rol del oxido nÍtrico en el efecto inotrÓpico negativo

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ROL DEL OXIDO NÍTRICO EN EL EFECTO INOTRÓPICO NEGATIVO ASOCIADO CON EL ESTRÉS HIPEROSMÓTICO Malena Morell, Juan I Burgos y Martín Vila Petroff. Centro de Investigaciones Cardiovasculares Dr. Horacio E Cingolani, CONICET-UNLP Luis Gonano, La osmolaridad de los tejidos esta finamente regulada bajo condiciones fisiológicas. Sin embargo, en diferentes situaciones patológicas como estados de deshidratación severa, hiperglucemia, hiperlipidemia y diabetes, las células sufren encogimiento osmótico. A nivel cardíaco, esta alteración en el volumen celular, es capaz de promover disfunción contráctil. El Óxido Nítrico (NO), sintetizado por la Oxido Nítrico Sintasa (NOS), ha sido definido (1) como segundo mensajero y regulador de la función cardíaca . Previamente demostramos que el hinchamiento hipotónico de miocitos cardíacos promueve la liberación de NO (2) promoviendo un soporte contráctil . El objetivo de este trabajo fue evaluar si el estrés hiperosmótico promueve la liberación de NO y, de ser así, examinar su impacto sobre la contractilidad. INTRODUCCIÓN RESULTADOS CONCLUSIONES 4. El NO provee soporte inotrópico durante el estrés hiperosmótico 4. El 1. El estrés hiperosmótico provoca la disminución del volumen celular A,B : Debido a la perfusión con solución hiperosmótica (SH) los miocitos se reducen tanto en ancho como en largo. C: La perfusión con solución hiperosmótica disminuye el volumen de miocitos cardíacos. 2. Someter a los miocitos cardíacos a una solución hiperosmótica promueve la liberación de Oxido Nítrico (NO) 3. La nNOS y la eNOS serían las isoformas de la NOS responsables de la producción de NO durante el estrés hiperosmótico.. El eje NO/GMPc/PKG A: Inhibir las NOS (con L-NAME), la nNOS (con Nitroguanidina), la eNOS (con Wortmanina) o ambas (Nitroguanidina+Wortmanina) previene la producción de NO sugiriendo que ambas isoformas serían las responsables de la producción de NO durante el estrés hiperosmótico. B Resultados promedio donde se muestra que la inhibición de la producción de NO no afecta el grado de disminución del volumen celular durante el estrés hiperosmótico. Solución isosmótica (baja en Sodio) Solución hiperósmotica (baja en Sodio) NaCl 91 91 5.3 5.3 MgCl 2 0.5 0.5 CaCl 2 1 1 Glucosa 10 10 Hepes, pH 7.4 10 10 Manitol 91.5 224.5 Osmolaridad(mOsm) 309 440 REFERENCIAS 1- Ziolo MT, Kohr MJ, Wang H. Nitric oxide signaling and the regulation of myocardial function. J Moll Cell Cardiol 2008;45:625-632. 2- Gonano LA, Morell M, Burgos JI, Dulce RA, De Giusti VC, Aiello EA, Hare JM, Vila Petroff M. Hypotonic swelling promotes nitric oxide release in cardiac ventricular myocytes: impact on swelling-induced negative inotropic effect. Cardiovasc Res 2014;104(3):455-466. MÉTODOS Miocitos cardíacos de ratas wistar macho de 3 meses de edad fueron aislados mediante digestión enzimatica. Con el objetivo de inducir estrés hiperosmótico las células fueron perfundidas durante 5 minutos con una solución isosmótica (IS: 309 mOsm/L) y luego 20 minutos con una solución hiperosmótica (SH:440 mOsm/L). Para medir producción de NO, los miocitos fueron cargados durante 30 minutos con el indicador fluorescente DAF-FM y se tomaron imágenes de epifluorescencia en un microscopio invertido. En paralelo, se tomaron imágenes de campo claro donde se midió el cambio en el volumen celular. 2+ 2+ El transitorio de Ca fue registrado en células cargadas con el indicador sensible a Ca Fura-2AM, y el acortamiento se midió mediante video detección de bordes. Ancho celular (% del basal isotònico) 70 75 80 85 90 95 100 105 0 5 10 15 20 25 Tiempo (min) n=10 n=21 A 70 75 80 85 90 95 100 105 0 5 10 15 20 25 Tiempo (min) Largo celular (% del basal isotónico) n=10 n=21 * * * * B 50 60 70 80 90 100 110 0 5 10 15 20 25 Tiempo (min) Volumen celular (% del basal isotónico) n=10 n=21 * * * * C A: Imágenes representativas de fluorescencia que muestran un aumento de la fluorescencia de DAF-FM (indicativo de producción de NO) durante la perfusión de miocitos cardíacos con solución hiperosmótica. B: Resultados promedio donde se muestra un aumento gradual de la fluorescencia de DAF-FM durante la perfusión de miocitos con solución hiperosmótica que es significativo a los 5 minutos comparado a la perfusión con solución isosmótica. 90 95 100 105 110 115 120 0 5 10 15 20 25 Tiempo (min) Fluorescencia de DAF-FM (% del basal isotónico) IS n=10 n=22 * * * * IS SH A B 90 95 100 105 110 115 120 0 5 10 15 20 25 Tiempo (min) Fluorescencia de DAF-FM (% del basal isotónico) SH IS SH+L-NAME SH + NG SH+ WT Y NG IS * * * * SH + WORT n=22 n=10 n=7 n=12 n=10 n=6 A 50 60 70 80 90 100 110 0 5 10 15 20 25 Tiempo (min) Volumen celular (% del basal isotónico) SH IS SH+L- NAME IS SH+NG SH+WT * * * * n=10 n=21 n=6 n=12 n=11 B -200 0 200 400 600 800 1000 1200 1400 1600 1800 2000 105 110 115 120 125 130 135 140 145 150 Acortamiento celular (um) Tiempo(seg) SH IS A 60 80 ( % del basal isotònico) 0 20 40 100 120 0 5 10 15 20 25 Tiempo (min) Acortamiento celular SH SH + L-N SH + NG SH + WT n=10 n=6 n=11 n=5 * * * * C A : Perfil representativo de acortamiento celular donde se muestra el efecto de la perfusión de miocitos con una solución hiperosmótica (panel izquierdo). 2+ Trazos representativos de la medición de Ca (panel superior). i Trazos representativos del acortamiento celular durante el estrés hiperosmótico (panel inferior). El cambio de perfusión de una solución isosmótica (IS) a una solución hiperosmótica (SH) cursa con un efecto inotrópico negativo 2+ (EIN) el cual no se asocia a un cambio en el contenido del Ca sugiriendo que el EIN observado durante el estrés hiperosmótico podría i 2+ ser consecuencia de una desensibilización de las proteínas contráctiles al Ca . i B: Perfil representativo de acortamiento celular donde se muestra el efecto de la perfusión de miocitos con una solución hiperosmótica en presencia del inhibidor de las NOS: L-NAME (panel izquierdo). 2+ Trazos representativos de la medición de Ca en soluciones IS+L-NAME y SH+L-NAME(panel superior). i Trazos representativos del acortamiento celular durante el estrés hiperosmótico en presencia de L-NAME (panel inferior). Inhibir la producción de NO exacerba el EIN sugiriendo que el NO producido durante el estrés hiperosmótico estaría generando un soporte contráctil. C: Resultados promedio donde se muestra el EIN producido al perfundir miocitos con solución hiperosmótica (HS). Este efecto se encuentra exacerbado en presencia de L-NAME y Wortmanina (inhibidor de eNOS). Esto no sucede cuando se inhibe la nNOS (con Nitroguanidina) sugiriendo que el soporte contráctil durante el estrés hiperosmótico podría estar dado por el NO producido por la eNOS. 1. El estrés hiperosmótico promueve la liberación de NO y las isoformas de la NOS involucradas serían la nNOS y la eNOS. 2.El estrés hiperosmótico cursa con un EIN que podría deberse a una 2+ desensibilización de las proteínas contráctiles al Ca . i 3. El NO liberado por la eNOS y no por la nNOS es el que provee soporte inotrópico durante el estrés hiperosmótico. 4. La liberación de NO podría ayudar a sostener la función contráctil durante diferente situaciones patológicas asociadas con el encogimiento celular como deshidratación severa, hiperglucemia, hiperlipidemia, diabetes, etc. 5. Los resultados sugieren que la disfunción contráctil que ocurre durante la disminución del volumen celular podría estar exacerbada en patologías asociadas con una baja disponibilidad de NO. c SH 150 155 160 165 105 110 115 120 125 130 135 140 145 150 Acortamiento celular (um) Tiempo(seg) 1470 1480 105 110 115 120 125 130 135 140 145 150 1475 1485 Acortamiento celular (um) Tiempo(seg) 1.00 1.05 1.10 1.15 1.20 1.25 1.30 Fura-2 (340/380 nm) 1.00 1.05 1.10 1.15 1.20 1.25 Fura-2 (340/380 nm) SH 150 160 105 110 115 120 125 130 135 140 145 150 155 165 1470 1475 1480 1485 105 110 115 120 125 130 135 140 145 150 Acortamiento celular (um) Acortamiento celular (um) Tiempo(seg) Tiempo(seg) Fura-2 (340/380 nm) 1.00 1.05 1.10 1.15 1.20 1.25 1.30 1.00 1.05 1.10 1.15 1.20 1.25 1.30 1.35 Fura-2 (340/380 nm) IS+L-NAME SH+L-NAME -200 0 200 400 600 800 1000 1200 1400 1600 1800 2000 105 110 115 120 125 130 135 140 145 150 Acortamiento celular (um) Tiempo(seg) SH+L-N IS+L-N L-NAME B

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SAFIS2015ULT13.0 (2).cdrROL DEL OXIDO NÍTRICO EN EL EFECTO INOTRÓPICO NEGATIVO ASOCIADO CON EL
ESTRÉS HIPEROSMÓTICO
Luis Gonano,
La osmolaridad de los tejidos esta finamente regulada bajo condiciones fisiológicas. Sin
embargo, en diferentes situaciones patológicas como estados de deshidratación severa,
hiperglucemia, hiperlipidemia y diabetes, las células sufren encogimiento osmótico. A nivel
cardíaco, esta alteración en el volumen celular, es capaz de promover disfunción contráctil.
El Óxido Nítrico (NO), sintetizado por la Oxido Nítrico Sintasa (NOS), ha sido definido (1)como segundo mensajero y regulador de la función cardíaca . Previamente demostramos
que el hinchamiento hipotónico de miocitos cardíacos promueve la liberación de NO (2)promoviendo un soporte contráctil .
El objetivo de este trabajo fue evaluar si el estrés hiperosmótico promueve la liberación
de NO y, de ser así, examinar su impacto sobre la contractilidad.
INTRODUCCIÓN
RESULTADOS
CONCLUSIONES
4. El NO provee soporte inotrópico durante el estrés hiperosmótico 4. El
1. El estrés hiperosmótico provoca la disminución del volumen celular
A,B : Debido a la perfusión con solución hiperosmótica (SH) los miocitos se reducen tanto en ancho como en largo.
C: La perfusión con solución hiperosmótica disminuye el volumen de miocitos cardíacos.
2. Someter a los miocitos cardíacos a una solución hiperosmótica promueve
la liberación de Oxido Nítrico (NO)
3. La nNOS y la eNOS serían las isoformas de la NOS responsables de la
producción de NO durante el estrés hiperosmótico.. El eje NO/GMPc/PKG
A: Inhibir las NOS (con L-NAME), la nNOS (con Nitroguanidina), la eNOS (con Wortmanina) o ambas (Nitroguanidina+Wortmanina)
previene la producción de NO sugiriendo que ambas isoformas serían las responsables de la producción de NO durante el estrés
hiperosmótico.
B Resultados promedio donde se muestra que la inhibición de la producción de NO no afecta el grado de disminución del volumen celular
durante el estrés hiperosmótico.
NaCl
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5.3
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MgCl2
0.5
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REFERENCIAS
1- Ziolo MT, Kohr MJ, Wang H. Nitric oxide signaling and the regulation of myocardial function. J Moll Cell Cardiol 2008;45:625-632.
2- Gonano LA, Morell M, Burgos JI, Dulce RA, De Giusti VC, Aiello EA, Hare JM, Vila Petroff M. Hypotonic swelling promotes nitric oxide release in cardiac ventricular
myocytes: impact on swelling-induced negative inotropic effect. Cardiovasc Res 2014;104(3):455-466.
MÉTODOS
Miocitos cardíacos de ratas wistar macho de 3 meses de edad fueron aislados mediante
digestión enzimatica. Con el objetivo de inducir estrés hiperosmótico las células fueron
perfundidas durante 5 minutos con una solución isosmótica (IS: 309 mOsm/L) y luego 20
minutos con una solución hiperosmótica (SH:440 mOsm/L).
Para medir producción de NO, los miocitos fueron cargados durante 30 minutos con el
indicador fluorescente DAF-FM y se tomaron imágenes de epifluorescencia en un
microscopio invertido. En paralelo, se tomaron imágenes de campo claro donde se midió el
cambio en el volumen celular.
2+ 2+ El transitorio de Ca fue registrado en células cargadas con el indicador sensible a Ca
Fura-2AM, y el acortamiento se midió mediante video detección de bordes.
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A: Imágenes representativas de fluorescencia que muestran un aumento de la fluorescencia de DAF-FM (indicativo de
producción de NO) durante la perfusión de miocitos cardíacos con solución hiperosmótica.
B: Resultados promedio donde se muestra un aumento gradual de la fluorescencia de DAF-FM durante la perfusión de miocitos
con solución hiperosmótica que es significativo a los 5 minutos comparado a la perfusión con solución isosmótica.
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A : Perfil representativo de acortamiento celular donde se muestra el efecto de la perfusión de miocitos con una solución
hiperosmótica (panel izquierdo). 2+ Trazos representativos de la medición de Ca (panel superior).i
Trazos representativos del acortamiento celular durante el estrés hiperosmótico (panel inferior).
El cambio de perfusión de una solución isosmótica (IS) a una solución hiperosmótica (SH) cursa con un efecto inotrópico negativo 2+
(EIN) el cual no se asocia a un cambio en el contenido del Ca sugiriendo que el EIN observado durante el estrés hiperosmótico podría i
2+ser consecuencia de una desensibilización de las proteínas contráctiles al Ca . i
B: Perfil representativo de acortamiento celular donde se muestra el efecto de la perfusión de miocitos con una solución
hiperosmótica en presencia del inhibidor de las NOS: L-NAME (panel izquierdo). 2+
Trazos representativos de la medición de Ca en soluciones IS+L-NAME y SH+L-NAME(panel superior).i
Trazos representativos del acortamiento celular durante el estrés hiperosmótico en presencia de L-NAME (panel inferior).
Inhibir la producción de NO exacerba el EIN sugiriendo que el NO producido durante el estrés hiperosmótico estaría generando un
soporte contráctil.
C: Resultados promedio donde se muestra el EIN producido al perfundir miocitos con solución hiperosmótica (HS). Este efecto se
encuentra exacerbado en presencia de L-NAME y Wortmanina (inhibidor de eNOS). Esto no sucede cuando se inhibe la nNOS (con
Nitroguanidina) sugiriendo que el soporte contráctil durante el estrés hiperosmótico podría estar dado por el NO producido por la
eNOS.
1.El estrés hiperosmótico promueve la liberación de NO y las isoformas de la NOS
involucradas serían la nNOS y la eNOS.
2.El estrés hiperosmótico cursa con un EIN que podría deberse a una 2+desensibilización de las proteínas contráctiles al Ca . i
3.El NO liberado por la eNOS y no por la nNOS es el que provee soporte inotrópico
durante el estrés hiperosmótico.
4. La liberación de NO podría ayudar a sostener la función contráctil durante
diferente situaciones patológicas asociadas con el encogimiento celular como
deshidratación severa, hiperglucemia, hiperlipidemia, diabetes, etc.
5. Los resultados sugieren que la disfunción contráctil que ocurre durante la
disminución del volumen celular podría estar exacerbada en patologías asociadas con
una baja disponibilidad de NO.
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