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MANUAL DE ORIENTAÇÃO PARA COLETA, IDENTIFICAÇÃO, ACONDICIONAMENTO, PREPARO E TRANSPORTE DE MATERIAL BIOLÓGICO PARA ANÁLISE NO

LABORATÓRIO CENTRAL DO ESTADO DO PARÁ

2ª Edição revisada 2017

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AUTORIDADES

Simão Robison Oliveira Jatene Governador do Estado do Pará

Vitor Manuel Jesus Mateus Secretário de Estado de Saúde Pública do Pará

Sebastião Licínio Lira dos Santos Diretor Geral do LACEN-PA

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PRODUÇÃO TÉCNICA DA 2ª EDIÇÃO

Ana Nízia da Silva Palheta de Aragão Andrezza Maria Lucas da Costa Medeiros Claudio Levi dos Santos Mascarenhas Cynthia Manuela Lourinho de Matos Danielle de Oliveira Damasceno George Leandro Ferreira Lima Gleissy Adriane Lima Borges Ilvanete Almeida da Silva Kátia Cristina de Lima Furtado Lilian Patrícia de Souza Barros Luiz Artur Dias Alves Luna Luana de Jesus Pantoja Marcelo Vinícius Ferreira Rodrigues de Andrade

Maria Amélia de Oliveira da Costa Maria Cristina Celeira de lima Raimunda Izaura da Silva Moreira Raimunda Marques de Carvalho Rosa Márcia Correa Saraiva Rosângela Maria Pirajá da Silva Rosilena Costa Mesquita Rubens Einar Correa Dantas Sueli Gouveia Silva Susan Beatriz Batista de Oliveira Vanessa de Souza Guimarães Zelinda Habib Dantas de Santana

ORGANIZADORES DA 2ª EDIÇÃO

Carla Regina Osmarina Câmara Christiane Bentes da Silva Cristiane Shibata Ikeda Igor Teles de Menezes Macedo Chaves Otávia da Conceição Brito da Silva Patrícia Miriam Sayuri Sato Barros da Costa Valnete das Graças Dantas Andrade

REVISORES DA 2ª EDIÇÃO Ilvanete Almeida da Silva Patrícia Miriam Sayuri Sato Barros da Costa

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AGRADECIMENTOS

À Direção do LACEN-PA, por subsidiar a editoração desta segunda versão do Manual, visto ser um instrumento colaborativo para as ações deste laboratório.

Aos servidores da Divisão de Biologia Médica e da Divisão de Rede de Laboratório que contribuíram diretamente com dados relevantes para a elaboração da segunda edição do Manual.

Aos servidores da Coordenação da Qualidade e Biossegurança pela dedicação e empenho para gerir todas as atividades e etapas de revisão e atualização deste Manual visando sempre a busca da melhoria dos serviços oferecidos à população pelo LACEN-PA.

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SUMÁRIO

APRESENTAÇÃO................................................................................................................... 8 MISSÃO DO LACEN-PA......................................................................................................... 9 VISÃO DO LACEN-PA............................................................................................................ 9 POLITICA DA QUALIDADE E BIOSSEGURANÇA DO LACEN-PA....................................... 9 LOCALIZAÇÃO, HORÁRIO DE FUNCIONAMENTO E ATENDIMENTO AO PÚBLICO........ 9 ORIENTAÇÕES GERAIS....................................................................................................... 10 Cadastro de exames............................................................................................................... 10 Gerenciador de Ambiente Laboratorial – GAL........................................................................ 10 Sistema de Informação de Câncer – SISCAN........................................................................ 10 Documentação obrigatória...................................................................................................... 10 Fase pré-analítica................................................................................................................... 13 O que é a fase pré-analítica laboratorial e sua importância................................................... 13 Cuidados preliminares............................................................................................................ 14 Identificação da amostra......................................................................................................... 14 Higienização das mãos........................................................................................................... 14 Uso de Equipamentos de Proteção Individual (EPIs)............................................................. 15 Informações relevantes para uma Coleta de sangue adequada............................................ 15 Sequência de coleta de sangue.............................................................................................. 15 Acondicionamento e transporte de amostras biológicas........................................................ 16 Interferentes nas amostras sanguíneas.................................................................................. 17 Critérios de rejeição................................................................................................................ 17 Descarte seguro de resíduos.................................................................................................. 17 Entrega de resultados de exames.......................................................................................... 17 ORIENTAÇÕES ESPECÍFICAS............................................................................................. 18 Seção de Bacteriologia e Micologia........................................................................................ 18 ASPERGILOSE (Pesquisa sorológica)........................................................................................ 18 ASPERGILOSE (Pesquisa de Aspergillus sp.)............................................................................ 18 BRUCELOSE.............................................................................................................................. 19 BOTULISMO (Pesquisa de Toxina Botulínica)........................................................................... 19 CÓLERA (Pesquisa de Vibrio cholerae).................................................................................... 20 COQUELUCHE (Pesquisa de Bordetella pertussis na secreção de nasofaringe)...................... 20 CLAMÍDIA (Chlamydia trachomatis).......................................................................................... 21 DIFTERIA.................................................................................................................................. 21 DOENÇAS DTA (Doenças transmitidas por alimento e água).................................................. 21 DOENÇAS DIARREICAS (Enterobactérias).................................................................................. 22 FEBRE TIFÓIDE – COPROCULTURA............................................................................................. 22 FEBRE TIFÓIDE (Pesquisa de Salmonella sp)........................................................................... 23 GONORRÉIA (Neisseria gonorrhoeae)...................................................................................... 23 HANSENÍASE (Pesquisa do Mycobacterium leprae no raspado intradérmico).......................... 24 HEMOCULTURA (Pesquisa sorológica)...................................................................................... 24 HISTOPLASMOSE (Pesquisa sorológica).................................................................................... HISTOPLASMOSE (Pesquisa de Histoplasma sp)......................................................................

25 25

LEPTOSPIROSE......................................................................................................................... 25 MENINGITE BACTERIANA............................................................................................................ 26 MENINGITE – LÍQUOR – CULTURA (Pesquisa de bactérias e fungos no LCR)............................ 26 MICOLOGIA............................................................................................................................... 27 PARACOCCIDIOIDOMICOSE (Pesquisa sorológica)..................................................................... 27 PARACOCCIDIOIDOMICOSE (Pesquisa de Paracoccidioides sp)................................................ 27 RESISTÊNCIA A ANTIMICROBIANOS – ENVIO DE CEPAS PARA CONFIRMAÇÃO................................... 28 SECREÇÕES (Feridas, Abscessos e Exsudatos)...................................................................... 28 SÍFILIS (Treponema pallidum).................................................................................................. 29 TUBERCULOSE (Amostra de origem Extrapulmonar)

URINA..........................................................................................................................

LÍQUIDO CEFALORRAQUIDIANO (LCR) ...........................................................................

LÍQUIDO PLEURAL, LÍQUIDO SINOVIAL E LÍQUIDO PERITONEAL...........................................

FRAGMENTOS CUTÂNEOS, ÓSSEOS E DE ÓRGÃOS...........................................................

SANGUE E ASPIRADO DE MEDULA..................................................................................

PUS E SECREÇÕES.......................................................................................................

FEZES.........................................................................................................................

LAVADO GÁSTRICO.......................................................................................................

29 30 30 31 31 32 32 33

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TUBERCULOSE (Amostra de origem Pulmonar)

ESCARRO ESPONTÂNEO................................................................................................

ESCARRO INDUZIDO......................................................................................................

LAVADO BRÔNQUICO ESCOVADO...................................................................................

FRAGMENTOS DE TECIDOS PULMONARES.......................................................................

33 34 34 35

Seção de Citohistopatologia .................................................................................................. CITOLOGIA ONCÓTICA CÉRVICO VAGINAL – PCCU..................................................................... CITOLOGIA DE PUNÇÃO ASPIRATIVA POR AGULHA FINA – PAAF.................................................. CITOLOGIA DE SECREÇÕES, LÍQUIDOS E DESCARGAS.................................................................. EXAMES ANATOMOPATOLÓGICOS DE BIÓPSIA E PEÇAS CIRÚRGICAS............................................

35 35 36 37 37

Seção de Imunoendocrinologia e Toxicologia Ocupacional ................................................... CITOMEGALOVÍRUS (IGG E IGM) E TOXOPLASMOSE (IGG E IGM) ................................................. HORMÔNIOS (Βhcg, Luteinizante, Progesterona, Tiroxina Total, Tiroxina Livre, Testosterona, Prolactina, Estradiol, Folículo Estimulante E Tíreo-Estimulante) ........................................... MARCADORES TUMORAIS (Antígeno Prostático Específico – PSA Total) .................................. COLINESTERASE – TOXICOLOGIA OCUPACIONAL......................................................................... EXAMES DE PRÉ-NATAL (TOXOPLASMOSE IGG, TOXOPLASMOSE IGM, HEPATITE C, ATI – HCV, HIV, CITOMEGALOVÍRUS IGG, CITOMEGALOVÍRUS IGM, CHAGAS IGG, SÍFILIS TOTAL)...................

38 38 39 39 40 40

Seção de Parasitologia ........................................................................................................... LEISHMANIOSE VISCERAL HUMANA (CALAZAR) ........................................................................... LEISHMANIOSE VISCERAL CANINA.............................................................................................. LEISHMANIOSE VISCERAL HUMANA – CONTROLE DE QUALIDADE................................................. LEISHMANIOSE TEGUMENTAR AMERICANA – PARASITOLÓGICO.................................................... LEISHMANIOSE TEGUMENTAR AMERICANA – CONTROLE DE QUALIDADE....................................... LEISHMANIOSE TEGUMENTAR AMERICANA – IMUNOLOGIA............................................................ DOENÇA DE CHAGAS – SOROLOGIA............................................................................................ DOENÇA DE CHAGAS – PESQUISA DE T. CRUZI – PARASITOLÓGICO.............................................. DOENÇA DE CHAGAS – CONTROLE DE QUALIDADE DE LÂMINAS................................................... MALÁRIA – PESQUISA DE PLASMODIUM – PARASITOLÓGICO......................................................... MALÁRIA – CONTROLE DE QUALIDADE DE LÂMINAS.....................................................................

41 41 41 42 42 43 43 44 44 45 45 46

Seção de Virologia .................................................................................................................. ARBOVÍRUS (CHIKUNGUNYA, DENGUE, FEBRE AMARELA, ZIKA) – HISTOPATOLÓGICO.................... ARBOVÍRUS (CHIKUNGUNYA, DENGUE, FEBRE AMARELA) – ISOLAMENTO VIRAL............................ CAXUMBA................................................................................................................................. CHIKUNGUNYA – IGM................................................................................................................ CHIKUNGUNYA – RT-PCR......................................................................................................... DENGUE – IGM......................................................................................................................... DENGUE – RT-PCR.................................................................................................................. DOENÇAS PRIÔNICAS (COM ENFOQUE NA DOENÇA DE CREUTZFELDT JACOB – DCJ)..................... EPSTEIN – BARR....................................................................................................................... FEBRE AMARELA – IGM............................................................................................................. FEBRE AMARELA – RT-PCR...................................................................................................... HANTAVÍRUS............................................................................................................................. HERPES VÍRUS 6....................................................................................................................... HERPES VÍRUS (1 E 2)............................................................................................................... HTLV I E II................................................................................................................................ INFLUENZA (SÍNDROME RESPIRATÓRIA AGUDA GRAVE - SRAG).................................................. OROPOUCHE............................................................................................................................. PARVOVÍRUS B 19..................................................................................................................... PESQUISA DE VÍRUS RESPIRATÓRIOS - SÍNDROME GRIPAL.......................................................... POLIOVÍRUS.............................................................................................................................. ROTAVÍRUS............................................................................................................................... RAIVA HUMANA (ANTICORPOS ANTIRRÁBICOS).......................................................................... ZIKA VÍRUS – RT-PCR........................................................................................................... ZIKA VÍRUS – MONITORAMENTO DAS ALTERAÇÕES DO CRESCIMENTO E DESENVOLVIMENTO –

MS 1ª VERSÃO

Recém-nascido até 8º dia de vida (RT-PCR em tempo real)....................................

Recém-nascido até 8º dia de vida (Ensaio Imunoenzimático - IgM).........................

Recém-nascido após 8º dia de vida até 3 anos de idade (RT-PCR em tempo real).

Recém-nascido após 8º dia de vida até 3 anos de idade (Ensaio Imunoenzimático - IgM)..........................................................................................................................

Gestantes em qualquer período gestacional (RT-PCR em tempo real)....................

46 46 47 48 48 49 49 50 50 51 51 52 52 53 53 54 54 55 55 56 56 57 57 58 58 59 59 60 60

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Gestantes em qualquer período gestacional (Ensaio Imunoenzimático - IgM)..........

Síndromes neurológicas agudas (RT-PCR em tempo real).......................................

Síndromes neurológicas agudas (Ensaio Imunoenzimático - IgM)............................ HEPATITES VIRAIS – SOROLOGIA (ANTI-HAV IGM, ANTI-HBS, ANTI-HBC, ANTI-HBC IGM, ANTI-HBE, HBEAG, ANTI-HCV, ANTI-HDV) ..................................................................................................... HEPATITE B (PCR QUANTITATIVO) ............................................................................................ HEPATITE C (PCR QUANTITATIVO E GENOTIPAGEM) ................................................................... HIV – SOROLOGIA..................................................................................................................... HIV – CONFIRMATÓRIO.............................................................................................................. HIV – CONTAGEM DE LINFÓCITOS T CD4/CD8............................................................................ HIV – GENOTIPAGEM................................................................................................................. HIV – QUANTIFICAÇÃO DE CARGA VIRAL.................................................................................... RUBÉOLA.................................................................................................................................. RUBÉOLA – ISOLAMENTO VIRAL.................................................................................................. SARAMPO – IGG E IGM.............................................................................................................. SARAMPO – ISOLAMENTO VIRAL.................................................................................................

61 61 62 62 63 63 64 64 65 65 66 66 67 67 68

ANEXOS................................................................................................................................. 69 ANEXO A................................................................................................................................ 69 ANEXO B................................................................................................................................ 70 ANEXO C................................................................................................................................ 71 ANEXO D................................................................................................................................ 72 ANEXO E................................................................................................................................ 73 ANEXO F................................................................................................................................ 74 ANEXO G................................................................................................................................ 75 REFERÊNCIAS....................................................................................................................... 77

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APRESENTAÇÃO O Laboratório Central do Estado do Pará, LACEN-PA, é um Laboratório de Saúde

Pública, vinculado à Secretaria de Estado de Saúde Pública do Pará, é responsável por coordenar a Rede de Laboratórios Públicos e Privados do Estado que realizam análises de interesse em saúde pública, além de realizar o controle de qualidade analítica da rede estadual, conforme determina a Portaria 2.031:2004/MS, a qual dispõe sobre a organização do Sistema Nacional de Laboratórios de Saúde Pública - SISLAB.

Diante desta responsabilidade, o LACEN-PA tem a honra de apresentar a todos os seus clientes e parceiros a “2ª Edição revisada do MANUAL DE ORIENTAÇÃO PARA COLETA, IDENTIFICAÇÃO, ACONDICIONAMENTO, PREPARO E TRANSPORTE DE MATERIAL BIOLÓGICO” com a finalidade de sistematizar e padronizar as orientações técnicas para a fase pré-analítica dos ensaios que devem ser cumpridas pelos clientes que enviam amostras para o LACEN-PA.

Observando e cumprindo as orientações, as circunstâncias para análise serão mais favoráveis à obtenção de resultados precisos e confiáveis, pois não basta apenas que as técnicas sejam executadas corretamente, é necessário também que se receba uma boa amostra, visto que o ciclo laboratorial se inicia na fase pré-analítica.

Buscando sempre a melhoria contínua dos processos executados pelo LACEN-PA, esta iniciativa vislumbra garantir a qualidade dos resultados ofertados à população e a satisfação dos nossos clientes.

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MISSÃO DO LACEN-PA Prestar atendimento laboratorial, científico e tecnológico como referência estadual, à vigilância em saúde, garantindo qualidade nos serviços oferecidos a sociedade.

VISÃO DO LACEN-PA

Ser referência regional em laboratório de saúde pública com reconhecimento nacional.

POLITICA DA QUALIDADE E BIOSSEGURANÇA DO LACEN-PA

O LACEN-PA assegura a qualidade dos ensaios e a credibilidade e confidencialidade dos seus resultados, visando atender e satisfazer os seus usuários, mediante a correta aplicação dos métodos analíticos preconizados, do cumprimento dos requisitos da legislação e das normas nacionais, das políticas e da documentação do Sistema de Gestão da Qualidade e Biossegurança e do compromisso com a melhoria contínua das práticas laboratoriais e de Biossegurança.

LOCALIZAÇÃO, HORÁRIO DE FUNCIONAMENTO E ATENDIMENTO AO PÚBLICO

O LACEN-PA tem suas instalações na Rodovia Augusto Montenegro KM 10, sem número, Bairro de Icoaraci, Belém-PA, CEP 66823-010.

Funciona para atendimento ao público de acordo com as seguintes demandas: coleta de material biológico, recebimento de amostras biológicas e entrega de resultados de exames, atividades realizadas pela Seção de Gerenciamento de Amostras (SGA) pertencente à Divisão de Biologia Médica (DBM) do LACEN/PA, conforme especificado abaixo:

Setor Horário de funcionamento Atribuições

SGA/DBM-LACEN Atendimento ao público

07h00 às 16h00 07h00 às 09h00: coleta de material para exames. 11h00 às 16h00: entrega de resultados de exames.

SGA/DBM-LACEN Recebimento de amostras

08h00 às 17h00 Atendimento e recebimento de amostras dos municípios.

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ORIENTAÇÕES GERAIS

Cadastro de exames Gerenciador de Ambiente Laboratorial – GAL

O GAL é um sistema desenvolvido pela Coordenação Geral de Laboratórios de Saúde Pública (CGLAB), em parceria com Departamento de Informática do Sistema Único de Saúde (DATASUS) e a Secretaria de Vigilância em Saúde (SVS), com o objetivo de informatizar o Sistema Nacional de Laboratórios de Saúde Pública das Redes Nacionais de Laboratórios de Vigilância Epidemiológica e Vigilância em Saúde Ambiental, proporcionando o gerenciamento das rotinas, o acompanhamento das etapas para realização dos exames/ensaios e a obtenção de relatórios produção/epidemiológicos/ analíticos nas redes estaduais de laboratórios de saúde pública.

Todas as solicitações de exames encaminhadas ao LACEN-PA devem obrigatoriamente ser cadastradas no sistema GAL pelo município e instituição demandante da amostra, exceto para os exames de HIV (CD4+/CD8+, Carga viral, genotipagem), citopatologia e histopatologia. Sistema de Informação de Câncer - SISCAN

O SISCAN tem por finalidade permitir o monitoramento das ações relacionadas à detecção precoce, à confirmação diagnóstica e ao início do tratamento de neoplasias malignas.

As solicitações para exames de citopatologia e histopatologia (quando o material a ser examinado for Mama e Colo do útero) encaminhadas ao LACEN-PA devem obrigatoriamente ser cadastradas no sistema SISCAN pelo município e ou instituição demandante da amostra.

Documentação obrigatória

Os dados obtidos através da documentação obrigatória dos exames fornecem para as Vigilâncias Epidemiológicas informações que subsidiam tomadas de ações de Saúde Pública nas esferas Municipal, Estadual e Federal, portanto, é necessário que os dados sejam completos, legíveis, corretos e sem rasuras.

As amostras enviadas para o LACEN-PA devem vir acompanhadas de toda a documentação obrigatória determinada pelos órgãos regulamentadores e pela Instituição, obedecendo aos critérios gerais:

Letra legível (preferencialmente letra de forma).

Nome, Endereço, Telefone e Cidade da instituição solicitante.

Nome do paciente completo, data de nascimento, Idade, Sexo, CPF, Endereço completo do paciente com CEP do logradouro, Número do Cartão Nacional de Saúde e CID.

Assinatura, CPF e carimbo do médico solicitante.

Descrição do material coletado (soro, sangue, líquor, lavado brônquico, fezes, urina, secreções, raspado de pele, etc.).

Nome e/ou descrição do exame (s) solicitado (s).

Data e Hora da requisição.

Data e Hora da coleta.

Data e Hora do início dos sintomas quando aplicável (Ex: Dengue, Leptospirose).

Dados epidemiológicos para todos os exames.

Identificação de segunda amostra, quando aplicável.

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Documentação Obrigatória

Nome do documento

O que é Para que exame

Onde encontrar Observações

Requisição médica / Solicitação de exames

Formulário que o profissional de saúde (médico ou enfermeiro, conforme resoluções do COREN) utiliza para solicitar procedimentos laboratoriais para os usuários.

Todos os exames.

Instrumento padronizado pelos serviços de saúde. Também está disponível no GAL, para impressão, na pasta “formulários” manuais > formulários > requisição de exame > módulo biologia médica > agravos gerais.

Alguns exames possuem formulário padrão.

Ficha de investigação/ notificação (SINAN)

Registro padronizado pelo Ministério da Saúde.

Exames para Agravos de notificação compulsória.

Portal do Ministério da Saúde: http://portalsaude. saude.gov.br /index.php/ servicos No site do LACEN/PA: www.lacen.pa.gov.br

Os agravos estão contidos na Portaria Nº 204 de 17/02/2016 do Ministério da Saúde.

Ficha Epidemiológi-ca para exame de HIV

Registro padronizado pelo LACEN-PA para exames de triagem do HIV.

Exame para Sorologia de HIV.

Modelo on-line disponível no site do LACEN/PA: www.lacen.pa.gov.br Modelo impresso disponível na Seção de Gerenciamento de Amostras (SGA/DBM) do LACEN.

Anexo A.

Relação das pacientes de citologia

Registro padronizado pelo LACEN-PA contendo a relação nominal das pacientes, por Unidade de Saúde, do município solicitante.

Exames citopatológicos de colo do útero.

Modelo impresso disponível no Serviço de Gerenciamento de Amostras (SGA/DBM) do LACEN. Modelo on-line disponível no site do LACEN/PA: www.lacen.pa.gov.br

Anexo B.

Requisição de Exame Citopatológico de Colo do Útero

Formulários de Requisição/ resultado dos exames do SISCAN preenchidos com os dados cadastrais da paciente, incluindo o número do protocolo gerado pelo SISCAN.

Exame Citopatológico Cervicovaginal e Exame Citopatológico Cervicovaginal/ Microflora – Rastreamento.

http://siscan.saude.gov.br/formulario /listarFormulariosUsuarioLogado.jsf

O formulário é disponível no endereço eletrônico para funcionários com acesso ao SISCAN por meio de senha.

Requisição de Exame Citopatológi-co de Mama

Formulários de Requisição/ resultado dos exames do SISCAN preenchidos com os dados cadastrais da

Exame Citopatológico de Mama.


O formulário é disponível no endereço eletrônico para funcionários com

http://www.lacen.pa.gov.br/


http://siscan.saude.gov.br/formulario




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paciente, incluindo o número do protocolo gerado pelo SISCAN.

acesso ao SISCAN por meio de senha.

Requisição de Exame Histopatológico de Colo do Útero


Exame anatomopatológico do colo de útero – biópsia. Exame anatomopatológico do colo uterino – peça cirúrgica.



Requisição de Exame Histopatológico da Mama


Exame anatomopatológico de Mama – Biópsia. Exame anatomopatológico de Mama – Peça Cirúrgica.



Relatório de Encaminha-mento de amostras (GAL)

Relatório emitido pelo sistema após o encaminhamento dos pacientes para o GAL do LACEN-PA.

Todos os exames cadastrados no GAL

GAL – pasta biologia médica – entrada - triagem – encaminhar exames para rede – consultar encaminhados.

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BPA-I para Genotipagem de Vírus da Hepatite C

Instrumento de registro padronizado pelo SIGTAP (Sistema de Gerenciamento da tabela de procedimentos, medicamentos e OPM do SUS) e adaptado pelo LACEN-PA.

Exame para Genotipagem de Vírus da Hepatite C

Modelo impresso disponível na Seção de Gerenciamento de Amostras (SGA/DBM) do LACEN. Modelo on-line disponível no site do LACEN/PA: www.lacen.pa.gov.br

Anexo C

BPA-I para Pesquisa de Anticorpos Contra o Vírus da Hepatite C (Anti-HCV)


Exame para Pesquisa de Anticorpos Contra o Vírus da Hepatite C (Anti-HCV)

Modelo impresso disponível no Serção de Gerenciamento de Amostras (SGA/DBM) do LACEN. Modelo on-line disponível no site do LACEN/PA: www.lacen.pa.gov.br

Anexo D

BPA-I para Quantificação de RNA do Vírus da Hepatite C


Exame para Quantificação de RNA do Vírus da Hepatite C

Modelo impresso disponível no Seção de Gerenciamento de Amostras (SGA/DBM) do LACEN. Modelo on-line disponível no site do LACEN/PA: www.lacen.pa.gov.br

Anexo E








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BPA-I para Identificação do Vírus da Hepatite B por PCR


Exame para Identificação do Vírus da Hepatite B por PCR

Modelo impresso disponível no Seção de Gerenciamento de Amostras (SGA/DBM) do LACEN. Modelo on-line disponível no site do LACEN/PA: www.lacen.pa.gov.br

Anexo F

Contagem de Linfócito T CD4+/CD8+

Instrumento padrão do Sistema de Controle de Exames Laboratoriais da Rede Nacional de Contagem de Linfócitos CD4+/CD8+ e Carga Viral (SISCEL)

Exame para Contagem de Linfócito T CD4+/CD8+

http://www.aids.gov.br/sites/default/files/anexos/page/2010/364/laudo_medico_emissao_bpa_i_contagem_linfocitos_t_c_31671.pdf

O exame para Genotipagem de HIV possui solicitação própria.

Quantifica-ção do RNA do Vírus HIV

Instrumento padrão do SISCEL.

Exame para Quantificação do RNA do Vírus HIV

http://www.aids.gov.br/sites/default/files/page/2010/DSTAIDS-SISCEL_POWERBUILDER_BPA-I_CV-HIV_20140401.pdf

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Solicitação de Laudo Histopatológico

Registro padronizado pelo LACEN-PA.

Exame anatomopatológico para congelamento/ parafina por peça cirúrgica ou por biópsia (Exceto Colo Uterino e Mama).

Modelo impresso disponível na Seção de Gerenciamento de Amostras (SGA/DBM) do LACEN. Modelo on-line disponível no site do LACEN/PA: www.lacen.pa.gov.br

Anexo G.

Observação: as Fichas/Registros não devem ser modificadas.

Fase pré-analítica O que é a fase pré-analítica laboratorial e sua importância

Os exames laboratoriais possuem papel fundamental na decisão médica diante das dúvidas oriundas da história clínica e do exame físico do paciente. Para que o laboratório possa contribuir de forma eficaz nesta decisão, é imprescindível que todas as fases do ciclo laboratorial sejam executadas da forma mais adequada e segura possível, sendo observadas as diversas variáveis que influenciam diretamente a qualidade final dos exames.

Segundo a Sociedade Brasileira de Patologia Clínica (SBPC), a fase pré-analítica é responsável por cerca de 70% do total de erros ocorridos nos laboratórios que possuem um sistema de controle da qualidade bem estabelecido, isto inclui a indicação do exame, redação, leitura e interpretação da solicitação, transmissão de instruções de preparo do paciente, procedimentos de coleta, acondicionamento, transporte e preservação da amostra biológica até o momento em que o exame seja, efetivamente, realizado.

Assim, evidencia-se que a fase pré-analítica depende da sequência de ações de todos os profissionais envolvidos, perpassando pelo médico, pelo coletador, pelo transportador e ainda pelo próprio paciente, o que torna esta fase ainda mais crítica. Outros interferentes também são importantes nesta fase, como: horário de coleta, jejum, uso de medicamentos, uso ou não uso de garrote, uso de tubos com ou sem anticoagulantes, descrição do local da coleta, atividade física, ingestão de álcool e fumo entre outros.















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Cuidados preliminares Entende-se por boa amostra aquela obtida em um ambiente favorável, na quantidade

adequada, em recipiente apropriado, identificada, corretamente acondicionada e transportada, para isso várias ações devem ser tomadas.

A sistematização da fase pré-analítica e, principalmente, do processo de coleta evita uma série de erros, retrabalhos e desperdícios de amostras e de reagentes, evitando danos aos pacientes e à imagem da instituição, portanto ao iniciar as atividades, o técnico deverá organizar o material de acordo com a amostra a ser coletada, utilizar Equipamentos de Proteção Individual — EPI (luvas, jaleco de manga comprida, sapatos fechados, máscara e óculos - para coleta de secreções), conferir todos os dados da requisição e preparar a identificação da amostra. Identificação da amostra

Identificar os recipientes com etiqueta autocolante contendo: nome do paciente, idade, sexo, tipo de exame, local de procedência (nome do município e do estabelecimento de saúde), número de identificação do paciente no local da coleta se for o caso e identificação em caso de segunda amostra. A etiqueta deve ser colocada de maneira que se possa visualizar a amostra e não colocar a etiqueta na tampa. Se for amostra líquida (sangue total, soro, plasma) o nível da amostra não deve ficar coberto.

Para amostras confeccionadas em lâminas, identifica-las a lápis com as Iniciais do paciente, local de procedência (nome do município e do estabelecimento de saúde) e número de identificação do paciente no local da coleta. Higienização das mãos

A higienização das mãos dos profissionais que realizam a coleta de amostras e funcionários que manipulam material biológico deve ser realizada antes de calçar as luvas (início do procedimento) e após a retirada das luvas (término da atividade) podendo, preferencialmente, ser realizada com água e sabão ou com álcool gel, conforme abaixo:

Fonte: http://www.blogdasaude.com.br/saude-fisica/2012/03/02/estao-higienizando-as-maos-

corretamente/

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Uso de Equipamentos de Proteção Individual (EPIs)

EPI é todo dispositivo ou produto, de uso individual utilizado pelo trabalhador, destinado à proteção de riscos suscetíveis de ameaça à segurança e à saúde no trabalho como: agentes infecciosos, químicos, calor ou frio excessivo, fogo, entre outros riscos, no ambiente de trabalho. Serve também, para evitar a contaminação do material em experimento ou em produção.

O EPI de fabricação nacional ou importado, só poderá ser adquirido e utilizado com a indicação do Certificado de Aprovação (CA) emitido pelo Ministério do Trabalho e Emprego dentro do prazo de validade, além de atender obrigatoriamente as especificidades do trabalho realizado.

O uso de EPIs é obrigatório para todos os funcionários que manipulam materiais biológicos durante suas atividades laborais. Informações relevantes para uma Coleta de sangue adequada

A recomendação do Clinical and Laboratory Standardization Institute (CLSI) para coleta de sangue é pela utilização do sistema fechado, composto por um dispositivo que permite a aspiração do sangue diretamente da veia através do vácuo e/ou aspiração, utilizando agulha ou escalpe de duas pontas que se conectam diretamente ao tubo de análise para onde o sangue é drenado.

As vantagens do sistema fechado para coleta de sangue venoso são:

Facilidade no manuseio: o tubo e/ou seringa para coleta de sangue contém, no seu interior, vácuo calibrado ou seringa com vácuo e/ou aspiração, que está correlacionado com a proporção entre a quantidade de volume de sangue coletado com o anticoagulante/ativador de coágulo determinado na etiqueta do produto;

Segurança e conforto ao paciente: a disponibilidade dos diversos calibres de agulhas, escalpes e tubos com menor volume de aspiração, assim como a possibilidade de que, em uma única punção, sejam colhidos vários tubos (coleta múltipla), beneficiam pacientes com acessos difíceis. O profissional de saúde avalia o paciente e escolhe qual produto (material) será mais adequado para a coleta, proporcionando segurança e qualidade na fase pré-analítica;

Segurança ao profissional de saúde: minimização do risco de acidente com perfurocortantes (agulhas) e contaminação, pois não há o manuseio da amostra de sangue, uma vez que o sangue entra diretamente no recipiente de coleta.

Sequência de coleta de sangue

A recomendação da sequência dos tubos baseada na CLSI deve ser respeitada, para que não ocorra contaminação por aditivos nos tubos subsequentes (contaminação cruzada dos aditivos), quando há necessidade da coleta para diversos analitos de um mesmo paciente, sendo ela: 1. Frasco para hemocultura. 2. Tubo de citrato de sódio. 3. Tubo com ativador de coágulo, com ou sem gel para obtenção de soro. 4. Tubo de heparina. 5. Tubo de EDTA. 6. Tubo de fluoreto/EDTA

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Fonte: Recomendações da Sociedade Brasileira de Patologia clínica Medicina Laboratorial

para Coleta de Sangue Venoso, 2010, p. 59. Acondicionamento e transporte de amostras biológicas

As amostras de material biológico devem ser acondicionadas em tubos e/ou frascos, de acordo com a especificidade de cada agravo e tipo de análise. Estas informações estão detalhadas nos quadros específicos para cada agravo deste Manual.

Para o transporte, as amostras devem vir protegidas de choques, dentro de caixas térmicas ou em embalagens específicas de acordo com a categoria da substância infecciosa (categoria A, embalagem UN 2814 ou categoria B, embalagem UN/3373) com ou sem gelo, respeitando o tempo de transporte, conforme quadros específicos para cada agravo deste Manual.

Quando as amostras são procedentes de locais mais distantes, o LACEN-PA sugere colocar as requisições correspondentes, devidamente preenchidas, dentro de um saco plástico; vedar bem o saco e fixá-lo na parte externa da tampa da caixa térmica; fechar e vedar bem a caixa; identificar com destinatário, remetente e enviar ao laboratório.

Fonte: Manual da fase pré-analítica – Recomendações da Sociedade Brasileira de Patologia

clínica Medicina Laboratorial, 2010, p. 116. Notas: a) Gelo: o gelo deve ser reciclável ou seco se for o caso, para não haver risco de perda da amostra. b) Caixa Térmica: é utilizada para acondicionar e transportar amostras, devendo ser capaz de conservar a temperatura interna adequada à viabilidade das amostras. Deve ser lavável, resistir à desinfecção e portar a identificação de “Infectante” ou “Risco Biológico”, juntamente

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com o nome, telefone e endereço da pessoa que deve ser avisada em caso de acidente com a(s) amostra(s). Interferentes nas amostras sanguíneas

Vários fatores interferentes são relevantes nas análises laboratoriais, dos quais destacamos: 1. Tempo de contato prolongado do soro ou plasma com as células: a separação do

soro ou plasma das células sanguíneas deve ser realizada o mais rápido possível, respeitando o tempo necessário para a retração do coágulo, em um tempo máximo de até duas horas após a coleta a fim de evitar interferências. Não é recomendado o transporte de amostras sem centrifugação.

2. Hemólise: é a ruptura das hemácias, com extravasamento da hemoglobina, ocasionando alteração na cor do soro e/ou plasma para uma cor avermelhada, que pode variar de um tom claro a um tom mais intenso dependendo da intensidade da hemólise. Recomenda-se deixar o braço garroteado apenas pelo tempo necessário durante a coleta (evitando garrotes por um longo tempo durante a coleta); verificar a completa coagulação do sangue antes da centrifugação (30 a 60 minutos); evitar refrigerar a amostra antes da separação do soro ou plasma; evitar a homogeneização brusca da amostra após a coleta.

3. Lipemia: é causada por altos níveis de colesterol e/ou triglicérides no sangue do paciente, resultando na alteração na cor do soro ou plasma para uma cor branco-amarelada turva, o que normalmente interfere na execução de várias análises. Recomenda-se que o jejum recomendado seja obedecido.

4. Temperatura: antes de coletar uma amostra para análise é importante que seja observada a que temperatura deve ser acondicionada e transportada, visto que esta varia de acordo com a análise que será realizada e tem impacto direto na viabilidade da amostra. A temperatura refrigerada da amostra corresponde a temperaturas entre 2 e 8ºC e inibe o metabolismo das células e estabiliza certos constituintes termolábeis, já a temperatura ambiente é aquela compreendida entre 22 e 25ºC. Este Manual abordará as informações detalhadas de temperatura na tabela de orientações específicas para cada agravo.

Critérios de rejeição

Os critérios para rejeição de amostras no LACEN-PA estão detalhados nos quadros específicos para cada agravo deste manual. Descarte seguro de resíduos

Os Serviços de Saúde são responsáveis pelo correto gerenciamento de todos os resíduos por eles originados, desde o momento da geração até a destinação final. Este gerenciamento deve ser feito obedecendo às legislações Federais, Estaduais e Municipais, das quais a principal para os Resíduos em Serviços de Saúde (RSS) é a Resolução de Diretoria Colegiada (RDC) 306, de 07/12/2004 da ANVISA.

Os Serviços de Saúde geradores de resíduos devem elaborar um Plano de Gerenciamento de Resíduos em Serviços de Saúde (PGRSS), conforme os tipos de resíduos produzidos, definindo todo o manejo dos resíduos, que compreende: segregação, acondicionamento, identificação, transporte interno, armazenamento temporário, tratamento, armazenamento externo, coleta externa, transporte externo e disposição final. Além de medidas de Segurança Ocupacional e Programa de Reciclagem. Entrega de resultados de exames

Os resultados dos exames serão entregues para pacientes/clientes na recepção do LACEN mediante a apresentação de documento de identidade com foto e protocolo.

Os resultados de exames para Municípios são impressos pelo próprio Município através do sistema GAL, o qual está disponível de forma online. Apenas os exames de HIV Carga viral, HIV CD4+/CD8+, Citopatologia e Histopatologia, são entregues impressos aos motoristas dos Municípios no setor SGA-DBM do LACEN ou enviados por malotes.

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ORIENTAÇÕES ESPECÍFICAS Seção de Bacteriologia e Micologia Considerações Gerais da Coleta Microbiológica:

Colher antes da antibioticoterapia, sempre que possível;

Instruir claramente o paciente sobre o procedimento;

Observar a antissepsia na coleta de todos os materiais clínicos;

Colher do local onde o microrganismo tenha maior probabilidade de ser isolado;

Proteger os swabs da exposição ao ar, da dessecação e das temperaturas extremas;

Os meios de cultura utilizados para o transporte das amostras (ágar carvão, ágar chocolate, etc) deverão ser retirados da geladeira pela manhã, antes do início dos trabalhos, devendo já ter alcançado a temperatura ambiente no momento da semeadura. Não utilizar meios gelados;

Os meios de Stuart, Cary-Blair e os meios de hemocultura deverão ser mantidos à temperatura ambiente e protegidos da luz.

ASPERGILOSE (Pesquisa sorológica)

Preparo do Paciente

Não se aplica

Amostra 2ml de soro em tubo sem anticoagulante

Conservação e Transporte

Conservar a amostra à temperatura de -20°C Transportar sob refrigeração e enviar imediatamente ao LACEN


Requisição médica + Cadastro no GAL

Informações Importantes

Enviado pelo LACEN para ser realizado no Laboratório de Referência – Instituto Evandro Chagas (IEC)

Método Pesquisa sorológica

Interferências Não se aplica

Tempo de Resultado

15 dias úteis

ASPERGILOSE (Pesquisa de Aspergillus sp.)

Preparo do Paciente

Não se aplica

Amostra Escarro

Líquidos orgânicos


Conservar as amostras à temperatura ambiente e enviar imediatamente ao LACEN por até 2h.




Não se aplica

Método Cultura

Interferências O transporte após 2h impossibilita a análise da amostra

Tempo de Resultado

30 dias úteis

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BRUCELOSE

Preparo do Paciente

Não se aplica

Amostra No mínimo 1ml de soro


Conservar a amostra à temperatura de 2 a 8°C Transportar sob refrigeração e enviar imediatamente ao LACEN


Requisição de exame (com nome do paciente em letra de forma legível, data de nascimento, nome da mãe, número CNS do paciente, data da coleta, exame solicitado, informações sobre a clínica e epidemiologia, nome do profissional que está solicitando e carimbo com número do Conselho Regional) + Ofício + Cadastro no GAL


Enviado pelo LACEN para ser realizado no Laboratório de Referência – Instituto Adolfo Luttz (IAL)

Método Teste de Rosa Bengala


Tempo de Resultado

30 dias úteis

BOTULISMO (Pesquisa de Toxina Botulínica)

Preparo do Paciente

Não se aplica

Amostra

Botulismo alimentar, intestinal e por ferimento: 10ml de soro em tubo sem anticoagulante em até 8 dias após o início dos sintomas. Botulismo alimentar e intestinal: 15g ou 15ml de fezes em frasco limpo e seco de boca larga de tampa rosqueável coletadas em até 3 dias após início dos sintomas. Se houver constipação intestinal, coletar as fezes em até 6 dias. Botulismo alimentar: 15g ou 15ml de vômito ou lavado gástrico em frasco sem vazamento até 3 dias após início dos sintomas.


Conservar as amostras à temperatura de 2 a 8º C Transportar sob refrigeração e enviar imediatamente ao LACEN


Requisição de exame (com nome do paciente em letra de forma legível, data de nascimento, nome da mãe, número CNS do paciente, data da coleta, exame solicitado, informações sobre a clínica e epidemiologia, nome do profissional que está solicitando e carimbo com número do Conselho Regional) + Ofício + Cadastro no GAL


Enviado pelo LACEN para ser realizado no Laboratório de Referência – Instituto Adolfo Luttz (IAL)

Método Pesquisa de Toxina Botulínica

Interferências

O período entre os primeiros sintomas e a coleta das amostras clínicas não deve ultrapassar 8 dias, pois a coleta tardia pode impedir a detecção de toxina, uma vez que a toxina vai sendo absorvida pelos tecidos em função do tempo.

Tempo de Resultado

30 dias úteis

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CÓLERA (Pesquisa de Vibrio cholerae)

Preparo do Paciente

Não se aplica

Amostra Fezes in natura 0,5 a 2g ou swab fecal


Amostra in natura: conservar até 1h em temperatura ambiente ou até 5h se refrigerada entre 2 a 8°C. Swab (Cary-blair): conservar em temperatura ambiente por até 7 dias.




Não se aplica

Método Cultura


Tempo de Resultado

7 dias úteis

COQUELUCHE (Pesquisa de Bordetella pertussis na secreção de nasofaringe)

Preparo do Paciente

Assepsia nasal

Amostra Swab alginatado com secreção nasal coletada no início dos sintomas (período catarral). Depois de semeado a amostra no meio, introduzir o swab no meio de cultura. Transportar o meio com o swab introduzido.


Transportar em temperatura ambiente imediatamente após coleta. Na impossibilidade do transporte imediato, conservar o material em caixa plástica com tampa, contendo recipiente com água e incubar em estufa de 35ºC à 37ºC em um período máximo de 48h, encaminhando a seguir em temperatura ambiente. Caso o transporte do material pré incubado exceda 4h, recomenda-se transportar sob refrigeração.




Não se aplica

Método Cultura

Interferências O Uso de antibiótico interfere no isolamento da Bordetella pertussis

Tempo de Resultado

7 dias úteis

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CLAMÍDIA (Chlamydia trachomatis)

Preparo do Paciente

Realizar coleta antes do uso de antibióticos

Amostra Raspado da endocervice, uretral e conjuntiva tarsal superior


Conservar as lâminas em temperatura entre 4ºC e 8°C por 2 dias, após este período, conservar em freezer a temperatura –20°C por até 3 meses. Transportar as lâminas envolvidas com papéis filtro e laminado em frasco porta lâmina dentro de caixa térmica, sob refrigeração, encaminhar imediatamente.




Não se aplica

Método Imunofluorescência direta

Interferências Uso de medicamento interfere no resultado

Tempo de Resultado

2 dias úteis

DIFTERIA

Preparo do Paciente

Não se aplica

Amostra Dois swabs descartáveis estéreis com secreções da nasofaringe, estriados nos meios de transporte PAI ou STUART.


Conservar a amostra em temperatura ambiente Transportar imediatamente


Requisição médica + Ficha de investigação + Cadastro no GAL



Método Cultura

Interferências Uso de medicamento interfere no resultado

Tempo de Resultado

15 dias úteis

DOENÇAS DTA (Doenças transmitidas por alimento e água)

Preparo do Paciente

Não se aplica

Amostra Fezes in natura 0,5 a 2g ou swab fecal.


Conservar o swab em meio de transporte cary-blair em temperatura ambiente por até 7 dias.


Requisição médica + Ficha de investigação de surto – DTA + Cadastro no GAL


Não se aplica

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Método Cultura

Interferências Uso de antibiótico poderá inibir o crescimento de bactérias patogênicas

Tempo de Resultado

7 dias úteis

DOENÇAS DIARREICAS (Enterobactérias)

Preparo do Paciente

Não se aplica.



Fezes in natura podem ser conservadas em temperatura ambiente nos frascos no prazo máximo de 2h. Conservar o swab em meio de transporte cary-blair em temperatura ambiente por até 7 dias.




Não se aplica

Método Cultura


Tempo de Resultado

7 dias úteis

FEBRE TIFÓIDE - COPROCULTURA

Preparo do Paciente

Não se aplica







Não se aplica

Método Cultura


Tempo de Resultado

7 dias úteis

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FEBRE TIFÓIDE (Pesquisa de Salmonella sp)

Preparo do Paciente

Não se aplica







Não se aplica

Método Cultura


Tempo de Resultado

7 dias úteis

GONORRÉIA (Neisseria gonorrhoeae)

Preparo do Paciente

Não se aplica

Amostra

Tipos de amostra: Orofaringe; Uretral; Anal; Endocervice; Ocular. Coletar 02 swabs alginatados com amostra do sitio real da infecção, 01 swab deve ser inoculado no meio de transporte Amies e o outro em Thayer-Martin (fazendo estria em forma de Z, na superfície dos meios). Confeccionar uma lâmina para coloração pelo método de gram.


O semeio no meio de Amies deve ser enviado em temperatura ambiente ao laboratório até 6h após a coleta. A semeadura em meio de Thayer-Martin modificado em tubos deve ser acondicionada em atmosfera de CO2 e mantida em posição vertical. As lâminas para coloração, fixadas pelo calor, devem ser acondicionadas em tubetes porta lâminas, conservadas e transportadas em temperatura ambiente.




Não se aplica

Método Cultura


Tempo de Resultado

7 dias úteis

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HANSENÍASE (Pesquisa do Mycobacterium leprae no raspado intradérmico)

Preparo do Paciente

Não se aplica

Amostra

Para Diagnóstico: Os pacientes devem ser encaminhados para a realização da coleta no LACEN-PA, que serão realizadas da seguinte forma:

1- Pacientes sem lesões ativas visíveis: lâminas com raspado intradérmico do lóbulo auricular direito (LD), lóbulo auricular esquerdo (LE), cotovelo direito (CD) e cotovelo esquerdo (CE).

2- Pacientes com lesões cutâneas visíveis ou áreas com alteração de sensibilidade: lâminas com raspado intradérmico do lóbulo auricular direito (LD), lóbulo auricular esquerdo (LE), cotovelo direito (CD) e lesão (L).

Para o Controle de Qualidade: O LACEN realiza controle de qualidade externo para rede de laboratórios. As amostras lidas no serviço devem ser encaminhadas e acompanhadas de um mapa de produção com os dados de cada amostra e seus respectivos resultados. Enviar 100% das amostras mensalmente.


Conservar as lâminas para controle de qualidade em temperatura ambiente. Transportar em frasco porta lâminas à temperatura ambiente.


Ficha contendo as informações sobre os resultados da leitura da lâmina


Não se aplica

Método Leitura das lâminas por microscopia


Tempo de Resultado

Para diagnóstico: 3 dias úteis Para Controle de Qualidade: não se aplica

HEMOCULTURA (Pesquisa sorológica)

Preparo do Paciente

Preferencialmente a coleta deve ser realizada no período febril.

Amostra Introduzir o sangue coletado em meio de cultura específico para hemocultura. O volume de sangue coletado deve ser de acordo com o especificado pelo fabricante do meio de cultura.


Semeio imediato no meio de cultura e encaminhar imediatamente, em temperatura ambiente, ao laboratório.




Não se aplica

Método Cultura

Interferências Uso de antibiótico

Tempo de Resultado

10 dias úteis

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HISTOPLASMOSE (Pesquisa sorológica)

Preparo do Paciente

Não se aplica



Conservar a amostra à temperatura de -20°C. Transportar sob refrigeração e enviar imediatamente ao LACEN.







Tempo de Resultado

15 dias úteis

HISTOPLASMOSE (Pesquisa de Histoplasma sp)

Preparo do Paciente

Não se aplica

Amostra Escarro







Não se aplica

Método Cultura


Tempo de Resultado

30 dias úteis

LEPTOSPIROSE

Preparo do Paciente

Realizar jejum mínimo de 4h. Coletar amostra a partir de 7 dias após o início dos sintomas.

Amostra 2ml de soro


Conservar o soro em temperatura de 4°C a 8°C até 5 dias, após este período conservar à temperatura de -20°C. Transportar sob refrigeração e enviar imediatamente ao LACEN




Não se aplica

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Método ELISA

Interferências Soro com hemólise

Tempo de Resultado

10 dias úteis

MENINGITE BACTERIANA

Preparo do Paciente

Não se aplica

Amostra

1ml de Liquor 0,5ml de Soro / Plasma A quantidade solicitada corresponde ao volume ideal para processamento do teste, volumes inferiores enviados também serão processados.


A amostra deverá ser acondicionada a -20°C ± 5°C até o seu transporte. A amostra deverá ser acondicionada em frascos novos e devidamente tampados, preferencialmente em tubos com tampas de rosca e anel de vedação. O transporte da amostra deve ser realizado em caixa térmica com gelo seco ou reciclável.




Não se aplica

Método PCR em Tempo Real (qPCR)


Tempo de Resultado

5 dias úteis

MENINGITE – LÍQUOR - CULTURA (Pesquisa de bactérias e fungos no LCR)

Preparo do Paciente

Não se aplica

Amostra 1ml de liquor


Conservar o liquor em temperatura ambiente e enviar imediatamente ao LACEN. Liquor semeado em Agar chocolate pode ser conservado em estufa a 37°C por até 48h. Transportar a amostra em temperatura ambiente e enviar imediatamente ao LACEN.




Não se aplica

Método Cultura


Tempo de Resultado

7 dias úteis

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MICOLOGIA

Preparo do Paciente

Não utilizar medicamento antifúngico por 15 dias antes da coleta.

Amostra Escarro e outros fluidos


Conservar em temperatura ambiente. Transportar em caixa térmica à temperatura ambiente em até 2h.




Não se aplica

Método Cultura

Interferências Amostras com mais de 2h a partir da coleta

Tempo de Resultado

30 dias úteis

PARACOCCIDIOIDOMICOSE (Pesquisa sorológica)

Preparo do Paciente

Não se aplica



Conservar a amostra à temperatura de -20°C. Transportar sob refrigeração e enviar imediatamente ao LACEN.







Tempo de Resultado

15 dias úteis

PARACOCCIDIOIDOMICOSE (Pesquisa de Paracoccidioides sp)

Preparo do Paciente

Não se aplica

Amostra Escarro







Não se aplica

Método Cultura


Tempo de Resultado

30 dias úteis

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RESISTÊNCIA A ANTIMICROBIANOS – ENVIO DE CEPAS PARA CONFIRMAÇÃO

Preparo do Paciente

Não se aplica

Amostra

Realizar repique do microrganismo isolado em placa ou tubo em meio de cultura adequado para isolamento deste microrganismo e certificar que as colônias estão puras. Identificar a placa ou tubo com o nome do paciente, tipo de material do qual a cepa foi isolada. Vedar a placa ou tubo com fita crepe. Encaminhar o material em temperatura ambiente, com os resultados de identificação da cepa e teste de sensibilidade.


Manter a temperatura ambiente e enviar em caixa térmica sem gelo


Ofício do hospital solicitante com os dados do paciente + cadastro no GAL Em caso de suspeita de surto a CCIH do serviço de saúde deve enviar a cópia do formulário nacional de notificação de agregado de casos e surtos da ANVISA, disponível em: http://formsus.datasus.gov.br/site/formulario.php?id_aplicacao=8934


As cepas enviadas devem ser de repiques recentes (24h), evitando assim o ressecamento das mesmas. Devem constar na ficha de encaminhamento o nome, idade, data de nascimento, sexo, data da coleta, sintomas e local de residência do paciente; além da procedência da amostra (unidade de saúde com respectivo número do cadastro CNES e município de notificação). Amostra enviada ao Laboratório de Referência - Instituto Evandro Chagas Em caso de surto a amostra será enviada ao laboratório de referência: LACEN/DF

Método Cultura em meios específicos, identificação e antibiograma.

Interferências Transporte por tempo prolongado e sem condições adequadas inviabilizam as cepas

Tempo de Resultado

15 dias úteis

SECREÇÕES (Feridas, Abscessos e Exsudatos)

Preparo do Paciente

A coleta deve ser realizada antes da antibioticoterapia

Amostra

Coleta da amostra: As margens e superfícies da lesão devem ser descontaminadas com solução de povidine iodine e soro fisiológico (1:1). Em seguida proceder à limpeza com solução fisiológica. Coletar o material purulento localizado na parte mais profunda da ferida, utilizando-se, de preferência, aspirado com seringa e agulha. Quando a punção com agulha não for possível, aspirar o material somente com seringa tipo insulina. Para feridas não purulentas, realizar a escarificação das bordas após assepsia, pode-se produzir material seroso que é adequado para cultura. Swabs (menos recomendados) serão utilizados quando os procedimentos acima citados não forem possíveis, nesse caso coletar 02 swabs com secreção de feridas cirúrgicas, lesões de peles escaras, abscessos e etc.. Colocar um swab em meio de transporte Stuart e com o outro fazer um esfregaço em lâmina para Gram.

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Conservar a amostra à temperatura ambiente. Transportar imediatamente ao LACEN.




Não se aplica

Método Cultura


Tempo de Resultado

7 dias úteis

SÍFILIS (Treponema pallidum)

Preparo do Paciente

Realizar jejum mínimo de 4h

Amostra 1ml de soro, após 7 a 10 dias do surgimento de lesão única.


Conservar em temperatura de 4ºC a 8ºC até 24h, após esse período manter a amostra à temperatura de -20°C até o envio. Transportar em estantes dentro de caixa térmica, sob refrigeração com gelo reciclável ou gelo seco, e enviar imediatamente ao LACEN.




Não se aplica

Método Imunofluorescência indireta


Tempo de Resultado

3 dias úteis

TUBERCULOSE (Amostra de origem Extrapulmonar)

URINA

Preparo do Paciente

Coletar a primeira urina da manhã. Coletar todo conteúdo urinário.

Amostra Urina superior a 5ml


Conservar em temperatura ambiente por até 2h. Transportar imediatamente ao LACEN.


Requisição médica com breve histórico do paciente + Ficha de investigação + Cadastro no GAL


Recomenda-se coletar 3 a 6 amostras em dias consecutivos.

Método Cultura

Interferências Amostras fora do prazo impossibilitam a realização do exame.

Tempo de Resultado

60 dias úteis

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LÍQUIDO CEFALORRAQUIDIANO (LCR)

Preparo do Paciente Jejum mínimo de 4h

Amostra Líquido cefalorraquidiano (coleta realizada por médico). Coletar volume mínimo de 5ml.


Conservar o líquor em temperatura ambiente e enviar imediatamente ao LACEN.




Não se aplica

Método Cultura


Tempo de Resultado

60 dias úteis


LÍQUIDO PLEURAL, LÍQUIDO SINOVIAL E LÍQUIDO PERITONEAL

Preparo do Paciente Não se aplica

Amostra

Líquido pleural, líquido sinovial e líquido peritoneal (coleta realizada por médico). Coletar volume mínimo de 10ml (coletar o maior volume possível em frasco estéril).


Conservar a amostra em temperatura ambiente e enviar imediatamente ao LACEN.




Não se aplica

Método Cultura


Tempo de Resultado

60 dias úteis

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FRAGMENTOS CUTÂNEOS, ÓSSEOS E DE ÓRGÃOS


Amostra Fragmentos cutâneos e ósseos imersos em solução fisiológica ou água destilada em frasco estéril com água destilada ou solução salina estéril. NÃO UTILIZAR FORMOL (coleta realizada por médico).


Conservar a amostra em temperatura ambiente e enviar imediatamente ao LACEN (preferencialmente em 15 minutos ou até no máximo 24h) em frasco bem fechado




Não se aplica

Método Cultura


Tempo de Resultado

60 dias úteis


SANGUE E ASPIRADO DE MEDULA


Amostra No mínimo 1ml de aspirado de medula em tubo com anticoagulante (SPS). 3ml de sangue por punção venosa em frasco de meio de cultura ou frasco estéril.


Conservar a amostra em temperatura ambiente e enviar imediatamente ao LACEN.




Nunca refrigerar Não usar EDTA como anticoagulante

Método Cultura


Tempo de Resultado

60 dias úteis

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PUS E SECREÇÕES

Preparo do Paciente

Não utilizar cremes, pomadas no local da lesão.

Amostra

Pus e secreções Para realizar coleta de cavidades fechadas: por punção (realizado por médico). Para realizar coleta de cavidades abertas: com swab (laboratório). Armazenar em frasco estéril e swab imerso em solução salina ou água destilada.


Conservar a amostra em temperatura ambiente e enviar imediatamente ao LACEN num período inferior a 2h.




Não se aplica

Método Cultura


Tempo de Resultado

60 dias úteis


FEZES

Preparo do Paciente Realizar coleta antes da medicação.

Amostra Fezes 0,5 a 2g. Coletar em pote de boca larga sem conservante.


Transportar em temperatura ambiente até 1h, após esse período refrigerar a 4ºC por até 24h. Enviar a amostra imediatamente ao LACEN.




Não se aplica

Método Cultura


Tempo de Resultado

60 dias úteis

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LAVADO GÁSTRICO

Preparo do Paciente Jejum de 8 a 10h. Coletar ao acordar, antes de levantar. Crianças antes de ver a mãe para evitar deglutição pelo estímulo visual

Amostra

Lavado gástrico realizado com sonda nasogástrica fina, introduzida pela boca ou nariz, injeta-se 10 a 15ml de solução fisiológica e após 30 minutos faz-se a lavagem gástrica. Coletar em frasco estéril volume de 50ml e levar imediatamente ao laboratório ou coletar em frasco estéril contendo solução tampão de carbonato de sódio a 10% e levar em até 4h ao laboratório.


Conservar a amostra em temperatura 4ºC por até 4h e enviar imediatamente ao LACEN.




Não se aplica

Método Cultura


Tempo de Resultado

60 dias úteis


ESCARRO ESPONTÂNEO

Preparo do Paciente Lavar a boca/bochecho Em local arejado, forçar a tosse: inspirar profundamente, prender a respiração e escarrar no pote.

Amostra Coletar volume de 5 a 10ml de escarro em frasco de boca larga com tampa rosqueável.


Transportar em temperatura ambiente imediatamente ao LACEN (em até 2h após a coleta). Após 2h de coleta, armazenar a 4ºC, por até 7 dias e transportar imediatamente sob refrigeração.




Não se aplica

Método Cultura


Tempo de Resultado

60 dias úteis

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ESCARRO INDUZIDO

Preparo do Paciente Ingerir bastante líquido no dia anterior. Nebulizar o paciente com solução salina hipertônica a 3%, durante 5 a 20 minutos; seguir as mesmas instruções do escarro espontâneo.

Amostra Escarro induzido: coletar volume de 5 a 10ml de escarro em frasco de boca larga com tampa rosqueável.


Transportar em temperatura ambiente imediatamente ao LACEN (em até 2h após a coleta). Após 2h de coleta, armazenar a 4ºC, por até 7dias e transportar imediatamente sob refrigeração.




Indicado quando o paciente tem pouca secreção ou não consegue expelir pois a nebulização fluidifica a secreção do pulmão e provoca irritação que leva a tosse e expulsão do escarro. A amostra é menos viscosa e semelhante a saliva. Escrever no pote “escarro induzido”.

Método Cultura


Tempo de Resultado

60 dias úteis


LAVADO BRÔNQUICO ESCOVADO


Amostra Lavado brônquico escovado


Transportar em temperatura ambiente imediatamente ao LACEN (em até 2h após a coleta). Após 2h de coleta, armazenar a 4ºC, por até 24h e transportar imediatamente sob refrigeração.




Anestésicos inibem o crescimento bacteriano. Evitar a contaminação com o trato respiratório superior. A sala deve ter cuidados de Biossegurança para evitar contaminação do meio ambiente.

Método Cultura


Tempo de Resultado

60 dias úteis

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FRAGMENTOS DE TECIDOS PULMONARES


Amostra Fragmentos de tecidos pulmonares imersos em solução fisiológica ou água destilada em frasco estéril com água destilada ou solução salina estéril. NÃO UTILIZAR FORMOL (coleta sob orientação médica).


Transportar em temperatura ambiente imediatamente ao LACEN (em até 2h após a coleta). Após 2h de coleta, armazenar a 4ºC, por até 24h e transportar imediatamente sob refrigeração. Após 24h, congelar -20ºC e transportar sob refrigeração.




Não se aplica

Método Cultura


Tempo de Resultado

60 dias úteis

Seção de Citohistopatologia

CITOLOGIA ONCÓTICA CÉRVICO VAGINAL - PCCU

Preparo do Paciente

Não utilizar duchas ou medicamentos vaginais ou exames intravaginais, como por exemplo a ultrassonografia, durante 48h antes da coleta; Evitar relações sexuais durante 48h antes da coleta; Não utilizar anticoncepcionais locais, espermicidas, nas 48h anteriores ao exame; O exame não deve ser feito no período menstrual, pois a presença de sangue pode prejudicar o diagnóstico citológico; Aguardar o 5° dia após o término da menstruação. Em algumas situações particulares, como em um sangramento anormal, a coleta pode ser realizada.

Amostra

Convencional: Lâmina com esfregaço cérvico vaginal com identificação do mesmo lado contendo as iniciais da paciente, número citológico, nome da unidade de origem e nome do município. Meio Líquido: Raspado cérvico vaginal kit próprio para citologia em meio liquido fornecido pelo LACEN-PA com identificação contendo nome do município de origem, nome do estabelecimento de saúde, o número da citologia da usuária e as iniciais do nome da mesma.

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Convencional: Conservar em temperatura ambiente protegidos da luz e calor. Transportar em tubetes plásticos com tampa rosqueável contendo álcool 96°, dentro de caixa térmica à temperatura ambiente, no prazo de sete dias. Meio Líquido: Conservar em solução de Preservcyt (fornecido pelo LACEN) Transportar em frascos plásticos com tampa rosqueável dentro de caixa térmica à temperatura ambiente, protegidos da luz e calor no prazo de sete dias.


Requisição citopatológica de colo do útero preconizada pelo MS com todas as informações preenchidas (nome, idade, data do nascimento, endereço, nome da mãe, cartão SUS, data da coleta, DUM, motivo do exame - anotar resultado do exame anterior, descrever a acuidade) + Cadastro no SISCAN.


Tanto fichas como lâminas não deverão conter rasuras, porém se isto acontecer passe um traço sobre a palavra errada e escreva a palavra correta acima da palavra rasurada, rubricar e datar. Nunca usar corretivo. Não transportar uma quantidade superior a 200 frascos de citologia em meio líquido em uma mesma caixa térmica. Identificar as caixas de transporte de citologia em meio líquido com “Líquido inflamável – Metanol” e fazer a orientação “↑↑↑↑” para indicar este lado para cima.

Método Coloração de Papanicolaou.

Interferências

Amostras com falta de informação adequada. Amostras mal acondicionadas e mal conservadas. Duchas ou medicamentos vaginais, exames intravaginais, relações sexuais, anticoncepcionais locais, espermicidas durante 48h antes da coleta. Período menstrual

Tempo de Resultado

30 dias consecutivos após a entrada no LACEN

CITOLOGIA DE PUNÇÃO ASPIRATIVA POR AGULHA FINA - PAAF

Preparo do Paciente

Realizado no local da coleta, conforme protocolo de atendimento do paciente

Amostra

Procedimento médico para envio do material: Realizar a coleta da mama ou tireoide e outros órgãos com seringa, conforme protocolo clínico, obedecendo aos seguintes critérios de identificação: tipo de material, topografia puncionada, iniciais do paciente, município de origem e número da citologia da usuária. O material obtido pode ser enviado de duas maneiras:

a) Na própria seringa devidamente identificada e /ou b) Distendido em lâminas com bordas foscas, quantas forem necessárias,

previamente fixadas e identificadas. Topografia exata do material puncionado. Exemplo: mama direita, quadrante superior externo. Exemplo: tireoide punção de lesão cística ou sólida. Lobos direito e esquerdo, ou istmo.


Seringa: conservar em temperatura de 2ºC a 8°C. Lâminas: transportadas em frascos com ranhuras e não quebráveis. Transportar a amostra em caixa térmica, protegida da luz e calor em temperatura de 0º C a 8ºC. Não utilizar conservantes.

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Requisição médica (assinada e carimbada pelo médico solicitante com dados do paciente, tipo de amostra e dados clínicos relevantes, exames de imagem) + Cadastro no SISCAN (quando tratar-se de mama).


Não se aplica

Método Coloração de Papanicolaou

Interferências Excesso de sangue e escassez de células na amostra. Amostras com falta de informações. Amostras mal acondicionadas e mal conservadas.

Tempo de Resultado


CITOLOGIA DE SECREÇÕES, LÍQUIDOS E DESCARGAS

Preparo do Paciente

Realizado no local da coleta, conforme protocolo de atendimento do paciente

Amostra

Secreções e descargas: conforme critério clínico, se a amostra for de órgão bilateral, deve-se informar a lateralidade. Escarro: coletar em 3 dias diferentes pela manhã, por expectoração profunda (as vezes assistida por inalação de agente mucolítico) em recipiente estéril com tampa rosqueável, identificar com nome do município de origem, estabelecimento de saúde, o número da citologia do usuário e as iniciais do nome do mesmo. Não fazer "pool" de várias amostras colhidas durante 24h.


Conservar em álcool a 50%, na proporção de 1:1 e manter em temperatura de 0ºC a 8°C. Transportar as amostras em caixa térmica, protegidas da luz e calor à temperatura de 0º C a 8ºC.


Requisição médica (assinada e carimbada pelo médico solicitante com dados do paciente, tipo de amostra e dados clínicos relevantes) + Cadastro no SISCAN (quando tratar-se de mama).


Não se aplica

Método Coloração de Papanicolaou

Interferências Saliva em vez de escarro e quantidade insuficiente de amostra. Amostras com falta de informação, mal acondicionadas e mal conservadas.

Tempo de Resultado


EXAMES ANATOMOPATOLÓGICOS DE BIÓPSIA E PEÇAS CIRÚRGICAS

Preparo do Paciente

Realizado no local da coleta, conforme protocolo de atendimento do paciente.

Amostra

Peças anatomopatológicas, cirúrgicas ou fragmentos de biópsia coletadas por profissional médico em ambiente hospitalar imersas em formol a 10% em recipiente de polietileno, estéril e com dimensões proporcionais ao tamanho da peça cirúrgica e/ou biópsia. Identificar a amostra quanto ao material biológico. Qualquer material de qualquer dimensão deve estar completamente submerso no líquido fixador (formol 10%).

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O recipiente deve estar bem vedado e devidamente identificado de acordo com os dados da requisição: nome do (a) paciente, data do procedimento, tipo de material, unidade de procedência e médico solicitante. O material deverá, sempre que possível, ser enviado imediatamente para o LACEN. Todo material deve vir acompanhado da solicitação devidamente preenchida, sem rasuras e com letras legíveis, segundo padronização estabelecida. Transportar em caixa térmica à temperatura ambiente, protegidos da luz e calor.


Solicitação médica (assinada e carimbada pelo médico solicitante com dados do paciente, tipo de amostra e dados clínicos relevantes) + Cadastro no SISCAN (quando tratar-se de mama e/ou útero).


Não se aplica

Método Histopatológico

Interferências Amostras com falta de informação adequada. Amostras mal acondicionadas e mal conservadas.

Tempo de Resultado

30 dias consecutivos após entrada no LACEN

Seção de Imunoendocrinologia e Toxicologia Ocupacional

CITOMEGALOVÍRUS (IGG E IGM) E TOXOPLASMOSE (IGG E IGM)

Preparo do Paciente

O paciente deverá estar em jejum de no mínimo 4h

Amostra 2 a 5ml de soro.


Conservar a amostra em temperatura entre 2ºC a 8°C. Transportar em estantes dentro de caixa térmica com temperatura entre 2ºC a 8°C, a esta temperatura a amostra é viável por até 7 dias.


Requisição médica + Cadastro Softlab ou GAL + Identificação do local de envio


Não se aplica

Método Imunoensaio de Micropartículas por Quimioluminescência – CMIA.

Interferências Exercício físico antes da coleta. Amostras lipêmicas e hemolisadas.

Tempo de Resultado


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HORMÔNIOS (Βhcg, Luteinizante, Progesterona, Tiroxina Total, Tiroxina Livre, Testosterona, Prolactina,

Estradiol, Folículo Estimulante E Tíreo-Estimulante)

Preparo do Paciente

O paciente deverá estar em jejum de no mínimo 4h Para a dosagem de Prolactina, recomenda-se repouso de 30 minutos antes da coleta.



Conservar a amostra em temperatura entre 2ºC a 8°C. Transportar em estantes dentro de caixa térmica à temperatura entre 2ºC a 8°C, a esta temperatura a amostra é viável por até 7 dias.


Requisição médica assinada e carimbada pelo médico solicitante com dados do paciente, tipo de amostra, dados clínicos relevantes, cartão SUS e identificação do local de envio.


Não se aplica.

Método Imunoensaio de Micropartículas por Quimioluminescência – CMIA.

Interferências Exercício físico antes da coleta, amostras lipêmicas e hemolisadas.

Tempo de Resultado


MARCADORES TUMORAIS (Antígeno Prostático Específico – PSA Total)

Preparo do Paciente

O paciente deverá estar em jejum de no mínimo 4h Manter abstinência sexual por 5 dias e não utilizar bicicleta ou motocicleta no dia da coleta.

Amostra 2 a 5ml de soro


Conservar a amostra em temperatura entre 2ºC a 8°C. Transportar em estantes dentro de caixa térmica com temperatura entre 2ºC a 8°C, a esta temperatura a amostra é viável por até 7 dias.


Requisição médica + Cadastro Softlab + Identificação do local de envio.


Não se aplica.

Método Imunoensaio de Micropartículas por Quimioluminescência - CMIA

Interferências Exercício físico antes da coleta; amostras lipêmica e/ou hemolisadas.

Tempo de Resultado


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COLINESTERASE – TOXICOLOGIA OCUPACIONAL

Preparo do Paciente

Não é necessário preparo



Conservar a amostra em temperatura entre 2ºC a 8°C. Transportar em estantes dentro de caixa térmica a temperatura entre 2ºC a 8°C, nessas condições a amostra é viável por até 7 dias.


Requisição médica + Cadastro Softlab ou GAL+ Identificação do local de envio.


Para realização desses exames, é necessário contato prévio com o LACEN.

Método Cinética de Múltiplos pontos por espectrofotometria de reflectância.

Interferências Amostra hemolisada.

Tempo de Resultado


EXAMES DE PRÉ-NATAL: TOXOPLASMOSE IGG, TOXOPLASMOSE IGM, HEPATITE C, ATI – HCV, HIV, CITOMEGALOVÍRUS IGG, CITOMEGALOVÍRUS IGM, CHAGAS IGG, SÍFILIS TOTAL

Preparo do Paciente

Não se aplica

Amostra Sangue total em papel filtro.


Após a coleta o papel filtro deve ser mantido em temperatura 15 a 25ºC


Requisição médica + Cadastro no GAL + Identificação do local de envio + Controle de cadastro.


- O papel filtro deve ser preservado a temperatura ambiente até o transporte, NÃO deve ser exposto a altas temperatura para acelerar a secagem. - A amostra deve ser encaminhada ao LACEN com o respectivo controle de cadastro no GAL.

Método ELISA

Interferências Papel filtro com presença de extravasamento do local destinado a amostra, ou molhado, caracterizando possível contaminação.

Tempo de Resultado

Depende da demanda de amostras recebidas.

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Seção de Parasitologia

LEISHMANIOSE VISCERAL HUMANA (CALAZAR)

Preparo do Paciente

Não se aplica



Conservar a amostra em temperatura entre 2ºC a 8°C. Transportar em estantes dentro de caixa térmica com temperatura entre 2ºC a 8°C, nessas condições a amostra é viável por até 7 dias, após este período conservar à temperatura de -20°C.


Ficha de investigação SINAN + Requisição médica + Cadastro no GAL


Não se aplica

Métodos Teste rápido e Imunofluorescência IgG

Interferências Amostras com hemólise, amostras não centrifugadas e amostras acondicionadas de forma inadequada.

Tempo de Resultado


LEISHMANIOSE VISCERAL CANINA

Preparo do Paciente

Não se aplica





Requisição com informações do cão e do dono + Cadastro no GAL


Não se aplica

Método Teste rápido e Ensaio Imunoenzimático - ELISA.


Tempo de Resultado


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LEISHMANIOSE VISCERAL HUMANA – CONTROLE DE QUALIDADE

Preparo do Paciente

Não se aplica

Amostra

2ml de soro. Encaminhar trimestralmente (enviar até o dia 10) todas as amostras positivas especificando o título, todas as amostras indeterminadas (título 1/40) e 10% das amostras negativas.

Conservação e

Transporte



Relação das amostras analisadas no trimestre, com identificação do soro e o resultado.


Deve ser encaminhado por todos os laboratórios municipais para onde o diagnóstico da Leishmaniose Visceral Humana está descentralizado.

Método Imunofluorescência Indireta

Interferências

Amostras com hemólise, amostras não centrifugadas e amostras acondicionadas de forma inadequada

Tempo de Resultado


LEISHMANIOSE TEGUMENTAR AMERICANA – PARASITOLÓGICO

Preparo do Paciente

Não se aplica

Amostra

Lâmina (borda fosca) com esfregaço da escarificação da lesão (linfa) Nota: Em situações em que a lesão cutânea apresente infecção secundária, a mesma deverá ser tratada, antes de se proceder a coleta para exame laboratorial.


Conservar em temperatura ambiente. Transportar as lâminas em tubetes porta lâminas ou em material que garanta a integridade da lâmina em temperatura ambiente, preferencialmente em caixas térmicas.




Diagnóstico diferencial com Hanseníase e exame micológico. Orientar o paciente a não utilizar produtos medicamentosos como cremes e pomadas 03 dias antes da coleta.

Método Exame direto de microscopia para pesquisa de Leishmania spp parasitológico (pesquisa de parasitos em lâmina corada).

Interferências Confecção e coloração do esfregaço mal feitas, presença de artefatos, infecções da lesão.

Tempo de Resultado


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LEISHMANIOSE TEGUMENTAR AMERICANA – CONTROLE DE QUALIDADE

Preparo do Paciente

Não se aplica

Orientações O laboratório de revisão deve encaminhar mensalmente 50% das lâminas positivas e 30% das lâminas negativas ao LACEN.


Conservar à temperatura ambiente. Transportar em tubetes porta lâminas ou empacotadas de maneira que garanta a integridade das mesmas, preferencialmente em caixas térmicas.


Boletim com as leituras dos resultados e nome do revisor (em letra legível) que fez o controle do laboratório de base + Resumo mensal das lâminas + Relatório mensal do quantitativo de exames realizados de LTA.


Esta atividade se faz necessária a fim de estabelecer procedimentos padronizados, além de monitorar o desempenho dos microscopistas por meio da revisão de lâminas. Deve ser encaminhado pelos Laboratórios de revisão dos 13 Centros Regionais de Saúde.

Método Método direto de microscopia para pesquisa de Leishmania spp.

Interferências Acondicionamento incorreto das lâminas, presença de artefatos, confecção e coloração mal feitas.

Tempo de Resultado

30 dias consecutivos após a entrada no LACEN, acompanhando relatório de avaliação do diagnóstico para cada revisor.

LEISHMANIOSE TEGUMENTAR AMERICANA – IMUNOLOGIA

Preparo do Paciente

Não é necessário

Amostra Aplicar no antebraço do paciente 0,1ml intradérmico de antígeno de Montenegro e realizar a leitura em 48h.


Não aplicável.


Ficha de investigação SINAN + Requisição médica + Cadastro no GAL.


O paciente deve retornar 48h após a aplicação do antígeno de Montenegro para realização da leitura.

Método Intradermorreação de Montenegro (IDRM).

Interferências Evitar atrito no local da aplicação do antígeno.

Tempo de Resultado

48h após a aplicação do antígeno

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DOENÇA DE CHAGAS – SOROLOGIA

Preparo do Paciente






Casos Agudos: Ficha de investigação SINAN + Requisição médica + Cadastro no GAL. Casos Crônicos: Requisição médica + Cadastro no GAL.


A Ficha de investigação do SINAN somente é necessária nos casos agudos.

Método Ensaio Imunoenzimático (ELISA), Imunofluorescência Indireta IgG, Imunofluorescência Indireta IgM e Hemaglutinação.


Tempo de Resultado

07 dias consecutivos após entrada no LACEN para todos os métodos.

DOENÇA DE CHAGAS – PESQUISA DE T. CRUZI – PARASITOLÓGICO

Preparo do Paciente


Amostra Exame a fresco e gota espessa: Sangue por punção digital ou venosa durante a fase aguda da doença e confeccionar a lâmina imediatamente. Creme leucocitário: 5ml de sangue venoso em tubo com EDTA.


Exame a fresco: Não se aplica, pois o exame deve ser realizado no próprio local da coleta. Gota espessa e Creme leucocitário: após confecção da gota espessa, transportar as lâminas em tubetes porta lâminas ou em recipiente rígido que garanta a integridade das mesmas. Se as amostras forem encaminhadas ao LACEN, conservar o sangue em geladeira à temperatura entre 2ºC a 8 ºC por até 5h.




A lâmina deve ser corada pelo método de Walker para caracterização do Trypanosoma. Para o método a fresco, quando há suspeita clínica, se negativo o primeiro exame, este deve ser repetido por três ou quatro vezes ao dia, durante vários dias, enquanto persistir os sintomas, o que aumenta a chance de encontrar o parasito.

Método Exame direto à fresco, gota espessa e creme leucocitário.

Interferências Amostras de sangue com tempo de coleta superior a 5h serão rejeitadas, assim como amostras coaguladas e hemolisadas.

Tempo de Resultado

02 dias consecutivos após entrada no LACEN.

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DOENÇA DE CHAGAS – CONTROLE DE QUALIDADE DE LÂMINAS

Preparo do Paciente

Não se aplica

Amostra Os laboratórios de revisão das regionais devem encaminhar mensalmente 100% das lâminas revisadas para o LACEN.


Conservar em temperatura ambiente. Transportar em tubetes porta lâminas ou empacotadas de maneira que garanta a integridade das mesmas em temperatura ambiente, preferencialmente em caixas térmicas.


Esta atividade se faz necessária afim de estabelecer procedimentos padronizados, além de monitorar o desempenho dos microscopistas por meio da revisão de lâminas. Deve ser encaminhado pelos laboratórios de revisão dos 13 Centros Regionais de Saúde.

Método Microscopia para pesquisa de T.cruzi em lâmina com gota espessa de sangue corada pelo método de walker.


Tempo de Resultado

30 dias consecutivos após a entrada no LACEN, acompanhando relatório de avaliação do diagnóstico para cada revisor.

MALÁRIA – PESQUISA DE PLASMODIUM – PARASITOLÓGICO

Preparo do Paciente


Amostra Lâmina com 02 gotas espessas de sangue por punção digital ou venoso na fase sintomática inicial (calafrio, febre e sudorese).


Conservar à temperatura ambiente. Transportar em tubetes porta lâminas ou empacotadas de maneira que garanta a integridade das mesmas em temperatura ambiente, preferencialmente em caixas térmicas.


Ficha de investigação SIVEP + Requisição médica + Cadastro no GAL.


Diagnóstico diferencial com Doença de Chagas

Método Pesquisa de Plasmodium spp em lâmina corada pelo método de walker e determinação da parasitemia em gota espessa.

Interferências Presença de artefatos, confecção e coloração mal feitas.

Tempo de Resultado


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MALÁRIA – CONTROLE DE QUALIDADE DE LÂMINAS

Preparo do Paciente

Não se aplica

Amostra O laboratório de revisão deve encaminhar mensalmente para o LACEN 10 lâminas (positivas + negativas) lidas por microscopista de base.


Conservar em temperatura ambiente. Transportar em tubetes porta lâminas ou empacotadas de maneira que garanta a integridade das mesmas em temperatura ambiente, preferencialmente em caixas térmicas.


Boletins com as leituras dos resultados e nome do revisor (em letra legível) que fez o controle do laboratório de base + resumo mensais das lâminas. Encaminhar também Boletim de acompanhamento das atividades de controle de qualidade do diagnóstico da malária – treinamentos e supervisões e Boletim de acompanhamento das atividades de controle de qualidade do diagnóstico da malária – revisão de lâminas.


Esta atividade se faz necessária a fim de estabelecer procedimentos padronizados, além de monitorar o desempenho dos microscopistas por meio da revisão de lâminas. Deve ser encaminhado pelos laboratórios de revisão dos 13 Centros Regionais de Saúde.

Método Microscopia para pesquisa de Plasmodium spp em lâmina com gota espessa corada pelo método de walker e semi quantificação da parasitemia em cruzes.


Tempo de Resultado

30 dias, acompanhando relatório de avaliação do diagnóstico para cada revisor.

Seção de Virologia

ARBOVÍRUS (CHIKUNGUNYA, DENGUE, FEBRE AMARELA, ZIKA) – HISTOPATOLÓGICO

Preparo do Paciente

Até 24 horas após o óbito.

Amostra Vísceras Coletar fragmentos pequenos (2 a 3 cm3) do fígado, baço, pulmão, rim, coração e cérebro.


Colocar os fragmentos de vísceras em frasco estéril com tampa de rosca contendo formalina tamponada. Usar formalina tamponada a 10%, com volume 10 vezes maior que o volume dos fragmentos. Colocar os frascos, em caixa de transporte de amostra biológica SEM GELO. Conservar em temperatura ambiente


Ficha de investigação SINAN+ Requisição médica+ Cadastro GAL

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Enviado pelo LACEN para ser realizado no Laboratório de Referência – Instituto Evandro Chagas (IEC). Imprescindível: data dos primeiros sintomas, data da coleta, informações demográficas, clínicas e epidemiológicas dos pacientes.

Método Imunohistoquímica

Interferências Amostras acondicionadas de forma inadequada.

Tempo de Resultado

30 a 45 dias consecutivos após a entrada no LACEN.

ARBOVÍRUS (CHIKUNGUNYA, DENGUE, FEBRE AMARELA) – ISOLAMENTO VIRAL

Preparo do Paciente

Não é necessário preparo do paciente. No caso de óbito, obter a amostra em até 24 horas após o óbito.

Amostra

Sangue/ soro Coletar o sangue sem anticoagulante entre 1º e 5º dias após o início dos sintomas. Reservar 1 mL de sangue ou separar 1 mL de soro. Armazenar em tubo resistente a temperatura ultra baixa (criotubo), capacidade de 2 mL com tampa de rosca e anel de vedação, devidamente identificado No caso de óbito puncionar o sangue direto do coração

Vísceras Coletar fragmentos pequenos (1 cm3) do fígado, baço, pulmão e cérebro até 24 horas após o óbito. Armazenar em frasco plástico estéril com tampa de rosca resistente a temperatura ultra baixa. Capacidade 15mL. Colocar o fragmento de cérebro em frasco separado dos demais fragmentos


Conservar em freezer a -70ºC e transportar em gelo seco, ou colocar em saco plástico individualizado dentro de uma canaleta identificada no botijão de nitrogênio líquido


Ficha de investigação SINAN+ Requisição médica + Cadastro GAL



Método Inoculação em células C6/C36.


Tempo de Resultado


48

CAXUMBA

Preparo do Paciente

Não é necessário preparo.

Amostra 2 mL de soro.


Conservar a amostra à temperatura de 2 a 8°C. Transportar em estantes dentro de caixa térmica à temperatura de 2 a 8°C, nestas condições a amostra é viável por até 48 horas, após esse período conservar em temperatura a -20°C, por até 07 dias.


Ficha de Requisição do Gal + Requisição médica + Cadastro GAL



Método Ensaio Imunoenzimático (IgM).


Tempo de Resultado

15 dias consecutivos após a entrada no LACEN.

CHIKUNGUNYA - IGM

Preparo do Paciente

Não necessita preparo.

Amostra 2mL de soro, coletar a partir do 7º dia após início dos sintomas.


Tubo plástico estéril sem anticoagulante ou aditivos; Até 2 semanas refrigerar a 2-8ºC, após congelar a -20 ou -70ºC; Transportar em caixa de transporte de amostra biológica com gelo reciclável ou seco, dependendo do período de conservação.


Ficha de Investigação Dengue e Febre de Chikungunya (SINAN) + Requisição médica + Cadastro no GAL.


Imprescindível: data dos primeiros sintomas, data da coleta, informações demográficas, clínicas e epidemiológicas dos pacientes.



Tempo de Resultado


49

CHIKUNGUNYA – RT-PCR

Preparo do Paciente


Amostra 2 mL de soro, coletado entre o 1° e o 5º dia após início dos sintomas.


Tubo plástico estéril sem anticoagulante ou aditivos (soro); Até 2 semanas refrigerar 2-8ºC após congelar -20 ou -70ºC; Transportar em caixa de transporte de amostra biológica com gelo reciclável. Conservar a amostra à temperatura de -20°C.





Método RT-PCR em tempo real.


Tempo de Resultado


DENGUE - IGM

Preparo do Paciente




Tubo plástico estéril sem anticoagulante ou aditivos; Até 2 semanas refrigerar a 2-8ºC após congelar a -20ºC; Transportar em caixa de transporte de amostra biológica com gelo reciclável ou seco, dependendo do período de conservação.







Tempo de Resultado


50

DENGUE – RT-PCR

Preparo do Paciente


Amostra 2 mL de soro, coletado entre o 1° e o 5º dia dos primeiros sintomas da doença.









Tempo de Resultado


DOENÇAS PRIÔNICAS (COM ENFOQUE NA DOENÇA DE CREUTZFELDT JACOB – DCJ)

Preparo do Paciente


Amostra Líquor: 2 mL em tubo estéril. Sangue: 5mL de sangue total em tubo com anticoagulante ( EDTA).


Líquor: Conservar a amostra em temperatura entre 2 a 8°C. Transportar em estantes dentro de caixa térmica com gelo reciclável, por no máximo 24 horas. Sangue: Conservar a amostra em temperatura de 2 a 8ºC. Transportar em estantes dentro de caixa térmica com gelo reciclável, por no máximo 24 horas.


Laudo do médico (neurologista ou infectologista) + Requisição médica + Ficha epidemiológica + Cadastro GAL.


Diante de um caso suspeito a Vigilância Epidemiológica/Hospital deve providenciar Documentação Obrigatória necessária e contato com o LACEN para que haja programação de dia e horário para realizar coleta das amostras e entrega das mesmas ao Laboratório Central. Enviado pelo LACEN para ser realizado no Laboratório de Referência – Laboratório de Investigações em Neurologia – USP/SP e Centro Internacional de Pesquisa e Ensino do Hospital A. C. Camargo - SP

Método Líquor: Imunoblot Pesquisa de Proteína 14-3-3 LIM Sangue:Pesquisa de polimorfismos e/ou mutações do gene de príon celular PRNP.


Tempo de Resultado


51

EPSTEIN - BARR

Preparo do Paciente




Conservar a amostra à temperatura de 2 a 8°C. Transportar em estantes dentro de caixa térmica à temperatura de 2 a 8°C, nestas condições a amostra é viável em até 48 horas, após esse período conservar em temperatura a -20°C, por até 07 dias..







Tempo de Resultado


FEBRE AMARELA - IGM

Preparo do Paciente






Ficha de Investigação Febre Amarela (SINAN) + Requisição médica + Cadastro no GAL.





Tempo de Resultado


52

FEBRE AMARELA – RT-PCR

Preparo do Paciente


Amostra 2mL de soro, coletar entre o 1° e o 5° dia após início dos sintomas.


Conservar a amostra à temperatura de -20°C. Transportar em estantes dentro de caixa térmica à temperatura a -20ºC, nestas condições a amostra é viável em até 24horas, após esse período conservar à temperatura a -70°C ou em botijão de nitrogênio líquido, por até 07 dias.


Ficha de Investigação Febre Amarela (SINAN) + Requisição médica + Cadastro no GAL.



Método Inoculação em células C6/C36 ou RT-PCR em tempo real.


Tempo de Resultado


HANTAVÍRUS

Preparo do Paciente


Amostra coletar 2mL de soro, a partir do 7º dia após início dos sintomas.




Ficha de investigação SINAN+ Requisição médica+ Cadastro GAL



Método Ensaio Imunoenzimático (IgM / IgG).


Tempo de Resultado


53

HERPES VÍRUS 6

Preparo do Paciente




Conservar em temperatura entre 2 a 8ºC. Transportar em estantes dentro de caixa térmica com temperatura de 2 a 8ºC, nestas condições a amostra é viável por até 48 horas, após esse período conservar a -20ºC.





Método Ensaio imunoenzimático (IgM)


Tempo de Resultado


HERPES VÍRUS (1 E 2)

Preparo do Paciente


Amostra LCR (líquor) ou Swab das lesões (cutâneas ou mucosas),em meio PBS 7,2 com antibiótico.







Método PCR - Reação em Cadeia de Polimerase

Interferências Swab fora do meio de transporte.

Tempo de Resultado


54

HTLV I E II

Preparo do Paciente









Método Ensaio imunoenzimático (IgM)


Tempo de Resultado


INFLUENZA (SÍNDROME RESPIRATÓRIA AGUDA GRAVE - SRAG)

Preparo do Paciente


Amostra Aspirado de nasofaringe (ANF) ou swab combinado (nasal/oral), coletar até o 7º dia do início dos sintomas (fase aguda da doença). Em meio de transporte viral (Hanks).


Conservar à temperatura de 4 - 8º C. Transportar em caixa térmica à temperatura de 4 - 8ºC em até 24h após coleta.


Ficha de investigação SINAN (Síndrome Respiratória Aguda Grave) + Requisição médica + Cadastro GAL.


Para os casos graves em unidade de terapia intensiva (UTI) e óbitos, a coleta deve ser realizada independente do dia de início dos sintomas. Imprescindível: data dos primeiros sintomas, data da coleta, informações demográficas, clínicas e epidemiológicas dos pacientes.


Interferências Contaminação do meio de transporte viral, temperatura fora do recomendado, coleta fora do período oportuno e depois da administração do antiviral (Oseltamivir).

Tempo de Resultado


55

OROPOUCHE

Preparo do Paciente


Amostra coletar 2mL de soro, a partir do 7º dia após início dos sintomas.




Ficha SINAN (Notificação/Conclusão) + Requisição médica + Cadastro no GAL.





Tempo de Resultado


PARVOVÍRUS B 19

Preparo do Paciente


Amostra 2 mL de soro, coletar entre o 1º e o 28º dia após o início do exantema.


Conservar a amostra à temperatura de 2 a 8°C.. Transportar em estantes dentro de caixa térmica em temperatura de 2 a 8°C, nestas condições a amostra é viável até 48 horas, após esse períodoconservar à temperatura de -20°C por até 07 dias.


Ficha SINAN (Notificação/Conclusão) +Requisição médica+ Cadastro no GAL.



Método Ensaio Imunoenzimático (IgM/IgG).


Tempo de Resultado


56

PESQUISA DE VÍRUS RESPIRATÓRIOS - SÍNDROME GRIPAL

Preparo do Paciente

Não necessita preparo

Amostra Secreção de nasofaringe e orofaringe por aspirado ou swab combinado, coletar até o 5º dia do início dos sintomas (fase aguda da doença). Em meio de transporte viral (Hanks).


Conservar à temperatura de 4ºC a 8º C. Transportar em caixa térmica à temperatura de 4ºC a 8ºC em até 24h após coleta.


Ficha de Síndrome Gripal (SIVEP Gripe) + Ficha clínico laboratorial, em duas vias + Requisição médica + Cadastro no GAL.


Exame demandado para o LACEN-PA exclusivamente por unidades sentinelas da gripe. Imprescindível: data dos primeiros sintomas, data da coleta, informações demográficas, clínicas e epidemiológicas dos pacientes.

Método Imunofluorescência indireta.

Interferências Contaminação do meio de transporte viral, temperatura fora do recomendado, coleta fora do período oportuno e uso de antiviral (Oseltamivir).

Tempo de Resultado

08 dias corridos após entrada no LACEN.

POLIOVÍRUS

Preparo do Paciente


Amostra

8g de fezes ou 2/3 da capacidade do coletor de fezes universal com tampa rosqueável, a partir do 1º dia do início da deficiência motora (fase aguda) até o 14º dia. Caso o paciente não evacue em 24 horas pode ser feita a coleta com swab retal, acondicionando em coletor universal.


Conservar a amostra à temperatura entre 2º e 8ºC. Transportar em caixa térmica com temperatura entre 2º e 8ºC, nestas condições a amostra é viável por até 2 dias, após esse período, conservar à temperatura entre - 20ºC.


Ficha de investigação SINAN (Paralisia Flácida Aguda) + Requisição médica + Cadastro GAL.



Método Inoculação em células e PCR


Tempo de Resultado


57

ROTAVÍRUS

Preparo do Paciente


Amostra

5 a 10 mL de fezes líquidas ou 5g (1 colher de chá) de fezes sólidas ou aproximadamente 2/3 do coletor universal com tampa rosqueada, coletar na fase aguda entre o 1º ao 5º dia após o início dos sintomas, encaminhar em até 48 horas. Fraldas Fezes sólidas: coletar com espátula e colocar em frasco coletor Fezes líquidas: utilizar compressa cirúrgica entre a fralda e a criança e após o episódio de diarreia, coletar a gaze, colocar em coletor universal. Em caso de óbito, a coleta pode ser feita com swab retal em meio Cary-Blair ou em água peptonada alcalina.


Transportar em caixa térmica à temperatura ambiente ou 4º a 8°C por até 48h, após esse período transportar as amostras à temperatura de -20°C para todos os tipos de amostra.


Ficha de investigação SINAN + Requisição médica + Cadastro GAL.



Método Ensaio Imunoenzimático.


Tempo de Resultado


RAIVA HUMANA ANTICORPOS ANTIRRÁBICOS

Preparo do Paciente


Amostra 2 mL de soro, coletado 10 a 14 dias após a última dose da vacinação ou após administração do reforço.


Conservar a amostra à temperatura de 2 a 8°C. Transportar em estantes dentro de caixa térmica à temperatura de 2 a 8°C, nestas condições a amostra é viável em até48 horas, após esse períodoconservar em temperatura a -20°C, por até 07 dias.


REQUISIÇÃO DE SOROLOGIA PARA RAIVA DE AMOSTRA HUMANA + Requisição médica + Cadastro GAL.


Enviado pelo LACEN para ser realizado no Laboratório de Referência – Instituto Pasteur - SP

Método Titulação de Anticorpos Neutralizantes.


Tempo de Resultado


58

ZIKA VÍRUS – RT-PCR

Preparo do Paciente


Amostra 2 mL de soro, coletado entre o 1° e o 5º dia dos primeiros sintomas da doença.




Ficha SINAN (Notificação/Conclusão) +Requisição médica+ Cadastro no GAL.





Tempo de Resultado


ZIKA VÍRUS – MONITORAMENTO DAS ALTERAÇÕES DO CRESCIMENTO E DESENVOLVIMENTO – MS 1ª

VERSÃO

Recém-nascido até 8º dia de vida (RT-PCR em tempo real)

Preparo do Paciente


Amostra 2mL de soro, coletar nas primeiras 48h após nascimento, preferencialmente. 5mL de urina, coletar nas primeiras 48h após nascimento, preferencialmente.


Tubo plástico estéril sem anticoagulante ou aditivos (soro); Tubo plástico com tampa de rosca e anel de vedação (urina); Até 2 semanas refrigerar 2-8ºC após congelar -20 ou -70ºC; Transportar em caixa de transporte de amostra biológica com gelo reciclável.


Ficha SINAN (Notificação/Conclusão) +Requisição médica+ Cadastro no GAL





Tempo de Resultado


59


VERSÃO

Recém-nascido até 8º dia de vida (Ensaio Imunoenzimático - IgM)

Preparo do Paciente


Amostra 2mL de soro, coletar nas primeiras 48h após nascimento, preferencialmente.


Tubo plástico estéril sem anticoagulante ou aditivos (soro); Até 2 semanas refrigerar 2-8ºC após congelar -20 ou -70ºC; Transportar em caixa de transporte de amostra biológica com gelo reciclável.


Ficha SINAN (Notificação/Conclusão) + Requisição médica + Cadastro no GAL





Tempo de Resultado



VERSÃO

Recém-nascido após 8º dia de vida até 3 anos de idade (RT-PCR em tempo real)

Preparo do Paciente


Amostra 2mL de soro, coletar até o 5º dia após início dos sintomas; 5mL de urina, coletar até o 14º dia após início dos sintomas, preferencialmente.









Tempo de Resultado


60


VERSÃO

Recém-nascido após 8º dia de vida até 3 anos de idade (Ensaio Imunoenzimático - IgM)

Preparo do Paciente




Tubo plástico estéril sem anticoagulante ou aditivos; Até 2 semanas refrigerar 2-8ºC após congelar -20 ou -70ºC; Transportar em caixa de transporte de amostra biológica com gelo reciclável.







Tempo de Resultado



VERSÃO

Gestantes em qualquer período gestacional (RT-PCR em tempo real)

Preparo do Paciente











Tempo de Resultado


61


VERSÃO

Gestantes em qualquer período gestacional (Ensaio Imunoenzimático - IgM)

Preparo do Paciente




Tubo plástico estéril sem anticoagulante ou aditivos; Até 2 semanas refrigerar a 2-8ºC após congelar a -20 ou -70ºC; Transportar em caixa de transporte de amostra biológica com gelo reciclável ou seco, dependendo do período de conservação.







Tempo de Resultado



VERSÃO

Síndromes neurológicas agudas (RT-PCR em tempo real)

Preparo do Paciente











Tempo de Resultado


62


VERSÃO

Síndromes neurológicas agudas (Ensaio Imunoenzimático - IgM)

Preparo do Paciente




Tubo plástico estéril sem anticoagulante ou aditivos; Até 2 semanas refrigerar a 2-8ºC após congelar a -20 ou -70ºC; Transportar em caixa de transporte de amostra biológica com gelo reciclável ou seco, dependendo do período de conservação.







Tempo de Resultado


HEPATITES VIRAIS - SOROLOGIA (ANTI-HAV IGM, ANTI-HBS, ANTI-HBC, ANTI-HBC IGM, ANTI-HBE, HBEAG, ANTI-HCV, ANTI-HDV)

Preparo do Paciente

Necessita jejum de 4h.



Conservar a amostra à temperatura de 2ºC a 8°C. Transportar em estantes dentro de caixa térmica à temperatura de 2ºC a 8°C, nestas condições a amostra é viável por até 3 dias, após esse período conservar à temperatura entre -20°C e -70°C.




Enviar somente o SORO, em tubos, sem gel separador e sem anticoagulante.

Método Eletroquimioluminescência e Ensaio imunoenzimático - ELISA.

Interferências Amostras com lipemia ou com hemólise, amostras não centrifugadas e amostras acondicionadas de forma inadequada.

Tempo de Resultado


63

HEPATITE B (PCR QUANTITATIVO)

Preparo do Paciente

Necessita de, no mínimo, jejum de 4h.

Amostra

2 tubos de polipropileno estéril rosqueável com 2ml de plasma com EDTA em cada tubo. NOTA: para a obtenção do plasma, centrifugar a 1500 RPM por 20 minutos dentro de 4h após a coleta.


Conservar em temperatura de 2ºC a 8ºC. Transportar em estantes dentro de caixa térmica com temperatura de 2ºC a 8ºC, nestas condições a amostra é viável por até 72h.


Ficha de investigação SINAN + Requisição médica + Cadastro no GAL + Formulário BPA-I específico.


As amostras não devem ser congeladas após a coleta. As amostras devem ser coletadas em tubos com EDTA.

Método Reação Transversa da Reação em Cadeia da Polimerase em Tempo Real- RT PCR.

Interferências Amostras com lipemia ou com hemólise, amostras não centrifugadas e amostras acondicionadas de forma inadequada

Tempo de Resultado


HEPATITE C (PCR QUANTITATIVO E GENOTIPAGEM)

Preparo do Paciente

Necessita de jejum de 8h.

Amostra

2 tubos de polipropileno estéril rosqueável com 2mL de plasma em cada tubo. Nota: para obtenção do plasma, centrifugar a 1500 rpm por 20 min dentro de 4 horas após a coleta.


Conservar o plasma em temperatura 15ºC a 30°C por até 24 horas ou entre 2ºC a 8°C por até 72 horas ou a -70°C por período prolongado. Transportar em estantes dentro de caixas térmica com temperatura entre 2ºC a 8°C, nestas condições a amostra é viável por até 72 horas.


Ficha de investigação SINAN + Requisição médica + Cadastro no GAL + Formulário BPA-I específico.


As amostras devem ser coletadas em tubos com EDTA. Evitar múltiplos ciclos de congelamento/descongelamento. Amostras de Genotipagem enviadas pelo Lacen para serem realizados em São Paulo pelo Centro de Análise e Triagem de Genoma Ltda - CATG.

Método Reação Transversa da Reação em Cadeia da Polimerase em Tempo Real- RT PCR.

Interferências Amostras com lipemia ou com hemólise, amostras não centrifugadas e amostras acondicionadas de forma inadequada.

Tempo de Resultado


64

HIV - SOROLOGIA

Preparo do Paciente


Amostra 8,5ml de sangue total em tubo a vácuo com gel separador.


Conservar temperatura de 2ºC a 8°C por até 5h, após esse período conservar em temperatura a -20ºC. Transportar em estantes dentro de caixa térmica com temperatura de 2ºC a 8°C por até 5h e após esse período transportar a -20ºC.


Ficha epidemiológica SINAN + Ficha para HIV + Requisição médica + Cadastro no GAL ou SOFT LAB


Não se aplica

Método Quimioluminescência.


Tempo de Resultado


HIV - CONFIRMATÓRIO

Preparo do Paciente


Amostra 8,5ml de sangue total em tubos a vácuo com gel separador.


Conservar temperatura de 2ºC a 8°C por até 5h, após esse período conservar em temperatura a -20ºC. Transportar em estantes dentro de caixa térmica com temperatura de 2ºC a 8°C por até 5h e após esse período transportar a -20ºC.


Ficha epidemiológica SINAN+ Requisição médica + Cadastro no GAL ou SOFT LAB


Não se aplica

Método Imunoblot rápido dpp HIV ½ e Western blot.

Interferências Amostras com hemólise, amostras não centrifugadas e amostras acondicionadas de forma inadequada

Tempo de Resultado


65

HIV – CONTAGEM DE LINFÓCITOS T CD4/CD8

Preparo do Paciente

Não necessita jejum

Amostra 5ml de sangue total em tubo com EDTA.


Conservar a amostra à temperatura ambiente entre 20ºC a 25oC. Transportar em estantes dentro de caixa térmica em temperatura ambiente entre 20ºC a 25oC por até 24h. Transportar separadamente de amostras refrigeradas.


BPA-I com preenchimento completo CNS, CPF e CEP.


Transportar separadamente de amostras refrigeradas.

Método Citometria de fluxo: anticorpos monoclonais para CD4 e CD8.

Interferências Amostras com hemólise ou com coágulos, amostras acondicionadas de forma inadequada e amostras colhidas há mais de 24 horas, amostras com volume insuficiente em relação ao EDTA.

Tempo de Resultado


HIV – GENOTIPAGEM

Preparo do Paciente


Amostra 2 tubos com 5ml de plasma cada


Conservar em temperatura 15°C a 30°C por até 24h ou entre 2ºC a 8°C por até 05 dias (PLASMA) ou a -70°C por período prolongado. Transportar em estantes dentro de caixa térmica com temperatura 15°C a 30°C por até 24h ou entre 2°C a 8° C por até 05 dias ou a -70°C por período prolongado.


BPA-I para Carga Viral com preenchimento completo CNS, CPF e CEP + Formulário A para Genotipagem (MS)


Transportar separadamente de amostras refrigeradas. Enviado pelo LACEN para ser realizado no Laboratório de Referência – Fundação de Medicina Tropical Dr. Heitor Vieira Dourado – Manaus/AM.

Método Sequenciamento.

Interferências Amostras com hemólise, amostra em tubos com gel ou tubos reciclados, amostras com volume insuficiente em relação ao EDTA.

Tempo de Resultado


66

HIV – QUANTIFICAÇÃO DE CARGA VIRAL

Preparo do Paciente


Amostra 1 tubo com 5ml de sangue total ou plasma.


Conservar em temperatura 15°C a 30°C por até 24h ou no caso de plasma entre 2ºC a 8°C por até 05 dias ou a -70°C por período prolongado. Transportar em estantes dentro de caixa térmica com temperatura 15°C a 30°C por até 24h ou entre 2°C a 8° C por até 05 dias ou a -70°C por período prolongado.


BPA-I para Carga Viral com preenchimento completo CNS, CPF e CEP


Sempre que possível separar o plasma imediatamente após a coleta, principalmente municípios distantes do local da realização do exame.

Método PCR em Tempo Real.

Interferências Amostras hemolisadas e lipêmicas e temperatura fora da recomendada.

Tempo de Resultado


RUBÉOLA

Preparo do Paciente

Não necessita de preparo, a amostra de sangue deve ser coletada para sorologia no primeiro contato com o paciente.

Amostra 3 -5ml de soro, coletar entre o 5º e o 28º dia após o início do exantema.


Conservar a amostra à temperatura entre 4ºC e 8°C. Transportar em estantes dentro de caixa térmica com temperatura entre 4ºC e 8°C, nestas condições a amostra é viável por até 48h caso não possa ser enviado neste prazo, conserva-lo no freezer em temperatura de -20 °C até o momento do transporte.


Ficha de investigação SINAN ou Ficha de Síndrome rubéola congênita + Requisição médica + Cadastro no GAL.


Para o exame de Rubéola IgM, caso o resultado seja positivo ou inconclusivo, faz-se necessária uma segunda coleta após duas a três semanas da primeira coleta.

Método Ensaio Imunoenzimático – ELISA (IgG e IgM).

Interferências Amostras com hemólise ou lipemia, amostras não centrifugadas e amostras acondicionadas de forma inadequada

Tempo de Resultado


67

RUBÉOLA – ISOLAMENTO VIRAL

Preparo do Paciente

Não necessita preparo

Amostra

Coletar até o 5° dia a partir do aparecimento do exantema, preferencialmente nos primeiros três dias. Urina: 15 a 100ml de preferência a 1° urina em frasco estéril. Sangue total: 4 a 10ml de sangue total venoso em tubo com EDTA; em crianças muito pequenas colher no mínimo 3ml. Secreções Nasofaríngeas: 3 amostras com swab, uma amostra de cada narina e uma da garganta em um tubo contendo 3ml do meio fornecido pelo LACEN-PA (Hanks).


Conservar em temperatura ambiente ou entre 4ºC e 8°C dentro de 24h. Transportar em estantes dentro de caixa térmica com temperatura entre 4ºC e 8°C em até 24h. Nota: Não congelar o material.


Ficha de investigação SINAN/Ficha rubéola congênita + Requisição médica + Cadastro no GAL


Enviado pelo LACEN para ser realizado no Laboratório de Referência – Fundação Oswaldo Cruz (FIOCRUZ) – RJ.



Tempo de Resultado

30 dias corridos após entrada no LACEN

SARAMPO – IGG E IGM

Preparo do Paciente

Não necessita de preparo, a amostra de sangue deve ser coletada para sorologia no primeiro contato com o paciente.

Amostra 3 a 5ml de soro, coletar entre o 5º e o 28º dia após o início do exantema.


Conservar a amostra à temperatura entre 4ºC e 8°C. Transportar em estantes dentro de caixa térmica com temperatura entre 4ºC e 8°C, nestas condições a amostra é viável por até 48h caso não possa ser enviado neste prazo, conserva-lo no freezer em temperatura de -20 °C até o momento do transporte.




Para o exame de Sarampo IgM, caso o resultado seja positivo ou inconclusivo, faz-se necessária uma segunda coleta após duas a três semanas da primeira coleta.

Método Ensaio Imunoenzimático - ELISA.

Interferências Amostras com hemólise ou lipemia, amostras não centrifugadas e amostras acondicionadas de forma inadequada.

Tempo de Resultado


68

SARAMPO – ISOLAMENTO VIRAL

Preparo do Paciente


Amostra

Coletar até o 5° dia do aparecimento do exantema, preferencialmente nos primeiros três dias. Urina: 15 a 100ml de preferência a 1° urina em frasco estéril. Sangue total: 4 a 10ml de sangue total venoso em tubo com EDTA; em crianças muito pequenas colher no mínimo 3ml. Secreções Nasofaríngeas: 3 amostras com swab, uma amostra de cada narina e uma da garganta em um tubo contendo 3ml do meio fornecido pelo LACEN-PA (Hanks).


Conservar em temperatura ambiente ou entre 4ºC e 8°C dentro de 24h. Transportar em estantes dentro de caixa térmica com temperatura entre 4ºC e 8°C em até 24h. Nota: Não congelar o material.




Enviado pelo LACEN para ser realizado no Laboratório de Referência – Fundação Oswaldo Cruz (FIOCRUZ) – RJ.



Tempo de Resultado


69

ANEXOS

ANEXO A

70

ANEXO B

71

ANEXO C

72

ANEXO D

73

ANEXO E

74

ANEXO F

75

ANEXO G

77

REFERÊNCIAS

Brasil. Agência Nacional de Vigilância Sanitária. Manual de Microbiologia Clínica para o Controle de Infecção Relacionada à Assistência à Saúde. Módulo 8: Detecção e identificação de fungos de importância médica. Brasília: Anvisa, 2013.47p.: il.9 volumes.

Brasil. Agência Nacional de Vigilância Sanitária. Microbiologia Clínica para o Controle de Infecção Relacionada a Assistência à Saúde. Modulo 6: Detecção e identificação de bactérias de importância medica. Brasília, 2013.150p.: il.9 volumes.

Brasil. Agência Nacional de Vigilância Sanitária. Microbiologia Clínica para o Controle de Infecção Relacionada a Assistência à Saúde. Modulo 1: principais síndromes infecciosas. Brasília: Anvisa, 2013. 150p.: il.9 volumes.

Brasil. Agência Nacional de Vigilância Sanitária. Programa Nacional de Controle de Infecção Hospitalar. Manual de procedimentos básicos em microbiologia clínica para o controle de infecção hospitalar: Módulo I, Brasília, 2000.

Brasil. Agência Nacional de Vigilância Sanitária. Resolução de Diretoria Colegiada – RDC nº 306, de 07 de dezembro de 2004.

Brasil. Ministério da Saúde, Secretaria de Vigilância em Saúde, Departamento de Vigilância Epidemiológica. Guia de vigilância epidemiológica, Brasília, 7ª ed. Ministério da Saúde, 2009. Caderno 6, Hepatites virais.

Brasil. Ministério da Saúde, Secretaria de Vigilância em Saúde, Departamento de Vigilância Epidemiológica. Manual Nacional de Vigilância Laboratorial da Tuberculose e outras Micobactérias, Brasília, 2008.

Brasil. Ministério da Saúde, Secretaria de Vigilância em Saúde, Departamento de Vigilância das Doenças Transmissíveis. Protocolo de tratamento de Influenza, Brasília, 2014.

Brasil. Ministério da Saúde, Secretaria de Vigilância em Saúde, Diretoria Técnica de Gestão. Dengue: Diagnóstico e manejo clínico – adulto e criança, 4ª ed., Brasília, 2013.

Brasil. Ministério da Saúde, Secretaria de Vigilância em Saúde, Departamento de Vigilância Epidemiológica. Diretrizes nacionais para prevenção e controle de epidemias de dengue, Brasília, 2009.

Brasil. Ministério da Saúde, Secretaria de Vigilância em Saúde. Guia de Vigilância em Saúde, Brasília, 2014.

Brasil. Ministério da Saúde, Secretaria de Vigilância em Saúde. Manual de Vigilância Epidemiológica das Doenças Exantemáticas – Sarampo, Rubéola e Síndrome da Rubéola Congênita (SRC), Brasília, 2013.

Brasil. Ministério da Saúde. Caderno 13 – Atenção básica.

Brasil. Ministério da Saúde. Manual de Gestão da Qualidade para laboratório de citopatologia.

Brasil. Ministério da Saúde. Manual técnico para diagnóstico da infecção pelo HIV, Brasília, 2013.

Brasil. Ministério da Saúde. Portaria nº 204, de 17 de fevereiro de 2016.

Brasil. Ministério da Saúde. Portaria nº 334, de 08 de junho de 2007.

Brasil. Ministério da Saúde. Secretaria de Políticas de Saúde. Programa Nacional de DST e Aids. Manual de Controle das doenças sexualmente transmissíveis DST. Coordenação nacional de DST/aids 3ª edição – 1999.

Brasil. Ministério da Saúde. Secretaria de Políticas de Saúde Programa Nacional de DST e Aids Programa Nacional de Doenças Sexualmente Transmissíveis. Técnica para coleta de secreções. 2. ed. Brasília, 2001.

Brasil. Ministério da Saúde. Secretaria de Vigilância em Saúde. Departamento de Vigilância Epidemiológica. Guia de procedimentos técnicos: baciloscopia em

78

hanseníase. Brasília: Editora do Ministério da Saúde, 2010. 54 p.: il. – (Série A. Normas e Manuais Técnicos)

Brasil. Ministério da Saúde. Secretaria de Vigilância em Saúde. Departamento de Vigilância das Doenças Transmissíveis. Leptospirose: diagnóstico e manejo clínico. Brasília: Ministério da Saúde, 2014. 44 p.: il.

Brasil. Ministério da Saúde. Secretaria Nacional de Assistência à Saúde. Programa Nacional de Controle de Doenças Sexualmente Transmissíveis/Aids. Manual para controle das doenças sexualmente transmissíveis. Brasília, 1993.

http://www.blogdasaude.com.br/saude-fisica/2012/03/02/estao-higienizando-as-maos-corretamente/, acessado em 11/12/2015 às 13:40h.

http://www.sbpc.org.br/upload/conteudo/320090814145042.pdf, acessado em 08/12/2015 às 09:05h.

Norma Regulamentadora 06 - Equipamento de Proteção Individual - EPI de 08 de junho de 1978.

Sociedade Brasileira de Patologia Clínica Medicina Laboratorial para Coleta de Sangue Venoso, 2º ed., São Paulo, 2010.

Sociedade Brasileira de Patologia Clínica Medicina Laboratorial. Gestão da Fase Pré Analítica, 2010.

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http://www.sbpc.org.br/upload/conteudo/320090814145042.pdf

manual de orientaÇÃo para coleta, … de... · manual de orientaÇÃo para coleta,...

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