COLETA E TRANSPORTE DE

AMOSTRAS BIOLÓGICAS

Dra Maria Salete Sartori

Biomédica / Bióloga

Supervisora técnica da STLAC

Mestrado em Metabolismo e Nutrição

Seção Técnica de Laboratório de Análises Clínicas - HC – UNESP

- Realiza cerca de 180.000 exames / mês;

- Tecnologia de ponta na realização dos

exames;

- Exames de simples à sofisticados

- Possui sistema de informatização para

cadastro “on line” e consulta de

resultados;

Resultado

Fase Analítica

Fase Pós-Analítica

Fase Pré-Analítica

Coleta Transporte

Pré-Analítica

Analítica

Pós-Analítca

Freqüência (%)

68,2

13,3

18,5

1997

-

-

70

2005

93

-

-

2006

61,9

15,0

23,1

2007

Freqüencia dos erros

nos resultados laboratoriais

Instalações e Estrutura física do Local de

Coleta

ÁREA FÍSICA DA SALA DE COLETA

• Infra-estrutura – Pisos e paredes impermeáveis, laváveis e

resistentes a desinfetantes;

– Dispositivos de ventilação ambiental eficazes;

– Iluminação;

– Janelas com telas;

– Portas e corredores;

• Equipamentos e acessórios – Cadeira ou poltrona / apoio de braço;

– Armários fixos ou móveis auxiliares.

• Solicitação Médica

• Cadastramento no sistema

• Etiquetagem do material

• Confirmação do paciente

• Horário da coleta

Pré Coleta do Espécime Diagnóstico

Coleta de Sangue

Coleta do Espécime Diagnóstico

Colete de Sangue

• Material utilizado

• Posição do paciente • Sítio de punção

• Assepsia

• Garroteamento

• Seqüência dos tubos

• Homogeneização

Coleta de Sangue a Vácuo ou com

Agulha e Seringa

• Sangue capilar Pouco volume de sangue;

– Punção de calcanhar em crianças;

– Lobo da orelha ou polpa digital em adultos;

– Usado na dosagem de hemoglobina, glicotestes e teste do pezinho;

• Venosa – Veia mediana

– Jugular externa

– Dorso da mão e do pé

• Arterial – Artéria radial

– Artéria femoral

(Avaliação gasométrica em seringa com heparina)

Coleta do Espécime Diagnóstico

Colete de Sangue

• Material utilizado

• Posição do paciente • Sítio de punção

• Assepsia

• Garroteamento

• Seqüência dos tubos

• Homogeneização

Posição do Paciente

Coleta do Espécime Diagnóstico

Colete de Sangue

• Material utilizado

• Posição do paciente • Sítio de punção

• Assepsia

• Garroteamento

• Seqüência dos tubos

• Homogeneização

Locais de Escolha para Venopunção

Coleta do Espécime Diagnóstico

Colete de Sangue

• Material utilizado

• Posição do paciente • Sítio de punção

• Assepsia

• Garroteamento

• Seqüência dos tubos

• Homogeneização

?

Antissepsia

Coleta do Espécime Diagnóstico

Colete de Sangue

• Material utilizado

• Posição do paciente • Sítio de punção

• Assepsia

• Garroteamento

• Seqüência dos tubos

• Homogeneização

• Aplicar 8 cm acima do sítio de punção

• Não ultrapassar 1 minuto sendo ideal 30 segundos

• Soltar o garrote no momento da punção

Garroteamento

Coleta do Espécime Diagnóstico

Colete de Sangue

• Material utilizado

• Posição do paciente • Sítio de punção

• Assepsia

• Garroteamento

• Seqüência dos tubos

• Homogeneização

Seqüência de Tubos

Coleta do Espécime Diagnóstico

Colete de Sangue

• Material utilizado

• Posição do paciente • Sítio de punção

• Assepsia

• Garroteamento

• Seqüência dos tubos

• Homogeneização

Homogeneização do

Espécime Diagnóstico

Após Coleta

Tabela de Tubos de Coleta de Sangue – Laboratório Clínico– HCFMB–Botucatu – SP

ÁREA EXAME TUBO COR DA ROLHA OBSERVAÇÃO

BIOQUÍMICA

Todos (Rotina e

Urgência)

Adulto: 5,0 ml seco com

gel

Tampa vermelha

ou amarela

Criança: 2,5 ml seco

com gel

Tampa vermelha

ou amarela

ENCOCRINOLOGIA

Todos

5,0 ml seco com gel –

até 3 exames

Tampa vermelha

ou amarela com

gel separador

6,0 ml seco com gel –

acima de 4 exames

PTH 5,0 ml seco com gel ou

sem gel

TSH/T4 – RN Tubo seco com gel: 2,0

ml

HEMATOLOGIA

Hemograma Completo

(Rotina e Urgência)

Adulto: 3,0 ml – tubo

com EDTA

Tampa roxa Criança: 2,0 ml tubo com

EDTA

ERROS MAIS

COMUNS NA

COLETA DE

SANGUE

Erros Mais Comuns na Coleta de Sangue

• Não desprezar a primeira gota de sangue na punção

digital;

• Demorar garroteamento durante a coleta;

• Não atingir a veia logo à primeira “picada”;

• Usar agulhas de calibre muito fino ou muito grosso;

• Aspirar o sangue violentamente (agulha / seringa)

•TRANSFERIR O SANGUE DA SERINGA SEM RETIRAR A AGULHA;

Erros Mais Comuns na Coleta de Sangue

• Agitar violentamente o sangue para misturá-lo ao

anticoagulante;

• Demora em transferir o sangue para o tubo com ou

sem anticoagulante (agulha / seringa),

• Puncionar veias onde esteja ligado soro ou

qualquer outro medicamento,

• “Vácuo do tubo”

Erros na Coleta de Sangue

Áreas a Evitar Venopunção

• Áreas com terapia ou hidratação

• Locais com cicatrizes de queimaduras

• Membro superior próximo ao local de mastectomia,

cateterismo ou qualquer outro procedimento

cirúrgico

• Áreas com hematomas

• Fístulas artério-venosas

• Veias que já sofreram trombose

Transporte e Conservação

• Tubos de sangue colocados em estantes próprias;

• Maletas rígidas apropriadas para acondicionamento

e transporte com gelo reciclável;

• Em princípio todo material coletado deve ser

enviado imediatamente ao laboratório clínico;

(Demora de até 60 minutos é aceitável)

Coletas de Urinas

Coleta de Urina I

Orientação da coleta:

☺Higiene dos genitais externos;

☺Utilizar frasco adequado e identificados;

☺Volume mínimo de 10 ml.(pediatria)

Coleta de Cultura de Urina

Orientação da coleta:

• Higiene com assepsia dos genitais externos;

• Utilizar frasco esterilizado adequado e

identificados;

• Coletor pediátrico (máximo 40 min);

• Volume mínimo de 10 ml.

Transporte e Armazenamento

☺ “Enviar imediatamente ao laboratório”;

☺ Manter em local fresco por no máximo 2 hs;

☺ Transporte > que 2 hs conservar em geladeira;

☺ Transportar em maletas rígidas apropriadas com gelo

reciclável;

☺ Evitar vazamentos colocando cada copo coletor

dentro de saco plástico.

Coleta de Urina 24hs / 12hs

• Utilizar garrafa de água mineral sem gás e sem

sabor como recipiente coletor (identificar);

• Início da coleta = Desprezar a primeira urina da

manhã e marcar horário;

• Coletar todas as demais urinas no decorrer do

período de 24hs;

• Orientar para antes de defecar ou tomar banho;

• Realizar a última coleta no dia seguinte no mesmo

horário que iniciou.

Coleta de Fezes

Coleta de Fezes

Parasitológico:

☼ Orientar o paciente para que defeque em recipiente limpo e seco;

☼ Retirar uma amostra de fezes (10 gramas) em cada uma das 3 evacuações em dias alternados;

☼ Conservar em temperatura ambiente por até 7 dias.

Coleta de Fezes

• Swab Anal

– Coleta deverá ser feita pela manhã, paciente sem

banho;

– “Imprint” na região perianal com fita adesiva;

– E preparar lâmina colando a fita adesiva em uma

das faces;

– Após coleta enviar lâmina para laboratório

Coleta de Fezes

• Sangue Ocuto nas fezes, Copograma e Rotavirus:

– Não é necessário dieta

– Evitar escovação vigorosa nos dias que antecedem a coleta (Sang. Ocul.)

– Evitar uso de laxante

– Frasco para coleta sem conservante

– Material recém emitido

Transporte e Armazenamento de Fezes

• Depois da coleta, o material deverá ser encaminhado

ao laboratório.

• O material não fica armazenado após análise

Pós Coleta do Espécime Diagnóstico

O MATERIAL DEVERÁ SER ENVIADO O MAIS

RÁPIDO PARA O LABORATÓRIO.

Resultado

Fase Analítica

Fase Pós-Analítica

Fase Pré-Analítica

Coleta Transporte

OBRIGADA!!