologia e
fisiologia do biofilme são determinadas pela EPS. Os EPS atuam na aderência e
defesa das células, proporcionando resistência às condições adversas como a
diminuição de água e nutrientes e a presença de antimicrobianos (KOLODKIN-
GAL, et al., 2012).
Grande parte da matriz (até 97%) é constituída por água, dependendo de
cada biofilme e dos microrganismos presentes no mesmo, que pode ser parte da
composição das células ou existir livre no meio circundante, agindo como
solvente. Além da água, os EPS compõem 50-90% do carbono orgânico total. A
matriz extracelular do biofilme também contém outros materiais de origem
celular, incluindo DNA extracelular (eDNA). A presença de eDNA em biofilmes
é devido a um número de mecanismos, incluindo a lise das células, e é
acumulado no interior de biofilmes em uma rede filamentosa de estruturas tipo
grade (TURNBULL; WHITCHURCH, 2012). Os biofilmes também podem
conter materiais não-celulares na matriz, tais como proteínas, gorduras, minerais
e materiais corrosivos. Estes materiais não-celulares são incorporados aos
biofilmes a partir do ambiente circundante em que são formados (DONLAN,
2002). A composição do biofilme está representada na Tabela 1.
17
Tabela 1 Composição da matriz do biofilme
Componentes Percentagem
Água Até 97%
Células Microbianas 2-5% (várias espécies)
Polissacarídeos 1-2%
Proteínas (extracelular e resultante da
lise) <1-2%(várias, incluindo enzimas)
DNA e RNA <1-2% ( resultante da lise)
Íons (ligados e livres)
Fonte: Surtheland (2001).
Na maioria dos biofilmes, os microrganismos constituem menos de 10%
da matéria seca, enquanto a matriz pode ser responsável por mais de 90% da
composição (FLEMMING; WINGENDER, 2010). Os biofilmes mais antigos
tendem a ter uma maior quantidade de EPS que em biofilmes mais jovens (JIAO
et al., 2010). O topo e a base do biofilme tem maior densidade de células e
muitas vezes existem canais para o transporte de água, nutrientes e resíduos
(REN; SIMS; WOOD, 2002). As células dentro do biofilme estão sujeitas a
gradientes de nutrientes, que normalmente resultam em células metabolicamente
ativas, ou seja, com acesso a nutrientes na superfície intermediária do biofilme, e
células metabolicamente inativas no líquido sobreposto à periferia e na
superfície mais interna (PARSEK; FUQUA, 2004). Os biofilmes contêm células
bacterianas em diferentes estágios de desenvolvimento fisiológicos.
A composição da matriz é dependente de fatores intrínsecos e
extrínsecos. Os fatores intrínsecos surgem de acordo com o perfil genético dos
compostos das células microbianas e fatores extrínsecos incluem o ambiente
físico-químico no qual o biofilme e sua matriz estão localizados, o que,
inevitavelmente, é constantemente influenciado pelo transporte de soluto e
18
gradientes de difusão. Devido a grande variedade de substâncias que constituem
o EPS e a dificuldade de analisá-los, tem sido chamado de “matéria escura de
biofilmes” (SHENG; YU; YU, 2005; FLEMMING; NEU; WOZNIAK., 2007).
De acordo com Boari et al. (2009), a estrutura das células sésseis
apresentam viscoelasticidade e hidratação, e o grau de elasticidade está
relacionado à interação entre a matriz e/ou proteinas e a superfície onde o
biofilme será formado. A matriz polissacarídica que envolve o biofilme pode ser
comparada com um sistema de enzimas imobilizadas em que o meio e as
atividades enzimáticas estão em constante mudança. Entre estas, as propriedades
de superfície das células mudam durante a formação do biofilme e as proteínas
do EPS funcionam de forma inespecífica (KARUNAKARAN; BIGGS, 2010). O
EPS forma uma espécie de crosta, sob a qual os microrganismos continuam a
crescerem, formando cultivo puro ou associação com outros microrganismos,
aumentando a proteção contra agressões químicas e físicas (SUTHERLAND,
2001).
A concentração, coesão, carga, capacidade de sorção, especificidade e
natureza dos compostos indivíduais do EPS, assim como a arquitetura
tridimensional da matriz (densidade, poros e canais), determina o modo de vida
do biofilme (FLEMMING; WINGENDER, 2010).
2.4 Microrganismos envolvidos no processo de adesão e formação do
biofilme
Praticamente todos os microrganismos, tanto os deteriorantes quanto os
patogênicos, possuem potencial para aderir e formar biofilmes em diversos tipos
de superfícies. Na indústria de alimentos, o grupo de maior predominância é o
das bactérias, cujas elevadas taxas de reprodução, grande capacidade de
19
adaptação e produção de substâncias e estruturas extracelulares os fazem aptos à
formação de biofilme (NITSCHKE, 2006).
Bacillus cereus, Escherichia coli, Shigella spp. e Staphylococcus aureus
foram detectados em biofilmes desenvolvidos nas indústrias de processamento
de laticínios e ovos (SHARMA; ANAND, 2002; SHI; ZHU, 2009; JAN et al,
2011), e Listeria spp., Staphylococcus spp., Vibrio spp foram isolados a partir
de superfícies de equipamentos industriais em fábricas de processamento de
frutos do mar ( BAGGE-RAVN et al, 2003; SHI; ZHU, 2009; GUTIERREZ et
al, 2009; MILLEZI et al., 2012; OLIVEIRA et al., 2012;).
2.4.1 Bacillus cereus
Bacillus cereus é habitante natural dos solos, apresenta-se na forma de
bastonete Gram-positivo, aeróbio facultativo, sendo caracterizado pela formação
de endósporos, tendo assim duas formas morfológicas: endósporo e célula
vegetativa. É conhecido por seu amplo espectro de características fenotípicas,
permitindo-lhe ocupar diversos nichos ecológicos. (BOTTONE, 2010;
EHLING-SCHULZ; MESSELHAUSSER, 2013).
A capacidade de B. cereus em produzir e secretar certas toxinas são os
mais importantes aspectos bioquímicos deste microrganismo. Inúmeras
linhagens sintetizam grande variedade de metabólitos extracelulares, incluindo
enzimas que podem promover a deterioração dos alimentos (STARK et
al.,2013). As diferentes cepas desses microrganismos são responsáveis por
vários surtos envolvendo diversos produtos, como arroz, macarrão, carne,
legumes e laticínios (DELBRASSINNE et al., 2011; ELHARIRY, 2011; JAN et
al., 2011; KAMGA WAMBO et al., 2011; KOTZEKIDOU, 2013). No entanto, a
prevalência de B. cereus causando doenças transmitidas por alimentos é difícil
de determinar e pode ser subestimado devido aos sintomas associados às
20
infecções ou intoxicações serem geralmente leves e nem sempre relatadas
(CADEL SIX et al., 2012). No entanto, casos mais graves que podem levar ao
óbito também têm sido relatados, demonstrando a possível gravidade da
síndrome emética (DIERICK et al, 2005;. SHIOTA et al, 2010; NARANJO et al,
2011). Além de relatos recentes de septicemia e infecção neuroinvasiva em
paciente imunocomprometidos (BOTTONE, 2010; RHEE et al., 2015).
B. cereus provoca dois principais tipos de intoxicação alimentar: a
emética e a diarreica. Intoxicação emética está associada com a produção de
cerulide, uma toxina lipofílica. Esta toxina é extremamente estável ao calor, e
pode ser produzida em alimentos contaminados por células B. cereus.
Notavelmente, a cerulide pode persistir no corpo humano por um longo período,
afetando diversos órgãos e, eventualmente, levando a morte do paciente
(THORSEN et al. 2011).
A toxinfecção diarreica é causada por outro grupo de moléculas tóxicas,
as enterotoxina Hemolisina, a enterotoxina não-hemolítico e a citotoxina. Essas
toxinas tem alta sensibilidade ao pH baixo e as proteases digestivas impedindo o
desenvolvimento de sintomas diarreicos, quando ocorre a produção no alimento.
Portanto, toxinfecção ocorre devido à produção de enterotoxinas na intestino
delgado pelas células B. cereus ou endósporos que foram ingeridas
(GUINEBRETIÈRE et al, 2008).
B. cereus produz endósporos altamente resistente a ambientes inóspitos
e são capaz de sobreviver ao calor, a ausência de água, aos procedimentos de
sanitização, ao processamento de alimentos e também agregam em comunidades
bacterianas chamados biofilmes (BALL et al, 2008;. SHAHEEN et al., 2010;
ELHARIRY, 2011). Os estudos sobre a espécie bacteriana do mesmo gênero, o
B. Subtilis, revelou que biofilmes são reservatórios naturais de endósporos
tornando difícil a sua erradicação (BRANDA et al.,2006).
21
Embora a formação de biofilmes tem sido estudado em detalhe em B.
subtilis, uma espécie muito próxima ao B.cereus, pouco se sabe sobre este.
Porém sabe-se da relevância da motilidade e dos endósporos na adesão em
superfícies abióticas (AUGER et al., 2009; VILAIN et al., 2009; HOURY et al.,
2010; KARUNAKARAN; BIGGS, 2011).
As cepas de Bacillus tem sido estudadas por serem capazes de formar
biofilmes em surperfícies de metal e produzir elaboradas comunidades
multicelulares que apresentam características arquitetônicas, como projeções
aéreas que se estendem em toda superfície do biofilme (BRANDA et al., 2006;
AUGER et al. 2009; SIMÕES, SIMÕES; VIEIRA; 2010). Outros estudos
mostraram a capacidade de adesão de diferentes cepas de Bacillus e forneceu
informações sobre potenciais mecanismos de controle para este organismo
problemático. Observou-se grandes diferenças entre as cepas avaliadas em
relação a capacidade e consistência do biofilme formado e a resposta aos
diferentes tipos de estresse testados (ANDERSON et al, 2005; DE BEEN et al,
2011; KARUNAKARAN; BIGGS, 2011). Além disso, várias espécies
resistentes de Bacillus foram identificadas em plantas de processamento de
alimentos (VLAMAKIS et al., 2013).
2.5 Adaptação das bactérias a agentes antimicrobianos
Atualmente pode-se inferir que a resistência antimicrobiana é resultado
de complexa interação entre os agentes antimicrobianos, microrganismos e meio
ambiente. Assim, a versatilidade microbiana de se adequar às condições
impostas, representa formidável mecanismo de defesa (FIOCRUZ, 2005).
A resistência das bactérias aos antimicrobianos tem sido atribuída a
mecanismos herdados e não herdados (LEVIN, 2006), que estão diretamente
ligados à espécie bacteriana e ao estado fisiológico (LEVIN, 2006).
22
Vários estudos têm relatado que o uso de determinados sanificantes
promovem pressão seletiva e contribuem para o surgimento de microrganismos
resistentes a eles (LANGSRUD et al., 2003). Após a exposição regular aos
sanificantes, bactérias Gram positivas apresentam tolerância a estes compostos
químicos. Estudos revelaram que bactérias de mesmo gênero e espécie têm
diferentes graus de sensibilidade ao mesmo desinfetante. Além disso,
desinfetante com formulações químicas similares, porém não idênticas, têm
eficácia diferente contra as mesmas bactérias (SANDER et al., 2002).
Assim, é possível que a resistência dos microrganismos em biofilme a
sanificantes também possa ser consequência da exposição prolongada a doses
subletais destes compostos (DAVIDSON; HARRISON, 2002).
Apesar da base da resistência bacteriana a antibióticos ser bastante
conhecida, a resistência a sanificantes e conservantes de alimentos ainda é pouco
estudada. Os mecanismos bioquímicos exatos de adaptação e de resistência
permanecem largamente desconhecidos (LEVIN, 2006; BRAOUDAKI;
HILTON, 2005; RUSSEL, 2003).
A preocupação com a produção de alimentos mais seguros e com o
aumento da vida útil dos produtos tem levado ao uso mais frequente da
sanitização química (LANGSRUD et al., 2003). Assim, se os agentes
antimicrobianos e sanificantes tem o intuito de ter papel significativo no controle
eficaz de patógenos de origem alimentar, os fabricantes de alimentos devem
saber mais sobre o potencial de desenvolvimento de resistência entre os
microrganismos alvos (DAVIDSON; HARRISON, 2002).
Resistência cruzada pode ocorrer quando diferentes agentes
antimicrobianos atacam o mesmo alvo na célula, atingem rota comum de acesso
aos respectivos alvos ou iniciam uma via comum para a morte celular, ou seja, o
mecanismo de resistência é o mesmo para mais de um agente antibacteriano
(CHAPMAN, 2003).
23
De acordo com Landau; Shapira (2012), evidências moleculares e
fisiológicas apontam para o fato de muitas bactérias patogênicas de origem
alimentar estarem se adaptando a estresses subletais e, como consequência,
tornando-se mais resistentes em níveis letais de estresse ou proteção cruzada
contra outros estressores.
2.6 Óleos essenciais
Os óleos essenciais são formados a partir de vias metabólicas
secundárias e podem ser definidos como misturas complexas de substâncias
voláteis, lipofílicas, geralmente odoríferas e líquidas, que ocorrem em estruturas
secretoras especializadas, tais como pêlos glandulares, células parenquimáticas
diferenciadas, canais oleíferos ou em bolsas lisígenas ou esquizolisígenas.
Podem ser estocados nas flores, folhas, casca do caule, madeira, raízes, rizomas,
frutos e sementes, podendo variar na sua composição de acordo com a
localização em uma mesma espécie (SIMÕES; SPITZER, 2004). Os óleos
essenciais são constituídos por compostos tais como terpenos, aldeídos, ésteres,
cetonas, fenóis e álcoois (RADULESCU; CHILIMENT; OREA, 2004).
O mecanismo de ação dos óleos essenciais nas células bacterianas diz
respeito, principalmente, aos danos estruturais e funcionais à membrana
citoplasmática (SIKKEMA et al., 1994). Como são tipicamente lipofílicos, os
óleos essenciais se acumulam na bicamada lipídica da membrana citoplasmática,
conferindo característica de permeabilidade (SIKKEMA et al., 1994; BAKKALI
et al., 2008). A permeabilidade das membranas celulares é dependente da sua
composição e da hidrofobicidade dos solutos que a atravessam (SIKKEMA et
al., 1995), de maneira que a resistência bacteriana a óleos essenciais parece estar
relacionada à habilidade de partição dos compostos dos mesmos na fase lipídica
da membrana (LAMBERT et al., 2001).
24
Em bactérias, a permeabilidade da membrana citoplasmática está
associada à dissipação da força próton motiva, no que diz respeito à redução do
pool de ATP, do pH interno e do potencial elétrico, e à perda de metabólitos e
íons, como íons potássio e fosfato (LAMBERT et al., 2001; BAKKALI et al.,
2008). Dessa forma, danos estruturais à membrana citoplasmática levam ao
comprometimento de suas funções como barreira seletiva e local de ação
enzimática e geração de energia (SIKKEMA et al., 1994).
2.6.1 Elettaria cardamomum
A Família Zingeberaceas engloba cerca de 50 gêneros e 1100 espécies
distribuídas em países tropicais, sobretudo no Extremo Oriente (SOUZA, 2005).
Elettaria cardamomum é uma espécie pertencente à família
Zingeberaceae, uma das culturas de especiarias mais importantes cultivadas na
Índia, Guatemala, Tanzânia, Papua Nova Guiné, Costa Rica, Sri Lanka, El
Salvador, Vietnã, Laos e Camboja (LUCCHESI, 2007; PARTHASARATHY et
al. 2008; TYAGI et al., 2009). É uma planta perene com raízes laterais, que
podem crescer até a altura de 2,4 metros (SAJINA et al., 1997; DUBEY;
YADAV, 2001). A planta é valorizada pelo seu fruto seco que é chamado de
cardamomo. O fruto, juntamente as sementes, contém OE, esteróis, ácidos
fenólicos e lipídios. Os frutos e as sementes do cardamomo possui em média 4%
de óleos essenciais. Entre os compostos ativos encontra-se o -pineno, sabineno,
1,8- cineol, 4-terpineol, -terpineol, o cineol, o limoneno, o cabineno e o pineno,
α-terpenyl acetato, linalool. A proporção dos constituintes no óleo é muito
variável. (RÍOS et al,.2007; SERESHTI et al. 2012). O OE tem atividade
antimicrobiana anti-inflamatório, analgésico e antiespasmódico (TYAGI et al.,
2009; JAMAL et al., 2006). É usado principalmente como um agente
aromatizante na preparação de doces, produtos de panificação, conservas de
25
fruta, arroz e carne. O óleo também é usado nas indústrias de perfumaria,
bebidas e farmacêuticos, como um sabor e carminativa. O teor de óleo essencial
de E. cardamomum é fortemente dependente das condições de armazenamento,
mas pode ser bem elevado e possuir atividade antimicrobiana contra bactéria
Gram-negativas e Gram -positivas (MAHADY et al., 2005).
2.6.2 Cymbopogon citratus
Cymbopogon é um gênero importante da família Poaceae e é
representado por cerca de 120 espécies e suas variedades, em torno de 100
espécies são encontradas em países tropicais. Esse gênero tem grande
importância econômica na produção de óleo essência, como por exemplo, o C.
citratus (NEGRELLE; GOMES, 2007). É conhecida popularmente com
diferentes nomes conforme a região onde se encontra: capim-limão, capim-
santo, erva-cidreira, capim-catinga, capim-de-cheiro, capim-cidrão,
capimcidrilho, capim-cidró e capim-ciri (COSTA et al., 2013).
Com base na medicina popular é utilizado como calmante, ministrado no
preparo de chá a partir de suas folhas; analgésico em dores estomacais,
abdominais e de cabeça; antifebril; antirreumático; carminativo; diurético, em
distúrbios digestivos (COSTA et al, 2013).
Cymbopogon citratus contém grande variedade de constituintes
químicos e uma grande proporção desses produtos é utilizada na indústria
alimentícia, na perfumaria, detergentes, cosméticos, produtos farmacêuticos e
insecticidas (EVANS, 1996; NEGRELLE; GOMES, 2007).
Porém, sua maior importância econômica consiste da obtenção do seu
óleo essencial. Sua composição química pode variar, sendo influenciada pela
diversidade genética e o habitat (SANTOS et al., 2009). O principal constituinte
é o citral, uma mistura dos isômeros geranial e neral e seu conteúdo varia entre
26
47 a 85% (ANDRADE et al., 2009). Em menor proporção foram identificados
outros constituintes químicos como o canfeno, citonelal, citronelol, farnesol,
geraniol, limoneno, linalol, mentol, mirceno, nerol, a-pineno, b-pineno e
terpineol (BASSOLÉ; JULIANI, 2012; WEI; WEE, 2013). Estudos realizados
têm demostrado a ação antimicrobiana do óleo essencial de C. citratus
(NGUEFACKA et al. 2012; BASSOLÉ; JULIANI, 2012; WEI; WEE, 2013).
2.6.3 Thymus vulgaris
Thymus vulgaris é uma planta aromática e condimentar pertencente à
família Lamiaceae, conhecida no Brasil como tomilho, arçã, arçanha, poejo,
segurelha, timo. Adapta-se bem nas regiões de climas temperados quentes
(SILVA JÚNIOR; VERONA, 1997). É considerada adstringente e expectorante,
com propriedades antissépticas, antifúngicas, antioxidantes e antimicrobianas
(LORENZI; MATOS, 2002; SILVA JÚNIOR; BADI et al., 2004).
O óleo essencial do tomilho é rico em timol e carvacrol, sendo que
outros compostos fenólicos, como taninos e flavonoides já foram encontrados
em extratos da planta (SHAN, 2011).
2.6.4 Syzygium aromaticum
A árvore produtora de Syzygium aromaticum, vulgarmente conhecida
como cravo da índia, da família Myrtaceae, é endêmica nas Moluscas do Norte
(Arquipélago de Moluscas, Indonésia), tendo sido disseminada pelos alemães
durante a colonização pelas outras ilhas do arquipélago, assim como para outros
países. Atualmente, Zanzibar e Madagascar são os principais produtores desta
espécie, seguidos pela Indonésia. No Brasil, praticamente apenas na Bahia, esta
27
especiaria é produzida na forma comercial (FRAIFE-FILHO et al., 2005;
CHAIEB et al., 2007; WENQIANG et al., 2007).
É muito utilizado também como condimento na culinária devido ao seu
marcante aroma e sabor conferido por um composto fenólico volátil, o eugenol.
Ele chega a representar aproximadamente 95% do óleo extraído das folhas
(GULCIN, 2012). Sua ação antimicrobiana foi demonstrada sobre vários
microrganismos, incluindo ação antilisterial em carne e queijo (MATAN et al.,
2006). O principal constituinte de botões de cravo é o eugenol. O óleo de cravo
foi listado como uma substância "geralmente considerada como seguro" pelo
FDA quando administrado em níveis que não excedam 1500 ppm nas categorias
de alimentos. Além disso, os peritos em aditivos alimentares da Organização
Mundial da Saúde (OMS) estabeleceram uma dose diária aceitável para o
consumo humano de óleo de cravo a 2,5 mg / kg de peso corporal humano
(KILDEAA et al., 2004).
2.6.5 Cinnamomum cassia
Cinnamomum cassia, a canela, constitui uma das mais antigas
especiarias conhecidas. Sua utilização é descrita desde os tempos remotos e o
controle de seu comércio foi um dos incentivadores das grandes explorações
marítimas. Seu primeiro relato legítimo ocorreu em trabalhos escrito na china no
século IV a.c. sobre a obtenção do óleo essencial tanto das cascas como das
folhas (PRITAM, et al. 2013). Muitas propriedades biológicas têm sido
estudadas e atribuídas à canela, como antioxidantes e antimicrobianas (SINGH
et al., 2007). Dentre os principais compostos temos o cinamaldeído e o eugenol
(PRITAM, et al. 2013). Estudos da Cinnamomum cassia verificou-se sua
atividade antimicrobiana para E. coli, Staphylococcus aureus e Pseudomonas
28
aeruginosa, mas alguns microrganismos deteriorantes de alimentos ainda não
foram estudados (PRITAM, et al. 2013).
2.7 Constituintes Químicos isolados dos óleos Essenciais
Os óleos essenciais são compostos por vários constituintes químicos e
está bem estabelecido que a maioria deles tem amplo espectro de atividade
antimicrobiana contra agentes patogênicos e bactérias deteriorantes de origem
alimentar (BASSOLÉ, et al., 2012; KLEIN et al., 2013; AZNAR et al., 2015).
No entanto, em geral, verifica-se que concentrações mais elevadas de OES são
necessárias para se obter os mesmos efeitos antimicrobianos do que os
compostos individuais, sendo esses uma alternativa a ser estudada (KLEIN et al.,
2013).
O α-terpineol é um álcool terpeno que têm demostrado atividade
antimicrobiana de largo espectro (PARK et al., 2009). Ele pode ser isolado de
diferentes OE, dentre eles o de cardamomo (PARK et al., 2012).
O citral é um aldeído naturalmente encontrado nas folhas e frutos de
várias espécies de plantas, incluindo árvores de murta, manjericão africano,
limões, limas, capim-limão, laranja e bergamota. É constituída por uma mistura
de dois isómeros, geranial e neral, e devido ao seu poderoso aroma de limão é
usado para aromatizar a bebidas à base de citrinos e outros produtos (RESS et al
2003; LALKO; API 2008). O citral é geralmente reconhecido como aditivo
alimentar seguro (GRAS) e foi aprovado pela Food and Drug Administration
para uso em alimentos (FDA, GRAS, 21 CFR 182 · 60). Além disso, citral foi
registrado pela Comissão Europeia para o uso como aromatizante em gêneros
alimentícios, porque o seu uso não apresenta risco à saúde do consumidor
(BURT, 2004). Levando-se em conta suas propriedades antimicrobianas,
agradável aroma frutado e segurança para os consumidores, citral pode se tornar
29
um ingrediente antimicrobiano adequado para utilização mais ampla na indústria
de alimentos. Embora seja um constituinte do óleo essencial amplamente
estudada, os principais fatores que afetam a resistência microbiana ao citral, o
seu mecanismo de ação antimicrobiana e a base biológica por trás da resistência
microbiana não são completamente compreendidos. Sabe-se que, em geral, a
membrana plasmática é o principal local de ação tóxica de terpenos (PRASHAR
et al 2003; LUO et al 2004;. PARK et al 2009), mas os mecanismos finais de
inibição de crescimento, lesão celular e inativação não são totalmente definidas.
O timol é um monoterpeno obtido do OE de tomilho e apresenta ampla
atividade antimicrobiano (AZNAR, et al, 2015).
O eugenol foi relatado ter atividade antifúngica (LEE; SHIBAMOTO,
2002; MIYAZAWA; HISAMA, 2003). Como aditivo alimentar, foi classificada
pelo FDA como uma substância considerada segura (GULCIN, 2012). Os altos
níveis de eugenol encontrado no óleo essencial de cravo possivelmente confere a
sua atividade antimicrobiana.
O cinamaldeído é o componente principal no óleo de canela e é um
GRAS para uso alimentar com base em 21 CFR (Code of Federal Regulation)
parte 172,515 (CFR 2009). Demonstrou ser o principal composto antimicrobiano
na canela, além de exibirem atividade antibacteriana, inibindo também o
crescimento de fungos e produção de microtoxinas (BEUCHAT, 1994).
30
3 CONSIDERAÇÕES FINAIS
O recente interesse na resistência de espécies de B. cereus enfatiza um
problema bem reconhecido no campo da qualidade e segurança de alimentos.
Este estudo mostrou que os compostos foram bem adequados no controle de
células planctônica e séssil, mesmo quando sujeito a condições de stress
subletais. No entanto, a exposição a concentrações subletais pode afetar biofilme
B. cereus, podendo torná-lo muito mais resistentes a esses compostos.
A heterogeneidade das cepas frente a exposição ao estresse pode
contribuir para a avaliação da otimização das margens de segurança para
condições de processamento de alimentos, a fim de garantir os alimentos de
qualidade e segurança alimentar.
Os resultados são importantes para uma nova linha de pesquisa a ser
seguido, novos estudos para elucidar os mecanismos responsáveis pelo aumento
da resistência ou susceptibilidade bacteriana.
31
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CAPÍTULO 2 Ação antimicrobiana dos óleos essenciais e seus compostos
sobre cepas de Bacillus cereus
RESUMO
Bacillus cereus é uma bactéria formadora de esporos, causadora de deterioração de alimentos e toxinfecção alimentar, com capacidade de formar
biofilme, sendo seu controle de grande interesse na indústria de alimentos. Os
objetivos deste trabalho foram avaliar a concentração mínima inibitória e a concentração mínima bactericida dos óleos essenciais de Cymbopogon citratus,
Thymus vulgaris, Elettaria cardamomum, Syzygium aromaticum e Cinnamomum
cassia, e dos seus compostos puros, citral, timol, α-terpineol, cinamaldeido e eugenol, sobre diferentes cepas de B. cereus. O óleo essencial de C. citratus e do
C. cassia, e seus compostos químicos individuais, citral e cinamaldeído,
respectivamente, apresentaram os melhores resultados para todas as cepas
testadas. As CMI e CMB para o óleo essencial de capim-limão e citral foram iguais para todas as cepas de B. cereus estudadas, 1,2 e 0,6 µL.mL
-1,
respectivamente. Já para a canela, houve variação da CMI e CMB, entretanto,
para a maioria das cepas, a CMI foi de 0,6 e a CMB de 1,2 µL.mL-1
. Portanto, resultados bem semelhantes, mostrando que a atividade antimicrobiana desses
óleos essenciais, está associada, principalmente, aos seus compostos
majoritários.
Palavras-chave: Citral. Cinamaldeído. Toxinfeção alimentar. Thymus vulgaris.
Elettaria cardamomum.
44
ABSTRACT
Bacillus cereus is a spore-forming bacteria, causes food spoilage and
food poisoning, with ability to form biofilm, such their control, of great interest
in the food industry. The objectives of this study were to evaluate the minimum
inhibitory concentration and minimum bactericidal concentration of essential oils of Cymbopogon citratus, Thymus vulgaris, Elettaria cardamomum,
Syzygium aromaticum and Cinnamomum cassia , and its individual chemical
compounds, citral, thymol, α-terpineol, cinnamaldehyde, eugenol on different strains of B. cereus. The essential oil of C. citratus and C. cassia and its
individual chemical compounds citral and cinnamaldehyde, respectively,
showed the best results for all tested strains.
Key-words: Bacillus cereus. Essential oil. Pure compounds.
45
1 INTRODUÇÃO
Bacillus cereus pertence ao grupo de bactérias Gram-positivas,
formadoras de endósporos, sendo classificado como patógeno humano
emergente. Em 2009, foi considerado a terceira causa mais importante de
incidentes coletivos de toxinfecção alimentar na Europa, precedido apenas por
Salmonella e Staphylococcus aureus (EFSA J. 2009). No entanto, doenças de
origem alimentar causadas por B. cereus, são, em grande parte, sub-relatadas,
pois seu relato não é obrigatório. São várias as estirpes de B. cereus observadas
como sendo capazes de causar doença de origem alimentar (NARANJO et al.,
2011; RAMARAO, 2012; RHEE et al., 2015).
Em todo o mundo, há grande número de cepas bacterianas resistentes a
múltiplas drogas, aumentando a morbidade, os custos inerentes à saúde pública,
e as taxas de mortalidade devido a infecções (DIAS; MONTEIRO, 2010).
No que diz respeito a crescente importância dada às infecções
bacterianas, e o desenvolvimento progressivo da resistência antimicrobiana,
grande número de estudos têm sido realizados com produtos naturais, em busca
de nova perspectiva de antimicrobiano (STOJKOVIC et al., 2011; MILLEZI et
al., 2012; MILLEZI et al., 2013). Muitas plantas foram avaliadas, não apenas
pela sua atividade antimicrobiana direta, mas também como agente modificador
de resistência (SCHALLENBERGER et al., 2010). Além disso, nos últimos
anos, a busca por substâncias antimicrobianas naturais, como os óleos
essenciais, tornou-se popular devido às demandas de produtos mais naturais e
seguros.
Os óleos essenciais de plantas são misturas complexas de substâncias
voláteis isoladas por diferentes processos físicos. Ao longo da história, os óleos
essenciais vêm sendo empregados como agentes antimicrobianos, e
recentemente, vêm sendo usados em grande número de fármacos, alimentos e
46
cosméticos, uma vez que estes óleos são capazes de inibir de forma ampla e
eficaz, o crescimento de várias espécies de microrganismos, com menos efeitos
colaterais, do que os agentes antimicrobianos tradicionais (NEREYDA, 2011).
Apesar do uso generalizado dos óleos essenciais, pouco se conhece
sobre seu potencial de ação, sendo necessário ainda, muitos estudos nesse
campo. Assim, muitos pesquisadores têm colaborado na caracterização e
confirmação das propriedades antimicrobianas dos óleos essenciais de diferentes
plantas (PARK et al., 2009; ABDELWAHAB et al., 2010; RANA, et al., 2011;
STOJKOVIC et al., 2011; MILLEZI et al., 2012; MILLEZI et al., 2013;
OLIVEIRA, et al., 2012; OLIVEIRA; BRUGNERA; PICCOLI 2013; AZNAR
et al., 2015).
A atividade antimicrobiana é uma das mais importantes propriedades
dos óleos essenciais. Assim, conhecer o efeito inibitório dos óleos essenciais e
dos compostos individualizados, é fundamental para elucidar a ação destes (LIU;
YANG, 2012; AZNAR et al., 2015). A partir disso, é possível entender a
importância relativa do componente individual do óleo essencial, em toda a sua
atividade antimicrobiana.
A maioria dos estudos tem sido realizada com os óleos essenciais
(OLIVEIRA et al., 2010; MILLEZI et al., 2012; OLIVEIRA, et al., 2012;
MILLEZI et al., 2013). No entanto, os compostos individuais dos óleos
essenciais, são estruturalmente diferentes, e por terem propriedades químicas
distintas, tais como volatilidade e estabilidade oxidante, podem apresentar
atividade antimicrobiana diferente do óleo essencial.
Portanto, os objetivos deste estudo foram investigar a atividade
antimicrobiana in vitro de óleos essenciais de Elettaria cardamomum
(cardamomo), Cinnamomum cassia (canela), Syzygium aromaticum (cravo),
Cymbopogon citratus (capim-limão), Thymus vulgaris (tomilho); e a ação
47
individual dos compostos α-terpineol, cinamaldeido, eugenol, citral e timol
sobre cepas de B. cereus.
48
2 MATERIAIS E MÉTODOS
2.1 Óleos essenciais e compostos dos óleos essenciais
Os óleos essenciais (OEs) de cardamomo, canela, cravo, capim-limão e
tomilho foram adquiridos da FERQUIMA Ind. e Com. LTDA, e os compostos
puros α-terpineol (pureza = 90%), cinamaldeido (pureza = 93%), eugenol
(pureza = 99%), citral (pureza = 95%) e timol (pureza = 99,5%), foram
adquiridos da Sigma – Aldrich. Grau de pureza fornecido pela Sigma – Aldrich.
2.2 Microrganismos e padronização dos inóculos
Foram utilizadas as cepas de Bacillus cereus ATCC 14579, B. cereus
ATCC 11778, B. cereus CCT 2897 e B. cereus CCT 7453. Durante todo o
experimento, as cepas foram estocadas em meio de congelamento (15 mL
glicerol; 0,5 g peptona bacteriológica; 0,3 g de extrato de levedura e 0,5 g NaCl;
100 mL de água destilada, pH 7,2-7,4). A padronização do inóculo foi realizada
mediante curva de crescimento. A cepa foi reativada pela transferência de
alíquotas da cultura estoque, e foram transferidas para caldo Brain Heart
Infusion (BHI, Himedia, Índia), com auxílio de alça de repicagem. Foram
realizados três repiques consecutivos, com incubação a 32°C por 24 horas. Após
a terceira repicagem, a cultura foi estriada em Agar Triptona de Soja (TSA)
(Himedia®, Índia) e incubada a 32 °C por 24 horas. As colônias formadas na
superfície de TSA foram removidas e transferidas para 50 mL de caldo BHI, e
incubadas a 32 ºC. O crescimento foi monitorado por leituras periódicas em
espectrofotômetro (CARY Varian Inc.), (D.O 600 nm) e plaqueamento em
superfície em TSA, e incubação a 32 ºC por 24h. A cultura foi padronizada em
108UFC.mL
-1.
49
2.3 Determinação da concentração mínima inibitória e da concentração
mínima bactericida dos óleos essenciais
A Concentração Mínima Inibitória (CMI) dos EOs foi determinada
utilizando-se a técnica da microdiluição em caldo, em placas de poliestireno de
96 cavidades, de acordo com o National Committee for Clinical Laboratory
Standards (M7-A6) (NCCLS,2003), com adaptações.
Para tanto, soluções de BHI acrescidas de 0,5% de Tween 80, e de óleos
essenciais ou compostos dos óleos essenciais, foram preparadas nas
concentrações de 80; 40; 20; 10; 5; 2,5; 1,2; 0.6; 0.3; e 0,0 µL. mL-1
. Alíquotas
de 150µL dessas soluções foram adicionadas nas cavidades.
Previamente, as culturas estoque foram inoculadas em 50 mL de caldo
BHI e incubadas a 32 °C por 24 h. Após esse período, as culturas foram
padronizadas em 105 UFC.mL
-1 (LIU; YANG, 2010). Alíquotas de 10 µL dessa
cultura foram adicionadas às soluções contendo os óleos essenciais, ou
compostos dos óleos essenciais, previamente dispensadas nas cavidades das
microplacas. Estas foram tampadas e incubadas a 32 °C por 24h. A concentração
mínima inibitória (CMI) foi determinada por avaliação visual do crescimento
bacteriano pela turvação do meio. Em seguida, a concentração mínima
bactericida (CMB) foi determinada verificando-se o crescimento celular em
placas contendo TSA. Como controle positivo, foi utilizado caldo BHI
inoculado com B. cereus, sem adição de óleo ou componente testados. Para o
controle negativo utilizou-se caldo BHI acrescido de 0,5% de Tween 80, e óleo
essencial ou seus componentes. Todo o experimento foi realizado em triplicata e
três repetições. A CMI foi definida como a menor concentração de óleo
essencial e dos seus compostos, que resultou na ausência de crescimento visível
em caldo; e a CMB foi definida como a menor concentração do óleo essencial e
50
de seus compostos, que resultou na ausência de crescimento de B. cereus em
placa.
2.4 Análise Estatística
Foi utilizado o teste não paramétrico de Kruskal-Wallis para confrontar
tratamentos independentes. Com análise significativa (p<0,05) foram aplicados
os testes de Dunn e o de Student-Newman-Keuls, para comparações múltiplas
entre os tratamentos (Programa SPSS 19.0).
51
3 RESULTADOS E DISCUSSÃO
Os resultados da CMI e CMB dos cinco óleos essenciais estão
apresentados na Tabela 1.
Os óleos essenciais avaliados apresentaram atividade antimicrobiana em
concentrações abaixo de 5 µL.mL-1, exceto os óleos essenciais de cardamomo e
tomilho, onde a atividade antimicrobiana ocorreu em concentrações acima de 20
µL.mL-1
.
Os óleos essenciais de canela e capim-limão foram os mais eficazes
sobre todas as cepas B. cereus avaliadas, tanto para a atividade bactericida,
quanto para a bacteriostática. O óleo essencial de canela apresentou CMI de 1,2
µL.mL-1
para todas as cepas, e o óleo essencial de capim -limão apresentou CMI
de 1,2 µL.mL-1
para B. cereus ATCC 14579 e 0,6 µL.mL-1
para as demais cepas.
Na Tabela 2, são mostrados os resultados da atividade bacteriostática e
bactericida dos compostos puros sobre as cepas de B. cereus.
Os compostos avaliados apresentaram atividade antimicrobiana em
concentrações abaixo de 5 µL.mL-1
para todas as cepas testadas. Os valores de
CMI e CMB para os compostos mostraram que os mais eficazes, para todas as
cepas estudadas, foram o cinamaldeido e o citral (compostos majoritários dos
óleos essenciais de canela e capim-limão). O cinamaldeído e o citral
apresentaram atividade bacteriostática e bactericida em concentrações abaixo de
1,2 µL.mL-1
, demonstrando maior efeito antimicrobiano comparado aos demais
compostos testados.
52
Tabela 1 Concentração Mínima Inibitória (CMI) e concentração mínima bactericida (CMB) de óleos essenciais para estirpes de Bacillus cereus
Óleo Essencial (µL.mL-1
)
Bacillus cereus E. cardamomum C. cassia S. aomaticum C. citratus T. vulgaris
CMI CMB CMI CMB CMI CMB CMI CMB CMI CMB
ATCC 14579 40 40 1,2 1,2 2,5 5,0 1,2 1,2 20 20
ATCC 11778 40 40 0,6 1,2 2,5 2,5 1,2 1,2 40 40
CCT 7453 20 20 0,6 1,2 5,0 5,0 1,2 1,2 20 20
CCT 2897 20 20 0,6 0,6 5,0 5,0 1,2 1,2 40 40
53
Tabela 2 Concentração Mínima Inibitória (CMI) e a concentração mínima bactericida (CMB) dos compostos puros para estirpes de Bacillus cereus
Componente (µL.mL-1
)
Bacillus cereus α-terpineol Cinnamaldeido Eugenol Citral Timol
CMI CMB CMI CMB CMI CMB CMI CMB CMI CMB
ATCC 14579 5 5 1,2 1,2 2,5 2,5 0,6 0,6 2,5 2,5
ATCC 11778 5 5 0,6 0,6 5,0 5,0 0,6 0,6 2,5 2,5
CCT 7453 2,5 2,5 0,6 1,2 1,2 2,5 0,6 0,6 2,5 2,5
CCT 2897 5 5 0,6 0,6 5,0 5,0 0,6 0,6 0,6 0,6
54
As cepas avaliadas apresentaram variada sensibilidade aos óleos
essenciais e aos compostos puros. Delgado et al. (2004), avaliando diferentes
cepas de B. cereus a antimicrobianos naturais, também encontraram diferentes
graus de sensibilidade aos compostos testados, para as cepas estudadas.
O gênero Bacillus é reconhecido como sendo geneticamente mais
heterogêneo do que a maioria dos outros gêneros de bactérias. As espécies do
mesmo gênero, da maioria das bactérias, geralmente não se diferem mais do que
10 a 15% na sua composição de bases de DNA, ao passo que as estirpes de
Bacillus têm variação de 32 a 69% de teor G + C (ZWICK et al., 2012;
CARLSON et al., 1992). Esta variabilidade genética pode fazer as estirpes
apresentarem resistência variada aos mesmos antibacterianos.
A estrutura química dos compostos dos óleos essenciais influencia seu
modo de ação sobre a célula bacteriana. Devido à variabilidade de compostos
químicos presentes nos óleos essenciais, observa-se que a atividade
antibacteriana não é atribuída somente a um mecanismo específico, havendo
múltiplos alvos na célula bacteriana (LV et al., 2011; ZWICK et al., 2012). Os
mecanismos de ação dos óleos podem afetar outros alvos além de seu alvo
principal (BURT, 2004). Foi demonstrado entre os mecanismos, que os óleos
essenciais, por serem lipofílicos, atravessam a parede celular e a membrana
citoplasmática, interrompendo sistemas enzimáticos, comprometendo o material
genético da bactéria (BURT et al., 2007; DE SOUZA et al., 2010; LV et al.,
2011; BAJPAI; BAEK; KANG, et al. 2012).
Confirmando os resultados encontrados nesse trabalho, estudos
realizados anteriormente demonstraram que os compostos testados podem ser
considerados agentes antimicrobianos de largo espectro (RAYBAUDI-
MASSILIA et al. 2008; PEI, et al., 2009; GALLUCCI, et al., 2010; OLIVEIRA
et al. 2012; LIANG, et al., 2015).
55
O citral e o óleo essencial de capim-limão apresentaram efeitos similares
sobre as cepas de B. cereus. As cepas avaliadas também apresentaram a mesma
sensibilidade para o óleo essencial de canela e o composto cinamaldeído. Esse
resultado pode ser explicado, uma vez que o óleo de capim-limão e canela
possuem o citral (65-85%) e o cinamaldeído (75-90%) como componentes
majoritários, respectivamente (CHANTHAI et al. 2012; NG; WU, 2011).
Embora haja considerável variabilidade na composição dos óleos
essências, obtidos de diferentes espécies de canela e capim-limão, observa-se
que esses contêm em maior quantidade em relação aos demais compostos, o
cinnamaldeido e o citral, respectivamente (WANG et al., 2009; CHANTHAI et
al. 2012). Assim, os valores encontrados para as cepas avaliadas nesse trabalho,
são indicativos de que o efeito dos óleos essenciais de capim limão e canela está
relacionado à presença do citral e cinamaldeído, respectivamente.
O cinamaldeído, um fenilpropanoide, não está associado à ruptura da
membrana celular, mas pode inibir a atividade de várias enzimas celulares e
proteínas, devido a sua facilidade de penetração na célula, em função da
solubilidade em água (KHAYYAT; SADDIQ, 2015). Essa solubilidade se deve
ao grupo carbonila livre do cinamaldeído, o qual pode reagir prontamente com
os grupos amino livres dos aminoácidos, formando adutos bases Schiff (FEHN
ET AL., 2001), cuja principal vantagem é a sua solubilidade em água.
Para a maioria dos óleos essenciais e compostos testados, a CMB
apresentou valor igual à CMI, exceto para o cinamaldeído e o eugenol, que
apresentaram valores de CMB maior que a CMI. Estudo realizado por Kwon et
al. (2003), demostrou que o cinamaldeido pode inibir a divisão celular de B.
cereus, impedindo o aumento do número de células no meio de cultivo, sem
levar à morte celular.
Ao comparar os resultados obtidos para as diferentes cepas de B. cereus
utilizadas (Tabelas 1 e 2), verifica-se que a sensibilidade B. cereus é dependente
56
da cepa e do óleo essencial e compostos utilizados. Isso demonstra o risco da
tomada de decisão, de se utilizar um antimicrobiano natural baseada na análise
de apenas uma cepa, ou de apenas um óleo essencial ou composto.
57
4 CONCLUSÃO
De maneira geral, enfatiza-se que a avaliação da atividade
antimicrobiana de óleos essenciais e seus constituintes sobre células
planctônicas, deve ser a etapa inicial para selecionar os agentes mais ativos a
serem posteriormente avaliados, como conservantes naturais em alimentos, ou
como constituintes de soluções sanificantes.
Quanto ao efeito antibacteriano sobre as cepas de B. cereus, com base
nos resultados de todas as quatro cepas testadas, os compostos são eficientes
para a inativação destas, podendo ser novas alternativas para o controle de B.
cereus em indústrias de alimentos.
58
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62
CAPÍTULO 3 Potencial tolerância biocida e impacto sobre a resposta
adaptativa à concentrações subletais de soluções de três
terpenóides e dois fenilpropanóides, em cepas de Bacillus
cereus
RESUMO
A rápida evolução de certos microrganismos permite sua adaptação em
ambientes e condições distintas, desenvolvendo tolerância, e até mesmo resistência ao aumento de um ou mais estresses. O uso de compostos obtidos a
partir de produtos naturais tem sido estudado como possível alternativa ao
controle de crescimento e aquisição de resistência por esses microrganismos.
Esse trabalho visou verificar a adesão e atividade antibiofilme de cepas B.cereus; verificar ação sanificante frente aos compostos α-terpineol,
cinamaldeído, eugenol, citral e timol e; posteriormente, estudar a adaptação e a
adaptação cruzada à concentrações subletais de dois compostos mais efetivos, em células sésseis de cepas de B. cereus. As cepas de B. cereus apresentaram
adesão e atividade antibiofilme frente aos compostos testados. As soluções
sanificantes apresentaram atividade bactericida contra células planctônicas e sésseis, porém, foram encontradas diferenças significativas entre as
concentrações (p<0,005). As soluções de citral e cinamaldeído foram as mais
eficazes para todas as cepas testadas. Os resultados obtidos demonstraram que B.
cereus apresentou adaptação e adaptação cruzada ao citral e cinamaldeído. O presente trabalho sugere estudos futuros ainda mais abrangentes quanto à
potencialidade antimicrobiana destes compostos
Palavras- chave: Antimicrobianos naturais. Compostos bioativos. Patógeno alimentar.
63
ABSTRACT
Some microorganisms have rapid evolved and their adaptation in different environments and conditions, developing tolerance and even resistance
to the increase of one or more stresses. The use of compounds obtained from
natural products have been studied as an alternative to growth control and
acquisition of resistance to these microorganisms. This study aimed to verify adherence and antibiofilm activity of B. cereus strains; verify action sanitizing
front of α-terpineol compounds cinnamaldehyde, eugenol, citral and thymol, and
then study the adaptation and cross-adaptation to sublethal concentrations of the two most effective compounds in sessile cells of B. cereus strains. The strains of
B. cereus showed adhesion and antibiofilm activity against the tested
compounds. The sanitizing solutions showed bactericidal activity against
planktonic and sessile cells, however significant differences were found between concentrations (p <0.005). The solution citral and cinnamaldehyde were the
most effective for all strains tested. The results showed that B. cereus introduced
adaptation and cross-adaptation to citral and cinnamaldehyde. This study suggests future studies even more comprehensive as the antimicrobial potential
of these compounds.
Key-words: Natural antimicrobial. Bioactive compounds. Food pathogen.
64
1 INTRODUÇÃO
Bacillus cereus é uma bactéria formadora de endósporos comumente
isolada de produtos alimentícios, podendo causar toxinfecções alimentares,
síndrome emética ou diarreica (RAHIMI et al., 2013; RHEE et al., 2015). Além
disso, a literatura sugere três aspectos importantes resultantes da presença de B.
cereus na indústria alimentar, o que torna seu controle difícil. Em primeiro
lugar, é pouco provável conseguir evitar a contaminação total, uma vez que esta
bactéria (sob a forma de células vegetativas e endósporos) é amplamente
difundida no ambiente natural, em particular, no solo. Em segundo lugar, tem a
capacidade de adesão e formação de biofilme em diferentes superfícies, e a
temperatura de processamento da maioria dos alimentos é geralmente
insuficiente para destruir seus endósporos, que permanecerão viáveis no produto
e nas superfícies de processamento (GRANUM, 2001; ARAÚJO et al., 2009;
JAN et al., 2011; PADEGAR; SINGH, 2012).
Ao longo da cadeia alimentar, superfícies industriais molhadas, com
falhas nos procedimentos de limpeza e higienização, podem proporcionar
substrato para o desenvolvimento e persistência de um ecossistema dinâmico
espacialmente organizado, chamado biofilme, que pode conter microrganismos
patogênicos (WINKELSTROTER et al., 2013).
Os microrganismos, quando em biofilme, alteraram a sua fisiologia,
tornando-se mais resistentes aos agentes antimicrobianos, antibióticos e
desinfetantes disponíveis no comércio, por conseguinte, desempenham papel-
chave na capacidade dos microrganismos patogênicos persistirem na cadeia
alimentar (VERRAES et al., 2013).
Antimicrobianos naturais, como óleos essenciais e seus componentes,
são alternativa aos antimicrobianos tradicionais, e têm a vantagem de que as
suas origens naturais não levam à rejeição do consumidor. No entanto, antes da
65
indústria utilizá-los em grande escala, é necessário conhecer seus efeitos sobre
microrganismos.
As propriedades antimicrobianas dos óleos essenciais têm sido relatadas
em vários estudos (BAKKALI, et al., 2008; BAJPAI; BAEK; KANG, et al.,
2012). Em muitos casos, a atividade resulta de complexa interação entre as
diferentes classes de compostos, tais como fenóis, aldeídos, cetonas, álcoois,
ésteres, éteres ou hidrocarbonetos, encontrados nos óleos essenciais (BAJPAI;
BAEK; KANG, et al., 2012). Porém, em alguns casos, a bioatividade dos óleos
essenciais está intimamente relacionada à atividade de um composto específico
nele presente (BASSOLÉ; JULIANI, 2012).
Neste trabalho, foi avaliada a ação sanificante dos componentes α-
terpineol, cinamaldeído, eugenol, citral e timol, sobre células planctônicas e
séssil, de cepas de Bacillus cereus; e o efeito da exposição das células
bacterianas à concentrações subletais, dos compostos que apresentaram maior
atividade antimicrobiana.
66
2 MATERIAIS E MÉTODOS
2.1 Componentes majoritários
Os componentes α-terpineol (pureza = 90%), cinnamaldeido (pureza =
93%), eugenol (pureza = 99%), citral (pureza = 95%), timol (pureza = 99,5%),
foram adquiridos da Sigma – Aldrich. Grau de pureza fornecido pela Sigma –
Aldrich.
2.2 Microrganismos e padronização dos inóculos
Foram utilizadas as cepas de Bacillus cereus ATCC 14579, B. cereus
ATCC 11778, B. cereus CCT 2897 e B. cereus CCT 7453. Durante todo o
experimento, as cepas foram estocadas em meio de congelamento (15 mL
glicerol; 0,5 g peptona bacteriológica; 0,3 g de extrato de levedura e 0,5 g NaCl;
100 mL de água destilada, pH 7,2-7,4). A padronização do inóculo foi realizada
mediante curva de crescimento. A cepa foi reativada pela transferência de
alíquotas da cultura estoque, que foram transferidas para caldo Brain Heart
Infusion (BHI, Himedia, Índia), com auxílio de alça de repicagem. Foram
realizados três repiques consecutivos, com incubação a 32°C por 24 horas. Após
a terceira repicagem, a cultura foi estriada em Agar Triptona de Soja (TSA)
(Himedia®, Índia) e incubada a 32 °C por 24 horas. As colônias formadas na
superfície de TSA foram removidas e transferidas para 50 mL de caldo BHI, e
incubadas a 32 ºC. O crescimento foi monitorado por leituras periódicas em
espectrofotômetro (CARY Varian Inc.), (D.O 600 nm) e plaqueamento em
superfície em TSA, e incubação a 32 ºC por 24h. A cultura foi padronizada em
108UFC.mL
-1.
67
2.3 Determinação das concentrações mínimas inibitórias e bactericidas dos
componentes sobre células planctônicas
Os inóculos utilizados foram obtidos a partir da inoculação das culturas
estoque em 50 mL de caldo BHI, e incubados a 32 °C por 24 h. Após esse
período, as culturas foram padronizadas em 105 UFC.mL
-1.
A Concentração Mínima Inibitória (CMI) dos componentes majoritários
α-terpineol, cinamaldeido, eugenol, citral e timol, foi determinada utilizando-se
a técnica da microdiluição em caldo, em placas de poliestireno de 96 cavidades,
de acordo com o National Committee for Clinical Laboratory Standards (M7-
A6) (NCCLS,2003), com adaptações.
Para tanto, soluções antimicrobianas contendo caldo BHI acrescido de
0,5% de Tween 80 e de compostos majoritários, foram preparadas nas
concentrações de 80; 40; 20; 10; 5; 2,5; 1,2; 0.6; 0.3; e 0,0 µL. mL-1
. Alíquotas
de 150µL dessas soluções foram adicionadas nas cavidades.
Alíquotas de 10 µL das culturas padronizadas foram adicionadas às
soluções antimicrobianas dispensadas nas cavidades das microplacas, que foram
tampadas e incubadas a 32 °C por 24h. A CMI foi determinada por avaliação
visual do crescimento bacteriano pela turvação do meio. A CMI foi definida
como a menor concentração de compostos, que resultou na ausência de
crescimento visível em caldo.
A concentração mínima bactericida (CMB) foi determinada verificando-
se o crescimento celular em placas contendo TSA. Como controle positivo foi
utilizado caldo BHI inoculado com B. cereus, sem adição de componente
majoritário. Para o controle negativo utilizou-se caldo BHI acrescido de 0,5% de
Tween 80 e componente majoritário. A CMB foi definida como a menor
concentração dos compostos, que resultou na ausência de crescimento de B.
68
cereus em placa. Todo o experimento foi realizado em triplicata e três
repetições.
2.4 Formação de biofilme por cepas de Bacillus cereus
As cepas de B. cereus foram avaliadas quanto à capacidade de formar
biofilme em microplacas de poliestireno e cupons de aço inoxidável.
2.4.1 Classificação da capacidade de formação de biofilme de cepas de B.
cereus
Os biofilmes de B. cereus foram formados nas cavidades das
microplacas, pela inoculação de alíquotas de 50 µL de cultura padronizada em
150 µL de BHI, e incubados a 32 ºC por 48 h. Para controle negativo foi
adicionado nas cavidades, 200 µL de BHI. Após esse período, a cultura foi
removida e as cavidades foram lavadas três vezes consecutivas com solução
salina (0,85% m/v), para remoção das células não aderidas. Em seguida, 200 µL
de solução de cristal violeta (0,1% m/v) foi adicionado em cada cavidade. Após
10 minutos de contato, a solução de cristal violeta foi removida, e os poços
foram lavados três vezes com solução salina (0,85% m/v). Os biofilmes visíveis
como anéis corados nas paredes das cavidades, foram desprendidos após a
secagem das placas ao ar, pela adição de 200 µL de etanol a 95% (v/v). Após 10
minutos de contato, o conteúdo das cavidades foi homogeneizado e transferido
para nova microplaca. A concentração de cristal violeta na fase líquida foi
avaliada, medindo-se a absorbância a 600nm em leitor de microplaca (adaptado
de MERRITT et al., 2005).
A classificação que segue foi utilizada para determinar a capacidade de
formação de biofilme: não-formadoras de biofilme (DOA ≤ Docn); fracamente
69
formadora de biofilme (Docn <Doa≤2xDocn); moderadamente formadora de
biofilme (2xDocn <Doa≤4xDocn) e; fortemente formadora de biofilme (4xDocn
<DOA). Doa é a densidade óptica do biofilme e Docn é a densidade óptica do
controle de crescimento negativo (STEPANOVIÉ et al., 2000). Os valores finais
foram obtidos pelas médias aritméticas das absorbâncias lidas, sendo realizadas
8 replicatas.
2.4.2 Formação de biofilmes de cepas de B. cereus em cupons de aço
inoxidável
Cupons de aço inoxidável AISI 304 (#4) (1x8x18mm) foram
previamente higienizados e esterilizados de acordo com Rossoni e Gaylard
(2000), citado por Oliveira et al. (2010). Duas cepas com maior capacidade de
adesão, determinadas anteriormente, foram utilizadas para o teste de adesão
sobre aço inoxidável: B. cereus ATCC 14579 e B. cereus CCT 2897.
Os cupons foram dispostos em placas de Petri (120 mm de diâmetro)
contendo 60 mL de BHI. Em seguida, os inóculos padronizados foram
acrescentados na concentração final de 7 log UFC.mL-1
. A incubação foi
conduzida a 32 ºC, por 72 h, em condições estáticas. Durante esse período, a
cada 12 horas, a adesão foi avaliada pela retirada de cupons do meio de cultivo,
que foram lavados três vezes com solução salina para remoção das células não
aderidas, imersos em água peptonada 0,1% (m/v) contida em tubo de ensaio, e
submetidos a agitação por 2 minutos em agitador tipo vortex, para remoção das
células sésseis. Alíquotas de 10 µL das diluições adequadas foram plaqueadas
em TSA, empregando-se a técnica de microgota, e incubadas a 32 ºC por 12 h.
70
2.5 Determinação das concentrações mínimas bactericidas dos componentes
majoritários sobre biofilmes de cepas de Bacillus cereus
Os cupons contendo os biofilmes de B. cereus ATCC 14579 e B. cereus
CCT 2897 foram imersos em solução salina acrescida de 0,5% de Tween 80 e
dos componentes majoritários nas concentrações de 80; 40; 20; 10; 5; 2,5; 1,2;
0,6; e 0,3 µL. mL-1
. Após 20 minutos de contato à temperatura ambiente e
condições estáticas, os cupons foram lavados três vezes com solução salina, para
remoção dos compostos residuais. Em seguida, foram transferidos para tubos de
ensaio contendo água peptonada 0,1% (m/v) e submetidos a agitação por 2
minutos em agitador tipo vortex, para remoção das células sésseis. Alíquotas de
10 µL das diluições adequadas foram plaqueadas em TSA, empregando-se a
técnica de microgota, e incubadas a 32 ºC por 12 h.
A concentração mínima bactericida (CMBB) dos componentes
majoritários sobre os biofilmes de B. cereus, foi definida como a menor
concentração de antimicrobiano capaz de reduzir a números indetectáveis em
TSA, as células destacadas do biofilme.
2.6 Formação de biofilme por Bacillus cereus em condições de estresse
subletal
A influência do estresse subletal, causada pela presença dos compostos α
- terpineol, cinamaldeído, eugenol, citral e timol na formação de biofilme por B.
cereus foi avaliada.
Biofilmes de B. cereus ATCC 14579 e B. cereus CCT 2897 em aço
inoxidável, foram formados em presença de concentrações subletais dos
compostos majoritários, observando-se as CMBB para os microrganismos. Os
compostos na concentração de 1/4 CMBB impediram a formação dos biofilmes,
71
assim, testes foram realizados para determinar a concentração máxima subletal
(CMS), que permite o crescimento do microrganismo (Di PASQUA et al.,
2010). Definiu-se então, ¼ da CMB das células planctônicas, como a CMS para
ser utilizada.
Os cupons de aço inoxidável foram dispostos em placas de Petri (120
mm de diâmetro) contendo 60 mL de BHI, adicionados de 0,5% de Tween 80 e
CMS (¼ MCB) dos compostos (Tabela 1).
Em seguida, os inóculos padronizados foram adicionados na
concentração final de 7 log UFC.mL-1
e as placas incubadas em condições
estáticas a 32 ºC por 48 horas. O biofilme controle foi formado sob as mesmas
condições, entretanto, sem adição dos compostos.
Após as 48h de incubação, os cupons foram lavados três vezes com
solução salina 0,85% (m/v) para remoção das células não aderidas, transferidos
para tubos de ensaio contendo água peptonada 0,1% (m/v), e submetidos a
agitação por 2 minutos em agitador tipo vortex, para remoção das células
sésseis. Alíquotas de 10 µL das diluições adequadas foram plaqueadas em TSA,
empregando-se a técnica de microgota, e incubadas a 32 ºC por 12 h.
72
Tabela 1 Concentração subletal dos componentes majoritários usados no cultivo de Bacillus cereus para formação de biofilme em cupons de
aço inoxidável
Compostos
Concentração subletal (µL. mL-1
)
ATCC 14579 CCT 2897
α -terpineol 1,2 1,2
Cinamaldeído 0,3 0,15
Eugenol 0,6 1,2
Citral 0,15 0,15
Timol 0,6 0,15
Controle 0 0
2.7 Determinação da concentração mínima bactericida dos componentes
majoritários sobre biofilmes adaptados
Após formação de biofilmes de B. cereus ATCC 14579 e B.cereus CCT
2897 sobre cupons de aço inoxidável por 48h, estes foram retirados das placas e
expostos por 20 minutos a soluções contendo solução salina, 0,5% de Tween 80,
e componentes majoritários nas concentrações de ¼ CMB. Os cupons foram
removidos e lavados três vezes com solução salina 0,85% (m/v), para remover a
solução residual. Em seguida os cupons foram novamente dispostos em placas
de Petri (120 mm de diâmetro) contendo 60 mL de BHI, e incubados a 32 °C por
12 h em condições estáticas.
Os cupons contendo os biofilmes adaptados foram transferidos para
tubos de ensaio contendo água destilada, 0,5% de Tween 80 e os mesmos
componentes majoritários, aos quais foram expostos anteriormente em
concentrações subletais, nas concentrações de 80; 40; 20; 10; 5; 2,5; 1,2; 0,6; e
0,3 µL. mL-1
. Após 20 minutos de contato à temperatura ambiente, e condições
estáticas, os cupons foram lavados três vezes com solução salina, para remoção
73
das células não aderidas, transferidos para tubos de ensaio contendo água
peptonada 0,1% (m/v) e submetidos a agitação por 2 minutos em agitador tipo
vortex, para remoção das células sésseis. Alíquotas de 10 µL das diluições
adequadas foram plaqueadas em TSA, empregando a técnica de microgota, e
incubadas a 32 ºC por 12 h.
2.8 Determinação da concentração mínima bactericida do citral e
cinamaldeído sobre biofilmes adaptados
Com base no teste anterior, foram selecionados o citral e o
cinamaldeído, compostos com a atividade antimicrobiana mais elevada dentre
todos, para a avaliação da capacidade de adaptação cruzada do biofilme.
Os cupons foram dispostos em placas de Petri (120 mm de diâmetro)
contendo 60 mL de BHI e incubados a 32 °C por 48 h em condições estáticas.
Durante esse período, a cada 12 horas, avaliou-se a formação de biofilme. Após
as 48h de incubação, os cupons foram removidos, lavados três vezes com
solução salina para remoção das células não aderidas, e sanificados em solução
de água destilada, 0,5% de Tween 80 e concentrações subletais (¼ MCB) de
citral e cinamaldeído, por 20 minutos em temperatura ambiente, e condições
estáticas Após exposição ao estresse subletal, os cupons foram novamente
dispostos em placas de Petri (120 mm de diâmetro), contendo 60 mL de BHI e
incubados a 32 °C por 12 h em condições estáticas.
Após esse período, os cupons foram submetidos à sanitização. Foram
removidos e lavados três vezes com solução salina, para retirar as células não
aderidas. Em seguida, os cupons foram sanificados em solução de água destilada
contendo 0,5% (v/v) de Tween 80, e do componente puro em diferentes
concentrações (Tabela 2).
74
Tabela 2 Composição das soluções sanificantes usadas no tratamento dos biofilmes de B. cereus em cupons de aço inoxidável
Soluções
Composição
Água destilada com
0,5% Tween 80 (µL.
mL-)
Cinamaldeido
(µL. mL-)
Citral
(µL. mL-)
SC 100,00 0,00 0,00
SCIN 1 99,70 0,3 0,00
SCIN 2 99,85 0,15 0,00
SCIT 1 99,85 0,00 0,15
SCIT 2 99,85 0,00 0,15
SC (solução controle). Scin 1 (solução com concentração subletal de cinamaldeído, preparado para cepa ATCC 14579). Scin 2 (solução com concentração subletal de
cinamaldeído, preparado para cepa CCT 2897). SCIT 1 (solução com concentração
subletal de citral, preparado para cepa ATCC 14579). SCIT 2 (solução com
concentração subletal de citral, preparado para cepa CCT 2897).
O tratamento foi mantido por 20 minutos em temperatura ambiente e
condições estáticas. Os cupons foram lavados três vezes numa solução salina
para remover os compostos residuais. Em seguida foram imersos em tubos de
ensaio contendo água peptonada a 0,1% (m/v), e agitados por 2 minutos em
agitador tipo vortex, para remoção das células sésseis. Alíquotas de 10 µL das
diluições adequadas foram plaqueadas em TSA, empregando a técnica de
microgota, e incubadas a 32 ºC por 12 h.
2.9 Análise estatística
O experimento foi conduzido em dois delineamentos.
75
2.9.1 Desenvolvimento do biofilme
Delineamento inteiramente casual em arranjo fatorial 2 x 5 (estirpes x
tempos de formação), em três repetições. Os resultados foram submetidos à
análise de variância, análise de regressão e teste de média (Skott-Knott).
2.9.2 Estudo do comportamento das células após a exposição subletal
Delineamento inteiramente casual em arranjo fatorial 3 x 3 (soluções
sanificantes x condições de formação), em três repetições. Os resultados foram
submetidos à análise de variância e teste (Skott-Knott). As análises estatísticas
foram realizadas utilizando-se o programa Sisvar 5.3 (FERREIRA, 2008).
76
3 RESULTADOS E DISCUSSÃO
3.1 Atividade antimicrobiana em células planctônicas
As Atividades antimicrobianas das soluções dos compostos puros α-
terpineol, cinamaldeido, eugenol, citral e timol, em células planctônicas de cepas
de Bacillus cereus, são apresentadas na Tabela 3. Os resultados apresentados
mostram que as soluções possuem atividade antibacteriana em diferentes
concentrações. A maior concentração mínima bactericida encontrada foi de
5,0 µL. mL-1
apresentada pelos compostos α-terpineol e eugenol.
A solução a base de citral foi mais eficaz contra células planctônicas de
todas as cepas testadas, apresentando concentração mínima bactericida de
0,6 µL/ mL-1
.
Tabela 3 Concentração mínima bactericida de citral (CIT), timol (TIM), α-
terpineol(TER), cinamaldeido(CIN), eugenol(EUG) sobre cepas de Bacillus cereus
Cepas Componentes (µL. mL
-1)
CIT TIM TER CIN EUG
Bacillus cereus ATCC 14579 0,6 2,5 5,0 1,2 2,5
Bacillus cereus ATCC 11778 0,6 2,5 5,0 0,6 5,0
Bacillus cereus CCT 7453 0,6 2,5 2,5 1,2 2,5
Bacillus cereus CCT 2897 0,6 0,6 5,0 0,6 5,0
A diferença entre a atividade antibacteriana dos compostos puros pode
ser atribuída às composições químicas, à sua configuração estrutural, e à
natureza dos mesmos (CHANG; CHEN; CHANG, 2001).
77
Em geral, o que se encontra na literatura, é que os compostos
fenilpropanóides são mais eficazes contra microrganismos (DI PASCA et al.,
2010; OUSSALAH et al. 2007). Porém, nesse trabalho, o eugenol, um
fenilpropanóides, apresentou resultados inferiores aos compostos terpenóides
utilizados.
Os terpenóides podem perturbar as células modulando a fluidez da
membrana, aumentando a permeabilidade ou solubilizando as biomembranas
(WINK, 2008). Neste trabalho, observou-se a importância da lipofilicidade de
terpenos para a atividade do composto, evidenciado pela maior ação do citral.
3.2 Formação de biofilme e sua classificação
As quatro cepas utilizadas apresentaram capacidade de aderir e formar
biofilme. As cepas de B. cereus ATTCC 14579 e B. cereus CCT 2897 foram
classificadas como moderados formadores de biofilme. As cepas de B. cereus
ATTCC 11778 e B. cereus CCT 7453 foram classificadas como fracamente
capazes de formar biofilme.
A fim de confirmar que a diferença na formação de biofilme entre as
quatro cepas, não está relacionada à diferença da taxa de crescimento entre as
linhagens, avaliou-se a taxa de crescimento, encontrando-se aproximadamente
0,88 gerações por hora, em todas as cepas (curva de crescimento não mostrada).
A formação de biofilme de B. cereus foi inicialmente testada em placas
de poliestireno. Os resultados obtidos foram consistentes com os encontrados na
literatura. No teste de adesão em poliestireno, as cepas classificadas como
fracamente capazes de formar biofilme, não foram mais utilizadas nesse
trabalho.
78
As cepas classificadas como moderadamente formadoras de biofilme em
poliestireno, foram testadas para formação de biofilme em aço inoxidável
(Figura 1).
Figura 1 Formação de biofilme por duas cepas de Bacillus cereus em
superfície de aço inoxidável
Legenda: (◊) Médias de adesão da cepa ATCC 14579, (♦) Médias de adesão da cepa
CCT 2897. Em cada estágio de formação de biofilme, a mesma letra não
difere pelo teste Skott-Knott a 5% probabilidade.
As estirpes de B. cereus avaliadas foram capazes de aderir e formar
biofilmes na superfície de aço inoxidável. De acordo com a análise de variância,
houve diferença significativa (p<0,05) entre a capacidade de formação de
biofilme das duas cepas testadas. Neste estudo, foi observado que as duas cepas
de B.cereus (ATTC 14579 e CCTT 2897) diferiram entre si na capacidade de
formação de biofilme ao longo do tempo. Após 12 e 24 horas de cultivo, as duas
cepas apresentaram comportamento de adesão semelhante, não diferindo
significativamente (p <0.05) na contagem do número de células aderidas. A
79
diferença na adesão ocorreu após 36 horas de cultivo, e permaneceu por todo o
período avaliado.
Após 36 horas de cultivo, houve estabilização do número de células
aderidas para as duas cepas avaliadas, não ocorrendo diferença significativa (p
<0.05) na adesão, após 36, 48 e 72 horas de cultivo da mesma cepa. Com 72
horas de cultivo, B. cereus ATCC 1459 apresentou adesão de 5,36 log. UFC. cm-
2 e B. cereus CCT 2897 de 5,92 log. UFC. cm
-2. Resultados semelhantes foram
encontrados por Bernardes et al. (2010), onde a adesão foi avaliada durante 10
dias, atingindo o 4,43 log. UFC cm-2
.
Após a estabilização do biofilme, as células sésseis podem se desprender
e contaminar o substrato em circulação. Isso mostra o risco que essas
comunidades microbianas representam para a qualidade dos alimentos e
segurança dos consumidores (OLIVEIRA et al., 2010).
3.3 Formação de biofilme por Bacillus cereus em condições de estresse
subletal
As estirpes de B. cereus mostraram-se capazes de formar biofilme na
presença de compostos puros em concentração subletal (Tabela 4). O tempo de
estabilização do número de células aderidas para as cepas B. cereus foi de 36
horas (figura 1), por isso, definiu-se o tempo de avaliação de formação de
biofilmes em presença dos compostos após 48 horas de cultivo.
Ambas as cepas cultivadas em presença de compostos puros em
concentrações subletais, foram capazes de se aderirem e formarem biofilme
sobre aço inoxidável, porém, a adesão foi menor em comparação com o controle
(Tabela 4).
80
Tabela 4 Biofilme (B) de Bacillus cereus formado sob estresse subletal promovido por citral (CIT), cinamaldeido(CIN), eugenol(EUG),
timol (TIM), α-terpineol(TER) e controle (C)
Condições de
formação de biofilme
Log UFC cm-2
Médias
ATCC 14579 CCT 2897
BC 5,05 ±0.23 Aa 5,92 ±0.08 Ab 5,48±0.61
BCIT 3,53 ±0.52 Ba 3,69 ±0.24 Bb 3,61±0.11
BCIN 3,35 ±0.17 Ca 3,45 ±0.29 Cb 3,40±0.07
BEUG 3,17 ±0.08 Da 3,36 ±0.49 Db 3,27±0.13
BTIM 3,16 ±0.45 Da 3,21 ±0.18 Ea 3,19±0.04
BTER 3,11 ±0.29 Da 3,17 ±0.32 Ea 3,14±0.04
Médias 3,56±0.68 3,8±0.296
Resultados expressos como média ± desvio padrão. As letras maiúsculas na mesma
coluna e na mesma linha não diferem pelo teste Scott-Knott a 5% probabilidade.
Verificou-se que houve diferença significativa entre a capacidade de
formação de biofilme das duas cepas utilizadas na presença dos compostos, bem
como no controle (p<0,05), exceto na presença do composto timol e α-terpineol.
A maior aderência celular ocorreu na presença dos compostos
cinamaldeído e citral, sugerindo possível indução da resistência por esses
compostos.
Para Ceri et al., (2001), células organizadas começam a ter vantagens em
relação às células em seu estado planctônico, por terem melhores condições de
sobrevivência e resistência a agentes antimicrobianos.
3.4 Concentração mínima bactericida em biofilmes
Na Tabela 5, observa-se o comportamento dos biofilmes formados por
B. cereus ATCC 14579 e B. cereus CCT2897, crescidos em concentrações
subletais. E em seguida, avaliou-se a concentração mínima bactericida para o
81
biofilme controle (biofilme) e para o biofilme submetido ao crescimento com os
compostos puros (adaptação).
Os resultados obtidos mostram que as cepas de B. cereus adaptaram-se
às concentrações subletais dos compostos puros, pois foram encontradas
diferenças na concentração mínima bactericida entre as condições de adaptação
e biofilme (Tabela 5).
Tabela 5 Concentração mínima inibitória de compostos α-terpineol, cinnamaldeido, eugenol, citral, timol para biofilmes de Bacillus
cereus ATCC 14579 e CCT 2897, crescidos expostos à concentração
subletal dos mesmos compostos
Bacillus cereus
Componentes (µL. mL-1
)
α-
terpineol Cinamaldeido
Eugenol Citral Timol
Não adaptado
ATCC 14579 5 2,5 5,0 2,5 5,0 CCT 2897 5 2,5 10 5 10
Adaptado
ATCC 14579 20 10 40 10 20
CCT 2897 5 10 40 10 20
É possível observar que foram necessárias concentrações muito maiores
de soluções para inibir o desenvolvimento dos biofilmes formados por cepas de
B. cereus, quando submetidas ao crescimento em concentrações subletais dos
compostos, evidenciando a adaptação e o aumento da tolerância dos
microrganismos aos antimicrobianos, quando expostos a condições não ideais
para a sua eliminação.
Os resultados também mostram as variações no que diz respeito às
concentrações que resultaram na inibição de crescimento encontrados para as
células planctônicas e sésseis (Tabela 3 e 5). As células planctônicas
82
apresentaram maior sensibilidade aos compostos puros que as células sésseis.
Isso pode ser explicado pelo comportamento diferente das células planctônicas e
sésseis.
Resultados encontrados na literatura corroboram com esse trabalho, em
que as células sésseis foram mais resistentes aos produtos antibacterianos
naturais do que as células planctônicas, e apenas as concentrações mais elevadas
de alguns compostos puros reduziram a viabilidade das bactérias presentes em
biofilmes (LIU; YANG, 2012).
A exposição constante do biofilme bacteriano, em concentrações
subletais de sanitizantes, durante os procedimentos de limpeza, pode ativar os
mecanismos de resposta adaptativa ao estresse, fazendo com que as bactérias
sobrevivam em condições ambientais, antes hostis. Resultados encontrados em
estudo com diversas cepas de Bacillus cereus, mostram que estas apresentavam
alta resistência aos agentes antimicrobianos tradicionais, quando expostas por
períodos prolongados aos mesmos (MERZOUGUI, et al., 2014).
3.5 Efeito de exposição do biofilme à concentrações subletais de
antimicrobianos e resistência cruzada
A resposta adaptativa à exposição a concentrações subletais foi avaliada
(Tabela 6 e Tabela 7).
83
Tabela 6 Valores de log-redução dos biofilmes (B) formados por Bacillus cereus ATCC 14579 após 48 horas (2 dias) obtidos após tratamento
com soluções (S) contendo concentrações subletais de cinamaldeído (CIN) e citral (CIT) e solução controle (SC)
Soluções
Condições de formação
BC BCIN BCIT
Log-reduction % Log-reduction % Log-reduction %
SC 0.58±0.25aA 12,89 0.28±0.08aA 5.61 0.35±0.39aA 9.72
SCIT 1.62±0.44bB 38.61 1.95±1.50bB 52.09 2.33±0.41bB 56.42
SCIN 2.28±0.18bB 55,21 2.26±1.36bB 55.19 2.90±1.03bC 57.00
Resultados expressos pela média ± o desvio padrão. Letras minúsculas iguais na mesma
coluna e maiúsculas iguais na mesma linha não diferem entre si pelo teste de Scott-Knott
ao nível de 5% de probabilidade. BC (biofilme controle), BCIN (biofilme exposto a
concentrações subletais de cinamaldeído durante a sua formação), BCIT (biofilme exposto a concentrações subletais de citral durante a sua formação).
Os resultados obtidos para as diferentes cepas de B. cereus, mostraram
que a sensibilidade do microrganismo, após a exposição a doses subletais de
CIN e CIT, é dependente da estirpe e dos óleos essenciais utilizados.
A cepa de B. cereus ATCC14579, crescidos em concentrações subletais
de cinamaldeído e citral, não apresentaram diferença significativa para
eliminação dos biofilmes com a solução de cinamaldeído e citral (p<0,05). As
soluções dos compostos diferiram significativamente da solução controle
(p<0,05) (Tabela 6).
84
Tabela 7 Valores de log-redução dos biofilmes (B) formados por Bacillus cereus CCT2897 após 48 horas (2 dias) obtidos após tratamento com
soluções contendo concentrações subletais de cinamaldeído (CIN) e citral (CIT) e solução controle (SC)
Soluções
Condições de formação
BC BCIN BCIT
Log-reduction % Log-reduction % Log-reduction %
SC 0.58±0.25aA 12,19 0.18±0.08aA 3,61 0.35±0.39aA 8.42
SCIT 0,95±0.44aA 14.61 0,62±1.50bB 13,09 0.63±0.41bB 13.22
SCIN 0.78±0.18aA 13,98 0.56±1.36bB 11,89 0.90±1.03bC 14,43
Resultados expressos pela média ± o desvio padrão. Letras minúsculas iguais na mesma
coluna e maiúsculas iguais na mesma linha não diferem entre si pelo teste de Scott-Knott
ao nível de 5% de probabilidade. BC (biofilme controle), BCIN (biofilme exposto a
concentrações subletais de cinamaldeído durante a sua formação), BCIT (biofilme
exposto a concentrações subletais de citral durante a sua formação).
A cepa de B. cereus CCT 2897 crescidos em concentrações subletais de
cinamaldeído e citral, apresentou diferença significativa para eliminação dos
biofilmes com a solução citral, e não apresentou diferença significativa para a
solução de cinamaldeído (p<0,05). As soluções dos compostos diferiram
significativamente da solução controle (p<0,05) (Tabela 6).
Os biofilmes crescidos em presença de cinamaldeído apresentaram Log
da redução semelhante para solução de citral, cinamaldeído e solução controle.
Isso mostra que a exposição frequente a concentrações subletais de CIN ou CIT,
afetou negativamente a eliminação dos biofilmes das cepas de B. cereus
estudadas.
Muitos microrganismos são capazes de desenvolverem resposta
adaptativa ao estresse subletal, o que lhes permite tolerar e sobreviver à
exposição subsequente a níveis letais do mesmo estresse, ou até mesmo a um
85
tipo diferente de estresse (UTLEE et al, 2000). A maior resposta adaptativa das
células é manter a fluidez da membrana com um valor constante, independente
das condições ambientais no momento.
Os óleos essenciais são lipofílicos e têm capacidade de penetrar na
membrana citoplasmática e alterar a sua permeabilidade. Essa alteração leva à
perda de íons, alterações na bomba de prótons e perdas de ATP, coagulação
citoplasmática e quebra de macromoléculas (SOLOMAKOS et al. 2008).
As condições que os microrganismos enfrentam durante o
processamento de sanitização, podem levar ao desenvolvimento de respostas
adaptativas, e desenvolvimento de tolerância após a exposição a fatores subletais
de estresse, capazes de provocar danos às células microbianas (LUZ et al.,
2012). É bem conhecido que a exposição a condições subletais de substâncias
antimicrobianas, pode resultar no desenvolvimento de aumento da tolerância aos
mesmos (homólogos), ou a agente de estresse de tolerância cruzada
(heterólogos) (ALVAREZ-ORDÓÑEZ et al., 2008).
A adaptação de Bacillus cereus ao citral e cinamaldeído pode ter
ocorrido por diversos fatores. Estudo realizado com Bacillus cereus, em
presença de carvacrol, apresentou diminuição da fluidez da membrana
citoplasmática, devido a alterações nas estruturas da mesma. Além disso, o
composto, embora tenha alterado a composição da membrana, não foi
metabolizado (UTLEE et al., 2000).
Apesar de aparentemente interessante do ponto de vista científico, este
fato deve ser visto de maneira cuidadosa, pois a possível adaptação, e possível
aquisição de resistência por parte dos microrganismos em questão, podem
apresentar sérios problemas futuros.
Isso demonstra o risco que a tomada de decisão baseada na análise de
apenas uma cepa de microrganismos, ou de apenas um composto sanificante,
pode levar.
86
4 CONCLUSÃO
Os resultados obtidos são importantes dentro de uma nova linha de
pesquisa a ser seguida. Mais estudos para elucidar os mecanismos responsáveis
pelo aumento da resistência, ou da suscetibilidade bacteriana, devem ser
realizados, bem como ensaios envolvendo cepas persistentes ou isoladas,
diretamente de indústrias de alimentos.
87
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