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Universidade Federal de Santa Catarina Programa de Pós-Graduação em Bioquímica Centro de Ciências Biológicas Programa de Bolsas REUNI Florianópolis, 23 de novembro de 2010 Proteômi ca

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Universidade Federal de Santa Catarina Programa de Pós-Graduação em Bioquímica

Centro de Ciências BiológicasPrograma de Bolsas REUNI

Florianópolis, 23 de novembro de 2010

Proteômica

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Proteômica

A palavra PROTEOMA refere-se as PROTEínas expressas por um genOMA. Conceitualmente a proteômica engloba o somatório de todo o produto gênico, isto é, todas as proteínas em uma célula ou organismo vivo, podendo caracterizar processos biológicos e permitem a descrição de mecanismos celulares.

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Proteômica é a técnica utilizada para identificar todas as proteínas expressas por um genoma em um determinado tempo/espaço com o principal objetivo de elucidar os produtos gênicos a nível protéico.

Tempo

Espaço

Núcleo

Citoplasma

Membrana

Proteômica

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Proteômica

Proteômica sistemática: mapa protéico

Tecidos

Células

Compartimentos celulares

Proteômica diferencial: faz análise das modificações a nível protéico comparativamente com proteínas de referência

Desenvolvimento

Interações entre microorganismos e hospedeiros

Tratamentos

Proteômica

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Áreas de pesquisa : Caracterização do câncer

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1999 Proteoma do cérebro de camundongo

2006 Proteoma do hipocampo de camundongo

2005 Proteoma do complexo NMDA de camundongo em resposta à fármacos

2005 Proteoma do cérebro de rato

2008 Proteoma de hipocampo de rato sob exercício

2004 Proteoma de hipocampo humano

2001 Foi proposto pela HUPO a caracterização do Proteoma humano sob condições normais e patológicas

Área de pesquisa : Neuroproteômica – Caracterização do cérebro humano

2005 Proteoma de M.P de hipocampo de camundongo

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Revistas

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Etapas metodológicas

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Tratamento do animal

Extração das proteínas

Espectrometria de massa

Digestão in gel

Focalização isoelétrica

Principais etapas metodológicas

Eletroforese em gel 2-DE

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Isolamento de proteinas

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Extração da amostra

Tampão de lise:

25 mM Tris HCl pH 7,2 10 mM CHAPS 0,5 M NaCl 5% glicerol (v/v) 1 mM PMSF

Lise mecânica da célula

Centrifugação 30 min a 12000 x g a 4º C

Proteínas nucleares

Proteínas citoplasmáticas

Proteínas membranares

Precipitado é re-extraído

SN1+ SN2

Homogenato de ptns em gelo por 20 min

Lise da célula, proteção contra proteólise e fracionamento.

Estratégias a serem tomadas: manter a amostra na menor temperatura possível e utilizar o protocolo mais simples para evitar perda protéica.

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Quantificação das proteínas com 2D Quant Kit

Solução com Íon cúprico (Cu+1)

Cu+1

Cu+1

Cu+1

Cu+1

Agente colorimétrico

Cu+1

Cu+1 480 nm

Proteínas totais

MÉTODOS ESPECTROFOTOMÉTRICOS : Bradford, Biureto, Lowry e Smith ou BCA.

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Limpeza da amostra com Clean up Kit

100 ug /ul de proteína

Solução precipitante

Centrifugação

Baseada na precipitação por TCA

Diversas moléculas são eliminadas:

-DNA, lipídeos

- Sais, detergentes

Pellet de Proteína pura

Ressuspensão das ptns em 250uL tampão de reihidratação:

7 M Uréia

2 M Tiuréia

2%(p/v) CHAPS

0.5% de IPG buffer pH 3-10

18 mM DTT

0,001% azul de bromofeno

MÉTODOS BCA:

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Agentes redutores: DTT

Solubilização da amostra

Agentes Caotrópicos: Uréia e Tiouréia

Agentes Surfactantes: CHAPS

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Hidratação do strip

Tiras de strip de 13 cm imobilizado com pH 3-10

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Strips foram removidos

Cerâmica IEF Strips foram posicionados

Paper Pads umedecidos

Total: 15500 V/h e 25 uA/strip

Ettan IPGphor 3 Ajuste dos eletrodos

Focalicalização isoelétrica (IEF)

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Separação das proteínas por pI

Gel poliacrilamida 12,5%

Cuba vertical Hoefer SE Ruby

Separação das ptns por massa

Proteínas separadas por pI e massa

1º DTT

2º Iodoacetamida

Coloração: Coomassie Blue G-250 por 24h

Fixação: 8% de ácido fosfórico, 50% de etanol por 1 hora

Eletroforese em gel bidimensional (2D)

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Análise simultânea de diversas proteínas. Permite comparar todas as proteínas expressas por uma célula em condições diferentes.

Separação de proteínas com eletroforese em gel 2D

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Análise das imagens no gel

Posição dos spots (Ex. modificações pós-traducionais)

Volume dos spots: permitindo uma quantificação relativa

Presença ou Ausência de spots

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Digestão in gel

Descoloração:

25 mM bicarbonato de amônio e 50% acetonitrila

Tripsinização

(entre os resíduos de lisina e arginina)

Extração de petídeos: 50% de acetonitrila e 5% trifluoroacético

Peptídeos são secos à vácuo

Estocagem a -20ºC

Excisão dos spots

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Espectrometria de massa é uma técnica que permite determinar a massa molecular de proteínas/peptídeos e a seqüência de aminoácidos.

Esta informação é utilizada para identificar a proteína comparando bases de dados de seqüência de nucleotídeos e de proteínas.

Também é utilizada para determinar o tipo e localização das modificações pós-traducionais das proteínas.

Identificação das proteínas por Espectrometria de Massa

Amostras 2-DE

Fonte de ionização

Analisador de massa

Detector

Sistema à vácuo

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Peptídios são ionizados

Os íons são dessorvidos

Peptídeos são homogenizados com pequenos compostos orgânicos

Estes compostos reagem com a matriz orgânica ácido -ciano-4-hidroxicinâmico

Espectômetro de Massa

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Os íons são acelerados alcançando alta energia cinética

Colisão dos íons ao detector

Espectômetro de Massa

As massas dos fragmentos são separadas e detectadas

As massas digeridas dos peptídeos são comparadas com uma lista de massas teóricas de peptídeos oriundas das ORFs do banco de dados do genoma de um organismo

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Espectômetro de Massa

Identificação de cada proteína do mapa proteômico

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Proteômica

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Array-based protein interaction detection

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Array-based protein interaction detection

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Protein microarrays

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Proteomicworld.com