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Leonardo Bianco de Carvalho
MONITORAMENTO E MANEJO DE PLANTAS DANINHAS EM VIDEIRAS DE ALTITUDE
Lages – SC Edição do Autor
2014
Carvalho, Leonardo Bianco de (Org.) Monitoramento e manejo de plantas daninhas em videira de altitude / Editado pelo autor, Lages, SC, 2014 vi, 56 p. : 14,8x21,0 cm Todos os direitos reservados. É proibida a reprodução total ou parcial, por qualquer meio ou forma, sem expressa autorização (Lei n
o. 9.610).
e-ISBN 978-85-912712-3-8
Distribuição pelo autor: matologiaexperimental.blogspot.com [email protected]
AUTORES Leonardo Bianco de Carvalho
Professor Adjunto da Universidade do Estado de Santa Catarina (UDESC), Lages SC. [email protected]. Jocleita Peruzzo Ferrareze
Professora Substituta da Universidade do Estado de Santa Catarina (UDESC), Lages SC. Flávia Regina da Costa
Pós-graduanda em Produção Vegetal da Universidade do Estado de Santa Catarina (UDESC), Lages SC. [email protected]. Liese de Vargas Pereira
Pós-graduanda em Produção Vegetal da Universidade do Estado de Santa Catarina (UDESC), Lages SC. [email protected]. Marcela Padilha
Pós-graduanda em Produção Vegetal da Universidade do Estado de Santa Catarina (UDESC), Lages SC. [email protected].
SUMÁRIO
Página
CAPÍTULO 1 – INTERFERÊNCIA DE PLANTAS DANINHAS ………………… 1
Definição, origen e evolução de plantas daninhas …………………………… 1
Convivência com plantas daninhas …………………………………………….. 3
CAPÍTULO 2 – MÉTODOS DE CONTROLE DE PLANTAS DANINHAS …… 11
Introdução …………………………………………………………………………. 11
Prevenção …………………………………………………………………………. 12
Tipos de controle …………………….…………………………………………… 13
CAPÍTULO 3 – MANEJO INTEGRADO DE PLANTAS DANINHAS …………... 23
Monitoramento de comunidades de plantas daninhas ……………………….. 23
Determinação da área mínima de amostragem ………………………………. 24
Fitossociologia de comunidades de plantas daninhas ……………………… 26
Principais plantas daninhas em videiras de altitude ………………………….. 30
Estratégias de manejo em videiras de altitude ……………………………… 31
Manejo de plantas daninhas resistentes a herbicidas ……………………… 36
CAPÍTULO 4 – PROBLEMAS OCASIONADOS PELO USO INADEQUADO
DE HERBICIDAS ..
41
Introdução …………………………………………………………………………. 41
Deriva de herbicidas e suas consequências ………………………………… 42
CONSIDERAÇÕES FINAIS ……………………………………………………… 49
REFERÊNCIAS BIBLIOGRÁFICAS ………………………………………………. 51
1
CAPÍTULO 1
INTERFERÊNCIA DE PLANTAS DANINHAS
Leonardo Bianco de Carvalho
Flávia Regina da Costa
Definição, origem e evolução de plantas daninhas
Em ecossistemas de produção agrícola, plantas daninhas são
espécimes vegetais que germinam e se desenvolvem
espontaneamente e que, direta ou indiretamente, afetam, de
maneira negativa, o crescimento, o desenvolvimento e a produção
das culturas ou mesmo influenciam atividades de manejo de modo a
causar perdas de produtividade. Portanto, essencialmente, plantas
daninhas causam prejuízos à atividade agrícola em decorrência de
sua presença e coexistência com plantas cultivadas
No entanto, de acordo com a definição, entende-se que
qualquer planta pode ser considerada daninha, desde que cause
prejuízos a alguma atividade humana, seja agrícola ou não. Por
esse motivo, plantas que são consideradas daninhas em algum
momento ou situação podem não o ser em outra circunstância. Por
exemplo, o trevo (Trifolium spp.) pode atuar como planta daninha,
competindo por água e nutrientes, causando prejuízo ao
crescimento da cultura; ou mesmo pode atuar como planta atrativa
de polinizadores para frutíferas cultivadas, melhorando a
polinização.
2
As plantas daninhas originaram-se muito antes da existência
do ser humano e evoluíram desde os primórdios da Terra, na sua
maioria, como especialistas em colonizar áreas com alto distúrbio,
ou seja, onde a vegetação, de alguma maneira, havia sido
destruída. Com o advento da agricultura, campos de produção
agrícola assemelhavam-se às áreas de alto distúrbio, às quais as
plantas daninhas eram adaptadas. Além de adaptadas, as plantas
daninhas passaram a evoluir conjuntamente com o ser humano nas
áreas agrícolas onde a pressão de seleção, devido ao controle, era
muito alta, o que causava maior adaptação das plantas aoambiente
de cultivo. Por isso, as plantas daninhas são altamente adaptadas
ao ambiente agrícola e de improvável erradicação.
No processo evolutivo das plantas daninhas, diversas
características foram selecionadas, as quais permitem a
sobrevivência das espécies em ambientes agrícolas. Dentre as
principais características podem ser citadas: a desuniformidade no
processo germinativo, o rápido crescimento e desenvolvimento
inicial, o curto ciclo de desenvolvimento, a rápida produção de
estruturas reprodutivas, a produção de grande quantidade de
sementes, os mecanismos múltiplos de dormência de sementes, a
longevidade das sementes e outras estruturas de reprodução, a
facilidade de dispersão das estruturas reprodutivas, entre
outras. Essas características permitem que as comunidades de
plantas daninhas sejam altamente dinâmicas em termos
reprodutivos e de recolonização das áreas, dificultando o controle e
aumentando a capacidade de prejudicar a produção das culturas
agrícolas.
3
Convivência com plantas daninhas
Interferência
Os prejuízos causados pelas plantas daninhas decorrem de
uma série de fatores condicionantes do ambiente em função de sua
presença nas áreas agrícolas. O somatório desses fatores é
denominado interferência, ou seja, “o conjunto de ações negativas
que recebe determinado cultivo agrícola em decorrência da
presença de plantas daninhas em determinado ambiente”
(PITELLI, 1985). Os principais fatores componentes da interferência
das plantas daninhas em áreas de cultivo agrícola são:
competição, alelopatia e hospedagem de pragas e agentes
fitopatogênicos.
A competição é a interação entre plantas em que há prejuízo
para ambos os indivíduos envolvidos devido à limitação de algum
recurso ambiental exigido para o crescimento e desenvolvimento
das plantas. Portanto, a competição somente vai ocorrer quando ao
menos um recurso estiver limitado no meio. Caso o meio forneça o
recurso em quantidade suficiente para atender a demanda de
ambos os indivíduos, o simples fato de estarem convivendo não
garante que a competição irá se estabelecer.
Os principais recursos passíveis de competição são: água,
nutrientes, luz e espaço; podendo haver, ainda, limitação de gases
(CO2 e O2, principalmente). É importante ressaltar que a ocupação
do espaço (limitação de espaço, especificamente), está diretamente
relacionada à competição por água, nutrientes e luz, ou seja,
4
quando a planta ocupa mais espaço, consequentemente, pode
alocar mais recursos do meio.
A competição é considerada a principal causa de redução
de produtividade em cultivos agrícolas, pois as plantas daninhas
requerem, para seu crescimento e desenvolvimento, sempre os
mesmos recursos que as plantas cultivadas. Porém, de maneira
geral, é praticamente impossível separar, no campo, os efeitos
oriundos da competição e da alelopatia (que será discutida a seguir).
Considerando, portanto, o termo interferência mais adequado para
descrever os efeitos negativos que ocorrem quando plantas
daninhas convivem e causam reduções de produtividade em
culturas agrícolas.
A alelopatia é a interação entre plantas em que ao menos
um dos indivíduos envolvidos é prejudicado, enquanto o outro pode
se beneficiar ou não da interação. Nesse sentido, entende-se que
uma planta produz e libera no ambiente algum metabólito
secundário (denominado aleloquímico) que exercerá algum efeito
inibidor no crescimento e no desenvolvimento de outra planta.
Os metabólitos secundários são produzidos por diferentes
partes da planta, dependendo, inclusive, da espécie em questão.
Normalmente, os metabólitos secundários com potencial alelopático
(aleloquímicos) são produzidos em maior quantidade nas folhas. A
quantidade de aleloquímicos produzida varia em função da espécie
e é influenciada por fatores bióticos e abióticos. Há espécies em que
algum fator de estresse, biótico ou abiótico, pode estimular a
produção de determinado composto; porém, em outra espécie pode
ocorrer inibição na produção do composto.
5
Muitas plantas daninhas atuam ainda como hospedeiras
alternativas de insetos, fungos, bactérias, vírus, nematoides, ácaros
e outros micro-organismos fitopatogênicos que podem ser potenciais
pragas de culturas agrícolas. Nesse caso, a presença da planta
daninha na área vai aumentar a quantidade da praga, aumentando o
risco para a cultura. Plantas daninhas como serralha (Sonchus
oleraceus), carurus (Amaranthus spp.), ançarinha-branca
(Chenopodium album), leiteiro (Euphorbia heterophylla) e
guanxumas (Sida spp.) são hospedeiras de mosca-branca (Bemisia
tabaci). Balãozinho (Nicandra physaloides), papuã (Urochola
plantaginea) e picão-preto (Bidens pilosa) são plantas hospedeiras
de nematoides Meloidogyne spp., por exemplo.
Grau de interferência
O somatório percentual desses efeitos sobre a produtividade
de determinada cultura agrícola é denominado grau de interferência,
ou seja, “a redução percentual da produção econômica de
determinada cultura provocada pela interferência de plantas
daninhas” (PITELLI, 1985). O grau de interferência é influenciado
por fatores bióticos e abióticos do ambiente, os quais, por sua vez,
são condicionados por fatores edafoclimáticos. Pitelli (1985),
também destaca quatro componentes do grau de interferência em
ambientes agrícolas: comunidade infestante, cultura agrícola,
manejo da área e período de convivência das plantas daninhas com
as culturas agrícolas. Esses quatro fatores, por sua vez, são todos
influenciados e condicionados por fatores de solo e clima.
6
Os fatores que compõem os efeitos derivados da
comunidade infestante sobre o grau de interferência são: a
composição específica (há espécies mais competitivas que outras),
a densidade de plantas (em geral, densidades mais altas promovem
maior interferência, até o limite da interferência intraespecífica) e
pela distribuição das plantas na área (distribuições aleatórias, ou
mais próximas à uniforme, promovem maior interferência).
Os fatores que compõem os efeitos derivados da cultura
agrícola sobre o grau de interferência são: o genótipo (há espécies
que são mais competitivas, assim como, dento da mesma espécie,
há cultivares mais competitivos que outros, que crescem mais rápido
e fecham a entrelinha rapidamente), a população e o arranjo de
plantas (em geral, quanto menor o espaçamento entrelinhas, mais
rapidamente o dossel sombreia a entrelinha e inibe a germinação
e/ou crescimento das plantas daninhas, assim como, densidades
mais altas promovem, em geral, maior capacidade competitiva; além
de que plantas distribuídas mais uniformemente podem aproveitar
melhor os recursos para seu crescimento).
Todo manejo empregado na área vai influenciar tanto
plantas cultivadas quanto plantas daninhas. Adubações, por
exemplo, favorecem o crescimento de ambas; assim, plantas
daninhas que alocam quantidades grandes de recursos podem inibir
mais rapidamente e intensamente o crescimento da cultura. O
controle fitossanitário também influencia ambas as plantas, daninhas
e cultivadas. Por isso, o controle das plantas daninhas deve ser
eficiente para que essa vegetação não usufrua melhor do manejo da
área que as plantas cultivadas.
7
O período de convivência entre plantas daninhas e as
culturas agrícolas é um dos principais fatores que compõem o grau
de interferência. De maneira geral, quanto mais longo o tempo de
convivência, mais intenso poderá ser o grau de interferência. Porém,
não somente o tempo de convivência, mas também a época em que
ocorre a convivência é importante (CARVALHO, 2013). Sabe-se que
no início e final do ciclo da cultura, a presença das plantas daninhas
pode não acarretar interferência. Em função disso, três períodos de
interferência foram propostos por Pitelli e Durigan (1984): o período
anterior à interferência (PAI), o período total de prevenção à
interferência (PTPI) e o período crítico de prevenção à interferência
(PCPI).
Há um período no início do ciclo em que a convivência não
acarreta interferência, pois a quantidade de recursos do ambiente é
suficiente para suprir as necessidades tanto das plantas daninhas
quanto das plantas cultivadas. Esse período inicia-se no plantio (ou
após a dormência fisiológica de culturas perenes, causada por
temperaturas baixas) e estende-se até o momento em que as
necessidades das plantas daninhas e cultivadas suplantam a
quantidade de recursos disponível no ambiente, estabelecendo-se,
portanto, o início da interferência. Tal período é denominado de
Período Anterior à Interferência (PAI).
Há um período em que, teoricamente, a ação residual dos
herbicidas aplicados ao solo deve cobrir até o momento em que a
própria cultura, por si só, seja capaz de inibir a emergência e/ou o
crescimento das plantas daninhas (por sombrear as entrelinhas,
geralmente). Esse período inicia-se no mesmo momento do PAI e
8
estende-se até o momento descrito acima (sombreamento das
entrelinhas, normalmente). Tal período é denominado de Período
Total de Prevenção à Interferência (PTPI). Portanto, o PTPI
compreende o PAI e mais um período, como descrito a seguir.
Há um período do ciclo da cultura, que se inicia no final do
PAI e se estende até o final do PTPI, em que a presença de plantas
daninhas efetivamente acarreta interferência sobre a produtividade
das culturas e, portanto, devem ser controladas para prevenir à
interferência. Tal período é denominado de Período Crítico de
Prevenção à Interferência (PCPI). O controle, de modo geral, deve
ser feito durante todo esse período.
Todos os fatores descritos acima são, de maneira direta ou
indireta, influenciados por condições de solo e clima. Locais com
condições de solo e clima diferentes tendem a apresentar
comunidades de plantas daninhas de composição distinta devido à
adaptação das espécies. Além disso, a composição pode até ser a
mesma, mas a importância relativa das espécies pode ser diferente,
também devido à adaptação das mesmas. Portanto, mesmo que
comunidades infestantes semelhantes se estabeleçam em dois
locais de condições distintas de solo e clima, o grau de interferência
exercido por elas em uma mesma cultura pode ser diferente.
O comportamento dos herbicidas no ambiente é diferente
quando se compara solos de texturas diferentes e mesmo condições
de clima diferenciadas. Clima mais ameno tende a ter menos perdas
por volatilização. Solo mais argiloso tende a reter mais herbicida,
enquanto solo mais arenoso tende a lixiviar mais herbicida
(logicamente depende de propriedades dos herbicidas). O
9
comportamento das culturas também é influenciado de modo que
culturas mais adaptadas à determinada região se desenvolvem
melhor nessa região ou em regiões com condições edafoclimáticas
semelhantes.
Dessa maneira, diz-se que condições edafoclimáticas
condicionam os demais fatores que compõem o grau de
interferência (plantas daninhas, planta cultivada, período de
convivência e manejo), sendo, também, um fator que influencia o
grau de interferência.
10
11
CAPÍTULO 2
MÉTODOS DE CONTROLE DE PLANTAS DANINHAS
Leonardo Bianco de Carvalho
Marcela Padilha
Introdução
O controle das plantas daninhas consiste em suprimir o
crescimento e/ou reduzir o número de plantas até níveis aceitáveis
para convivência, ou seja, sem que estas causem prejuízos para a
cultura. Já o manejo da vegetação ou das plantas daninhas consiste
em se utilizar, de forma integrada e planejada, práticas dos
diferentes métodos de controle, para manter a cultura livre de
interferência e a infestação em níveis aceitáveis. Portanto, o manejo
de plantas daninhas envolve estratégias que devem ser aplicadas
em momentos adequados. Os momentos em que ocorrem as
melhores oportunidades de controle são antes, na implantação
do pomar e após a implantação do pomar (VARGAS; OLIVEIRA,
2002).
Ainda de acordo com esses autores, a implantação e a
definição de estratégias de manejo da vegetação de cobertura do
solo em pomares passa pela aceitação de que as plantas daninhas
e as culturas podem conviver em determinados níveis e em
determinadas épocas, principalmente para o sistema de produção
orgânico. No entanto, em sistemas não-orgânicos de produção,
12
deve-se lançar mão de outros métodos de controle para constituir
estratégias adequadas dentro do programa de manejo de plantas
daninhas, principalmente integrando diferentes métodos para
aumentar a eficiência de controle e diminuir os prejuízos causados
pela presença das plantas daninhas em áreas agrícolas.
Prevenção
A prevenção envolve o uso de práticas que visam reduzir ou
não aumentar o banco de dissemínulos das plantas daninhas em
determinado ambiente. A prevenção pode envolver o uso de outros
métodos de controle para prevenir a ocorrência das plantas
daninhas e sua disseminação nas áreas, envolvendo três situações
básicas: (i) limitação da entrada de estruturas reprodutivas de
espécies plantas daninhas de outras áreas que não ocorrem na área
em questão; (ii) limitação da entrada de estruturas reprodutivas de
espécies de plantas daninhas presentes na área, oriundas de outras
áreas; e (iii) limitação da disseminação de espécies de plantas
daninhas presentes na própria área.
Diversas são as práticas de prevenção utilizadas no manejo
de plantas daninhas, destacando-se: (i) limpeza de equipamentos,
ferramentas, implementos e máquinas agrícolas utilizadas no
manejo das culturas, principalmente quando são deslocados de uma
área para outra; (ii) limpeza de roupas, sapatos e EPIs antes da
entrada na lavoura; (iii) uso de sementes e mudas certificadas, para
garantir que não haja contaminação do lote de sementes e mudas
com estruturas reprodutivas de plantas daninhas; (iv) uso de esterco
13
muito bem fermentado, pois, no processo de fermentação, as
sementes das plantas daninhas podem ser deterioradas; (v) limpeza
dos canais de irrigação, para evitar que as plantas daninhas
proliferem-se na beira desses locais e que, em seguida, sejam
disseminadas pela água de irrigação;e (vi) manter animais em
quarentena, pois podem trazer sementes de plantas daninhas no
seu aparelho digestório (inclusive, quebrando sua dormência no
trato gastrointestinal).
Tipos de controle
O controle de plantas daninhas em ambientes agrícolas pode
ser feito por meio de diversos métodos. Os métodos possíveis de
serem utilizados são: cultural, mecânico, físico e químico.
O método de controle cultural baseia-se no uso do manejo
da própria cultura para controlar as plantas daninhas. Dentro do
método de controle cultural existem diversas práticas de controle,
destacando-se: (i) uso de variedades mais competitivas; (ii) uso de
espaçamento mais estreito; (iii) uso de densidade de plantio mais
alta; (iv) uso de cobertura verde (culturas de cobertura), entre
outras. Esse método é de baixo custo e pode ser utilizado em
qualquer área de produção, sem restrições.
O método de controle mecânico baseia-se no uso de algum
instrumento que arranque ou corte as plantas daninhas. Dentro do
método de controle mecânico existem diversas práticas de controle ,
destacando-se: (i) monda (arranquio ou corte das plantas daninhas
utilizando as mãos como instrumento de controle); (ii) capina
14
(arranquio ou corte manual das plantas daninhas utilizando
instrumentos de controle como enxada, enxadão, picão, enxada-
rotativa, rolo-faca etc.); (iii) roçada (corte das plantas daninhas
utilizando instrumentos de controle como roçadeiras elétricas ou
motorizadas, foices, roçadeiras tratorizadas, rolo-faca etc.); e (iv)
cultivo ou cultivo do solo (arranquio das plantas daninhas através do
revolvimento do solo realizado por implementos agrícolas
cultivadores (arado de disco, arado de aivecas, subsoladores etc.).
Esse é o método mais oneroso e de menor rendimento, havendo
limitação em áreas muito declivosas sempre que envolve o uso de
máquinas agrícolas.
O método de controle físico baseia-se no uso de alguma
prática que exerça influência física sobre as plantas daninhas.
Dentro do método de controle físico existem diversas práticas de
controle, destacando-se: (i) cobertura morta (uso de palha ou outro
resíduo vegetal) e (ii) solarização (uso de filme de polietileno). Esse
método é relativamente oneroso e limitado a pequenas áreas.
O método de controle químico baseia-se no uso de produtos
químicos (herbicidas) visando matar plantas daninhas. É o método
mais difundido e sua aceitação decorre de: (i) apresentar menor
dependência de mão de obra, que é cada vez mais cara e difícil de
ser encontrada; (ii) ser rápido, prático e eficiente; (iii) apresentar
controle eficiente, mesmo em épocas chuvosas; (iv) poder ser usado
com eficiência mesmo na linha de plantio, sem danificar o sistema
radicular da cultura; (v) permitir o cultivo mínimo ou plantio direto;
(vi) poder controlar plantas daninhas de reprodução vegetativa
(SILVA; SILVA, 2007).
15
Os herbicidas disponíveis para uso agrícola no Brasil
(MAPA, 2013) são de diversos grupos químicos pertencentes a 15
mecanismos de ação distintos. Por mecanismo de ação, entende-se
o primeiro evento metabólico (sítio de ação) das plantas onde o
herbicida atua. Os principais herbicidas utilizados no Brasil
apresentam os seguintes mecanismos de ação:
a) Inibidores da ACCase – inibem a ação da enzima acetil
coenzima A carboxilase, que catalisa a reação de conversão
da Acetil-CoA em Malonil-CoA, precursor de ácidos graxos.
Em geral, são herbicidas aplicados em pós-emergência para
controle de gramíneas. Destacam-se: clodinafop-propargyl,
haloxyfop-p-ethyl, fluazifop-p-buthyl, clethodim, sethoxydim
etc;
b) Inibidores da ALS – inibem a ação da enzima acetolactato
sintase, que catalisa as reações de condensação de
piruvato em acetolactato, precursor de valina e leucina, e de
piruvato+cetobutirato em acetohidroxiburitato, precursor de
isoleucina. Em geral, são herbicidas aplicados em pós-
emergência (com boa ação no solo). Controlam mono e
dicotiledôneas, mas há variação entre os grupos químicos.
Destacam-se: chlorimuron-ethyl, metsulfuron-methyl,
nicosulfuron, imazethapyr, cloransulam-methyl, diclosulam,
flumetsulam, pyritiobac-sodium etc;
c) Inibidores do FSII – inibem o transporte de elétrons no
fotossistema II, ligando-se à proteína D1 onde se acopla à
plastoquinona, havendo formação de radicais livres e
destruição do cloroplasto. Em geral, são herbicidas
16
aplicados no solo (mas têm boa ação foliar) para controle de
dicotiledôneas, preferencialmente. Destacam-se: atrazine,
metribuzin, amicarbazone, bentazon, diuron, linuron,
tebuthiuron, propanil etc;
d) Inibidores do FSI – inibem o transporte de elétrons no
fotossistema I, ligando-se aos transportadores ferredoxina,
havendo formação de radicais livres e destruição do
cloroplasto. São herbicidas de ação total utilizados
essencialmente em pós-emergência. Paraquat e diquat são
os herbicidas desse mecanismo de ação;
e) Inibidores da PROTOX – inibem a ação da enzima
protoporfirinogênio oxidase, que catalisa a conversão de
protoporfirigonênio IX em protoporfirina IX, precursor de
clorofilas e citocromos. Ocorre, ainda, formação de radicais
livres que causam destruição de membranas da célula. Em
geral, são herbicidas aplicados em pós-emergência, mas
alguns têm ação no solo, para controle de dico e
monocotiledôneas. Destacam-se: fomezafen, lactofen,
oxyfluorfen, flumioxazin, oxadiazon, carfentrazone-ethyl,
sulfentrazone etc;
f) Inibidores da HPPD – inibem a ação da enzima 4-
hidroxifenil-piruvato dioxigenase, que catalisa a conversão
de 4-hidroxifenilpiruvato em homogentisato, precursor de
plastoquinona que, por sua vez, é requerida para a síntese
de carotenoides. Há destruição de clorofilas e formação de
radicais livres e peróxido de hidrogênio (H2O2),
destruindo membranas. Em geral, são recomendados para
17
aplicação nas folhas para controle de mono e
dicotiledôneas. Destacam-se: mesotrione, tembotrione e
izoxaflutole;
g) Inibidores da DOXP – inibem a ação da enzima 1-deoxi-D-
xilulose 5-fosfato sintase que atua na rota metabólica da
síntese de carotenoides, causando efeitos similares aos
Inibidores de HPPD. Utilizado em pré-emergência para
controle de mono e dicotiledôneas. Destaca-se o herbicida
clomazone;
h) Inibidores da EPSPs – herbicidas de amplo espectro que
inibem a ação da enzima 5-enolpiruvil chiquimato-3-fosfato
sintase, que catalisa a conversão de chiquimato-3-fosfato +
fosfoenolpiruvato em 5-enolpiruvil chiquimato-3-fosfato,
precursor de fenilalanina, tirosina e triptofano. Aplicado
essencialmente em pós-emergência para controle não-
seletivo (exceto culturas transgênicas). Destaca-se o
herbicida glyphosate;
i) Inibidores da GS – herbicidas de amplo espectro que inibem
a ação da enzima glutamina sintetase, que catalisa a
conversão de conversão do glutamato em glutamina,
precursor de asparagina, histidina e triptofano. Aplicado
essencialmente em pós-emergência para controle não-
seletivo (exceto culturas transgênicas). Destaca-se o
herbicida glufosinate-ammonium;
j) Inibidores do arranjo de microtúbulos – atuam inibindo a
formação das fibras dos microtúbulos, impedindo a
movimentação dos cromossomos e causando, assim, a
18
interrupção da divisão celular na Prófase. Aplicados
essencialmente em pré-emergência para controle de
gramíneas. Destacam-se os herbicidas: trifluralin e
pendimethalin;
k) Inibidores da biossíntese de ácidos graxos de cadeira muito
longa – o mecanismo exato de ação ainda não é conhecido,
mas se sabe que degradam aminoacil tRNAs, afetando a
síntese proteica e inibindo, assim, a divisão celular.
Destacam-se os herbicidas alachlor e metolachlor;
l) Inibidores da biossíntese de lipídeos (não-ACCase) – atuam
inibindo a síntese de lipídeos, proteínas, isoprenoides e
flavonoides, mas o mecanismo exato de ação não é
conhecido. São aplicados essencialmente em pré-
emergência para controle de gramíneas. Destacam-se os
herbicidas molinate e thiobencarbe;
m) Mimetizadores de auxina – apresentam ação potencializada
da auxina, induzindo mudanças metabólicas e bioquímicas
no metabolismo de ácidos nucleicos e na plasticidade da
parede celular. São aplicados preferencialmente em pós-
emergência, mas têm boa ação no solo, para controle de
dicotiledôneas. Destacam-se os herbicidas 2,4-D, quinclorac
e triclopyr.
Na cultura da videira, 29 produtos comerciais estão
registrados junto ao MAPA para uso no controle de plantas
daninhas. No entanto, esses herbicidas pertencem a apenas quatro
mecanismos de ação, sendo que nenhum deles é totalmente
19
seletivo para a cultura. Dessa forma, há limitação da rotação de
herbicidas com mecanismos de ação distintos, o que pode gerar
problemas de manejo em relação à seleção de flora tolerante ou
mesmo resistente aos produtos. Os herbicidas registrados junto ao
MAPA para uso na videira estão descritos na Tabela 1.
20
Tabela 1. Informações sobre os herbicidas registrados no Ministério da Agricultura, Pecuária e Abastecimento (MAPA)
para uso em videira no Brasil. Nome Comum Sítio de Ação
/1 Aplicação
/2 Ação Marca Comercial Dose de PC
/3
diuron/4 FSII
PRE, POS ou
POSd
Sistêmica (PRE)
Contato (POS) Diuron (Nortox) 2 a 6 L/ha
glufosinate/5 GS POS ou POSd Contato
Finale (Bayer)
Liberty (Bayer)
2 L/ha
2 L/ha
glyphosate/6 EPSPS POS ou POSd Sistêmica
Credit (Nufarm)
Crucial (Nufarm)
Direct (Monsanto)
Glifosato (Atanor)
Glifosato (Nortox)
Glifosato Agripec (Nufarm)
Gliox (Nortox)
Gliz (Dow)
Gliz Plus (Dow)
Mademato (Dipil)
Pilarsato (Pilarquin)
Pocco (Consagro)
Polaris (Du Pont)
Preciso (Consagro)
Radar (Monsanto)
0,5 a 6 L/ha
0,8 a 5 L/ha
0,5 a 3,5 kg/ha
1 a 6 L/ha
1 a 6 L/ha
1 a 6 L/ha
1 a 6 L/ha
2 a 6 L/ha
1 a 6 L/ha
1 a 5 L/ha
1 a 5 L/ha
1 a 5 L/ha
1 a 5 L/ha
0,5 a 2,5 kg/ha
1 a 5 L/ha
Continuação da Tabela 1 na página seguinte...
21
…continuação da Tabela 1.
Roundup Original
Roundup Transorb (Monsanto)
Roundup WG (Monsanto)
Rustler (Monsanto)
Stinger (Monsanto)
Sumô (Pilarquin)
1 a 6 L/ha
0,75 a 4,5 L/ha
0,5 a 3,5 kg/ha
1,5 a 5 L/ha
0,5 a 5 L/ha
1 a 5 L/ha
paraquat/7 FSI POS ou POSd Contato
Helmoxone (Helm)
Laredo (Helm)
Orbit (Sinon)
Paradox (Sinon)
1,5 a 2 L/ha
1,5 a 2 L/ha
1,5 a 2 L/ha
1,5 a 3 L/ha
diuron+paraquat/8 FSII+FSI POS ou POSd Contato Gramocil (Syngenta) 2 L/ha
/1 FSII e FSI correspondem aos herbicidas inibidores do fluxo de elétrons nos fotossistemas II e I, respectivamente; e GS e EPSPS correspondem aos
herbicidas inibidores das enzimas glutamina sintetase e 5-fosfoenolpiruvil-chiquimato-3-fosfato sintase. /2 PRE, POS e POSd correspondem a épocas de aplicação, sendo: PRE, pré-emergência das plantas daninhas (normalmente na entrelinha da cultura;
POS, pós-emergência das plantas daninhas (normalmente na entrelinha com proteção, denominada de pós-dirigida = POSd). /3 PC corresponde a produto comercial; a variação da dose depende do tipo de solo, da espécie, do estádio de crescimento das plantas daninhas, entre
outros fatores, sendo que a determinação da dose correta a ser utilizada deve ser feita por profissional qualificado. /4 Recomendado para aplicação no início do outono para controle de plantas daninhas anuais e algumas perenes, ou, em alguns casos, em aplicações em
pós-emergência, mantendo certo residual no solo. /5 recomendado para aplicação em pós-emergência dirigida, em plantas recém-emergidas, de preferência, para controle de plantas daninhas anuais e
algumas perenes. /6 recomendado para aplicação em pós-emergência dirigida para controle de plantas daninhas gramíneas anuais e perenes e eudicotiledôneas.
/7 recomendado para aplicação em pós-emergência dirigida, em plantas recém-emergidas, de preferência, para controle de plantas daninhas anuais e
algumas perenes. /8 recomendado para aplicação em pós-emergência dirigida para controle de plantas daninhas anuais e algumas perenes, mantendo certo residual no solo.
FONTE: Adaptado de Derr (2013) e MAPA (2013).
22
23
CAPÍTULO 3
MANEJO INTEGRADO DE PLANTAS DANINHAS
Leonardo Bianco de Carvalho
Liese de Vargas Pereira
O Manejo Integrado de Plantas Daninhas (MIPD) nada mais é
que o uso associado de dois ou mais métodos de controle em uma mesma
área e época de cultivo. No entanto, para que o MIPD seja bem feito, há
necessidade de conhecimento a respeito das espécies de plantas daninhas
que ocorrem nas áreas de produção e de se fazer o monitoramento de suas
populações ao longo das estações de cultivo. Com isso é possível saber se
as estratégias de controle utilizadas estão sendo eficazes e estabelecer,
efetivamente, programas de manejo das plantas daninhas que sejam
adequados a cada região e ambientes de cultivos distintos.
Monitoramento de comunidades de plantas daninhas
O monitoramento de comunidades de plantas daninhas é essencial
para saber se o programa de manejo utilizado está sendo eficaz. Como as
comunidades de plantas daninhas são muito dinâmicas, seu estudo é muito
importante para entender o comportamento das espécies dentro da
comunidade, realçando possíveis alterações na importância relativa de cada
espécie e, assim, sendo possível adequar as estratégias de manejo dentro
do programa de manejo estabelecido.
24
A etapa inicial do monitoramento de comunidades de plantas
daninhas é o conhecimento das espécies presentes, sendo, portanto,
indispensável a identificação das espécies de plantas daninhas que ocorrem
na área de cultivo. A segunda etapa é a amostragem de populações de
plantas daninhas dentro da comunidade, sendo muito importante saber a
área representativa a ser amostrada. A terceira etapa é o estudo da
comunidade de plantas daninhas, denominado fitossociologia, que é feito
através da análise de índices fitossociológicos. A última etapa é a
comparação dos resultados de uma amostragem com a amostragem
anterior (quando não for a primeira, obviamente) para analisar possíveis
alterações na dinâmica das populações de plantas daninhas dentro da
comunidade. Esses resultados serão, então, utilizados para estabelecer
estratégias adequadas e viáveis de controle dentro do programa de manejo
de plantas daninhas.
Determinação da área mínima de amostragem
Normalmente, para o monitoramento de plantas daninhas utiliza-se
quadros vazados de ferro de 50 cm de lado (área de 0,25 m2); no entanto,
quadros maiores devem ser utilizados quando indivíduos que acumulam
muita biomassa são encontrados na comunidade.
Para a determinação da área mínima de amostragem, ou o número
mínimo de amostras, deve-se caminhar em zigue-zague na área toda e
lançar aleatoriamente o quadro ao solo. Todas as plantas dentro do quadro
devem ser contadas separadamente dentro de cada espécie. Sempre que
aparecer alguma espécie nova, em cada quadro lançado, a amostragem
deve continuar. Quando, portanto, não for mais encontrada qualquer
25
espécie nova, desde que tenha percorrido toda a área de cultivo, pode-se
finalizar a amostragem. Normalmente, 32 amostras são suficentes para
estabelecer a área mínima de amostragem.
Findada a amostragem, os dados devem ser transpostos a uma
planilha contendo o número de amostras nas colunas e as espécies
encontradas em cada amostra nas linhas, como na Tabela 2.
Tabela 2. Exemplo de tabela de amostragem de plantas daninhas para
determinação da área mínima de amostragem.
Espécies Amostra 1 Amostra 2 ... Amostra n
Espécie 1 * *
Espécie 2 *
...
Espécie n *
FONTE: Carvalho (2011).
O próximo passo é construir uma tabela auxiliar. Sorteia-se um
número da amostra (p.ex. Amostra 2) e anota-se quais espécies estão
contidas nesta amostra. Em seguida, deve-se dobrar a área amostrada, ou
seja, sortear mais uma amostra (p.ex. Amostra 10), excluindo àquela que já
foi amostrada, e anotar as espécies novas. Depois, dobrar a área
amostrada, ou seja, sortear mais duas amostras (p.ex. Amostras 8 e 16) e
anotar as espécies. Mais uma vez dobrar a área amostrada, sorteando
quatro novas amostras; depois mais oito amostras; depois mais 16
amostras, e assim por diante, até completar todas as amostras coletadas.
Portanto, constrói-se uma tabela auxiliar, como na Tabela 3.
Posteriormente, deve-se construir um gráfico utilizando a tabela
auxiliar (Tabela 3), onde o eixo X é o número de amostragens e o eixo Y
26
é o número de espécies, com ajuste hiperbólico, como na página
seguinte. Esse gráfico pode ser construído à mão, desde que obedecida a
escala.
Tabela 3. Exemplo de tabela auxiliar de amostragem de plantas daninhas para
determinação da área mínima de amostragem.
Quadrados Totais Amostras Espécies Total de espécies
1 2 Esp 1, Esp 6 e
Esp 14 3
1 5 Esp 21, Esp 31 e
Esp 3 6
2 12 e 15 Esp 4, Esp 12,
Esp 41... 15
4 9, 13, 18 e 22 Esp 22 26
... ... ... ...
n n Nenhuma espécie
nova 26
FONTE: Carvalho (2011).
No exemplo, o número máximo de espécies é 32. Portanto, traça-se
uma linha da base da curva hiperbólica até a metade do número total de
espécie. Em seguida, traça-se uma linha paralela a essa primeira até
tangenciar a curva hiperbólica. Na intersecção da linha traçada com a curva
ajustada, traça-se outra linha até cruzar o eixo X, definindo o número
mínimo de amostras. Neste caso específico, em torno de 9 amostras, como
na Figura 1.
A construção da tabela auxiliar deve ser feita ao menos três vezes
para a determinação de, no mínimo, três áreas mínimas de amostragem.
Depois, faz-se a média das três áreas e define-se o número mínimo de
lançamentos dos quadros de amostragem a ser realizados para uma
perfeita amostragem da área a ser estudada.
27
Fitossociologia da comunidade de plantas daninhas
O estudo fitossociológico da comunidade de plantas daninhas deve
ser realizado antes e após a utilização de determinada medida ou estratégia
de controle. Por exemplo, caso necessite saber se a aplicação de
determinado herbicida foi eficaz (ou está sendo eficaz) no controle de
determinadas plantas daninhas, faz-se a primeira amostragem antes da
aplicação e a segunda amostragem após a aplicação do produto,
respeitando, logicamente, o período de ação do herbicida. Outras
amostragens devem ser feitas em espaços regulares de tempo para
confirmar o fluxo de plantas daninhas na área após a aplicação.
FONTE: Carvalho (2011).
Figura 1. Exemplo de gráfico para determinação da área mínima de amostragem.
Para o estudo fitossociológico da comunidade infestante do exemplo
anterior, estabelecemos o número mínimo de amostras em 9. Portanto, o
quadro de amostragem deverá ser lançado aleatoriamente no mínimo 9
28
vezes dentro de toda a área de cultivo. Nesse caso, deve-se proceder como
foi feito para determinação da área mínima de amostragem, contando-se o
número de plantas de cada espécie. O ideal seria além de identificar,
também coletar as plantas para serem pesadas (todas as plantas por
espécie), mas na prática tal procedimento poucas vezes é viável.
Sendo assim, com os dados de número de plantas e de frequência
de ocorrência das espécies nas 9 amostras, poder-se-á calcular os índices
fitossociológicos de constância relativa (Co.R.), densidade relativa (De.R.) e
importância relativa (I.R.) (MÜELLER-DOMBOIS; ELLEMBERG, 1974), que
serão analisados para determinar a dinâmica das populações dentro da
comunidade de plantas daninhas.
A constância relativa é calcula pela fórmula:
x100]/n)[(n
/n)(nCo.R.
pi
pi
em que: ni indica o número de amostras em que foram detectados
indivíduos de uma mesma espécie; n indica o número de amostras
coletadas na área; ∑[(ni/n)p)] indica o somatório das frequências de todas
as espécies em conjunto. Obs.: a letra p indica população.
A densidade relativa é calculada pela fórmula:
x100)(De
DeDe.R.
p
p
em que: Dep indica o número de indivíduos de uma mesma espécie; n indica
o número de amostras coletadas na área; ∑(Dep) indica o número total de
indivíduos de todas as espécies em conjunto. Obs.: a letra p indica
população.
29
A importância relativa é calculada pela fórmula:
x100]De.R.)[(Co.R.
De.R.)(Co.R.I.R.
p
p
Com isto, constrói-se uma tabela, indicando as espécies e os
relativos índices fitossociológicos para cada uma das espécies componente
da comunidade de plantas daninhas, como na Tabela 4.
Tabela 4. Exemplo de tabela para estufo fitossociológico de uma comunidade de
plantas daninhas.
Espécie Co.R. De.R. I.R.
Esp 1 30,0 58,8 44,4
Esp 2 30,0 13,7 21,9
Esp 3 16,7 9,8 16,6
Esp 4 23,3 17,6 17,2
FONTE: Produção do próprio autor.
Mais importante que construir a tabela é interpretá-la. Observando a
última coluna da Tabela 4, I.R., pode-se identificar a espécie mais
importante, que é aquela com maior importância relativa. Neste caso, com
I.R. de 44,4%, a Esp 1 é a mais importante. Por quê? Vamos observar os
outros índices. Apesar de apresentar mesma Co.R., em De.R. esta espécie
destacou-se em relação às demais. Portanto, a Esp 1 foi mais importante na
comunidade infestante, pois ocorreu com maior número de indivíduos, em
relação às demais espécies.
A espécie 2, embora tenha apresentado menor De.R. que a espécie
3, teve Co.R. bem mais alta, ou seja, foi mais frequentemente encontrada,
sendo, portanto, a segunda mais importante. Já a espécie 4, embora com
30
maior Co.R. que a espécie 3, apresentou De.R. bem menor, sendo,
portanto, a menos importante da comunidade.
Com o estudo fitossociológico, percebe-se que a espécie 4 está
dominando a área, com alta frequência de ocorrência e densas populações.
Portanto, entende-se que o programa de manejo utilizado nesta área fictícia
não está sendo eficiente para controlar essa espécie. Dessa maneira, deve-
se reanalisar todas as estratégias de controle no sentido de priorizar o
controle desta espécie e entender quais os motivos da seleção desta planta
no ambiente de cultivo. Assim, medidas de controle diferentes daquelas que
estão sendo utilizadas deverão ser inseridas no programa de manejo, como
adoção de outro método de controle, rotação de herbicidas etc., para que se
possa ter eficiência no manejo integrado das plantas daninhas.
Principais plantas daninhas em videiras de altitude
A vitivinicultura de altitude é explorada, basicamente, na região Sul
do Brasil, nos estados de Santa Catarina e Rio Grande do Sul. Em função
das características regionais, e logicamente influenciada pela altitude, a
composição específica das comunidades infestantes difere
demasiadamente de outras regiões produtoras de uva do Brasil. As plantas
daninhas que ocorrem, em maior ou menor frequência, nas regiões
produtoras de uva em altitude e suas principais características que auxiliam
nas tomadas de decisão para escolha de práticas adequadas de controle
estão descritas na Tabela 5.
Dentre todas essas espécies de plantas daninhas, a que mais
preocupa os produtores de uva, principalmente no Estado do Rio Grande do
Sul, é o azevém devido à presença de biótipos resistentes ao herbicida
31
glyphosate. Como alternativa de controle químico desses biótipos, Mariani
et al. (2013) destacam a possibilidade de aplicação de herbicidas
graminicidas, como os inibidores da ACCase (Fusilade, Verdict-R, Gallant,
Shogun, Furore, Podium, Iloxan, Select e Poast) e inibidor da ALS (Hussar),
além de herbicidas de ação total, como inibidores do FSI (Gramoxone) e da
GS (Finale). Os herbicidas graminicidas indicados são seletivos para a
videira, no entanto não estão registrados junto ao MAPA para uso na
cultura. O herbicida Finale está registrado para uso em videira, já o
Gramoxone não. Porém, produtos similares ao Gramoxone, à base de
paraquat, estão registrados para uso em videira (vide Tabela 1). No entanto,
esses produtos não são seletivos para a videira e devem ser empregados
de maneira cuidadosa, com proteção e em jato dirigido, para não atingirem
e ocasionarem danos às folhas da videira, com possíveis reflexos no
crescimento e na produtividade da cultura.
Estratégias de manejo em videiras de altitude
As principais estratégias que podem ser adotadas para reduzir a
infestação das plantas daninhas antes da implantação do pomar,
segundo Vargas e Oliveira (2002), são: usar áreas livres ou com baixa
infestação de plantas daninhas ou, ainda, áreas com espécies de fácil
controle; eliminar as espécies daninhas estabelecidas com uso de preparo
do solo ou de herbicidas totais; utilizar práticas capazes de induzir a
germinação das sementes e a emergência das plântulas, reduzindo o banco
de dissemínulos, e controlar estas, mecanicamente ou com herbicidas
antes da implantação da cultura; e implantar espécies como azevém
e/ou aveia para formar cobertura morta. Já após a implantação do pomar, o
32
uso da roçadeira reduz a infestação de plantas daninhas nas entrelinhas,
mas não daquelas localizadas na linha da cultura. O controle das
plantas daninhas existentes na linha pode ser feito com uso de roçadeira
manual e/ou cobertura morta e com uso de herbicidas, dependendo do
sistema de produção utilizado.
A cobertura vegetal, seja cobertura verde ou morta, é de grande
importância no manejo de plantas daninhas em videira, principalmente no
outono-inverno, em que o azevém pode infestar intensamente as áreas de
produção. No entanto, a cobertura deve estar limitada à entrelinha de
33
Tabela 5. Características de plantas daninhas de ocorrência em regiões produtoras de videiras de altitude. Espécie Nome comum Origem Hábito Ciclo Reprodução
Ageratum conyzoides catinga-de-bode América herbácea anual sementes
Bidens pilosa
Bidens subalternans picão-preto América herbácea anual sementes
Bromus catharticus cevadilha América herbácea anual sementes
Cenchrus echinatus capim-carrapicho América herbácea anual sementes
Chloris distichophylla
Chloris guayana pé-de-galinha
América
África herbácea perene
sementes
sementes e estolões
Commelina benghalensis
Commelina diffusa
Commelina erecta
trapoeraba
Ásia
América
América
herbácea perene
sementes
sementes e enraizamento de ramos
sementes e enraizamento de ramos
Conyza bonariensis
Conyza. canadensis
Conyza sumatrensis
buva ou voadeira América herbácea anual sementes
Cynodon dactylon grama-seda África, Europa
e Ásia herbácea perene sementes, rizomas e estolões
Cyperus difformis
Cyperus esculentus
Cyperus ferax
Cyperus meyenianus
Cyperus rotundus
tiririca
Europa
América
América
América
India
herbácea
anual
perene
perene ou anual
perene
perene
sementes
sementes e tubérculos
sementes e tubérculos
sementes
tubérculos e sementes
Continuação da Tabela 5 na página seguinte...
34
...continuação da Tabela 5.
Digitaria horizontalis
Digitaria sanguinalis milhã
América
Europa herbácea anual
sementes e enraizamento de nós
sementes
Echinochloa colona
Echinochloa crus-galli
Echinochloa crus-pavonis
capim-arroz
Índia
Europa e Ásia
Europa e Ásia
herbácea anual sementes
Eleusine indica capim-pé-de-galinha Ásia herbácea anual ou perene sementes
Euphorbia heterophylla leiteiro América herbácea anual sementes
Eryngium elegans caraguatá América herbácea perene sementes e rizomas
Hypochaeris brasiliensis
Hypochaeris radicata almeirão-do-campo
América
Europa herbácea
anual ou bianual
perene
sementes e rebrota de raízes
sementes
Hypoxis decumbens falsa-tiririca América herbácea perene sementes e rizomas
Hyptis mutabilis
Hyptis suaveolens betônica América herbácea anual sementes
Ipomoea grandifolia
Ipomoea hederifolia corda-de-viola América trepadeira anual sementes
Lolium multiflorum azevém Europa herbácea anual ou bianual sementes
Panicum maximum sempre-verde África herbácea perene sementes e rizomas
Pennisetum clandestinum capim-quicuio África herbácea perene rizomas e estolões
Physalis angulata bucho-de-rã América herbácea anual sementes
Plantago major tanchagem Europa herbácea perene sementes e gemas de raiz
Continuação da Tabela 5 na página seguinte...
35
...continuação da Tabela 5.
Plantago tomentosa tanchagem América herbácea perene sementes
Poa annua pastinho-de-inverno Europa herbácea anual sementes
Raphanus raphanistrum
Raphanus sativus nabiça ou nabo Europa herbácea anual sementes
Richardia brasiliensis poaia-branca América herbácea anual sementes
Rumex obtusifolius língua-de-vaca Europa herbácea perene sementes e gemas de raiz
Senecio brasiliensis maria-mole América herbácea perene sementes
Sida rhombifolia guanxuma América subarbustiva anual ou perene sementes
Silene gallica flor-roxa Mediterrâneo herbácea anual sementes
Sinapis arvensis mostarda Europa herbácea anual sementes
Solanum americanum maria-pretinha América herbácea anual sementes
Sonchus oleraceus serralha Europa herbácea anual sementes
Spermacoce capitata
Spermacoce latifolia erva-quente América herbácea
anual ou perene
anual sementes
Stachys arvensis urtiga-mansa Europa herbácea anual sementes
Taraxacum officinale dente-de-leão Europa e Ásia herbácea anual ou perene sementes e gemas de raiz
Trifolium pratense
Trifolium repens
trevo-vermelho
trevo-branco Europa herbácea perene sementes
Urochloa plantaginea papuã África herbácea anual sementes
Verbena bonariensis cambará América subarbustiva perene sementes
FONTE: Adaptado de Kissmann (1997), Kissmann e Groth (1999, 2000) e Lorenzi (2000).
36
cultivo, caso contrário pode competir com a cultura por recursos do
ambiente. Dessa maneira, o manejo da cobertura vegetal é de extrema
importância no controle de plantas daninhas em videira.
O uso de herbicidas está entre as práticas de controle mais
utilizadas, juntamente com a roçada mecânica. Normalmente, a aplicação
de herbicidas está limitada à linha de plantio associada à roçada da
vegetação na entrelinha, com proteção para não atingir as plantas da
cultura (cujos efeitos podem ser diversos, conforme será apresentado a
seguir) ou mesmo em área total. No entanto, as opções de produtos
químicos para controle de plantas daninhas são limitadas, sendo que a
maioria dos produtos registrados é à base de glyphosate (21 produtos
comerciais), que é um produto não-seletivo de ação total, ou mesmo
herbicidas não-seletivos.
Resultados de pesquisa são escassos sobre controle de plantas
daninhas em videiras. Alguns relatam o uso de coberturas mortas, como
será abordado em outro capítulo. Porém, no caso do controle químico,
pouco se conhece a respeito dos produtos a serem utilizados. Paulo et al.
(1997), destacam a seletividade do diuron a uvas ‘Niagara Rosada’, assim
como dois outros produtos não registrados, simazine e dichlobenil. Os
autores relataram que todos os produtos controlaram muito bem caruru
(Amaranthus hybridus), guanxuma (Sida spp.) e picão-preto (Bidens pilosa);
além disso, dichlobenil controlou bem capim-colchão (Digitaria horizontalis)
e leiteiro (Euphorbia heterophylla), e diuron controlou bem o leiteiro. Neves
et al. (2012), relatam a opção pelo uso de haloxifop (graminicida não
registrado, sem ação sobre a videira) no controle de azevém. Em outros
países, além dos herbicidas registrados no Brasil, produtos como
flumioxazin, isoxaben, napropamide, norflurazon, oryzalin, oxyfluorfen,
37
pendimethalin, pronamide, rimsulfuron, trifluralin, carfentrazone, clethodim,
diquat, fluazifop e sethoxydim também são utilizados de maneira eficaz no
controle das plantas daninhas em videiras. A maioria desses herbicidas é
registrado no Brasil para uso em outras culturas.
Além disso, em geral, herbicidas de contato (como o paraquat e o
glufosinate) são mais seguros quando a cultura não está em período de
dormência e com brotações no porta-enxerto. De maneira geral, é comum
os produtores não usarem herbicidas sistêmicos (como o glyphosate)
quando existem brotações, pois aplicações acidentais ou mesmo deriva
podem, segundo eles, se translocar pela planta e matá-la. No entanto, é
pouco provável que essa exposição acarrete morte da planta, apesar de
poder causar reduções de produtividade ou mesmo alteração na qualidade
do produto colhido.
Manejo de plantas daninhas resistentes a herbicidas
Por resistência entende-se: “a capacidade adquirida por um grupo
de indivíduos dentro de uma população (biótipo) em sobreviver e se
reproduzir após a exposição ao herbicida que controla outros indivíduos da
mesma espécies”; diferindo-se de tolerância que é “a capacidade inata da
espécie em sobreviver e se reproduzir após exposição ao herbicida”
(CHRISTOFFOLETI et al., 2008). Assim, pode-se dizer que quando uma
planta daninha é tolerante a determinado herbicida, qualquer indivíduo
dessa espécie, seja onde for, também será tolerante ao produto; no entanto,
quando uma planta daninha é resistente, um ou mais grupos de plantas, em
um local ou vários locais, apresentam indivíduos que não morrem e se
reproduzem normalmente, deixando descendentes após serem expostos ao
38
herbicida, enquanto outros grupos de plantas da mesma espécie morrem
após a exposição ao produto (CARVALHO, 2013a,b).
Não há registros oficiais de plantas daninhas resistentes a
herbicidas em áreas de produção de uvas de altitude. No entanto, alguns
relatos sugerem a presença de azevém e buva resistentes a glyphosate.
Outras plantas de difícil controle, como o nabo e a corda-de-viola, também
ocorrem em áreas de cultivo de uvas de altitude.
O problema da resistência pode evoluir mais seriamente, uma vez
que outras espécies de plantas daninhas já foram registradas como
resistentes em vários países e também ocorrem no Brasil, como: capim-
arroz (Echinochloa spp.), losna-branca (Parthenium hysterophorus) e
tanchagem (Plantago lanceolata), resistentes a inibidores de EPSPs; cardo
(Senecio vulgaris) resistente a inibidores de FSII; e caruru (Amaranthus
spp.) resistente a inibidores de FSII e EPSPs. Além disso, já foram
registrados casos de resistência de azevém a inibidores de ACCase e ALS
(inclusive no Brasil), FSII e FSI, e buva resistente a inibidores de ALS (no
Brasil) e FSI (HEAP, 2013).
Para prevenir a evolução de populações de plantas daninhas
resistentes a herbicidas e para manejar populações resistentes recomenda-
se algumas estratégias de manejo específicas, visando diminuir a pressão
de seleção exercida pelo uso contínuo de um único método de controle,
principalmente se for a aplicação frequente e repetida do mesmo herbicida
ou de herbicidas com o mesmo mecanismo de ação.
Uma das mais importantes recomendações é a rotação de
herbicidas com diferentes mecanismos de ação. Como o número de
produtos é limitado para uso em videiras, no Brasil, o risco de evolução de
populações resistentes é maior. Outras recomendações importantes são: o
39
uso de misturas formuladas de herbicidas, que melhora a eficiência de
controle; o controle das plantas daninhas em estágio vegetativo, antes da
produção de estruturas vegetativas, para diminuição do banco de
dissemínulos e manutenção de baixos níveis de infestação; o uso de
culturas de cobertura, que mantém o solo coberto e limita os recursos para
as plantas daninhas; e o uso de MIPD, que associa vários métodos e
práticas de controle, que aumenta a eficácia de controle de diferentes tipos
de plantas daninhas. Assim, de maneira geral, quanto mais estratégias de
controle e manejo forem usadas, menor o risco de evolução e melhor o
controle de plantas daninhas resistentes. No intuito de avaliar o risco de
evolução de populações resistentes, Christoffoleti et al. (2008) descrevem
opções de manejo e formas de avaliação pertinentes, encontrados na
Tabela 6.
Nas áreas de produção de videiras de altitude, duas plantas
daninhas são as mais problemáticas quanto à resistência a glyphosate, a
buva e o azevém. No entanto, dentre as opções de controle químico, com
execção do glyphosate, os demais herbicidas podem ser usados no controle
dessas espécies, mesmo com a presença de plantas resistentes na
comunidade. Associado à aplicação dos herbicidas, é recomendável o uso
de cobertura verde, principalmente no outono-inverno (para controle de
azevém), evitando áreas em pousio. Na primavera-verão, o
cuidado especial deve ser com a buva, podendo procurando controlar essa
planta daninha sempre em estádios inicias de crescimento, pois os
herbicidas, de maneira geral, não são eficazes no controle de plantas
adultas. Além disso, é importante o controle antes do florescimento, pois a
buva pode produzir mais de 500.000 sementes por planta, com diversos
mecanismos de dormência, o que permite sua permanência no banco de
40
dissemínulos por muito tempo e garante a infestação da área nos anos
seguintes.
Tabela 6. Avaliação de risco de evolução de populações de plantas daninhas
resistentes a herbicidas.
Opções de manejo Risco
Baixo Médio Alto
Mistura ou rotação de
herbicidas
> 2
mecanismos
de ação
2
mecanismos
de ação
1
mecanismo
de ação
Métodos de controle
utilizados
Cultural,
mecânico e
químico
Cultural e
químico Químico
Uso de igual mecanismo
de ação por ciclo Uma vez
Mais de
uma vez
Muitas
vezes
Sistema de cultivo/1
Rotação
plena
Rotação
limitada Sem rotação
Resistência relativa ao
mecanismo de ação Desconhecida Limitada Comum
Nível de infestação Baixo Médio Alto
Controle nos últimos
3 anos Bom Decrescente Baixo
/1 praticamente sem rotação para culturas perenes, por isso a importância de culturas de cobertura.
FONTE: Adaptado de Christoffoleti et al. (2008).
41
CAPÍTULO 4
PROBLEMAS OCASIONADOS PELO USO INADEQUADO DE HERBICIDAS
Jocleita Peruzzo Ferrareze
Introdução
Culturas perenes, em geral, estão predispostas à deriva de
herbicidas devido ao uso comum de produtos pós-emergentes na linha de
cultivo, com proteção ou não da barra de pulverização, integrando com a
roçada mecânica da vegetação na entrelinha. Nesse sistema de controle, as
plantas podem ficar expostas também a aplicações acidentais, quando não
há proteção da barra, principalmente, o que é mais problemático que a
deriva. No entanto, o uso de herbicidas não deve ser descartado, pois pode
contribuir para aumentar a produção das plantas cultivadas, apesar do
perigo da exposição das plantas que pode resultar em injúrias ocasionais a
culturas suscetíveis que estiverem próximas ao local de aplicação.
O uso indiscriminado de herbicidas tornou-se problemático a
parreirais na região norte do Estado do Rio Grande do Sul. Alguns produtos
altamente voláteis, como o 2,4-D éster, têm atingido videiras de
propriedades rurais a até um quilômetro de distância, causando
prejuízos por safras seguidas e impedindo que alguns produtores
conseguissem ter produções satisfatórias, mantendo, portanto, em estado
de alerta a respeito do uso desses produtos em suas áreas de cultivo
(FERREIRA, 2011).
42
Pomares de videiras estão, com certa frequência, localizados
próximos a áreas de cultivo de grãos. Dessa maneira, herbicidas utilizados
nas lavouras anuais podem sofrer deriva, atingir os pomares e causar
perdas significativas. A escala dos danos causados por deriva de herbicidas
na videira depende de vários fatores, incluindo a formulação do herbicida, a
variedade da videira, o estádio de crescimento e o vigor da planta,
condições ambientais, tamanho da gota e a altura da barra de pulverização.
Herbicidas hormonais, tais como 2,4-D, 2,4-DB, MCPA, MCPB, mecoprop,
dicamba, clopyralid, triclopyr, fluroxipyr, picloram e quinclorac são usados
para controlar plantas de folhas largas em muitos sistemas de cultivo. No
entanto, alguns desses herbicidas são propensos à deriva que pode causar
danos graves às videiras. Tais produtos são altamente fitotóxicos e
rapidamente translocados do local de absorção (folhas ou raízes) para os
pontos de crescimento.
Deriva de herbicidas e suas consequências
Herbicidas hormonais alteram o equilíbrio hormonal nas células em
crescimento (KADIR et al., 2003), além de influenciar o balanço energético
das plantas e a relação fonte:dreno. Oliveira Junior (2007), estudando o
efeito de subdoses de 2,4-D na produtividade de uva “Itália” e a
suscetibilidade da cultura em função de seu estádio de desenvolvimento,
observou que, 24 horas após a aplicação das subdoses de 2,4-D, os
sintomas já eram evidentes em muitas plantas e caracterizavam-se,
principalmente, pelo alongamento das gavinhas, epinastia das folhas e
deformações de ramos jovens e de folhas. Tais sintomas foram,
predominantemente, evidenciados nas partes novas em crescimento (folhas
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e ramos verdes). À medida que as subdoses e a severidade dos sintomas
aumentaram, a fitointoxicação observada progrediu para necrose, queda de
folhas e surgimento de raízes adventícias nos ramos. Tão ou mais
importantes que os efeitos observados nas folhas são os efeitos observados
nos ramos. Quando as injúrias nos ramos são significativas, além de haver
efeito direto na redução da translocação de reservas para os cachos em
formação, é possível que haja necessidade de uma poda mais severa logo
após a colheita para a recuperação do ramo produtivo. Nesses casos,
comprometem-se, no mínimo, duas safras depois da poda realizada
imediatamente após a colheita.
A videira é considerada uma das culturas mais susceptíveis ao
2,4-D (KADIR et al., 2003). Segundo Vargas e Oliveira (2013), deve-se
evitar aplicações nas proximidades da videira de herbicidas a base de
2,4-D, pois esta cultura é altamente sensível a este produto em
determinados estádios vegetativos. Quando o herbicida é aplicado perto de
um vinhedo em condições de vento forte ou de alta temperatura, há
potencial para danos, podendo ocasionar a perda total da produção e
mesmo das videiras. Segundo Kadir et al. (2003), um mínimo de cinco anos
ou seis pode ser necessário para restabelecer a produção total do pomar.
Um dos herbicidas mais utilizados na fruticultura é o glyphosate.
Esse produto é recomendado em culturas como citros, macieira, videira,
ameixeira, nectarineira, pessegueiro, bananeira, cacaueiro e pereira
(AMARANTE JÚNIOR et al., 2002). Na videira, o glyphosate é usado
para eliminar as plantas daninhas debaixo das linhas de videiras e para
reduzir o crescimento da cobertura vegetal entre as plantas, para que a
potencial competição por água e nutrientes seja reduzido (LANDRY et al.,
2005). O glyphosate é um herbicida de amplo espectro e não-seletivo, ou
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seja, controla mono e eudicotiledôneas, além de não ser seletivo para a
videira.
O glyphosate é o mais importante herbicida a afetar a síntese de
metabólitos secundários devido ao bloqueio da rota do ácido chiquímico,
com muitas implicações ecológicas (LYDON; DUKE, 1988). Doses não-
letais do glyphosate inibem a produção de fitoalexinas derivadas da rota
chiquímica de algumas plantas, aumentando a susceptibilidade a
patógenos. As fitoalexinas são compostos antimicrobianos sintetizados
pelas plantas em resposta à infecção microbiana, limitando a propagação
do patógeno (PASCHOLATI; LEITE, 1995). Vargas e Oliveira (2013) relatam
que quando for usar o glyphosate em um vinhedo deve-se ter o cuidado em
fazer a desbrota antecipada de brotos no toco do porta-enxerto para evitar
fitointoxicação das plantas.
Efeitos negativos do glyphosate foram observados por
Gravena (2006), em que todas as doses de glyphosate testadas em seu
experimento causaram queda de frutos de laranja ‘Pera’ (Citrus sinensis)
presentes na região atingida pela pulverização. O autor discute que o
glyphosate promove a queda de frutos em fase final de
desenvolvimento devido à produção de etileno em frutos em fase final de
maturação (causando a abscisão). Esses frutos, em geral, apresentaram
sintomas característicos de amarelecimento e necrose, principalmente,
na região atingida pelo herbicida. No entanto, o autor destaca que a
queda dos frutos ocorreu, principalmente, devido ao contato direto com a
calda pulverizada do glyphosate e não devido à translocação.
Por fim, o autor relata que a qualidade tecnológica dos frutos que
permaneceram na planta, e estavam na região atingida pelo herbicida, não
foi afetada.
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Em plantas de café, altas doses glyphosate causaram redução no
crescimento de plantas novas e velhas, enquanto baixas doses não
causaram efeitos sobre características de crescimento de plantas novas e
estimularam o crescimento das mais velhas (CARVALHO et al., 2013).
Portanto, glyphosate pode apresentar efeito, sendo dependente do estádio
de crescimento da planta no momento da aplicação do herbicida. Hormese
é um termo usado por toxicologistas para definir uma resposta bifásica a um
agente, dependente da dose. Sendo caracterizada por uma estimulação em
baixa dose ou efeito benéfico, e inibição ou efeito tóxico em dose elevada
(MATTSON, 2008).
Cordero-Bueso et al. (2011), em estudo realizado em vinhedos de
Madrid, relatam que a presença de herbicidas tem pouco impacto sobre a
diversidade de comunidades de leveduras associadas às bagas.
Além disso, o uso de herbicidas, como o glyphosate, pode ter estimulado a
ocorrência de populações de leveduras (incluindo as estirpes
fermentativas), já que as leveduras poderiam ter utilizado o glyphosate
como substrato energético. Assim, quando se fala em leveduras
fermentativas, como as do gênero Saccharomyces, em ambientes quentes
e áridos, onde o revolvimento provoca a degradação do solo, a melhor
recomendação seria a manutenção do solo nu, com a utilização de
herbicidas. Culturas de cobertura no vinhedo, por outro lado, poderiam
concorrer com a videira por recursos do meio, como nutrientes e água, e
poderiam favorecer o aumento da população de fungos que capazes de
competir com as populações de leveduras de estirpes fermentativas,
reduzindo sua quantidade e biodiversidade no pomar.
O uso de herbicidas nos vinhedos pode ter consequências para
plantas nativas ou não-alvo e isso pode afetar o equilíbrio natural do
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ambiente resultando em danos ao pomar. Kjaer et al. (2006) estudaram as
consequências da aplicação de metsulfuron em pilriteiro (Crataegus
monogyna), uma planta que não é utilizada comercialmente, mas é
importante como alimento para a fauna e como manutenção da
biodiversidade locais, e constataram que pulverizações de campos
agrícolas podem reduzir a quantidade de frutas disponíveis para aves
frugívoras e essas aves podem passar a causar estragos nas áreas de
cultivo próximas devido a falta de alimento.
Outro herbicida bastante utilizado em viticultura na França
(TOMLIN, 2000), mas não registrado no Brasil, é o flumioxazin, um herbicida
altamente eficiente para controle de plantas daninhas tanto em
pré-emergência quanto em pós-emergência em diversas culturas, como a
videira, algodão, amendoim ou soja (DECOIN, 1999; NIEKAMP et al., 1999;
SCOTT et al., 2001; ASKEW et al., 2002). Resultados obtidos por
Saladin et al. (2003) sugerem que a aplicação de flumioxazin no solo
induziu estresse em videiras, levando à proteólise da folha. No entanto, este
estresse foi parcialmente recuperado três semanas após a aplicação do
herbicida. Porém, na vinha, os efeitos de flumioxazin ainda eram
significativos cinco meses após o tratamento, em particular na cultivar
Chardonnay. Estes efeitos incluíram diminuição da percentagem de peso
seco de folhas e o conteúdo de hidratos de carbono solúveis, bem como
aumento do potencial osmótico nas folhas. A diminuição de
carboidratos solúveis foliares pode ter consequências drásticas para o
crescimento da baga e a constituição de reserva. Além disso, as
plantas tratadas foram caracterizadas por diminuição do teor de
aminoácidos livres e uma acumulação de amônio, enquanto que o nível de
proteínas não aumenta de forma significativa, sugerindo degradação
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aminoácidos, o que poderia afetar a qualidade dos vinhos produzidos a
partir dessas uvas.
A alteração do balanço de carbono e nitrogênio após o tratamento
com herbicida pode afetar o vigor de uma videira em longo prazo. O uso de
herbicidas pode contaminar águas superficiais e subterrâneas por lixiviação
e pode também contaminar os frutos através da deriva durante a aplicação.
Além disso, resíduos de herbicidas no solo podem também lesar as vinhas
e/ou reduzir o rendimento, e, por conseguinte, potencialmente, podem afetar
qualidade do vinho e entrar na cadeia alimentar. A taxa de dissipação de
uma substância química na superfície da baga depende de muitos fatores,
tais como a capacidade inerente do produto químico para aderir à
superfície, propriedades físico-químicas da substância, a textura da
superfície da baga, incluindo ceras da superfície e as condições climáticas
(YING; WILLIAMS, 2000). Esses mesmos autores citam ainda,
interessantemente, que as uvas brancas reteriam mais herbicidas em suas
superfícies quando comparadas às uvas tintas. Isso poderia ocorrer devido
a diferente composição e espessura da cera na superfície das bagas de
uvas brancas e tintas. Portanto, os herbicidas podem afetam não somente o
crescimento das videiras, mas também a qualidade do vinho produzido a
partir das plantas expostas ao produto.
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CONSIDERAÇÕES FINAIS
A presença de plantas daninhas em áreas de cultivo de videiras de
altitude, assim como os métodos utilizados para seu controle, pode
ocasionar problemas no crescimento, desenvolvimento e produção da
cultura. Além disso, efeitos indiretos sobre a qualidade das frutas e,
consequentemente, dos produtos derivados, tais como sucos e vinhos,
podem ocorrer, principalmente, devido à má utilização da tecnologia de
aplicação e da aplicação de herbicidas em condições ambientais
inadequadas. Por isso, é essencial o uso racional dos herbicidas e de outros
métodos de controle, principalmente de maneira integrada, visando
aumentar a eficiência de controle das plantas daninhas de um modo seguro
tanto para a cultura quanto para o trabalhador, o produtor e o consumidor
de uvas e derivados.
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