los aminoácidos y la estructura primaria de las proteínas
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Los aminoácidos y la estructuraprimaria de las proteínas
1 Estructurageneral de
aminoácidos
Los aminoácidos se llaman así porque son derivados aminados de ácidos
carboxílicos. En los 20 aminoácidos comunes, los grupos amino y carboxilo están
unidos al mismo átomo de carbono: el átomo de carbono a. Así, todos los
aminoácidos estándar que contienen las proteínas son a-aminoácidos. Al carbono
a se unen otros dos sustituyentes: un átomo de hidrógeno y una cadena lateral
(R) que es única para cada aminoácido.
El nombre químico correcto, o nombre sistemático, se apega a reglas establecidas
por laUnión Internacional de Química Pura y Aplicada (IUPAC, de International
Union of Pure and Applied Chemistry) y la Unión Internacional de Bioquímica y
Biología Molecular (IUBMB, de International Union of Biochemistry and
Molecular Biology))].Si el grupo R es —CH3, elnombre sistemático de ese
aminoácido sería ácido 2-aminopropanoico. (El ácido propanoico es CH3—
CH2—COOH ). El nombre trivial de CH3—CH(NH2)—COOH es alanina.
1a muestra la estructura general de un aminoácido en perspectiva.
Los átomos de carbono de una cadena lateral se identifican en sucesión como b, g,
d y e, que indican los carbonos 3, 4, 5 y 6, respectivamente. El nombre
sistemático de la serina es ácido 2-amino-3-hidroxipropanoico. En 19 de
los 20 aminoácidos que se usan en la biosíntesis de proteínas, el átomo de
carbono a es quiral, o asimétrico, porque tiene cuatro grupos diferentes unidos a
él.
La excepción es la glicina, cuyo grupo R sólo es un átomo de hidrógeno
(la molécula no es quiral, porque el átomo de carbono a está unida a dos átomos
idénticos de hidrógeno).
Los 19 aminoácidos quirales pueden, en consecuencia, existir como
estereoisómeros. Los estereoisómeros soncompuestos que tienen la misma
fórmula molecular pero difieren en el orden o configuración de sus átomos en el
espacio. Los dos estereoisómeros son moléculas distintas que no se pueden
interconvertir con facilidad entre sí ya que un cambio de configuración requiere
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romper uno o más enlaces. Los estereoisómeros de aminoácidos no son imágenes
especulares (es decir, imágenes en espejo) superponibles; a dichos
estereoisómeros se les llama enantiómeros.
Dos de los 19 aminoácidos quirales, la isoleucina y la treonina, presentan dos
átomos quirales de carbono cada uno. La isoleucina y la treonina pueden formar,
cada una, cuatro estereoisómeros diferentes.
La configuración del aminoácido de la figura 3.1a es L; la de su imagen especular
es D. Para asignar la identificación estereoquímica se traza la fórmula del
aminoácido en dirección vertical, con su grupo a-carboxilato en la parte superior
y su cadena lateral en la parte inferior, ambas alejándose del espectador. En esta
orientación, el grupo a-amino del isómero L está a la izquierda del carbono a y el
del isómero D está a la derecha.
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Estructura de los 20 aminoácidos Algunas cadenas laterales son no polares, y en consecuencia
hidrofóbicas, mientras que otras son polares o ionizadas a pH
neutro y en consecuencia son hidrofílicas. Las propiedades de las
cadenas laterales tienen gran influencia sobre l
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2 Ionización de los aminoácidos3
4 Las propiedades físicas de los aminoácidos reciben influencias de los
estados iónicos de los grupos a-carboxilo y a-amino y de todos los grupos
ionizables que haya en las cadenas laterales. Cada grupo ionizable guarda
relación con un valor específico de pKa, que corresponde al pH al que son
iguales las concentraciones de las formas protonada y no protonada.
5 Cuando el pH de la solución es menor que el pKa, predomina la forma
protonada y el aminoácido es entonces un ácido real, capaz de donar un
protón. Cuando el pH de la solución es mayor que el pKa del grupo ionizable,
la forma no protonada de ese grupo predomina, y el aminoácido existe en
forma de base conjugada, que es aceptora de protones. Cada aminoácido
tiene al menos dos valores de pKa que corresponden a la ionización de los
grupos a-carboxilo y a-amino. Además, siete de los aminoácidos comunes
tienen cadenas laterales ionizables con valores adicionales y medibles de
pKa. Esos valores difieren entre los aminoácidos. Así, a determinado pH, con
frecuencia los aminoácidos tienen cargas netas diferentes. Los estados
iónicos de las cadenas laterales de los aminoácidos influyen sobre las
estructuras tridimensionales de las proteínas. Además, ya que varios
residuos ionizables de aminoácido intervienen en catálisis por enzimas, lacomprensión de las propiedades iónicas de los aminoácidos ayuda a
comprender los mecanismos enzimáticos.
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7 Unión de aminoácidos por enlacespeptídicos en las proteínas
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9 La secuencia lineal de aminoácidos en una cadena polipeptídica se llama
estructura primaria de una proteína. A los niveles más altos de estructura se
les llaman estructura secundaria, terciaria y cuaternaria. La estructura de
las proteínas se describirá con más detalle en el siguiente capítulo, pero es
importante comprender los enlaces peptídicos y la estructura primaria antes
de describir algunos de los temas restantes en este capítulo. El enlace que se
forma entre los aminoácidos es un enlace de amida y se llama enlace
peptídico, o enlace de péptido
10 Esta unión se puede concebir como el resultado de una condensación
simple del grupo carboxilo a de un aminoácido con el grupo amino a del otro.
11 Las mitades de aminoácido unidas en una cadena polipeptídica se
llaman residuos de aminoácido. Los nombres de los residuos se forman
sustituyendo la terminación -ina o -ato por -ilo (o -il, en nombres
compuestos).
12 El grupo amino libre y el grupo carboxilo libre en los extremos opuestosde una cadena de péptido se llaman N-terminal (o terminal N, terminal
amino) y C-terminal (o terminal C, terminal carboxilo), respectivamente. Por
convención, los residuos de aminoácido en una cadena peptídica se numeran
desde el N-terminal hasta el C-terminal y se suelen escribir de izquierda a
derecha. Esta convención corresponde a la dirección de la síntesis de la
proteína para describir la secuencia de residuos de aminoácidos en péptidos
y polipéptidos se usan tanto las abreviaturas normales de tres letras de los
aminoácidos (por ejemplo GlyArg-Phe-Ala-Lys) como las abreviaturas de una
letra (como GRFAK). Los términos dipéptido, tripéptido, oligopéptido y
polipéptido indican cadenas de dos, tres, varios (hasta unos 20) y muchos a
mayor parte de las cargas iónicas asociadas a una molécula de proteína se
deben a las cadenas laterales de los aminoácidos componentes. Ello significa
que la solubilidad y las propiedades iónicas de una proteína están
determinadas en gran parte por su composición de aminoácidos. Además, las
cadenas laterales de los residuos interaccionan y esas interacciones
contribuyen a determinar la forma tridimensional y la estabilidad de una
molécula de proteína.
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16 El primer paso en la purificación de una proteína es preparar una
solución de proteínas.
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17 La fuente de una proteína suele ser células enteras donde la
proteína deseada constituye menos del 0.1% del peso total
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19 El aislamiento de una proteína intracelular requiere suspender las
células en una solución amortiguadora y homogeneizarlas o romperlas en
fragmentos de célula. Bajo estas condiciones se disuelve la mayor parte de
las proteínas. (Entre las excepciones principales están las proteínas de
membrana, que requieren procedimientos especiales de purificación).
Supóngase que la proteína que se pretende purificar es una entre varias que
hay en la solución amortiguadora en estudio.
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1 Fraccionamiento: procedimiento que aprovecha las distintas solubilidades de las
proteínas en soluciones salinas. Con frecuencia se usa sulfato de amonio en esos
fraccionamientos. Se mezcla suficiente sulfato de amonio con la solución de proteínas para
precipitar a las impurezas menos solubles, que se eliminan por centrifugación. La proteína
objetivo, y otras más, con mayor solubilidad, permanecen en el líquido que se llama fracción
sobrenadante. A continuación se añade más sulfato de amonio a la fracción sobrenadante y
se precipita la proteína que se desea. La mezcla se centrifuga, se separa el líquido y el
precipitado se disuelve en un volumen mínimo de solución amortiguadora.
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2 Cromatografía en columna para fraccionar la mezcla de proteínas que resta
después de la precipitación con sulfato de amonio y la diálisis. Una columna cilíndrica se
llena con un material insoluble, como fibras de celulosa sustituida o esferillas de material
sintético. La mezcla de proteínas se agrega a la columna y se lava haciendo pasar por la
matriz de material insoluble un solvente. A medida que el solvente fluye por la columna, el
eluido (que es el líquido que sale por el fondo de la columna) se recolecta en muchas
fracciones
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33 Las técnicas cromatografías se clasifican de acuerdo con el
tipo de matriz.
1 2 .1. Cromatografía de intercambio iónico
34 La matriz tiene cargas positivas (resinas de intercambio de aniones)
o cargas negativas (resinas de intercambio de cationes) matrices de
intercambio aniónico se unen con proteínas con carga negativa y las retienen
para su posterior elución. Por el contrario, los materiales de intercambio
catiónico se enlazan con proteínas con carga positiva. Las proteínas
enlazadas se pueden eluir en serie si se aumenta la concentración salina del
solvente en forma gradual. A medida que aumenta la concentración de la sal,
llega a una concentración en la que sus iones superan a las proteínas en la
unión a la matriz. A esa concentración la proteína se libera y es recolectada
en el eluido. Las proteínas unidas individualmente se eluyen a distintas
concentraciones de sal, y este fraccionamiento determina que la
cromatografía de intercambio iónico constituya un método poderoso para
purificar proteínas.
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2 La Cromatografía por filtración
36 En gel separa a las proteínas con base en su tamaño molecular. El
gel es una matriz de esferillas porosas. Las proteínas que son menores que el
tamaño promedio del poro penetran en gran parte del volumen interno de
las perlas, y de ese modo se retardan por la matriz cuando la solución
amortiguadora fluye por la columna. Mientras menor sea la proteína, se
eluye con más retraso de la columna. Hay menos poros accesibles a las
moléculas mayores de proteína. En consecuencia, las proteínas más grandes
rodean a las perlas y se eluyen primero.
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3 La cromatografía de afinidad es el tipo de cromatografía en columna más
selectivo. Se basa en interacciones específicas de unión entre la proteína
deseada y alguna otra molécula enlazada en forma covalente a la matriz de la
columna. La molécula unida a la matriz puede ser una sustancia o ligando que
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se une a una proteína in vivo; un anticuerpo que reconozca a la proteína
deseada u otra proteína de la cual se conozca el modo de interacción con la
proteína deseada dentro de la célula. A medida que la mezcla de proteínas pasa
por la columna, sólo la proteína deseada se une en forma específica a la matriz.
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39 Aminoácidos
40 Se puede determinar la composición de aminoácidos de una proteína en forma cuantitativa hidrolizando los enlaces peptídicos y analizando el hidrolizado mediante cromatografía. a secuencia deuna cadena polipeptídica se determina con el procedimiento dedegradación de !dman" en el #ue se separan e identi$cansucesivamente los residuos %&terminales. as secuencias de
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