angela margarita moncaleano- niño
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MACROFAUNA INVERTEBRADA MARINA ASOCIADA A RAÍCES DE
Rhizophora mangle L. EN LA BAHÍA DE BARBACOAS Y EN LA ISLA DE
BARU (Cartagena de Indias- Colombia)
Angela Margarita Moncaleano- Niño
PONTIFICIA UNIVERSIDAD JAVERIANA
Facultad de Ciencias Básicas
Carrera de Biología
Bogotá D.C., Abril de 2001
2
MACROFAUNA INVERTEBRADA MARINA ASOCIADA A RAÍCES DE
Rhizophora mangle L. EN LA BAHÍA DE BARBACOAS Y EN LA ISLA DE
BARU (Cartagena de Indias- Colombia)
Angela Margarita Moncaleano- Niño
TRABAJO DE GRADO
Presentado como requisito parcialpara optar al titulo de
BIOLOGO
Giovanni Ulloa. DirectorCamilo Andrade. Codirector
PONTIFICIA UNIVERSIDAD JAVERIANAFacultad de Ciencias Básicas
Carrera de Biología
Bogotá D.C., Abril de 2001
3
Articulo 23 de la Resolución No 13 de julio de 1946:
“La Universidad no se hace responsable por los conceptos
emitidos por sus alumnos en sus tesis de grado”
4
“A Luisa Fernanda y Diana Alejandra con mucho cariño”
5
AGRADECIMIENTOS
Expreso mis más sinceros agradecimientos al Proyecto Manglares de Colombia Fase
II del Ministerio Ambiente- ACOFORE y OIMT por la financiación del proyecto, a
su Coordinador Giovanni Ulloa Seccional Caribe y el consultor Walter Gil, por su
apoyo y colaboración para su desarrollo.
Al Parque Nacional Natural Corales del Rosario y San Bernardo, a su directora la
bióloga Clara Sierra, por autorizar la realización de los muestreos dentro de la zona
de Parque, la utilización de su infraestructura y por el apoyo recibido por parte del
personal de la institución.
Al Instituto de Investigaciones Marinas INVEMAR y a su director el Capitán
Francisco Arias. A los investigadores Sven Zea y Nestor Campos, por su ayuda en la
identificación de las especies de macroinvertebrados correspondientes a poríferos y
crustáceos respectivamente.
Finalmente, agradezco a todas aquellas personas que gracias a su valiosa ayuda,
hicieron posible el desarrollo y culminación de este trabajo de Grado.
6
TABLA DE CONTENIDO
“A LUISA FERNANDA Y DIANA ALEJANDRA CON MUCHO CARIÑO”................................................................... 5FINALMENTE, AGRADEZCO A TODAS AQUELLAS PERSONAS QUE GRACIAS A SU VALIOSA AYUDA, HICIERON POSIBLE EL DESARROLLO Y CULMINACIÓN DE ESTE TRABAJO DE GRADO. ............................................................................ 6TABLA DE CONTENIDO................................................................................................................... 7
1. INTRODUCCION-------------------------------------------------------------------------15
2. REVISION DE LITERATURA-------------------------------------------------------- 17
2.1 CARACTERISTICAS GENERALES.......................................................................................... 172.2 IMPORTANCIA, USO Y FUNCIÓN ECOLÓGICA DE LOS MANGLARES .........................202.3 FACTORES ABIOTICOS QUE DETERMINAN EL DESARROLLO DE LOS ECOSISTEMAS DE MANGLAR...................................................................................................... 232.4 ANTECEDENTES........................................................................................................................26
3. AREA DE ESTUDIO--------------------------------------------------------------------- 28
3.1 BAHÍA DE BARBACOAS.......................................................................................................... 283.2 ISLA DE BARU............................................................................................................................283.3 CLIMA.......................................................................................................................................... 293.4 HIDRODINÁMICA......................................................................................................................303.5 GEOMORFOLOGIA.................................................................................................................... 323.6 SEDIMENTOLOGIA................................................................................................................... 323.7 BIOTA...........................................................................................................................................333.8 FLORA..........................................................................................................................................343.9 FAUNA ........................................................................................................................................ 35
4. FORMULACION DEL PROBLEMA Y JUSTIFICACIÓN--------------------- 36
4.1 FORMULACION DEL PROBLEMA.......................................................................................... 364.2 JUSTIFICACION DE LA INVESTIGACION.............................................................................37
5. OBJETIVOS--------------------------------------------------------------------------------38
6. MATERIALES Y METODOS----------------------------------------------------------38
6.1 TIPO DE ESTUDIO...............................................................................................................................386.2 HIPÓTESIS.........................................................................................................................................396.3 RECOLECCIÓN DE INFORMACIÓN .......................................................................................................... 396.4 ANALISIS DE INFORMACIÓN................................................................................................................ 41
7. RESULTADOS Y DISCUSION-------------------------------------------------------- 43
7.1 DESCRIPCION BIOLOGICA DE LAS ESTACIONES DE MUESTREO................................ 43 Mycale laevis (Carter, 1882).................................................................................................................. 45
7.2 DISTRIBUCION DE LOS INVERTEBRADOS SOBRE LAS RAICES....................................527.3 VARIABLES FISICO- QUIMICAS.............................................................................................617.5 ANALISIS DE INFORMACIÓN ................................................................................................ 63
8. CONCLUSIONES------------------------------------------------------------------------- 70
7
9. RECOMENDACIONES----------------------------------------------------------------- 72
10. REFERENCIAS-------------------------------------------------------------------------- 73
REFERENCIAS ELECTRONICAS:-----------------------------------------------------84
HTTP://SOFTLIB.RICE.EDU/CRPC/GT/JHOLZAPF/GULF/TOREDO.HTML
---------------------------------------------------------------------------------------------------- 84
HTTP://WWW.NRM.SE/ DEL MUSEO DE HISTORIA NATURAL DE
SUECIA---------------------------------------------------------------------------------------- 84
HTTP://BIOLOGY.UNM.EDU/ DE LA UNIVERSIDAD DE NUEVO MEXICO
---------------------------------------------------------------------------------------------------- 84
HTTP://PHYLOGENY.ARIZONA.EDU/TRE/EUKARYOTES/ANIMALS/ART
HROPODA/CRUSTACEA/ISOPODA/ACCESORY/CAGUIDE/FLABELIFER
A.HTML/ DE LA UNIVERSIDAD DE ARIZONA.-----------------------------------84
11. ANEXOS----------------------------------------------------------------------------------- 85
11.1 DESCRIPCION DE ESPECIES................................................................................................. 8511.1.1 PORIFERA---------------------------------------------------------------------------------------------85
11.1.1.1 Haliclona piscaderaensis ............................................................................................................. 8611.1.1.2 Haliclona caerulea....................................................................................................................... 8711.1.1.3 Haliclona sp. 1............................................................................................................................. 8811.1.1.4 Haliclona sp. 2............................................................................................................................. 8911.1.1.5 Niphates erecta ........................................................................................................................... 9011.1.1.6 Mycale laevis .............................................................................................................................. 9211.1.1.7 Tedania ignis .............................................................................................................................. 9311.1.1.8 Lissodendoryx isodictyalis .......................................................................................................... 9411.1.1.9 Ircinia felix ................................................................................................................................. 9611.1.1.10 Hyrtios proteus ......................................................................................................................... 9711.1.1.11 Geodia gibberosa ...................................................................................................................... 9811.1.1.12 Geodia papyracea ...................................................................................................................... 99
11.1.2 MOLLUSCA------------------------------------------------------------------------------------------10011.1.2.1 Diodora cayenensis ................................................................................................................... 10111.1.2.2 Nerita tesellata .......................................................................................................................... 10211.1.2.3 Littorina angulifera ................................................................................................................... 10311.1.2.4 Strombus alatus ......................................................................................................................... 10411.1.2.5 Cymatium vespaceum ............................................................................................................... 10511.1.2.6 Murex recurvirostris ................................................................................................................. 10611.1.2.7 Thais rustica .............................................................................................................................. 10711.1.2.8 ANASPIDEA sp........................................................................................................................ 107
8
11.1.2.9 Arca imbricata .......................................................................................................................... 10811.1.2.10 Brachidontes exustus .............................................................................................................. 10911.1.2.11 Isognomon alatus .................................................................................................................... 11011.1.2.12 Pinctada radiata ....................................................................................................................... 11111.1.2.13 Crassostrea rhizophorae .......................................................................................................... 11211.1.2.14 Teredo sp. ............................................................................................................................... 113
11.1.3 ANNELIDA-------------------------------------------------------------------------------------------11411.1.3.1 Sabellastarte magnifica ............................................................................................................. 11411.1.3.2 Hydroides dianthus ................................................................................................................... 11511.1.3.3 Eunice filamentosa..................................................................................................................... 11611.1.3.4 Eunice mutilata ......................................................................................................................... 117
11.1.4 CRUSTACEA-----------------------------------------------------------------------------------------118
11.1.4.1 Balanus sp.-----------------------------------------------------------------------------------------11911.1.4.2 Synalpheus minus ..................................................................................................................... 12011.1.4.3 Periclimenes americanus ........................................................................................................... 12111.1.4.4 Lysmata grabhami ..................................................................................................................... 12311.1.4.5 Macrobrachium sp. ................................................................................................................... 12411.1.4.6 Clibanarius vittatus ................................................................................................................... 12511.1.4.7 Petrolisthes galathinus .............................................................................................................. 12611.1.4.8 Petrolisthes amoneus ................................................................................................................. 12711.1.4.9 Mithraculus coryphe ................................................................................................................. 12811.1.4.10 Microphrys bicornotus ............................................................................................................ 12911.1.4.11 Stenorhynchus seticornis ......................................................................................................... 13111.1.4.12 Pachygrapsus gracilis .............................................................................................................. 13211.1.4.13 Panopeus herbstii .................................................................................................................... 13311.1.4.14 Rocinela signata ...................................................................................................................... 13411.1.4.15 Paracerceis sp. ......................................................................................................................... 13511.1.4.16 Excorallana sexticornis ........................................................................................................... 13611.1.4.17 Excorallana tricornis ............................................................................................................... 13711.1.4.18 Gonodactylus sp. ..................................................................................................................... 13811.1.4.19 GAMMARIDEA sp................................................................................................................. 139
11.1.5 ECHINODERMATA--------------------------------------------------------------------------------14011.1.5.1 Ophiactis savignyi .................................................................................................................... 14111.1.5.2 Ophiothrix orstedii .................................................................................................................... 142
11.1.6 UROCHORDATA-----------------------------------------------------------------------------------14311.1.6.1 Ascidia sp. ................................................................................................................................ 14311.1.6.2 Botryllus sp................................................................................................................................ 145
9
INDICE DE TABLAS Y FIGURAS
INDICE DE TABLAS Y FIGURAS------------------------------------------------------ 10
FIGURA 1. MAPA DEL DEPARTAMENTO DE BOLÍVAR. UBICACIÓN
DEL ÁREA DE ESTUDIO.---------------------------------------------------------------- 30
FIGURA 2. PORCENTAJE DE LAS ESPECIES MUESTREADAS DE
MACROINVERTEBRADOS ASOCIADAS A LAS RAÍCES DE
RHIZOPHORA MANGLE POR PHYLUM.-------------------------------------------44
TABLA 1. LISTADO SISTEMÁTICO DE LAS ESPECIES ASOCIADAS A
LAS RAÍCES DEL MANGLE ROJO RHIZOPHORA MANGLE L EN LA
BAHÍA DE BARBACOAS Y LA ISLA DE BARÚ (CLASIFICACIÓN SEGÚN
RUPPERT & BARNNES, 1996 Y ZEA, 1987).-----------------------------------------45
TABLA 2. NÚMERO DE ESPECIES DE MACROINVERTEBRADOS
ASOCIADOS EN CADA UNA DE LAS ESTACIONES DE MUESTREO
DESDE FEBRERO 22 HASTA DICIEMBRE 14 DE 2000.------------------------ 51
TABLA 3. RESUMEN TOTAL DEL NÚMERO DE INDIVIDUOS
COLECTADOS PARA LAS CUATRO ESTACIONES DE MUESTREO EN
LA ISLA DE BARÚ Y LA BAHÍA DE BARBACOAS (FEBRERO –
DICIEMBRE, 2000).------------------------------------------------------------------------- 53
TABLA 4. ESQUEMA GENERAL DE PRESENCIA- AUSENCIA DE LAS
ESPECIES DE MACROINVERTEBRADOS A LO LARGO DE LOS CUATRO
ESTRATOS DE DIVISIÓN DE LA RAÍZ.--------------------------------------------- 57
TABLA 5. VARIABLES FÍSICO- QUÍMICAS REGISTRADAS PARA
CUATRO ESTACIONES DE MUESTREO EN LA ISLA DE BARÚ Y LA
BAHÍA DE BARBACOAS DURANTE 4 MESES DE ESTUDIO DE 2000. ---- 64
10
--------------------------------------------------------------------------------------------------- 66
FIGURA 3. VALORES DE AFINIDAD DE JACCARD EN LAS CUATRO
ZONAS DE MUESTREO. PN= PUERTO NAITO, ---------------------------------- 66
CH= CIÉNAGA DE CHOLÓN, AP= ARROYO DE PLATA, AH= ARROYO
HONDO---------------------------------------------------------------------------------------- 66
FIGURA 4. DENDOGRAMA DE CLASIFICACIÓN DE LAS ESTACIONES
DE MUESTREO DE ACUERDO A LAS ESPECIES MUESTREADAS DESDE
EL 22 DE FEBRERO HASTA EL 14 DE DICIEMBRE DE 2000. PN= PUERTO
NAITO, CH= CIÉNAGA DE CHOLÓN, AP= ARROYO DE PLATA, AH=
ARROYO HONDO-------------------------------------------------------------------------- 67
TABLA 6. ABUNDANCIA RELATIVA PROMEDIO POR RAÍZ (AR %)
PARA CUATRO ESTACIONES DE MUESTREO EN LA ISLA DE BARÚ Y
LA BAHÍA DE BARBACOAS DURANTE 4 MESES DE ESTUDIO DE 2000. 68
-------------------------------------------------------------------------------------------------- 146
FOTO1. MORFOLOGÍA DEL MANGLAR DE LA ISLA DE BARÚ,
DEPARTAMENTO DE BOLÍVAR. ESTACIÓN CIÉNAGA DE CHOLÓN.
OCTUBRE 25 DE 2000.------------------------------------------------------------------- 146
-------------------------------------------------------------------------------------------------- 146
FOTO 2. MORFOLOGÍA DEL MANGLAR DE LA BAHÍA DE BARBACOAS,
DEPARTAMENTO DE BOLÍVAR. ESTACIÓN ARROYO DE PLATA.
OCTUBRE 25 DE 2000.------------------------------------------------------------------- 146
-------------------------------------------------------------------------------------------------- 147
11
FOTO 3. COMPARACIÓN ENTRE LAS RAÍCES DE RHIZOPHORA
MANGLE, EN LAS ESTACIONES DE ARROYO HONDO Y PUERTO
NAITO.----------------------------------------------------------------------------------------147
-------------------------------------------------------------------------------------------------- 148
FOTO 4. COMPARACIÓN ENTRE LAS RAÍCES DE RHIZOPHORA
MANGLE, EN LAS ESTACIONES DE CIÉNAGA DE CHOLÓN Y ARROYO
DE PLATA.---------------------------------------------------------------------------------- 148
-------------------------------------------------------------------------------------------------- 149
FOTO 5. RAÍZ DE RHIZOPHORA MANGLE CON
MACROINVERTEBRADOS ASOCIADOS. ESTACIÓN DE PUERTO NAITO.
-------------------------------------------------------------------------------------------------- 149
OCTUBRE 25 DE 2000.----------------------------------------------------------- 149
12
RESUMEN
En este estudio se elabora un listado sistemático de las especies de
macroinvertebrados asociados a las raíces de Rhizophora mangle, para dos bosques
ubicados en la Isla de Barú y dos en la Bahía de Barbacoas.
La fase de campo tuvo una duración de un año, con el fin de abarcar las temporadas
de lluvia y de sequía. Los muestreos se realizaron en los meses de Febrero, Mayo,
Octubre y Diciembre de 2000. En cada una de las dos zonas, se escogieron dos
estaciones de muestreo, donde se recolectó un total de 160 raíces.
Se observa la distribución vertical de las especies a lo largo de la raíz, y se describen
las posibles raíces típicas para cada una de las estaciones de muestreo.
Se reportan 53 especies para todo el área de estudio y una baja similitud en la
estructura de las comunidades; condicionada por las características morfométricas de
las raíces, la topografía de las zonas y diferentes niveles de afectación por las aguas
provenientes del Canal del Dique.
Los taxas dominantes corresponden a crustáceos y moluscos, de los cuales cuatro
especies determinaron los principales cambios en la diversidad de las comunidades.
Para establecer diferencias ambientales se realizaron mediciones de salinidad,
temperatura, pH, y penetración lumínica en las áreas de manglar. Finalmente, se
descarta la influencia del régimen pluviométrico de la zona sobre los cambios en la
composición de las comunidades asociadas.
13
Se encontró que si existe una diferencia en cuanto a la composición de las
comunidades asociadas, al igual que una muy baja afinidad entre las cuatro estaciones
de muestreo; relacionadas con las diferencias en la morfología de las raíces típicas, al
igual que con el efecto de los sólidos suspendidos sobre estas.
14
1. INTRODUCCION
Los manglares son considerados uno de los ambientes más importantes de los
litorales marinos, debido a que mantienen una estrecha asociación con numerosas
especies pertenecientes a diferentes grupos taxonómicos. Estas encuentran
protección, hábitat y alimentación en el área de manglar, convirtiéndolo en un lugar
valioso e interesante para su estudio y protección.
Por esto, con la conservación de las zonas de manglar no solo se evita la extinción de
las especies vegetales que las conforman, sino que se mantienen las condiciones
necesarias para la subsistencia de la diversa fauna asociada.
Dentro de las especies de mangles, la más conocida y común es Rhizophora mangle
L., cuya característica más importante son sus rizomas en forma de zancos que
generan un ambiente propicio para la colonización y establecimiento de comunidades
marinas, conformadas especialmente por macroinvertebrados (Cintrón & Schaeffer-
Novelli, 1983; Cadavid et al., 1991).
En este trabajo, se dan a conocer las especies de macroinvertebrados marinos que se
encuentran asociados a las raíces del Rhizophora mangle L. en dos sectores del
Caribe colombiano.
Teniendo en cuenta esta información, se analiza como están compuestas las
comunidades de cada una de las estaciones, además de determinar la distribución
vertical de las especies a lo largo de las raíces, para obtener el esquema de raíz típica
de cada una.
15
También se analizan preliminarmente algunos factores que pueden presentar un
efecto sobre la composición de estas comunidades, además de identificar las especies
que presentan dominancia dentro de las raíces, así como aquellas que son raras y
posiblemente específicas de algunas de las estaciones.
16
2. REVISION DE LITERATURA
2.1 CARACTERISTICAS GENERALES
Los manglares son formaciones vegetales que constituyen un importante ecosistema
estuarino tropical, el cual cubre unos 24 millones de hectáreas en todo el mundo y se
encuentran presentes en casi la totalidad de la superficie costera de Colombia en el
Mar Caribe (Mock, 1998).
Son bosques de pantanos, caracterizados por ubicarse en litorales de suelo plano y
fangoso, y aguas relativamente tranquilas. Las especies de manglar se caracterizan
por presentar adaptaciones para terrenos inestables, anaerobios e inundados, con
influencias salinas, como son sus raíces zancos o tabloides con lenticelas y
neumatóforos en algunas especies (Sánchez- Páez & Alvarez- León, 1997).
Los manglares según la convención de Ramsar (Irán), se consideran humedales de
agua salada, estuarinos y lagunares establecidos en zonas intermareales. Los bosques
de mangle han llegado a ser considerados por los especialistas como una modalidad
de ecosistema con una de las más altas productividades biológicas en el planeta
(Ulloa et al., 1998).
Los manglares son una formación tropical, por lo tanto su mejor desarrollo ocurre
entre la faja de los trópicos de Cáncer y Capricornio (23o 30` Norte y los 23o 30` Sur)
(Cintrón & Schaeffer-Novelli, 1983). Actualmente se distribuyen a lo largo de la
línea costera del continente americano, encontrándose cerca del 70% en la Costa
Atlántica, donde van desde el Sur de Brasil hasta el Sur de los Estados Unidos
(Caicedo et al., 1996).
17
Según Walsh (1974), el manglar se desarrolla en mayor grado donde se reúnen las
siguientes condiciones:
1. Temperaturas cálidas: donde la temperatura promedio del mes más frío exceda
los 20oC y la amplitud anual sea menor de 5oC.
2. Substratos aluviales: los manglares mejor desarrollados ocurren en costas
deltaícas donde predominan los lodos finos, ricos en materia orgánica,
especialmente cuando los sedimentos son derivados de rocas volcánicas.
3. Resguardo de oleaje y fuertes marejadas: altos niveles de energía causan
erosión e impiden el asentamiento de las semillas.
4. Presencia de agua salada: los manglares son halófitos facultativos que ocupan
aquellos terrenos donde las plantas de hábito estrictamente terrestre no pueden
desarrollarse debido a la presencia de sales. Su mejor desarrollo ocurre
generalmente en salinidades entre 5 y 30o/oo.
5. Gran amplitud de marea: una amplia fluctuación de la marea y un declive
reducido permiten la intrusión de sal a grandes distancias tierra adentro. La
amplia faja de terrenos afectados por la intrusión salina puede ser colonizada por
el manglar.
Bajo condiciones ambientales subóptimas el manglar no alcanza su mayor desarrollo
estructural. Los árboles de mangles alcanzan hasta 45-50 metros en ambiente óptimo,
cerca del Ecuador donde hay disponibilidad de nutrientes, grandes amplitudes de la
marea y temperaturas altas y constantes; mientras que en donde las temperaturas son
subóptimas y sufren impacto periódico de las heladas, la altura de copa no excede los
2 metros (Cintrón & Schaeffer-Novelli, 1983).
18
A los bosques de mangle, se les atribuye una alta productividad primaria neta,
producto de la biomasa arbórea , y su productividad secundaria admite valores muy
altos, ya que la base en el ámbito secundario de la cadena trófica la constituye el
detrito formado por las hojas (Kochane, 2000).
La productividad neta de los manglares en las zonas donde hay suficiente lavado de
suelo, se transfiere casi en su totalidad al mar como "mantillo" conformado
principalmente por hojas, el cual se acumula dentro de las raíces hasta formarse en
detrito, que posteriormente es transportado hacia el mar (Von Prahl et al., 1990).
De la producción de las hojas y la madera, una parte es utilizada por los organismos
terrestres como hormigas, termitas y otros insectos, que a su vez son alimento de
otros animales. La mayor parte cae al suelo o al agua donde es atacada por hongos y
bacterias que lo convierten en detritos, el cual es la base de alimento para muchos
animales dentro de la cadena trófica (Kochane, 2000). Una parte importante de este
material se acumula dentro de las raíces donde sirve de alimento para la comunidad
que habita en ellas (Márquez, 1990).
Los manglares son excelentes evapotranspiradores supliendo significativamente de
humedad a la atmósfera, tornándose en fuente de enfriamiento natural para las
comunidades cercanas; son recicladores de CO2 fuente de materia orgánica e
inorgánica, constituyendo un eslabón importante en la cadena trófica como conductor
de energía a sistemas secundarios. Así mismo son excelentes detoxificadores
favoreciendo la calidad del agua (Ulloa et al., 1998).
Los manglares del Caribe Colombiano, se caracterizan por tener un menor desarrollo
comparado con los del Pacífico, alcanzando alturas máximas de 25 metros
aproximadamente, encontrándose más desarrollados en los deltas de los grandes ríos
que desembocan en esta costa (Atrato, Sinú, Magdalena y áreas de influencia del
Canal del Dique). Adicionalmente, también se localizan pequeños bosques de mangle
19
en el Golfo de Morrosquillo, los archipiélagos de San Bernardo e Islas del Rosario, la
Ciénaga de la Virgen (Cartagena), en la Ciénaga Grande de Santa Marta y el Parque
Nacional Natural Tayrona, y en algunos sectores de la Guajira (Sánchez- Páez &
Alvarez- León, 1997)
Como la especie pionera de los manglares se ha caracterizado Rhizophora mangle L.
(mangle rojo) que se encuentra en la parte exterior de las franjas de manglar y en los
bordes de los canales. La característica más llamativa de esta especie es su complejo
sistema de rizomas aéreos, que parten desde el tronco o de las ramas laterales
cayendo hacia el suelo. Esta red de rizomas proporciona sostén al árbol y lleva a cabo
funciones vitales de nutrición y aireación (Cintrón & Schaeffer-Novelli, 1983).
El mangle rojo es un importante pionero que ayuda a la formación de nuevos suelos,
a la creación de nuevas islas y a la reconstrucción de nuevas costas. Las grandes
raíces de mangle ofrecen un excelente substrato soportando plantas y animales
constituyéndose en verdaderos criaderos para numerosas especies (Batista, 1980).
Sobre este complejo de raíces crece un variado número de pequeños organismos
como algas, hidrozoarios, anémonas, gasterópodos, bivalvos y crustáceos, que
encuentran en ellas excelentes condiciones para sobrevivir (Ulloa et al., 1998). Estos
organismos aprovechan el material orgánico que se encuentra en suspensión dentro de
las raíces, razón por la cual también se convierte en una especie de comederos para
especies transitorias (Cadavid et al., 1991).
2.2 IMPORTANCIA, USO Y FUNCIÓN ECOLÓGICA DE LOS MANGLARES
El ecosistema de manglar cumple diversas funciones, una de las más importantes es
la de ofrecer protección, hábitat y refugio a numerosas especies de mamíferos, aves y
reptiles, que encuentran en él su alimento y las condiciones necesarias para
20
desarrollar sus respectivos ciclos de vida (Ulloa et al., 1998). Larvas y juveniles de
vertebrados e invertebrados son protegidas contra la depredación en las raíces de
Rhizophora mangle L. y capturan alimento que posteriormente se exporta hacia el
mar cuando son consumidos o cuando, ya adultos, se establecen en el arrecife, el mar
abierto o la plataforma continental (Von Prahl et al., 1990).
Sobre las raíces y substratos duros crece un variado número de pequeños organismos
(algas, hidrozoarios, anémonas, gasterópodos, bivalvos, crustáceos) que aprovechan
el material orgánico en suspensión y luego son capturados por organismos superiores
como peces, crustáceos, equinodermos y moluscos lo cual les confiere un papel muy
relevante en las funciones tróficas de los sistemas acuáticos (Ulloa et al., 1998).
Los manglares son ecosistemas abiertos y por tanto implican un gran flujo de materia
y energía, principalmente desde adentro hacia fuera, en beneficio de ecosistemas
adyacentes que dependen de alguna manera de estos. Esta importancia se ve reflejada
en la relación existente entre los manglares y los siguientes ecosistemas (Sánchez-
Páez & Alvarez- León, 1997):
1. Relación del manglar con arrecifes coralinos y pastos marinos: En estos
sistemas existen numerosas especies que realizan migraciones hacia las zonas de
manglar con fines de alimentación o refugio, especialmente peces, crustáceos y
moluscos que sirven como vectores de energía, lo que posibilita el
establecimiento de tramas tróficas más complejas. Un ejemplo se puede observar
en los Archipiélagos de las Islas del Rosario, Barú y San Bernardo.
2. Relación del manglar con las ciénagas, lagunas y bahías: Estos ecosistemas,
reciben aporte de materia orgánica procesada en el manglar según el grado de
lavado de los suelos del bosque.
21
3. Relación del manglar con las formaciones vegetales continentales: Los
manglares según la estabilidad de las condiciones medioambientales, pueden
permanecer como bosques en equilibrio o estar en estado sucecional hacia
vegetación continental o reemplazando la vegetación continental. Los bosques de
manglar presentan fauna en común con los bosques aledaños, como es el caso de
la "zorra cangrejera" (Procyon lotor), "el tigre" (Felis onca) y el tigrillo (Felis
pardalis), que ingresan al manglar durante la marea baja en busca de comida.
El valor ecológico del bosque de manglar es indiscutible, no solo desde el punto de
vista de la generación de materia orgánica que se renueva y enriquece las áreas
costeras de influencia directa y que sirve para el crecimiento de recursos de
importancia comercial, sino también por las demás funciones como productor de
materiales que tienen gran aceptación y uso entre las poblaciones humanas, o como
amortiguador contra ataques violentos del mar, o estabilizador de procesos costeros
(Cintrón & Schaeffer-Novelli, 1983).
Los manglares de la zona costera del Caribe Colombiano, han recibido
tradicionalmente diferentes formas de uso por parte de las comunidades nativas,
principalmente para el autosustento (Ulloa et al., 1998). Según Sánchez- Paez (1994)
los usos que tradicionalmente se les ha dado a los manglares en Colombia, son:
1. La sobreexplotación de productos forestales tales como la madera (corteza,
carbón y leña).
2. El corte de raíces de Rhizophora para la obtención de moluscos.
3. La cocción de hipocótilos de Rhizophora para alimento humano, las hojas y frutos
como forraje para animales.
22
4. Como pértigas para sujetar redes de pesca, postes para cercas y embarcaderos,
pisos, durmientes, traviesas para líneas férreas, puntales de mina, astillas para
pulpa, palos de fósforo, mangos de herramientas, colas, colorantes y azúcares.
2.3 FACTORES ABIOTICOS QUE DETERMINAN EL DESARROLLO DE LOS ECOSISTEMAS DE MANGLAR
1. Salinidad: los mangles son plantas halófitas facultativas, es decir que toleran y se
desarrollan en ambientes con diferentes grados de salinidad. También podemos
encontrarlos en ambientes de agua dulce o salinidad de cero, donde no desarrollan
formaciones boscosas o estructuradas, ya que son desplazados por vegetación
glicófita de más rápido crecimiento y mejor adaptación (Cintrón & Schaeffer-
Novelli, 1983).
2. Temperatura: Los manglares crecen en ambientes con un amplio rango de
temperaturas. Existen formaciones que pueden soportar los 15oC en promedio
hasta 4oC en las épocas más frías, y también en ambientes entre 30 y 35oC en
promedio con máximas de 40oC en las épocas de baja precipitación y desecación
(Ulloa et al., 1998); pero Rützler & Feller (1996), hablan de que los manglares no
pueden sobrevivir en lugares donde la temperatura del agua sea menor de 23°C.
3. Mareas: Las mareas son el mecanismo principal que causa la incursión de agua
salada hacia el interior de la costa, por lo tanto son el agente que hace el substrato
adecuado para ser colonizado por el manglar (Cintrón & Schaeffer-Novelli,
1983). Las intrusiones periódicas de agua salada excluyen de estos terrenos a las
plantas carentes de adaptaciones para tolerar la sal, por lo tanto él limite del
manglar tierra adentro coincide con la distancia máxima hasta la cual penetra el
agua salada (Cintrón et al., 1978).
23
4. Suelos: Los suelos de manglar poseen características variables de acuerdo a sus
orígenes, pueden ser de tipo autóctono, que son formados por los aportes de
materia del manglar (hojas) que después de un proceso de descomposición
resultan en turberas; o alóctonos que se originan a partir de la intemperización de
rocas intrusivas, volcánicas o sedimentarias. Otro componente que puede estar
presente son los restos calcáreos de plantas y animales marinos (Cintrón &
Schaeffer-Novelli, 1983).
Chapman (1940) clasificó los manglares en cuatro grupos de acuerdo a sus
sustratos: 1) arrecifal, 2) arenoso, 3) cenagoso y 4) turboso. Los manglares
presentes en los sustratos arrecifal, arenoso o pedregoso, sostienen árboles de
poco porte, mientras que los de substratos cenagoso y turbosos sostienen bosques
más desarrollados. Durante el proceso de colonización, el manglar puede
establecerse inicialmente sobre los sustratos marginales (arrecifal, arenoso o
pedregoso) e ir cambiando la naturaleza del suelo por medio de la deposición de
sedimentos finos y materia orgánica.
Los suelos de los bosques de Rhizophora contienen mayor porcentaje de materia
orgánica y son suelos menos consolidados comparados con los suelos de otros
bosques de manglar (Cintrón & Schaeffer-Novelli, 1983).
5. pH :Los suelos de manglar presentan un pH entre 4.8 y 8.8, siendo más básicos
los suelos de Rhizophora en comparación con los de las demás especies. Al
secarse los suelos de Rhizophora se hacen mucho más ácidos, alcanzando valores
de 3 y los suelos más maduros valores de 2.2. Los valores de pH se ven
modificados por el contenido de humedad y las fluctuaciones en el nivel freático
(Cintrón & Schaeffer-Novelli, 1983).
24
6. Evapotranspiración Potencial: Según Winograd (1985) las precipitaciones son
las que rigen el aprovisionamiento del agua dulce. En los casos en que la
precipitación es mayor que la evapotranspiración, los bosques se desarrollan con
mayor vigor y porte; mientras que en el caso contrario, presentan limitaciones en
su desarrollo, disminución del porte, complejidad en la estructura y riesgo de
salinización del suelo.
7. Aportes de agua dulce: El manglar es un sistema abierto que depende de los
flujos hídricos para llevar a cabo el intercambio de nutrientes, por esta razón la
productividad de los bosques de manglar es mayor en los lugares donde el aporte
de aguas continentales es significativo. Por ejemplo en las desembocaduras de los
ríos, zonas estuarinas o lagunas costeras (Von Prahl et al., 1990).
8. Nutrientes :Los manglares son sistemas abiertos al flujo de materia y energía
debido a que importan nutrientes y exportan materia orgánica en un ciclo
continuo. Estos nutrientes llegan por medio de los ríos y las mareas, luego son
absorbidos e incorporados a su biomasa por medio de la fotosíntesis, al mismo
tiempo gran cantidad de materia orgánica en forma de hojas, flores y ramas cae al
suelo donde es degradada por las bacterias y hongos (Von Prahl et al., 1990).
En los lugares donde la oferta de nutrientes inorgánicos es mayor, el manglar
tiende a alcanzar un desarrollo importante a nivel de diámetro, porte y cobertura,
mientras en los lugares donde la oferta de nutrientes es limitada, su desarrollo es
pobre encontrándose manglares achaparrados o enanos (Von Prahl et al. , 1990).
El amónio es la principal forma de nitrógeno orgánico que se encuentra en los
suelos del manglar, debido a que las condiciones de anóxia en que se encuentran
interfieren en la oxidación a nitritos y posteriormente a nitratos (Cloug, 1992).
25
2.4 ANTECEDENTES
Los estudios que se han hecho a los manglares han sido muy variados debido al gran
interés que se presenta hacia ellos. Algunos de los más importantes se comentan a
continuación:
En la zona del Indo Pacífico, Macnae (1968) realiza un reporte general de la fauna y
flora de los manglares del Indo Pacífico Oeste. Frith (1976) reporta la macrofauna de
6 zonas para los manglares de la isla Phuket, basándose en la observación de
parámetros físico-químicos, Cribb (1978) reporta algas asociadas a los manglares de
Australia, y Pinto (1980) en el simposio de Asia sobre manglares, trata sobre los
aspectos ecológicos principales para los cangrejos de manglar.
Para la zona del Pacífico, se conocen los trabajos de Peña (1971) quien describe los
gasterópodos de los manglares del Perú y de Abele (1972) que estudia la composición
y la abundancia relativa de los crustáceos decápodos que ocurren en diversos hábitats.
En el Atlántico, Taylor (1959) describe algunas algas de los manglares de Jamaica,
Chapman (1961) describe los manglares como un hábitat ecológico natural y reporta
algunas especies de algas de los manglares de Jamaica, Warner (1969) establece con
bases estadísticas la distribución de 5 zonas de 10 especies de decápodos para las
áreas de manglar en Jamaica, y Alvarez & Bonelli de Calventi (1978) realizan el
primer estudio sobre los manglares de la República Dominicana incluyendo flora
marina bentónica macroscópica e invertebrados asociados al ecosistema.
Rutzler (1969) estudia las estructuras de las comunidades de los manglares, Bacon
(1970) establece la relación de las especies de las florestas de mangle en el Atlántico
Occidental. Rodríguez (1972) y Flórez (1978) se refieren a la importancia y
protección del manglar para la fauna acompañante. Batista (1980) hace un estudio de
las comunidades que habitan las raíces del mangle rojo en Punta Galeta (Costa
26
Atlántica de Panamá), en el mismo año Sutherland utiliza láminas de asbesto como
substrato para estudiar la dinámica de la comunidad epibéntica de las raíces de
mangle rojo en la bahía de Buche en Venezuela y Espinosa habla sobre la fauna sésil
intermareal relacionada con algunos parámetros ambientales en la laguna de
Términos Campeche en México. Rivadeneira (1989) trabaja la ecología de la
epibiosis de las raíces inmersas de Rhizophora mangle en la Bahía de Ascensión
Quintana Roo México.
En Colombia, Perdomo (1971) hace reportes de la macrofauna en la bahía de
Cartagena, y Mosquera & Bernal (1975) en la Bahía de Barbacoas realizan un estudio
sobre la Bioecología de la Crassostrea rhizophorae. Henningg & Klaussen (1973) en
la isla de Salamanca colectaron 17 especies de Decapoda, describen cuatro zonas
según la ocurrencia de las especies y discuten los datos microclimáticos que influyen
en los decápodos. Pérez & Victoria (1977) estudian las raíces sumergidas del mangle
rojo en base a la taxocenosis Annelida-Mollusca, Crustácea en la Bahía de Cartagena,
y en el mismo año Palacio identifica 107 especies de invertebrados para la Ciénaga
Grande de Santa Marta.
Von Prahl (1981) (Tomado de Cadavid et al., 1991), presenta la distribución de los
cangrejos Gecarcinidos a lo largo del litoral Pacífico en relación con el substrato y
cinturones de vegetación que cubren estas zonas. Palacio (1983) trabaja sobre la
fauna béntica de macroinvertebrados en la Ciénaga Grande de Santa Marta y la
relaciona con las épocas secas y lluviosas de la zona. Jácome (1984) realiza una
zonación de Decapoda en la Bahía de Barbacoas. Cadavid et al. (1991) hacen un
estudio de invertebrados asociados a las raíces del mangle rojo en la laguna de
Cocoliso, Isla grande en las Islas del Rosario.
Reyes & Campos (1992) muestrean macroinvertebrados colonizadores de raíces de
mangle rojo en la Bahía de Chengue del Caribe Colombiano, y en el mismo año
Leyton trabaja la fauna asociada a las raíces de manges en el Golfo de Morrosquillo.
27
Avila & Bonilla (1993) se refieren a los patrones de distribución de los
macroinvertebrados de las raíces sumergidas del mangle rojo en la Ciénaga de
Cholón en la Isla de Barú, Caribe Colombiano. Kochane (2000) hace una reflexión en
torno al tema de conservación y preservación de los manglares en el Golfo de
Morrosquillo y Vilardy en el mismo año trabaja los moluscos asociados a Rhizophora
mangle en la Isla de San Andrés y Providencia.
28
3. AREA DE ESTUDIO
3.1 BAHÍA DE BARBACOAS
La bahía de Barbacoas se encuentra en el Litoral Caribe Colombiano al noroeste del
departamento de Bolívar, entre los 10o 08` 09`` a los 10o 14` 56`` latitud Norte y los
75o 31` 21`` a los 75o 40` 17`` de longitud Oeste. Presenta una superficie de 140 km2,
cuya periferia está constituida por un conjunto de ambientes originados por procesos
geomorfológicos que han favorecido el asentamiento del manglar formando extensas
zonas de bosque salado (Caicedo & Lara, 1998) (Figura 1).
3.2 ISLA DE BARU
La isla de Barú, está ubicada en el departamento de Bolívar, Municipio de Cartagena,
localizada entre los 10o 19` y 10o 08` latitud Norte y los 75o 42` 32`` y 75o 31`
longitud oeste, con respecto al meridiano de Greenwich y cuenta una extensión
aproximada de 7550.31 hectáreas. Limita por el sur y el este con la Bahía de
Barbacoas, por el norte con el Parque Nacional Natural Corales del Rosario y por el
noroeste con la bahía de Cartagena y la isla de Tierrabomba. Su altitud llega hasta los
60 metros sobre el nivel del mar. Los ecosistemas dominantes son: arrecifes
coralinos, pastos marinos, marismas, manglares y lagunas costeras (Caicedo & Lara.
1998) (Figura 1).
3.3 CLIMA
La zona posee dos estaciones de lluvia y dos secas, definidas básicamente por el
desplazamiento de la zona de convergencia intertropical (ZCIT) (IGAC, 1975).
Además, los sistemas montañosos que la circundan y la cercanía del Océano
Atlántico, así como su situación geográfica intervienen en la definición de una serie
de particularidades climáticas (Caicedo & Lara, 1998):
29
1. Alta insolación.
2. Gran contenido de vapor de agua que alcanza alturas superiores a los 10 Km lo
que favorece la convección térmica.
3. Una precipitación anual que va desde los 800 a los 2000 mm3.
4. Temperaturas medias anuales de 27.6°C, con máximas de 32.9°C y mínimas de
23.1°C.
5. La humedad relativa media presenta una amplitud diaria bastante grande,
principalmente en época seca (50% de día y 98% de noche), mientras que en
época húmeda los valores exhiben un promedio más constante (70 y 79%).
6. La evaporación es igual o en muchas ocasiones mayor que la precipitación, lo
cual origina un déficit hídrico en la zona durante la mayor parte del año.
El régimen pluviométrico presenta el siguiente comportamiento: desde Diciembre
hasta mediados de Abril, período seco; de mediados de Abril a mediados de Julio,
estación lluviosa; de mediados de Julio a Agosto, escasa precipitación; y de Agosto a
Diciembre, lluvias intensas (Caicedo & Lara, 1998).
Este régimen se encuentra influenciado por la acción de los vientos alisios, los cuales
soplan de manera constante del nor- noreste en Diciembre a Abril, con mayor
intensidad en los meses de Enero y Febrero. La presencia o no de la ZCIT define la
dirección predominante del viento en toda la región (Sánchez- Páez & Alvarez- León,
1997).
30
Figura 1. Mapa del Departamento de Bolívar. Ubicación del área de estudio.
3.4 HIDRODINÁMICA
La marea sobre la costa Caribe es de tipo semidiurna con un rango que varia de 17 a
42cm. Esta zona se encuentran influenciada en mayor magnitud por las mareas
meteorológicas (viento) que por las astronómicas, debido a su posición lejana del
continente. Es notable la presencia de la corriente del Caribe y la contracorriente de
Panamá que resulta de la circulación atmosférica que se mantiene por la acción de los
vientos (Sánchez- Páez & Alvarez- León, 1997).
El patrón general del oleaje, muestra que son más frecuentes las olas provenientes del
nor- noroeste y en algunas ocasiones llegan algunas destructivas provenientes del
Sudoeste llamadas "mar de leva" (Sánchez- Páez & Alvarez- León, 1997).
31
El ciclo anual se divide en cuatro períodos de acuerdo al comportamiento
hidrodinámico (Leblé & Cuignon, 1987; Garay, 2000):
Período 1: durante los meses de Diciembre y Enero, se presenta un caudal importante
del Canal del Dique y la corriente tiene dirección sur- oeste. El agua que sale de la
desembocadura se pega a la Isla de Barú debido a un posible movimiento circular en
el interior de la Bahía de Barbacoas. Esta corriente de agua salobre llega a la punta de
Barú pero sin subir a las Islas ya que es empujada al sur, producto de la acción de los
vientos Alisios.
Período 2: durante la época de Febrero a Mayo, el Canal del Dique se encuentra al
mínimo y las masas de agua tienen dirección sur-oeste, lo que indica que existe una
gran influencia de aguas oceánicas.
Período 3: de Junio a Octubre, el Canal del Dique presenta un aumento progresivo y
la acción de la corriente de Panamá en dirección nor- noroeste, produce que las aguas
dulces puedan subir hasta las Islas del Rosario.
Período 4: durante el mes de Noviembre, el Canal del Dique se encuentra en su
máximo nivel y las corrientes tienen dirección norte en la superficie.
A la Bahía de Barbacoas, le entran aguas oceánicas durante los períodos 1 y 2 por la
superficie y el fondo, pegando a las costas la poca agua dulce del Canal del Dique; en
los períodos 3 y 4, estas aguas entran por el fondo y regresan en dirección opuesta
con las aguas dulces del delta del Dique (Sánchez- Páez & Alvarez- León, 1997).
3.5 GEOMORFOLOGIA
Las zonas bajas y planas cercanas a la línea de costa están constituidas por depósitos
32
de origen cuaternario, constituyendo espigones y deltas que se encuentran sometidos
a fenómenos de acreación y erosión determinados por la variación en la fuerza y la
dirección de la corriente del litoral y por los vientos (Caicedo & Lara, 1998).
A partir de los perfiles batimétricos de la plataforma, se puede observar una
monotonía en la cual no se presentan accidentes mayores. De este a oeste se observa
una suave pendiente correspondiente a la plataforma, el banco de la isla tesoro, la
ruptura de la pendiente situada en la isóbata de los 80m colonizada por arrecifes y el
principio del talud continental (Caicedo & Lara, 1998).
Las islas corresponden a antiguos arrecifes, actualmente situados por encima del nivel
marino (2 -3m), que se han formado durante la última transgresión marina, donde las
terrazas arrecifales del Cuaternario se presentan horizontales a una altura constante,
lo cual refleja que no han sido afectadas por la tectónica actual (Leblé & Cuignon,
1987).
3.6 SEDIMENTOLOGIA
La Bahía de barbacoas presenta tres unidades morfológicas y sedimentarias que son
(Leblé & Cuignon, 1987):
1. Llanura Deltaíca: es la parte sumergida del delta, con un área aproximada de 500
km2, altamente irrigada por las aguas del Canal del Dique y por diversos caños.
2. Delta Front: Se forma a continuación de la llanura deltaíca superior, abarca un
área aproximada de 220km2. Formada por una plataforma submarina de poca
profundidad con un ancho que varía entre 2.5 y 7.5 Km, prolongándose hasta el
talud en el veril de los 15m.
3. Prodelta: con un área de aproximadamente 300 km2, es la zona de transición
hacia la plataforma continental; presenta un relieve accidentado formado sobre la
33
plataforma arrecifal.
La Bahía de Barbacoas tiene aportes fluviales del Canal del Dique los cuales
proporcionan un aumento en la turbiedad de la Bahía, con los desastrosos efectos de
la colmatación gradual de la misma y la muerte de organismos bentónicos.
En la isla de Barú se encuentran tres tipos de sedimentación (Leblé & Cuignon,
1987):
1. Zonas con pocos aportes minerales debido a la presencia de áreas de manglar en
lugares planos, con alto contenido de material orgánico.
2. Sedimentos de origen marino, generalmente arcillosos con acumulación
superficial de sales y un nivel freático alto.
3. Sedimentación de barras marinas de arenas gruesas biogénicas con colores claros.
3.7 BIOTA
Los tipos de biota que se encuentran influenciados por la Bahía de Barbacoas se
zonifican de acuerdo a las características dominantes de los sustratos. Las unidades de
vegetación más características son (Caicedo & Lara, 1998):
Zona de planos inundables: se localizan a lo largo de la Isla de Barú con sedimentos
de origen fluvial, transportados por la deriva del litoral y con sedimentos calcáreos de
origen coralino y algal. Encontramos coberturas desnudas, coberturas arbustivas
laxas, bosques incipientes y cinturones de mangle, que constituyen una de las barreras
más importantes para la protección de la línea costera.
Zona de manglares: los rodales de mangles están asociados a las lagunas costeras,
34
ya que en estos lugares, es donde el mangle presenta un mejor desarrollo. Tienen una
extensión aproximada de 22km.
Zona de Bosque de Playón: es una variedad de bosque húmedo tropical que ocupa
suelos salinos acompañados de vegetación de sotobosque. Su vegetación está
compuesta por herbáceas, maleza acuática y montes espinosos.
Zona de Bosque Seco Tropical: esta zona presenta un uso agrícola y ganadero
incipiente, además de presentarse algunas granjas camaroneras y de recreo como es el
caso del sector de Playa Blanca el cual sufre una fuerte presión debida al turismo.
3.8 FLORA
Dentro de la flora acuática, encontramos macrófitas las cuales son responsables hasta
de un 80% de la producción primaria de los ecosistemas acuáticos, además de
disminuir la erosión lateral y retener sedimentos que impiden la navegación en canoas
y otras pequeñas embarcaciones. En las orillas encontramos Paspalum rephens,
Echinocloa sp. y Oriza sp. que son especies con sus raíces fijas al substrato. Mientras
en las ciénagas predominan especies de raíces flotantes como Eicchornia crassipes
(buchón), Pistias stratiotes y Ludwigia sp. (CARINSA- INCOPLAN, 1993)
Dentro de la flora terrestre encontramos especies anuales resistentes a la inundación,
entre estas tenemos Hymenachne amplexicaulis, Panicum elefantipes, Echinocloa
cruz-pavonis, Leersia hexandra, Mimosa pigra, Cyperus surinamensis,
Rhynchospora sp. en substratos arenosos y Ludwiigia erecta, L. decurrens,
Phytolacca sp., Aeschinomene sensitiva, Mariscus ligularis, Fimbristyis lottoralis en
substratos lodosos (Caicedo & Lara, 1998).
3.9 FAUNA (Caicedo & Lara, 1998)
35
Dentro de la ictiofauna encontramos especies que viven permanentemente dentro de
las ciénagas, otras que son visitantes ocasionales y otras que viven allí las primeras
etapas de su desarrollo y salen luego al mar a completar su ciclo. Muchas de estas
especies no tienen utilidad directa como alimento humano ya sea por que su tamaño
es muy pequeño o porque son escasas, pero cumplen una función definida en la
cadena trófica de estos ecosistemas.
Dentro de los invertebrados que presentan una importancia comercial para las
poblaciones aledañas, encontramos a moluscos como la Crassostrea rhizophorae y el
Strombus gigas; y crustáceos como camarones del género Penaneus y jaibas del
género Callinectes.
Las formaciones de manglares sirven de enlace entre la fauna marina y la terrestre, ya
que representan una zona de transición en la que muchas especies de pájaros que
pertenecen al monte, anidan en los manglares como es el caso de la paloma, la tórtola
y algunas especies de gavilán. Aquí también encontramos mamíferos como el
"aullador rojo", el venado y el tigrillo, reducido a la zona boscosa. Con respecto a la
herpetofauna, se presentan tortugas, iguanas y babillas, que muy poco se ven por la
influencia del hombre en estas zonas.
36
4. FORMULACION DEL PROBLEMA Y JUSTIFICACIÓN
4.1 FORMULACION DEL PROBLEMA
La preservación y conservación de los manglares no solamente favorece a las
especies de plantas denominadas manglar, sino también a un ecosistema en el que se
encuentran otros organismos como mamíferos, aves, reptiles, anfibios, peces e
invertebrados que dependen del manglar como su hábitat, zona de alimentación,
reproducción y desarrollo. De esta forma su inadecuado uso y explotación, además
de disminuir las áreas de cobertura vegetal, conlleva a la desaparición de muchas
otras especies que hacen parte de cadenas tróficas importantes para el hombre y la
naturaleza, originando así un desequilibrio en muchos otros ecosistemas (Bohórquez,
1985).
La presencia de aguas dulces dentro de los ecosistemas acuáticos marinos, genera una
serie de repercusiones que se ven reflejadas en los cambios de la composición de las
comunidades. Este cambio es generado por el nivel de contaminantes y de materia
orgánica que son transportados hasta el mar. Este caso se presenta en las zonas
estudiadas de Barbacoas y Barú, ya que aledañas a ellas se encuentra la
desembocadura del Canal del Dique, el cual transporta desechos provenientes de
numerosas poblaciones del interior del país.
De acuerdo al ciclo de mareas que se presentan en esta zona del Caribe, en ciertas
épocas del año, las aguas provenientes del Canal del Dique, llegan hacia los
ecosistemas de manglar generando una serie de cambios en la calidad de las aguas. Es
importante establecer que tan relevantes son los efectos que tienen tales cambios
sobre la composición y densidad de las comunidades de macroinvertebrados
asociados y de esta manera poder tomar medidas en cuanto a la protección de estos
ecosistemas.
37
Sin embargo, existe aun poca información sobre la composición de las comunidades
asociadas a las raíces de manglar en esta región de Colombia, que sirva de base para
diseñar proyectos de investigación que indaguen sobre la influencia de los aportes del
Canal en la estructura de las comunidades.
La evaluación de esta influencia, puede hacerse indirectamente comparando la
composición de estas comunidades con las variaciones de algunos factores físico-
químicos, que se consideran importantes en el desarrollo de los ecosistemas, durante
cierto periodo de tiempo. El presente estudio pretende conocer la fauna asociada a las
raíces de Rhizophora mangle en dos sectores con diferente influencia del Canal del
Dique y preliminarmente discutir algunos factores que pueden estar determinando
esta composición.
4.2 JUSTIFICACION DE LA INVESTIGACION
Uno de los limitantes que tienen los programas de restauración de los ecosistemas de
manglar, es el desconocimiento de su composición biológica, por lo que no es
posible restablecer o reconstruir fielmente la función y estructura de estos sistemas
naturales (Sánchez et al., 2000).
Resulta por lo tanto, útil conocer cuales son las especies de macroinvertebrados que
dependen directamente de la existencia del manglar y en especial del Rhizophora
mangle, ya que muchas de ellas pueden llegar a tener importancia económica o
simplemente ser el alimento de algún otro organismo que si tenga esta importancia y
de esta manera conocer a quienes sé esta beneficiando indirectamente cuando se
conserva este ecosistema.
38
5. OBJETIVOS
Objetivo General: Reconocer taxonómicamente los invertebrados asociados a las
raíces de Rhizophora mangle en dos sectores de la Bahía de Barbacoas y dos sectores
de la Isla de Barú y evaluar preliminarmente algunas posibles variables que pueden
estar afectando la composición faunística.
Objetivos Específicos:
1. Realizar un inventario de los macroinvertebrados asociados a las raíces de
Rhizophora mangle en algunas áreas de la Bahía de Barbacoas y la Isla de Barú.
2. Realizar una descripción cualitativa de la distribución vertical típica de las
especies de invertebrados en las raíces de las zonas de estudio.
39
6. MATERIALES Y METODOS
6.1 TIPO DE ESTUDIO
El presente estudio es de tipo observacional y descriptivo, haciéndose observaciones
directas de las especies de macroinvertebrados asociadas al mangle, en diferentes
escenarios.
40
6.2 HIPÓTESIS
Se proponen tres tipos de hipótesis de acuerdo con los resultados esperados:
Hipótesis Alterna: Existe una diferencia en cuanto a la composición faunística de las
comunidades de macroinvertebrados asociados a las raíces de dos estaciones en la
Bahía de Barbacoas, con respecto a dos estaciones en la isla de Barú.
Hipótesis Nula: No existe una diferencia entre la composición faunistica de las
comunidades de macroinvertebrados asociados a las raíces de dos estaciones en la
Bahía de barbacoas con respecto a dos estaciones de la Isla de Barú.
Hipótesis de Trabajo 1: Existe un patrón típico de distribución vertical de las
especies de macroinvertebrados sobre las raíces de Rhizophora mangle para cada una
de las estaciones de estudio.
6.3 RECOLECCIÓN DE INFORMACIÓN
En cada una de las zonas estudiadas, se seleccionaron dos estaciones de muestreo
localizadas en Puerto Naito y la Ciénaga de Cholón en el sector de la Isla de Barú y
Arroyo de Plata con Arroyo Hondo en la Bahía de Barbacoas.
Se colectaron los macroinvertebrados que se encontraron adheridos a las raíces de
Rhizophora mangle, presentando una estrecha relación de asociación con este
sustrato. Se tomaron raíces de mangle completas, siguiendo un transecto de 50m,
cada 5m, para un total de 10 raíces por estación.
Se observó la distribución vertical de las especies en las raíces para identificar
aquellas que prefieren las zonas de choque de oleaje y las que prefieren una mayor
profundidad.
41
Paralelamente a cada muestreo biológico, se registraron datos de temperatura,
salinidad, pH y transparencia de Secchi. Considerando que algunas de estas variables
tienen cambios diarios, se trato de hacer las mediciones a la misma hora y bajo
condiciones meteorológicas similares.
Para la medición del pH se utilizó un pH- metro marca HANNA, para la salinidad un
Salinómetro-Refractómetro 0-100ppt W/ATC Sper Scientific 300011, para la
temperatura un termómetro graduado y para la transparencia el disco de Secchi.
Posteriormente en el laboratorio se procedió a la separación de individuos de las
raíces y luego a preservarlos en formol al 1N. Se contó el número de individuos de
cada una de las especies por raíz y posteriormente se obtuvo el total para cada una de
las estaciones. Las especies de organismos coloniales como poríferos y algunos
urocordados, se contaron por colonias, teniendo en cuenta que cada una se separa de
las demás por una distancia mayor de un milímetro según lo consultado a Sven Zea
especialista en poríferos del INVEMAR (Com. Pers.)
Para la determinación de crustáceos se consultaron las claves de Rathbum (1925 y
1930), Schmit (1940), Barnard (1969), Fenner (1972), Werding (1977), Velez (1977),
Rodríguez (1980), Manning & Holthuis (1981), Ortíz (1983), Jácome (1984), Austin
(1984), Chace (1988), Kensley & Schotte (1989), Wagner (1991) y Holthuis (1993).
Para los poliquetos: Day (1967), Dueñas (1979), Laverde & Rojas (1983), Salazar et
al. (1989). Para los equinodermos: Hendler et al. (1995). Para los poríferos: Hechtel
(1965), Wiedenmayer (1977), Zea (1987) y Rutzler et al. (2000). Para los moluscos:
Abbot (1954), Keen (1960) y Morris (1973). Para diversos grupos se consulto
también a Cdavid et al. (1991). Adicionalmente se solicito ayuda de especialistas para
la revisión de las muestras.
42
Los muestreos se realizaron durante un año, con el fin de tener en cuenta el régimen
pluviométrico y los períodos de mayor y menor influencia del Canal del Dique, y
considerar preliminarmente posible efectos sobre la composición de la comunidad de
macroinvertebrados de manglar.
6.4 ANALISIS DE INFORMACIÓN
Para determinar el porcentaje de abundancia relativa de cada especie en la raíz se
utilizó la siguiente fórmula (Zar, 1999):
Ar= (Ni/N) x 100
Donde:
Ni= número de individuos de la i-esima especie
N = número total de individuos de la raíz
Para determinar la afinidad faunística entre las estaciones de muestreo, se utilizó el
coeficiente de Jaccard (Ramírez, 1999):
C
Sj = ------------- A + B + C
Donde:
Sj = afinidad entre las dos zonas.
A = número de especies en la zona A.
B = número de especies en la zona B.
C = número de especies comunes entre la zona A y la zona B.
43
Considerando los valores de densidad de cada taxa, se estimó también la disimilitud o
distancia con base en el índice de Bray- Curtis (Clarke y Warwick, 1994):
∑ (xki – xkj)
Dij= ---------------------------------
(∑ xki + ∑ xkj)
En donde:
Dij = distancia entre las estaciones i y j.
xki y xkj = abundancia de la especies k en la estación i y j respectivamente.
Los resultados de análisis de clasificación fueron graficados en un dendograma
utilizando la técnica de ligamiento UPGMA. Para la elaboración del dendograma, se
utilizó el programa PRIMER (clarke & Warwick, 1994)
44
7. RESULTADOS Y DISCUSION
7.1 DESCRIPCION BIOLOGICA DE LAS ESTACIONES DE MUESTREO
Los bosques de Rhizophora mangle de cada una de las estaciones de muestreo,
presentan características morfológicas diferentes. Según Sánchez- Páez & Alvarez-
León (1997), los manglares de la Bahía de Barbacoas presentan un mejor desarrollo
que los de la Isla de Barú.
Los árboles de las estaciones Puerto Naito y Ciénaga de Cholón en la Isla de Barú
(Foto 1), no alcanzan más de cinco metros de altura, son muy ramificados y
solamente la parte superior de las ramas se encuentra por fuera del agua. Los árboles
de las estaciones Arroyo de Plata y Arroyo Hondo en la Bahía de Barbacoas (Foto 2),
alcanzan diez metros de altura, tienen troncos más gruesos y solamente la parte
correspondiente a los rizomas se encuentra sumergida.
Las raíces de Rhizophora mangle que se encuentran en las estaciones de muestreo,
difieren en cuanto su morfología. Las raíces de la Isla de Barú, son más grandes y
ramificadas que las de la Bahía de Barbacoas (Fotos 3 y 4), siendo las de la estación
Puerto Naito más densas que las de la Ciénaga de Cholón, y las de Arroyo de Plata
las más pequeñas de las cuatro estaciones, sin presentar ningún tipo de ramificación.
Por presentarse diferencias en cuanto a las áreas de muestreo, solo se manejan los
datos de una manera cuantitativa y descriptiva para cada una de las estaciones, siendo
prudente en la comparación entre estas.
Como resultado de los muestreos realizados en las raíces de Rhizophora mangle, para
todo el estudio se registraron 10543 individuos correspondientes a 53 especies de
macroinvertebrados asociados distribuidos dentro de los Phyla: Porifera, Mollusca,
Annelida, Arthropoda (Crustacea), Echinodermata y Chordata (Urochordata). En la
Tabla 1 se presenta el listado taxonómico de las especies colectadas.
45
El Phylum Arthropoda, representado por crustáceos presento un mayor número de
especies, con un total de 19, seguido por Mollusca con 14, Porifera con 12, Annelida
con 4, el Subphylum Urochordata con 2 y finalmente Echinodermata con 2 (Figura
2).
Figura 2. Porcentaje de las especies muestreadas de macroinvertebrados asociadas a las raíces de Rhizophora mangle por Phylum.
El Phylum Mollusca presentó el mayor número de individuos (6094), seguido por
Crustacea (3609), Annelida (563), Porifera (205), Urochordata (277) y finalmente
Echinodermata (199).
A pesar que en la comunidad asociada a las raíces de mangle se encuentran
representantes de la mayoría de los grupos de macroinvertebrados, los crustáceos y
moluscos sobresales por su alta abundancia (Hogarth, 1999), coincidiendo con los
resultados obtenidos para este estudio.
46
PORCENTAJE DE ESPECIES POR PHYLUM
23%
26%8%
35%
4% 4%P ORIFERA
MOLLUSCA
ANNELIDA
ART HROP ODA
ECHINODERM AT A
CHORDAT A
Tabla 1. Listado sistemático de las especies asociadas a las raíces del mangle rojo Rhizophora mangle L en la
Bahía de Barbacoas y la Isla de Barú (Clasificación según Ruppert & Barnnes, 1996 y Zea, 1987).
PHYLUM PORIFERA
CLASE DEMOSPONGEA
ORDEN HAPLOSCLERIDA
FAMILIA HALICLONIDAE
GENERO Haliclona
Haliclona piscaderaensis Van Soest, 1980
Haliclona caerulea Hetchel, 1965
Haliclona sp. 1
Haliclona sp. 2
FAMILIA NIPHATIDAE
GENERO Niphates
Niphates erecta Duchassaing & Michelotti, 1864
ORDEN POECICLOSCLERIDA
FAMILIA MYCALIDAE
GENERO Mycale
Mycale laevis (Carter, 1882)
FAMILIA MYXYLLIDAE
GENERO Tedania
Tedania ignis (Duchassaing & Michelotti, 1864)
GENERO Lissodendoryx
Lissodendoryx isodictyalis (Carter, 1882)
ORDEN DICTYOCERATIDA
FAMILIA THORECTIDAE
GENERO Ircinia
Ircinia felix (Duchassaing & Michelotti, 1864)
GÉNERO Hyrtios
Hyrtios proteus (Duchassaing & Michelotti, 1864)
ORDEN CHORISTIDA
FAMILIA GEODIIDAE
GENERO Geodia
Geodia gibberosa Lamarck, 1815
Geodia papyracea
47
Tabla 1. Continuación...
PHYLUM MOLLUSCA
CLASE GASTROPODA
SUBCLASE PROSOBRANCHIA
ORDEN ARCHAEOGASTROPODA
SUPERFAMILIA FISSURELLACEA
FAMILIA FISSURELLIDAE
GENERO Diodora
Diodora cayenensis Lamarck
SUPERFAMILIA NERITACEA
FAMILIA NERITIDAE
GENERO Nerita
Nerita tesellata Gmelin
ORDEN MESOGASTROPODA
SUPERFAMILIA LITTORINACEA
FAMILIA LITTORINIDAE
GENERO Littorina
Littorina angulifera (Beguaert, 1943)
SUPERFAMILIA STROMBACEA
FAMILIA STROMBIDAE
GENERO Strombus
Strombus alatus Gmelin
SUPERFAMILIA TONNACEA
FAMILIA CYMATIIDAE
GENERO Cymatium
Cymatium vespaceum Lamarck
ORDEN NEOGASTEROPODA
SUPERFAMILIA MURICACEA
FAMILIA MURICIDAE
GENERO Murex
Murex recurvirostris Baker
FAMILIA THAIDIDAE
GENERO Thais
Thais rustica Lamarck
SUBCLASE OPISTOBRANCHIA
ORDEN ANASPIDEA
ANASPIDEA sp.
48
Tabla 1. Continuación...
CLASE BIVALVIA
SUBCLASE PTERIOMORPHIA
ORDEN ARCOIDA
FAMILIA ARCIDAE
GENERO Arca
Arca imbricata Brug
ORDEN MYTILOIDA
FAMILIA MYTILIDAE
GENERO Brachidontes
Brachidontes exustus Linné
ORDEN PTEROIDA
FAMILIA ISOGNOMONIDAE
GENERO Isognomon
Isognomon alatus (Gmelin, 1791)
FAMILIA PTERIIDAE
GENERO Pinctada
Pinctada radiata Leach
ORDEN OSTREOIDA
FAMILIA OSTREIDAE
GENERO Crassostrea
Crassostrea rhizophorae Guildin, 1828
SUBCLASE HETERODONTA
ORDEN MYOIDA
FAMILIA TEREDINIDAE
GENERO Teredo
Teredo sp.
PHYLUM ANNELIDA
CLASE POLYCHAETA
SUBCLASE SEDENTARIA
FAMILIA SABELLIDAE
GENERO Sabellastarte
Sabellastarte magnifica Shaw, 1800
FAMILIA SERPULIDAE
GENERO Hydroides
Hydroides dianthus Zibrowius, 1770
49
Tabla 1. Continuación...
SUBCLASE ERRANTIA
FAMILIA EUNICIDAE
GENERO Eunice
Eunice filamentosa Grube, 1856
Eunice mutilata Webster, 1894
PHYLUM ARTHROPODA
SUBPHYLUM CRUSTACEA
CLASE CIRRIPEDIA
ORDEN THORACICA
SUBORDEN BALANOMORPHA
FAMILIA BALANIDAE
GENERO Balanus
Balanus sp.
ORDEN DECAPODA
SUBORDEN PLEOCYMATA
INFRAORDEN CARIDEA
SUPERFAMILIA ALPHEOIDEA
FAMILIA ALPHEIDAE
GENERO Synalpheus
Synalpheus minus (Say, 1818)
FAMILIA HIPPOLYTIDAE
GENERO Lysmata
Lysmata grabhami Riso, 1816
SUPERFAMILIA PALAMONOIDEA
FAMILIA PALAMONIDAE
GENERO Periclimenes
Periclimenes americanus (Kingsley, 1878)
GENERO Macrobrachium
Macrobrachium sp.
INFRAORDEN ANOMURA
SUPERFAMILIA PAGUROIDEA
GENERO Clibanarius
Clibanarius vittatus (Bosc, 1802)
50
Tabla 1. Continuación...
SUPERFAMILIA GALATHOIDEA
FAMILIA PORCELLANIDAE
GENERO Petrolisthes
Petrolisthes galathinus (Bosc, 1802)
Petrolisthes amoneus (Guerin, 1855)
INFRAORDEN BRACHIURA
SECCION OXYRHYNCHA
SUPERFAMILIA MAJOIDEA
FAMILIA MITHRACIDAE
GENERO Mithraculus
Mithraculus coryphe (Herbst, 1801)
GENERO Microphrys
Microphrys bicornotus (Latreille, 1825)
FAMILIA MAJIDAE
GENERO Stenorhynchus
Stenorhynchus seticornis (Herbst, 1788)
SECCION BRACHYRHYNCHA
FAMILIA GRASPIDAE
GENERO Pachygrapsus
Pachygrapsus gracilis (Saussure, 1858)
FAMILIA XANTHIDAE
GENERO Panopeus
Panopeus herbstii H. Milne Edwards, 1834
ORDEN ISOPODA
SUBORDEN FLABELLIFERA
GENERO Rocinela
Rocinela signata Schioedte & Meinert, 1879
FAMILIA SPHAEROMATIDAE
GENERO Paracerceis
Paracerceis sp.
FAMILIA CORALLANIDAE
GENERO Excorallana
Excorallana sexticornis (Richardson, 1901)
Excorallana tricornis (Hansen, 1890)
51
Tabla 1. Continuación...
CLASE MALACOSTRACA
SUBCLASE HOPLOCANIDA
ORDEN STOMATOPODA
FAMILIA GONODACTILYDAE
GENERO Gonodactylus
Gonodactylus sp.
CLASE AMPHIPODA
SUBORDEN GAMMARIDEA
GAMMARIDEA SP.
PHYLUM ECHINODERMATA
SUBPHYLUM ASTEROZOA
CLASE OPHIUROIDEA
ORDEN OPHIURIDA
FAMILIA OPHIACTIDAE
GENERO Ophiactis
Ophiactis savignyi (Muller & Troschel)
FAMILA OPHIOTRICHIDAE
GENERO Ophiothrix
Ophiothrix orstedii Lutken
PHYLUM HEMICHORDATA
SUBPHYLUM UROCHORDATA
CLASE ASCIDIACEA
ORDEN PHLEBOBRANCHIA
GENERO Ascidia
Ascidia sp.
ORDEN STOLIDOBRANCHIA
GENERO Botryllus
Botryllus sp.
52
En la Tabla 2, se observa que el mayor número de especies para todo el estudio, se
registró en Mayo y Octubre, meses que corresponden a la temporada lluviosa en esta
zona. Sin embargo, esta diferencia no es muy amplia con respecto al período seco y
de transición e inclusive dentro de una misma estación en ocasiones no hay cambio
en el número de especies.
La estación de la Ciénaga de Cholón (Isla de Barú) fue la más rica en especies con un
número máximo de 34 en el mes de Febrero y un mínimo de 32 en Diciembre (Tabla
2). Las estaciones de Arroyo de Plata y de Arroyo Hondo (Bahía de Barbacoas)
fueron las que menos especies presentaron: Arroyo Hondo siempre con nueve
especies, mientras que en Arroyo de Plata su máximo fue de 11 en Mayo y su mínimo
7 en Febrero.
Tabla 2. Número de especies de macroinvertebrados asociados en cada una de las estaciones de muestreo desde Febrero 22 hasta Diciembre 14 de 2000.
ESTACION/MES FEBRERO MAYO OCTUBRE DICIEMBRE
Isla de BarúPuerto Naito 28 30 25 24
Ciénaga de Cholón 34 33 33 32
Bahía de Barbacoas
Arroyo de Plata 7 11 9 9
Arroyo Hondo 9 9 9 9
La Tabla 3, muestra las especies y su presencia en las diferentes estaciones durante
los cuatro meses de muestreo. Solo se observaron poríferos en las estaciones de
Puerto Naito y Ciénaga de Cholón; las mismas doce especies en ambos sitios. En
cuanto a las 14 especies de moluscos que se registraron solo tres fueron afines para
las cuatro estaciones: el caracol Littorina angulifera y los bivalvos Crassostrea
rhizophorae y Brachidontes exustus, situación similar ocurrió con el anélido Eunice
53
filamentosa, los decápodos Pachygrapsus gracilis y Panopeus herbstii y el cirrípedo
Balanus sp.
Por otro lado, la estación de Arroyo de Plata, es la única que no presenta el bivalvo
Isognomon alatus, especie que se encuentra en las otras tres estaciones con
abundancias relativas altas.
La estación de la Ciénaga de Cholón fue la única en presentar ofiuros (Ophiactis
savignyi y Ophiothrix orstedii). Una característica muy llamativa de estas especies, es
su relación con la esponja Tedania ignis. Durante los muestreos que se registró esta
esponja, los ofiuros se encontraban dentro de las cavidades y túneles de su interior.
En el mes de Diciembre, cuando no se registró esta esponja, los ofiuros se
encontraron en el interior de especies del género Haliclona pero disminuyo el número
de individuos.
Algunas especies como Nerita tesellata, Stenorhynchus seticornis y Strombus alatus,
se presentaron solamente una vez en las estaciones a lo largo de todo el año (Puerto
Naito y Arroyo de Plata respectivamente).
7.2 DISTRIBUCION DE LOS INVERTEBRADOS SOBRE LAS RAICES
La comunidad de macroinvertebrados que se encuentra asociada a las raíces del
Rhizophora mangle, está compuesta principalmente por Poríferos, Moluscos,
Anélidos, Crustáceos, Equinodermos y Urocordados (Foto 5).
54
Tabla 3. Resumen total del número de individuos colectados para las cuatro estaciones de muestreo en la Isla de Barú y la Bahía de Barbacoas (Febrero – Diciembre, 2000).
Especies registradas Puerto Naito- Isla de Barú Ciénaga de Cholón- Isla de Barú Arroyo de Plata- Bahía de Barbacoas Arroyo Hondo- Bahía de BarbacoasFebrero Mayo Octubre Diciembre Total Febrero Mayo Octubre Diciembre Total Febrero Mayo Octubre Diciembre Total Febrero Mayo Octubre Diciembre Total
Haliclona piscaderaensis 3 3 0 5 11 2 2 0 3 7 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0Haliclona caerulea 0 1 0 1 2 1 2 0 4 7 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0Haliclona sp.1 0 1 2 2 5 0 2 5 0 7 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0Haliclona sp. 2 0 0 0 2 2 0 3 3 3 9 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0Niphates erecta 2 1 2 3 8 2 2 3 16 23 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0Mycale laevis 2 3 4 1 10 4 6 1 2 13 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0Tedania ignis 8 13 3 1 25 12 14 2 0 28 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0Lissodendoryx Isodictyalis 1 2 0 3 6 3 1 0 2 6 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0Ircinia felix 0 2 0 0 2 3 6 2 0 11 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0Hyrtios proteus 0 1 0 0 1 0 4 1 0 5 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0Geodia gibberosa 0 3 0 0 3 1 4 1 2 8 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0Geodia papyracea 2 1 1 0 4 0 0 0 2 2 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0Diodora cayenensis 2 0 0 0 2 10 3 8 4 25 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0Nerita tesellata 1 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0Littorina angulifera 1 4 7 1 13 0 1 0 0 1 3 8 2 0 13 4 15 11 21 51Strombus alatus 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 1 0 0 0 0 0Cymatium vespaceum 0 0 0 0 0 0 0 5 0 5 0 0 0 1 1 0 0 0 0 0Murex recurvirostris 1 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0Thais rustica 0 0 0 0 0 0 1 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0ANASPIDEA sp. 0 0 1 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0Arca imbricata 0 0 0 0 0 0 0 1 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0Brachidontes exustus 99 97 178 73 447 132 106 184 123 545 35 30 29 72 166 223 186 66 360 835Isognomon alatus 98 125 245 61 529 154 172 226 124 676 0 0 0 0 0 238 238 75 315 866Pinctada radiata 0 0 0 0 0 0 0 1 2 3 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0Crassostrea rhizophorae 103 121 100 76 400 112 105 71 32 320 52 51 48 82 233 214 214 61 393 882Teredo sp. 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 5 10 2 54 71 4 0 0 0 4Sabellastarte magnifica 5 6 8 22 41 11 5 2 10 28 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0Hydroides dianthus 4 7 14 30 55 7 22 3 44 76 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0Eunice filamentosa 8 4 8 5 25 18 6 14 18 56 0 6 0 4 10 0 0 2 5 7Eunice mutilata 5 0 6 9 20 17 7 2 14 40 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0
55
Tabla 3. Continuación...
Especies registradas Puerto Naito- Isla de Barú Ciénaga de Cholón- Isla de Barú Arroyo de Plata- Bahía de Barbacoas Arroyo Hondo- Bahía de BarbacoasFebrero Mayo Octubre Diciembre Total Febrero Mayo Octubre Diciembre Total Febrero Mayo Octubre Diciembre Total Febrero Mayo Octubre Diciembre Total
Balanus sp. 38 48 43 54 183 46 48 66 150 310 28 30 46 162 266 54 112 856 553 1575Synalpheus minus 10 9 15 18 52 12 36 9 21 78 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0Lysmata grabhami 0 2 0 0 2 4 0 0 0 4 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0Periclimenes americanus 2 2 0 0 4 7 0 3 0 10 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0Macrobrachium sp. 0 0 1 0 1 1 0 5 1 7 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0Clibanarius vittatus 24 2 8 0 34 0 0 0 0 0 0 6 0 0 6 0 0 0 0 0Petrolisthes galathinus 0 0 0 0 0 3 0 6 1 10 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0Petrolisthes amoneus 0 3 4 2 9 8 1 10 2 21 0 0 0 0 0 7 5 8 5 25Mithraculus coryphe 0 0 2 2 4 0 0 4 1 5 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0Microphrys bicornotus 4 2 2 9 17 6 0 9 1 16 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0Stenorhynchus seticornis 0 0 1 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0Pachygrapsus gracilis 8 10 8 7 33 25 22 10 1 58 4 13 12 16 45 77 46 23 33 179Panopeus herbstii 22 9 0 5 36 43 19 24 7 93 0 2 5 44 51 21 76 64 157 318Rocinela signata 8 5 0 0 13 7 15 0 3 25 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0Paracerceis sp. 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 2 6 32 9 49 0 5 0 0 5Excorallana sexticornis 2 1 0 0 3 2 8 0 0 10 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0Excorallana tricornis 2 2 0 0 4 4 9 0 2 15 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0Gonodactylus sp. 1 0 0 0 1 1 0 2 0 3 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0GAMMARIDEA SP. 0 0 1 0 1 4 2 0 25 31 0 0 1 0 1 0 0 0 0 0Ophiactis savignyi 0 0 0 0 0 97 48 6 22 173 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0Ophiothrix orstedii 0 0 0 0 0 13 12 6 4 35 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0Ascidia sp. 0 0 0 0 0 3 12 6 18 39 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0Botryllus sp. 0 0 19 20 39 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0TOTAL 466 490 683 412 2051 775 706 701 664 2846 129 163 177 444 913 842 897 1166 1842 4747
56
Esta fauna se puede catalogar en dos tipos: 1) Fauna sesil, que está compuesta por las
esponjas, bivalvos y anémonas, que forman una cubierta biológica sobre las raíces. 2)
Fauna móvil, que son los demás grupos que utilizan dicha cubierta para alimentación
o refugio (Rützler & Feller, 1996). Batista (1980) también propuso una división para
la comunidad de las raíces de mangle: Los asociados a las raíces como sustrato, que
seria la fauna sesil, los que utilizan las raíces como refugio, como el caso de los
peces; los visitantes como estomatópodos, cangrejos y peces, y los que habitan dentro
de las algas como los isópodos y los amfípodos. Esta división depende de la ecología
de cada una de las especies y de sus hábitos alimenticios.
Sobre la raíz se observa una distribución vertical de las especies de
macroinvertebrados, que puede dividirse en tres estratos para entender mejor los
hábitos de tales especies (Tabla 4). Existe una parte área, que es la porción de la raíz
que queda por fuera de la zona de nivel de marea y una parte acuática que puede
dividirse a su vez en: una superior que está entre el nivel mínimo y máximo de marea
(zona de transición) y una inferior que siempre está sumergida. Jácome (1984)
propuso una clasificación parecida para la distribución de los Crustáceos de la Bahía
de Barbacoas a lo largo de las raíces de mangle. En adición a esta clasificación, en
este informe se considera otra área que correspondería a la parte interna de la raíz
(Figuras 5 a 8).
Las diferencias observadas entre cada una de las raíces típicas de las estaciones de
muestreo, pueden estar relacionadas con las diferencias en las abundancias y
presencia de las especies raras y dominantes encontradas para cada una de las
estaciones.
En la parte área se encontró únicamente al caracol Littorina angulifera, y raramente
se le puede encontrar adherido a las valvas vacías de Crassostrea sobre la zona de
transición. En la zona de transición se hallo el bivalvo Crassostrea rhizophorae y el
cirrípedo Balanus sp., especies que presentan adaptaciones que les permiten soportar
57
el choque del oleaje característico de la zona en que se encuentran y poder seguir
aferrados a las raíces (Mosquera & Bernal, 1975). Como una excepción, en la
estación Arroyo Hondo (Bahía de Barbacoas) Balanus sp. se encuentra cubriendo
toda la raíz.
En la parte que siempre está sumergida, se ubicó la mayoría de los grupos de
macroinvertebrados: los bivalvos Isognomon alatus y Brachidontes exustus casi
siempre y en mayor número hacia la parte superior, aunque este último también se
puede encontrar en la parte inferior de la raíz junto a Thais rustica. Junto a estos
bivalvos y adheridos a sus conchas se encuentran Diodora cayenensis y los demás
moluscos que prefieren la parte superior del área sumergida.
Los poríferos se distribuyen a lo largo de toda la parte sumergida, inclusive sobre las
valvas del I. alatus y alguna que otra Ascidia sp. Sobre I. alatus se fijan los tubos
calcáreos de Hydroides dianthus y abriéndose campo entre los bivalvos y las esponjas
se desarrolla Sabellastarte magnifica. Sobre las partes de la raíz que no presentan
esponjas se encuentra el urocordado colonial Botryllus sp., que según Rivadeneira
(1989) puede reflejar una competencia por parte de estos organismos coloniales sobre
el recurso limitante (área disponible de la raíz).
Sobre esta cubierta biológica se ubicaron los grupos restantes, como los ofiuros
Ophiactis savignyi y Ophiothrix orstedii, que se encuentran en el interior de la
esponja Tedania ignis, al igual que algunos individuos del camarón Synalpheus
minus. En el interior de los poríferos también se halló el cangrejo Microphrys
bicornotus, cuyo caparazón a su vez se encuentra cubierto por esponjas, lo cual le
facilita el camuflaje.
Palacio (1983) sugiere que la presencia de estos organismos coloniales asociados a
las raíces de mangle origina microhábitats para algunas especies móviles, que
encuentran dentro de estos poríferos zonas de refugio o alimentación.
58
Tabla 4. Esquema general de presencia- ausencia de las especies de macroinvertebrados a lo largo de los cuatro estratos de división de la Raíz.
Especies registradas Estrato aéreo Estrato Acuático Estrato InternoSuperior Inferior
Haliclona piscaderaensis XHaliclona caerulea XHaliclona sp.1 XHaliclona sp. 2 XNiphates erecta XMycale laevis XTedania ignis XLissodendoryx Isodictyalis XIrcinia felix XHyrtios proteus XGeodia gibberosa XGeodia papyracea XDiodora cayenensis XNerita tesellata XLittorina angulifera XStrombus alatus XCymatium vespaceum XMurex recurvirostris XThais rustica XANASPIDEA sp. XArca imbricata XBrachidontes exustus XIsognomon alatus XPinctada radiata XCrassostrea rhizophorae XTeredo sp. XSabellastarte magnifica XHydroides dianthus XEunice filamentosa XEunice mutilata X
59
Tabla 4. Continuación...
Especies registradas Estrato aéreo Estrato Acuático Estrato InternoSuperior Inferior
Balanus sp. XSynalpheus minus XLysmata grabhami XPericlimenes americanus XMacrobrachium sp. XClibanarius vittatus X X XPetrolisthes galathinus XPetrolisthes amoneus XMithraculus coryphe XMicrophrys bicornotus XStenorhynchus seticornis XPachygrapsus gracilis X X XPanopeus herbstii XRocinela signata XParacerceis sp. XExcorallana sexticornis XExcorallana tricornis XGonodactylus sp. XGAMMARIDEA SP. XOphiactis savignyi XOphiothrix orstedii XAscidia sp. XBotryllus sp. X
En los espacios entre las esponjas y los bivalvos se encuentran los anélidos Eunice
filamentosa y E. mutilata, el cangrejo Mithraculus coryphe y a las especies de
isópodos, camarones, cangrejos del genero Petrolisthes, amfípodos y estomatópodos
que hallan refugio dentro de este complejo de túneles y cavidades.
En adición a estas especies, que permanecen todo el tiempo en un área específica, se
encuentran otras generalistas como el ermitaño Clibanarius vittatus y el cangrejo
60
Pachygrapsus gracilis ubicados en alguna de las tres áreas de la raíz, aunque tienen
preferencia por la parte acuática para evitar efectos del resecamiento (Jácome, 1984).
En la zona interna de la raíz, se hallaron el molusco Teredo sp. y el isópodo
Paracerceis sp., organismos de hábitos perforadores que viven en galerías
construidas por ellos mismos.
Espinosa (1980) y Leyton et al. (1992) hablan de una zonación vertical de los
organismos sobre las raíces. Como esquema general se encuentran los moluscos y
cirrípedos sobre la porción de la raíz que mantiene exposiciones periódicas, mientras
que poríferos, urocordados y demás grupos se encuentran en la porción que
permanece sumergida. Este esquema propuesto por los autores, coincide con las
observaciones realizadas en este estudio, lo que hablaría de una posible raíz típica de
Rhizophora mangle para esta zona del Caribe.
La distribución de los macroinvertebrados depende de las especies que se encuentren
en cada una de las estaciones de muestreo y del tamaño de las raíces de mangle en
cada sitio. La descripción se aplica mejor a las raíces de las estaciones Puerto Naito y
Ciénaga de Cholón, en la Isla de Barú, donde se encontró la mayoría de las especies.
Por otro lado, como las condiciones de las dos zonas son diferentes algunas especies
no se presentan, por lo que las que podrían ser dominantes en una zona, como es el
caso del Balanus en Arroyo Hondo (Bahía de Barbacoas), en otras están reducidas en
densidad debido a la competencia por el espacio con otros organismos.
La mayor longitud de las raíces y la presencia de más estratos y por lo tanto
microhábitats, puede estar originando la presencia de una comunidad más rica en
especies. Esto podría sustentar la presencia de un mayor número de especies en las
raíces pertenecientes a las estaciones de la Isla de Barú que son las que presentan un
mayor número de estratos comparadas con las raíces de la Bahía de Barbacoas.
61
Rützler & Feller (1996) afirman que los mangles se benefician con la presencia de
algunos macroinvertebrados, ya que los protegen del ataque de organismos
perforadores que ocasionan daño en las raíces de estos árboles. Esto puede explicar la
presencia de organismos como el Teredo sp. y Paracerceis sp. en las raíces de las
estaciones Arroyo de Plata y Arroyo Hondo en la Bahía de Barbacoas (Tabla 3),
donde se encontró un menor número total de invertebrados por raíz
Ellison et al. (1996) habla de interacciones positivas entre algunos grupos de
invertebrados con los árboles de Rhizophora mangle, tal es el caso de los poríferos,
los cuales participan en el flujo del Nitrógeno inorgánico que va de las esponjas por
vía adventicia hasta las raíces del manglar, al igual que otros micronutrientes como el
Carbono provenientes del metabolismo de estos invertebrados. Lo anterior muestra la
opción de considerar a algunos grupos de invertebrados como posibles indicadores
del estado de desarrollo de las florestas de manglar en trabajos de conservación y
preservación de estos ecosistemas.
Los bosques de mangles son un ecosistema rico en nutrientes reciclados que presenta
altas tazas de productividad, pero sus ocupantes son afectados fácilmente por
fluctuaciones de la salinidad y la temperatura, abundancia de sedimentos, desecación
y escasez de un substrato fijo (Rützler & Feller, 1987-88), de las cuales las tres
primeras pueden ser más estables o propicias en las estaciones de la isla de Barú.
62
7.3 VARIABLES FISICO- QUIMICAS
Los valores de las variables físico- químicas medidas para este trabajo, fluctuaron
levemente entre los períodos de muestreo (Tabla 5).
La Temperatura más alta registrada fue de 31°C y ocurrió durante el mes de Mayo
(Periodo de lluvias) en la estación de Arroyo Hondo, mientras que la más baja fue de
28 °C para Febrero (Temporada seca) en Puerto Naito y Arroyo Hondo, siendo los
valores de 29 y 30°C los que se presentaron en la mayoría de las estaciones. Según
Espinosa (1980) este factor no parece influir en la distribución y abundancia de las
especies asociadas, al igual que lo observado en este estudio.
La salinidad más alta registrada fue de 35ppm en la mayor parte de las estaciones de
muestreo, mientras que la más baja fue de 28ppm en Arroyo de Plata (Bahía de
Barbacoas) en el mes de Octubre (Periodo de lluvias).
Los factores de salinidad y temperatura pueden condicionar la distribución,
abundancia y composición faunística de las lagunas de manglar (Palacio, 1983). Así
mismo Espinosa (1980) manifiesta que la salinidad tiene una influencia directa sobre
la abundancia y distribución de acuerdo a sus rangos de tolerancia. Estas
apreciaciones podrían explicar la ausencia de la especie Isognomon alatus en la
estación de Arroyo Hondo (Bahía de Barbacoas) cuando la salinidad tiende a la baja.
Los valores del pH registrados presentaron pequeñas variaciones para cada una de las
estaciones muestreadas. El valor más alto registrado fue de 9.2 en Puerto Naito
durante Octubre y Diciembre, la Ciénaga de Cholón en Octubre y Arroyo de Plata en
Mayo, mientras que el mínimo fue de 8 en la estación de Arroyo Hondo en Febrero.
En las estaciones de Puerto Naito y Ciénaga de Cholón de la Isla de Barú la
trasparencia fue total, observándose siempre el fondo. Paras las estaciones de la Bahía
63
de Barbacoas, la transparencia tuvo un promedio de 57.5 cm para Arroyo de Plata y
de 70 cm para Arroyo Hondo con profundidades de 1.20 m y 6.10 m respectivamente.
La ausencia de datos tomados sistemáticamente y con una periodicidad adecuada, no
permite establecer relaciones directas entre las variables físico- química medidas y el
cambio en la comunidad, sin embargo se hacen algunas observaciones preliminares
basadas en información bibliográfica.
A pesar de que en este estudio no se midió la turbidez del agua en las estaciones de
muestreo, autores como Ellison et al. (1996), indican que la baja abundancia de
invertebrados en los manglares va de la mano con las altas tazas de sedimentación y
depende de las condiciones geomorfológicas propias de la zona donde se encuentre.
Este planteamiento de Ellison, en cierto modo puede explicar la diferencia en las
comunidades de macroinvertebrados de este estudio, ya que de acuerdo con Sanchez-
Páez & Alvarez- León (1997), las características geomorfológicas de las dos zonas
son disimiles: mientras la Isla de Barú tiene formaciones Miocenas de arcillas y
calizas, la Bahía de Barbacoas está constituida por arcillas orgánicas muy finas y sus
caños están cubiertos por una arena gris fina o arcilla orgánica.
Otros autores como Cadavid et al. (1991), también atribuyen el bajo número de
individuos a la turbidez así como a otros factores: el transporte de material sólido, a
corrientes profundas que atraviesan las raíces y a la fuerza mecánica del oleaje.
El posible efecto de la turbidez sobre organismos como los poríferos, indican que su
distribución se ve afectada por la presencia de sedimentos (Wulff, 2000; Rützler et
al., 2000), excluyéndolas completamente de los manglares localizados en las
desembocaduras de los ríos (Kochane, 2000). Este hecho puede estar relacionado con
la ausencia de los poríferos en las estaciones de muestreo de la Bahía de Barbacoas, y
la posible ausencia de algunas especies de esponjas como Tedania ignis y Ircinia
felix durante los períodos de entrada de agua proveniente del Canal del Dique a la Isla
de Barú (Tabla 3).
64
Otro factor que también se puede considerar importante en la composición faunística
de las comunidades asociadas, el cual no se midió en este estudio, es la fuerza
mecánica del oleaje. Este factor también determina la ausencia de algunas especies,
ya que solo aquellas que tengan adaptaciones morfológicas, que les permitan soportar
el continuo choque de las olas y su efecto abrasivo, podrán mantenerse adheridas a las
raíces (Wulff, 2000).
Esta podría ser una variable importante en estaciones como Arroyo de Plata (Bahía de
Barbacoas) que se encuentra sometida a un continuo choque del oleaje y solo se
hallan especies como la Crassostrea rhizophorae y el Balanus sp. Además la
influencia de este factor puede estar relacionado con la ausencia de los poríferos para
esta zona, debido a que tales organismos prefieren un movimiento mesurado de las
aguas para prevenir daños físicos en su estructura (Rützler et al., 2000).
7.5 ANALISIS DE INFORMACIÓN
En la Tabla 6 se pueden observar las abundancias relativas de cada una de las
especies en las cuatro las estaciones de muestreo. De las 53 especies que se
colectaron, tres de estas sobresalen por sus abundancias relativas altas, además de que
se presentan en las cuatro estaciones de muestreo durante todos los meses:
Crassostrea rhizophorae, con una abundancia promedio de 18.72%, Brachidontes
exustus con 19.20%, Balanus sp. con 20.54%. Estos valores altos de abundancias
relativas, manifiestan la dominancia de estas especies dentro de la comunidad de
invertebrados.
65
Tabla 5. Variables físico- químicas registradas para cuatro estaciones de muestreo en la Isla de Barú y la Bahía de Barbacoas durante 4 meses de estudio de 2000.
Variables Puerto Naito- Isla de Barú Ciénaga de Cholón- Isla de Barú Arroyo de Plata- Bahía de Barbacoas Arroyo Hondo- Bahía de Barbacoas
Febrero Mayo Octubre Diciembre Febrero Mayo Octubre Diciembre Febrero Mayo Octubre Diciembre Febrero Mayo Octubre Diciembre
Profundidad (m) 1.10 1.10 1.10 1.20 1.20 1.20 1.30 1.30 1.20 1.20 1.30 1.30 6.10 6.0 6.10 6.10
Temperatura (°C) 28 29 30 30 30 30 30 30 30 30 29 29 28 31 29 29
Salinidad (ppm) 35 35 34 35 35 35 35 35 35 35 28 30 34 35 34 30
pH 9 8.7 9.2 9.2 8.3 9 9.2 9 9 9.2 9 9 8 8.5 9 9.1
Penetración Lumínica (cm)
120 120 120 170 140 140 150 150 60 60 50 60 40 40 110 90
66
Otra especie que presenta una abundancia relativa alta y refleja una dominancia
dentro de la comunidad es Isognomon alatus, con un valor promedio de 16.97%, a
pesar de que solo se encuentre en tres de las cuatro estaciones.
Otras especies como los cangrejos Pachygrapsus gracilis y Panopeus herbstii, tienen
un porcentaje, aunque no muy alto, representativo dentro de las raíces del manglar, y
al igual que las especies anteriores, las encontramos en las cuatro estaciones de
muestreo.
Las demás especies de macroinvertebrados, presentan una abundancia relativa
similar, debido a que su presencia no se caracteriza por su elevado número de
individuos y puede variar durante el transcurso del año.
La comunidad de macroinvertebrados que se encuentra asociada en las zonas de
estudio, es una comunidad representada más que todo por los bivalvos, poliquetos y
crustáceos, grupos que se presentan en la gran mayoría de muestreo, que se
comparten para las cuatro estaciones y que mantienen abundancias relativas altas.
Este hecho confirma la apreciación de Vilardy (2000) cuando habla de la dominancia
de las especies de bivalvos en las raíces de mangle, al igual que la monopolización de
estas por parte de algunas especies, como ocurre en las raíces de la estación de
Arroyo Hondo, las cuales durante el mes de Octubre presentan una abundancia
evidente del Balanus sp.
El hecho de conocer cuales especies son las dominantes y cuales son las raras,
permite conocer más a fondo como es la composición y dinámica de estas
comunidades para los futuros programas de conservación y preservación de los
manglares.
67
Para conocer la afinidad entre las estaciones de muestreo, de acuerdo a la
composición de sus comunidades, se calculó el Indice de Jaccard. Este reflejó una
muy baja afinidad entre las estaciones de muestreo, sin embargo las zonas más afines
entre sí fueron Puerto Naito y Cholón con un valor de 0.295 y Arroyo de Plata con
Arroyo Hondo, con 0.264 (Figura 3). También se calculó Jaccard para estimar la
afinidad entre las zonas de la Isla de Barú y La Bahía de Barbacoas dando un valor
de 0.131, el cual muestra que la afinidad entre estas dos zonas es muy baja.
La baja afinidad entre las estaciones de muestreo al igual que los altos valores de
disimilitud de que arrojó Bray- Curtis (Figura 4), entre las estaciones de muestreo, se
atribuye al poco número de especies que comparte entre sí, especialmente las
estaciones de la Bahía de Barbacoas con respecto a las de la Isla de Barú. A pesar de
que entre las cuatro estaciones se compartan las especies dominantes, parece ser que
su diferencia se ve reflejada por las especies que presentan baja abundancia relativa.
Figura 3. Valores de afinidad de Jaccard en las cuatro zonas de muestreo. PN= Puerto Naito, CH= Ciénaga de Cholón, AP= Arroyo de Plata, AH= Arroyo Hondo
68
AFINIDAD ENTRE LAS ZONAS MUESTREADAS
0
0.05
0 .1
0 .15
0 .2
0 .25
0 .3
0 .35
P N-CH P N-AP P N-AH CH-AP CH-AH AP -AH
Figura 4. Dendograma de Clasificación de las estaciones de muestreo de acuerdo a las especies muestreadas desde el 22 de Febrero hasta el 14 de Diciembre de 2000. PN= Puerto Naito, CH= Ciénaga de Cholón, AP= Arroyo de Plata, AH= Arroyo Hondo
69
0,30
0,40
0,50
0,60
0,70
0,80
0,90
1,00
A3
Porce
ntaje
de D
isimi
liarid
ad
CH3 AP2AP1PN2PN3 CH4PN4
A1B
A2
Coeficiente cofénetico: 0,81
PN1AH2 CH2CH1
C D
AH1 AP3 AP4AH4AH3
A
Tabla 6. Abundancia relativa promedio por raíz (AR %) para cuatro estaciones de muestreo en la isla de Barú y la bahía de Barbacoas durante 4 meses de estudio de 2000.
Especies registradas Puerto Naito- Isla de Barú Ciénaga de Cholón- Isla de Barú Arroyo de Plata- Bahía de Barbacoas Arroyo Hondo- Bahía de BarbacoasFebrero Mayo Octubre Diciembre Total Febrero Mayo Octubre Diciembre Total Febrero Mayo Octubre Diciembre Total Febrero Mayo Octubre Diciembre Total
AR AR AR AR AR AR AR AR AR AR AR AR AR AR AR AR AR AR AR ARHaliclona piscaderaensis 0.69 0.65 0 1.17 0.63 0.27 0.26 0 0.31 0.21 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0Haliclona caerulea 0 0.15 0 0.38 0.13 0.11 0.29 0 0.45 0.21 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0Haliclona sp.1 0 0.15 0.29 1.10 0.38 0 0.26 0.66 0 0.23 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0Haliclona sp. 2 0 0 0 0.46 0.12 0 0.39 0.41 0.97 0.44 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0Niphates erecta 0.47 0.22 0.32 0.79 0.45 0.28 0.29 0.24 1.86 0.67 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0Mycale laevis 0.44 0.60 0.62 0.28 0.49 0.51 0.89 0.14 0.31 0.46 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0Tedania ignis 1.70 0.57 0.51 0.28 0.76 1.52 2.03 0.33 0 0.97 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0Lissodendoryx Isodictyalis 0.25 0.37 0 2.14 0.69 0.44 0.16 0 0.26 0.21 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0Ircinia felix 0 0.42 0 0 0.11 0.41 0.86 0.16 0 0.36 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0Hyrtios proteus 0 0.60 0 0 0.15 0 0.57 0.08 0 0.16 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0Geodia gibberosa 0 0.71 0 0 0.18 0.11 0.55 0.17 0.49 0.33 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0Geodia papyracea 0.44 0.23 0.16 0 0.21 0 0 0 0.23 0.06 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0Diodora cayenensis 0.44 0 0 0 0.11 1.27 0.40 0.95 0.57 0.80 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0Nerita tesellata 0.20 0 0 0 0.05 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0Littorina angulifera 0.17 0.78 0.94 0.28 0.54 0 0.15 0 0 0.04 2.27 4.93 2.33 0 2.38 0.45 1.59 1.05 1.03 1.03Strombus alatus 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0.83 0 0 0.21 0 0 0 0 0Cymatium vespaceum 0 0 0 0 0 0 0 0.70 0 0.18 0 0 0 0.16 0.04 0 0 0 0 0Murex recurvirostris 0.18 0 0 0 0.04 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0Thais rustica 0 0 0 0 0 0 0.15 0 0 0.04 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0ANASPIDEA sp. 0 0 0.12 0 0.03 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0Arca imbricata 0 0 0 0 0 0 0 0.14 0 0.04 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0Brachidontes exustus 22.21 19.94 26.77 16.49 21.35 16.85 15.30 26.74 19.45 19.58 23.69 14.34 13.82 18.91 17.69 26.39 20.97 5.54 19.67 18.14Isognomon alatus 21.07 25.81 36.69 13.35 24.23 19.80 24.40 33.92 18.06 24.04 0 0 0 0 0 28.00 26.50 6.51 17.33 19.58Pinctada radiata 0 0 0 0 0 0 0 0.13 0.26 0.10 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0Crassostrea rhizophorae 22.43 24.58 12.87 18.33 19.55 14.37 14.97 10.60 4.88 11.21 37.46 26.09 25.70 19.32 27.14 25.59 24.17 5.39 21.65 19.20Teredo sp. 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 4.51 7.04 1.11 13.37 6.51 0.45 0 0 0 0.11Sabellastarte magnifica 1.07 1.17 1.13 4.45 1.95 1.46 0.76 0.27 1.71 1.05 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0Hydroides dianthus 0.84 1.38 2.23 7.85 3.08 0.93 3.15 0.39 6.91 2.84 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0Eunice filamentosa 1.67 0.80 1.34 1.32 1.28 2.44 0.92 1.76 2.92 2.01 0 3.79 0 1.46 1.31 0 0 0.17 0.23 0.10Eunice mutilata 1.07 0 0.94 2.82 1.21 2.24 0.96 0.25 1.79 1.31 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0
70
Tabla 6. Continuación...
Especies registradas Puerto Naito- Isla de Barú Ciénaga de Cholón- Isla de Barú Arroyo de Plata- Bahía de Barbacoas Arroyo Hondo- Bahía de BarbacoasFebrero Mayo Octubre Diciembre Total Febrero Mayo Octubre Diciembre Total Febrero Mayo Octubre Diciembre Total Febrero Mayo Octubre Diciembre Total
AR AR AR AR AR AR AR AR AR AR AR AR AR AR AR AR AR AR AR ARBalanus sp. 7.72 9.82 6.50 12.44 9.12 6.08 6.94 9.35 25.22 11.90 18.67 20.14 22.83 31.73 23.34 6.11 12.33 73.00 29.40 30.21Synalpheus minus 2.23 1.64 1.97 3.90 2.43 1.65 5.04 1.31 3.12 2.78 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0Lysmata grabhami 0 0.34 0 0 0.08 0.48 0 0 0 0.12 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0Periclimenes americanus 0.40 0.34 0 0 0.19 1.02 0 0.38 0 0.35 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0Macrobrachium sp. 0 0 0.12 0 0.03 0.13 0 0.70 0.10 0.23 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0Clibanarius vittatus 5.15 0.38 0.99 0 1.63 0 0 0 0 0 0 2.79 0 0 0.70 0 0 0 0 0Petrolisthes galathinus 0 0 0 0 0 0.39 0 0.75 0.13 0.32 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0Petrolisthes amoneus 0 0.60 0.55 0.37 0.38 1.00 0.12 1.29 0.26 0.67 0 0 0 0 0 0.87 0.56 0.68 0.33 0.61Mithraculus coryphe 0 0 0.32 0.37 0.17 0 0 1.32 0.15 0.37 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0Microphrys bicornotus 0.89 0.37 0.35 2.62 1.06 0.77 0 0.61 0.12 0.38 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0Stenorhynchus seticornis 0 0 0.12 0 0.03 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0Pachygrapsus gracilis 1.74 2.08 1.14 1.65 1.65 3.15 2.83 1.36 0.13 1.87 11.58 10.38 10.44 2.53 8.73 9.34 4.91 2.07 1.78 4.53Panopeus herbstii 4.59 1.79 0 1.21 1.90 5.75 2.90 2.98 0.86 3.12 0 3.33 2.12 9.54 3.75 2.80 8.39 5.58 8.57 6.33Rocinela signata 1.85 0.96 0 0 0.70 0.89 2.19 0 0.28 0.84 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0Paracerceis sp. 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1.82 6.33 21.07 2.98 8.05 0 0.57 0 0 0.14Excorallana sexticornis 0.35 0.20 0 0 0.14 0.21 1.18 0 0 0.35 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0Excorallana tricornis 0.44 0.36 0 0 0.20 0.61 1.31 0 0.21 0.53 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0Gonodactylus sp. 0.18 0 0 0 0.04 0.13 0 0.29 0 0.10 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0GAMMARIDEA SP. 0 0 0.15 0 0.04 0.54 0.26 0 2.77 0.89 0 0 0.59 0 0.15 0 0 0 0 0Ophiactis savignyi 0 0 0 0 0 12.20 6.32 0.58 2.59 5.42 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0Ophiothrix orstedii 0 0 0 0 0 1.58 1.60 0.48 0.38 1.01 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0Ascidia sp. 0 0 0 0 0 0.39 1.60 0.56 2.54 1.27 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0Botryllus sp. 0 0 2.87 5.95 2.20 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0
71
8. CONCLUSIONES
Las diferencias entre la composición de las comunidades asociadas a las raíces entre
las cuatro estaciones de muestreo, están relacionadas con el tamaño y morfología de
las raíces de R. mangle que encontramos para cada una de las estaciones.
Dependiendo de esta morfología y por lo tanto del número de estratos que podemos
encontrar en cada una de las raíces, se encuentra una distribución vertical de las
especies típica para cada una de las estaciones de muestreo, en función del espacio
disponible para la colonización.
La presencia de organismos coloniales en las raíces para la formación de una cubierta
biológica sobre estas, representa una importancia para el asentamiento de los grupos
móviles que encuentran dentro de esta cubierta lugares de refugio y alimentación.
En la comunidad asociada a las Raíces de R. mangle, se presentan relaciones tanto
intra como interespecíficas, como el caso de las especies de ofiuros relacionadas con
las especies de Poríferos de los géneros Tedania y Haliclona.
El espacio disponible para la colonización de las raíces, es el recurso limitante para
los organismos coloniales como es el caso de las especies de poríferos y urocordados,
los cuales compiten por este.
La salinidad al igual que la presencia de sólidos suspendidos, son algunos de los
factores que presentan un efecto muy marcado en la composición de las comunidades
asociadas al mangle.
72
Dentro de esta comunidad asociada, se encuentran especies que se caracterizan por
abundancias muy altas, reflejando su dominancia, como el caso de las especies de
bivalvos y cirrípedos.
Las estaciones de muestreo, presentan afinidades muy bajas entre sí, basadas en las
pocas especies que comparten, siendo las estaciones de la Isla de Barú las que
presentan un mayor número.
Las altas disimilitudes en la composición biológica de las estaciones de muestreo,
están relacionadas con las especies de baja abundancia que pueden llegar a ser
específicas para determinada estación.
73
9. RECOMENDACIONES
Realizar monitoreos constantes de los factores físico-químicos en las zonas
estudiadas para definir claramente el papel que juegan estas dentro de la composición
y dinámica poblacional de las comunidades de macroinvertebrados.
Realizar mediciones de factores como la turbidez, la sedimentación y la fuerza
mecanica del oleaje, al igual que el patrón de mareas de la zona, ya que estos pueden
estar afectando la composición de las comunidades asociadas.
Medir las áreas de las raíces, así como el área de cobertura de los organismos
coloniales, de manera que se pueda tener una información más completa y
estadísticamente manejable para las diferentes zonas de estudio.
Tener en cuenta los ciclos de vida de las especies de macroinvertebrados,
especialmente de aquellas especies dominantes, ya que pueden explicar el aumento
drástico en el número de individuos en ciertos meses del año.
Escoger más puntos de muestreo en cada una de las dos zonas estudiadas, de manera
que se tenga una mayor información sobre las especies de macroinvertebrados
presentes.
Tener en cuenta no solo la macrofauna sino también la microfauna y algas
planctónicas, puesto que esta información daría más fundamentos para entender
mejor los cambios en las poblaciones que se alimentan de plancton por filtración.
Realizar este tipo de estudios de manera constante y no tener muestreo tan puntuales,
de manera que se pueda tener en cuenta el régimen pluviomérico y el efecto constante
del Canal de Dique.
74
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86
11. ANEXOS
11.1 DESCRIPCION DE ESPECIES
Para cada una de las especies registradas en este trabajo, se realizó su descripción
taxonómica, apartir de la bibliografía existente, la cual se encuentra a continuación
(La parte de la esponjas fue tomada del libro Esponjas del Caribe colombiano, Zea
1987):
11.1.1 PORIFERA
La superficie de las esponjas está perforada por orificios pequeños denominados
ostiolos o poros inhalantes de los cuales se denomina su nombre. Dichos poros
desembocan en una cavidad interior denominada espongocele o atrio, el cual se abre
al exterior por el ósculo. La superficie exterior de las esponjas está cubierta por
células aplanadas llamadas pinacocitos las cuales constituyen el pinacodermo. Cada
poro está formado por un porocito en forma de anillo que se extiende desde la
superficie externa hasta el espongocele. Debajo del pinacodermo, se encuentra el
mesohilo el cual está formado por una matriz gelatinosa de proteínas y células
llamadas amebocitos. Del lado interno del mesohilo y recubriendo el espongocele
existe una capa de células flageladas llamadas coanocitos. El esqueleto de los
poríferos está conformado por las espículas, las cuales pueden ser de tipo calcáreo,
silíceas, de fibras de espongina o una combinación de las dos últimas. Las espículas
son de forma variada y son el caracter más importante en la indentificación y
clasificación de las especies. Las espículas se encuentra generalmente dentro del
mesohilo aunque también pueden encontrase en el pinacodermo (Ruppert & Barnes,
1996; Pechenik, 2000)
87
11.1.1.1 Haliclona piscaderaensis
VAN SOEST, 1980: revestimientos hasta de 7 cm de diámetro, 3-8 mm de grosor.
Superficie lisa, ósculos dispersos 2-4 mm de diámetro, a ras con un collar cónico de
hasta 3 mm de altura. Reticulación tangencial uniespicular, irregular, poco o muy
densa. Líneas superficiales de 1-4 espículas, con dirección indefinida. Aberturas
reticulares con campos de poros 38-85 µm de diámetro. Pinacodermo con sigmas
dispersas. Canales subdermales 380-900 µm de diámetro. Megascleras más delgadas
abundantemente dispersas en la carne. Tractos de 1-4 espículas en sección
transversal. Espículas ó setas astadas de puntas largas, 161-24.1 x 1.4-8-12.8 µm.
Sigmas delgadas, con un ligero engrosamiento central, 10-12.3-14 µm.
Color: Café oscuro con tonos violeta oscuro.
Hábitat: Partes muertas de Porites porites, talud arrecifal de Acropora cervicornis,
partes muertas de Agaricia tenuiflora.
Distribución: Colombia: Cartagena (Zea, 1987). Curazao (Van Soest, 1980).
88
11.1.1.2 Haliclona caerulea
HETCHEL, 1965: Sinonimia en Van Soest, 1980 (Como S. Caerulea). Masas
aplanadas de lóbulos con ósculos apicales, 15 cm de diámetro y 1-5 cm de grosor.
Lóbulos comúnmente hasta de 1.5 cm de diámetro, con una membrana a manera de
diafragma. Reticulación tangencial uniespicular, bastante irregular. Espículas unidas
por espongina en los nodos. Coanosoma atravesado por numerosos canales hasta de 2
mm de diámetro. Los espacios subdermales perpendiculares a la superficie forman un
patrón prismático con aberturas 190 µm –1 mm visibles a simple vista.
Color: Azul claro intenso con tonos claros a grises.
Hábitat: Pradera de Thallassia, roca litoral en playa arenosa. Raíces de mangle.
Distribución: Colombia: Cartagena, Santa Marta (Zea, 1987). Curazao (Van Soest,
1980), Belice (Rutzler et al., 2000)
89
11.1.1.3 Haliclona sp. 1
Amorfa, semiincrustante, corta, procesos digitados protusivos, suave superficialmente
o algo punctiforme. Osculos grandes.
Color: Blanco.
Hábitat: Raíces Rhizophora mangle.
Distribución: Ciénagas de Puerto Naito y de Cholón, Isla de Barú PNN Corales del
Rosario, Cartagena- Colombia
90
11.1.1.4 Haliclona sp. 2
Tubiforme, ramosa. Canales superficiales. Osculos sobre cónulos o ápices de las
ramas.
Color: Blanca.
Hábitat: Raíces de Rhizophora mangle.
Distribución: Ciénagas de Puerto Naito y de Cholón, Isla de Barú PNN Corales del
Rosario, Cartagena- Colombia
91
11.1.1.5 Niphates erecta
DUCHASSAING & MICHELOTTI, 1864: Sinonimia en Hetchel, 1965 (Como
Gelliodes aerolata). Masas revistentes a menudo con ramas rastreras o erectas.
Ramas solitarias o en grupos, erectas, semierectas o rastreras, ramificadas, separadas
o anastomosadas. Apices de las ramas cilíndricos, algo agudos o lobulados,
achatados. Ramas hasta de 50 cm de longitud- altura o más, 7 mm- 5 cm de diámetro.
Revestimientos de varios centímetros de diámetro y 5 mm- 2 cm de grosor. Osculos
2-7 mm de diámetro, dispersos, agrupados o alineados, a ras con un collar de
ectosoma elevado hasta 2mm. Superficie en unas partes lisa, llana, en otras,
especialmente en los ápices de las ramas, conulosa- espinosa. Cónulos con 2-7 mm de
altura, en patrón prismático, bajos o muy espinosos, formados por fascículos
coanosómicos que sobresalen de la superficie. Reticulación paratangencial casi
siempre incompleta, formada por la ramificación y unión de los fascículos y fibras
primarias del coanosoma. Ramitas finales y mechones de espículas se unen y forman
un retículo de aberturas poligonales de 170-800 µm. Fibras principales hasta 260 µm
de diámetro, casi siempre totalmente rellenas de espículas. Coanosoma poroso,
cavernoso, con canales hasta de 3-5 mm de diámetro de bordes muy poco definidos.
Esqueleto prismático de fascículos o fibras primarias irregularmente definidos, que
ascienden y en las ramas divergen radialmente desde el eje central hacia la superficie,
llegando perpendicularmente a ella. Fascículos 2960-1300 µm de diámetro,
separados 1-2 mm. Primarias 130-260 µm de diámetro, rellenas casi totalmente por 92
15-30 espículas en sección transversal. Fascículos interconectados por secundarias
solitarias o en retículo, 20-60 mm de diámetro, formando aberturas de 250-1110 µm.
Espículas óseas astadas algo curvas, de puntas largas, cónicas u óseas fusiformes
como en estado de desarrollo, sigmas 13-16.1-20 µm.
Color: Dos fenotipos. Gris azul verdoso, rosado púrpura claro.
Hábitat: Substratos duros, ambientes agitados. Entre coral, arrecife de parche, litoral
rocoso. Raíces de mange.
Distribución: Colombia: Urabá, San Bernardo, Cartagena (Van Soest, 1980), Laguna
de Cocoliso PNN Corales del Rosario (Cadavid et al., 1991), Santa Marta,
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Cabello; Urbaneja y Lin, 1981), Brasil (Hechtel, 1976).
93
11.1.1.6 Mycale laevis
(CARTER, 1882): Sinonimia en Hetchel, 1965. Revestimientos gruesos hasta 15-20
cm de diámetro y 3 mm a 6 cm de grosor. Superficie lisa, espinosa en zonas
lobuladas. Osculos muy grandes de 3-12 mm de diámetro en los cuales confluyen
canales exhalantes, borde oscular con membrana cónica. Reticulación tangencial
incompleta de megascleras confusamente dispuestas, sostenida por tractos
coanosómicos que finalizan en mechones erectos de espículas. Rosetas de anisoquelas
dispersas. Membrana oscular sostenida por tractos multiespiculados erectos de 50-
150 µm de diámetro, ramificados y anastomosados. Esqueleto de tractos
multiespiculado gruesos de 40-310 µm de diámetro, interconectados entre sí. En la
base numerosas espículas, en la periferia la reticulación es regular con tractos
ascendentes interconectados formando aberturas rectangulares de 139-900 µm.
Tricodragmas y rosetas de anisoquelas abundantes inmediatamente debajo del
ectosoma; sigmas abundan hacia adentro. Espículas megascleras curvas, asimétricas,
agudas o achatadas, 45-552.1-619 x 9.0-15.2-23.3 µm. Microscleras palmeadas
grandes 71-76.0-90 µm.
Color: Amarillo- naranja. Fibras, dermis y membrana oscular blancuzca y
transparente.
Hábitat: En arrecifes, donde se asocia con corales, coral laminar y a veces modifica la 94
forma de crecimiento de este. Substratos artificiales de Bahía. Raíces de mangle.
Distribución: Colombia: San Bernardo, Cartagena, Santa Marta, Urabá (Zea, 1987).
Bahamas (Colin, 1978), Cuba (Alcolado, 1980), Jamaica (Goreau & Hartman, 1966;
Colin, 1978), Puerto Rico e Islas Vírgenes (Randall & Hartman, 1968; Colin, 1978),
Venezuela, Belice (Rutzler et al., 2000).
11.1.1.7 Tedania ignis
(DUCHASSAING & MICHELOTTI, 1864): Sinonimia en Hetchel, 1965;
Wiedenmayer, 1977 y Van Soest, 1984. Masas de 15-20 cm de diámetro y 5 cm de
grosor. Osculos 4-10 mm de diámetro, dispersos, sobre lóbulos. Lóbulos osculares
fusionados lateralmente. Ectosoma poco desprendible, dermis cargada de oniquetas y
tilotes tangencialmente dispuestos, oniquetas pequeñas abundantes. Coanosoma
cavernoso. Esqueleto como una reticulación irregular. Oniquetas 12-100 µm de
diámetro. Numerosas espículas dispersas, tilotes ectosómicos rectos, de cabeza
espinosa, 181-220.4-242 x 2.9-4.3-6.2 µm; estilos astados coanosómicos, curvos, de
puntas cortas, agudas, 228-259.8-313 x 2.9-7.9-14.3 µm; oniquetas grandes, 142-
230.7-280 x 0.9-1.9-3.3 µm; oniquetas pequeñas, 52-83.3-138 x 0.5-1.2-1.9 µm.
95
Color: Roja escarlata.
Hábitat: Aguas muy someras cerca de la costa, lagunas arrecifales y arrecifes de
parche. Substratos artificiales de bahía. Raíces de mangle.
Distribución: Colombia: San Bernardo, Cartagena, Santa Marta, Providencia (Zea,
1987), Laguna de Cocoliso PNN Corales del Rosario (Cadavid et al., 1991). Bermuda
(Rützler, 1968; McClay, 1971; Vogel, 1977), Bahamas (Wiedenmayer, 1978), Costa
Este y Oeste de Florida, Cuba (Kaminskaya, 1971).
11.1.1.8 Lissodendoryx isodictyalis
(CARTER, 1882): Sinonimia en Hetchel, 1965; Wiedenmayer, 1977; y Van Soest,
1984. Masa subesférica de 10-13 cm de diámetro y 7 cm de grosor, de la que salen
tubos osculares 1-3.5 cm de altura y 1-1.5 cm de diámetro, con una membrana apical
cónica transparente; ósculos 7 mm de diámetro. Dermis entre espacios subdermales,
formando aberturas poligonales 130-415 µm de diámetro; tractos de 1-4 tilotes;
intersticios de la red con numerosas microscleras y campos de poros 38-240 µm de
diámetro. Espacios subdermales hasta 3 mm de diámetro, separados por paredes de
máximo 3 mm de espesor. Coanosoma extremadamente cavernoso, densamente
atravesado por canales 260 µm-3 mm de diámetro que dejan paredes de máximo 2
mm de grosor. Esqueleto como una reticulación subisodictial irregular de 1-5 estilos 96
en sección transversal, formando aberturas triangulares; tractos multiespiculados
ascendentes, 48-60 µm de diámetro. Tilotes dermales rectos, 185-199.1-209 x 2.4-
3.8-5.7 µm¸ estilos astados curvos, de cabeza más angosta que el cuerpo, puntas
largas y agudas, 147-165.5-190 x 1.9-4.5-7.1 µm. Isoquelas arqueadas, 24-28.1-32 µ
m¸ sigmas, 21-24.3-28 x 1.8 µm.
Color: Verde claro, azuloso.
Hábitat: Aguas someras en ambientes de laguna arrecifal, substratos artificiales y en
cascajo entre Thallassia. Raíces de Mangle.
Distribución: Colombia: Cartagena, Santa Marta (Zea, 1987), Bahía de Chengue
PNNT (Reyes & Campos, 1992), Laguna de Cocoliso PNN Corales del Rosario
(Cadavid et al., 1991). New England, Carolina del Norte y del Sur, Bermuda
Bahamas, Costa este y Oeste (Storr, 1976) de Florida, Cuba (Kaminsaskaya, 1971),
Jamaica, Guadalupe, Venezuela: Puerto Cabello, Margarita; Aruba, Curazao y
Bonaire (Van Soest, 1981), Cozumel- Belice (Bakus y Thun, 1979), Belice (Rützler y
Macintyre, 1982; Rutzler et al., 2000).
97
11.1.1.9 Ircinia felix
(DUCHASSAING & MICHELOTTI, 1864): Sinonimia en Hetchel, 1965 (I.
fasciculata); Wiedenmayer, 1977 y Van Soest, 1978. Masiva, revistente, ramosa.
Masas de 50 cm de diámetro. Ramas hasta 2-4 cm de diámetro y 25-30 cm de
longitud. Superficie con cónulos hasta 3 mm de altura y 7 mm de separación. Osculos
a ras, sobre elevaciones cónicas, o en el ápice de los lóbulos, solitarios o en grupos, 3
mm-1 cm de diámetro. Esqueleto prismático. Fibras variablemente rellenas de
detritos. Fibrofascículos ascendentes 250-520 µm de diámetro, separados 570-2600 µ
m, formados de fibras 25-100 µm de diámetro, en retículo irregular con aberturas de
20-330 µm. Fibras secundarias 60-260 µm interconectadas entre sí los fascículos
cada 770-2500 µm. Carne totalmente rellena de filamentos de espongina 2.5-7 µm de
diámetro con cabezas terminales redondas de 2.7-10.5 µm de diámetro. Dermis
orgánica gruesa cubierta de detritos en patrón reticular de aberturas de 60-190 µm de
diámetro.
Color: Marrón con tonalidades amarillas.
Hábitat: Arrecife de coral, pradera de Thallassia, roca litoral metamórfica, plataforma
de conglomerado arcilloso. Raíces de mangle.
98
Distribución: Colombia: San Bernardo, Cartagena, Santa Marta, Guajira, Providencia
(Zea, 1987). Carolina del Norte, Bermuda (Vogel, 1977; Rützler, 1978), Costa Este y
Oeste (Storr, 1976) de Florida, Veracruz (Green & Bakus, 1975), Yucatán, Cozumel-
Belice (Bakus & Thun, 1979; Rützler, 1978; Rutzler et al., 2000), Cuba (Alcolado,
1976), Bahamas (Towe y Rützler, 1968; Wiedenmayer, 1978), Jamaica (Colín, 1978),
Puerto Rico, Islas Vírgenes, Curazao y Bonaire (Van Soest, 1981), Noreste de
Venezuela (Urbaneja y Lin, 1981), Panamá, Brasil (Jhonson, 1971: Hetchel, 1976).
11.1.1.10 Hyrtios proteus
DUCHASSAING & MICHELOTTI, 1864): Masiva. Longitud, ancho y grosor
máximos 8 x 6 x 5 cm. Superficie con cónulos hasta 3 mm de altura, separados 1-4
mm. Osculos a ras, rodeados de una membrana lisa, alineados en los bordes
superiores, o sobre elevaciones de hasta 1 cm de altura y 9 mm de diámetro. Diámetro
de los ósculos 1-5 mm. Dermis orgánica gruesa, elástica. Esqueleto prismático. Fibras
de espongina densamente rellenas de detritos. Primarias solitarias o en fascículos
ascendentes, 200-1300 µm de diámetro, separadas 400-2600 µm. Secundarias 20-390
µm de diámetro, interconectan las primarias o forman la reticulación fascicular con
aberturas de 25-1300 µm.
Color: Negra, interior crema.99
Hábitat: Aguas muy someras cerca de la línea de costa, Thallassia o partes muertas de
coral. Raíces de mangle.
Distribución: Colombia: San Bernardo, Providencia (Zea, 1987). Florida, Bahamas
(Wiedenmayer, 1978), Isla Vírgenes (Duch. & Mich., 1864), Curazao (Van Soest,
1978), Belice (Rutzler et al., 2000).
11.1.1.11 Geodia gibberosa
LAMARCK, 1815: (Tomado de Wiedenmayer, 1977). Masiva, con tendencia
lobulada. 15 cm de diámetro y 7 cm de altura. Superficie rugosa, de 2 mm-7 cm de
grosor. Circular o elongada. Osculos separados por fibras estrechas. Osculos de 0.5-5
mm de diámetro. Ectosoma con dos a tres capas en la corteza. Ectocroto muy delgado
y discontinuo. Criptas subcorticales de 1-1.5 mm. Coanosoma cavernoso,
megascleras confusas y en manojos en las partes centrales. Trianas 800-20 µm.
Espículas largas, fusiformes, oxeas, 265-1.850 x 2.5-40 µm. Las pequeñas,
fusiformes corticales oxeas, 125-250 x 2-4 µm.
Color: Blanca.
100
Hábitat: Lagunas, cubiertas por algas y otras esponjas. Raíces de mangle.
Distribución: Belice (Rutzler et al., 2000), Bahamas (Wiedenmayer, 1977).
11.1.1.12 Geodia papyracea
(Tomado de Hetchel, 1975). Masiva, Diámetro entre 8-10 cm. Corteza quebradiza.
Endosoma pulposo y mendrugoso. Sin ósculos macroscópicos. Superficie con
apariencia punctiforme. Corteza 400-600 µm. La cavidad atravesada por columnas
con megascleras. Capa basal fibrosa ausente. Oxeas largas y anatrianas delgadas.
Trianas con posición oblicua o tangencial y la corteza exterior. Región de la periferia
radiada, interior confuso. La mayoría de las oxeas terminan en el endosoma.
Espículas robustas 406-1058 x 5-24 µm y cubierta 33-123 x 4-24 µmm. Delgadas
246-609 x 2-3 µm y cubierta 7-36 x 1-2 µm. Oxeas, curvas, 616-1183 x 9-20 µm.
Color: Blanca.
Hábitat: Común en raíces de mangle.
Distribución: Colombia: Bahía de Chengue PNNT (Reyes & Campos, 1992). Belice
(Rutzler et al., 2000), Jamaica (Hetchel, 1965).101
11.1.2 MOLLUSCA
Poseen simetría bilateral y la forma de su cuerpo es ovoide. Su superficie ventral es
plana y muscularizada, formando una suela reptante llamada pie. Su cara dorsal está
cubierta por una concha la cual protege su masa visceral. La epidermis es
denominada manto o palio, la cual secreta la concha del animal. En extremo
posterior se encuentra la cavidad del manto o cavidad paleal, dentro de la cual se
encuentra las branquias y los nefridioporos. La boca se encuentra en extremo anterior
del animal, el suelo de la cavidad bucal está ocupado por una lengüeta alargada
compuesta por una masa de cartílago, el odontoforo y sobre su línea media
envolviendo la porción anterior de éste se extiende la rádula dotada por filas
transversas de dientes. La cavidad celomática o pericardio es pequeña y se localiza
en la región media dorsal, rodeando por la parte dorsal al corazón y por la parte
ventral un tramo del intestino. Los órganos de los sentidos están constituidos por los
tetáculos, un par de ojos ubicados en el pie y los osfradios localizados en el margen
posterior de la membrana ventral que sostiene a las branquias (Ruppert & Barnes,
1996; Pechenik, 2000)
102
11.1.2.1 Diodora cayenensis
LAMARCK: (Tomado de Abbott, 1954; Morris 1973; Cadavid et al., 1991).
Longitud 1-1.5 cm de longitud. Concha moderadamente sólida y elevada, con un
orificio elongado en la cúspide. Varias líneas radiales de las cuales cada cuarta línea
es más larga.
Color: Blancuzco y en su parte interna gris azulosos.
Hábitat: Sobre Rhizophora mangle, aguas poco profundas y substratos duros.
Distribución: Colombia: Bahía de Chengue PNNT (Reyes & Campos, 1992), Laguna
de Cocoliso PNN Corales del Rosario (Cadavid et al., 1991), Bahía de Cartagena
(Pérez & Victoria, 1977). Maryland, Golfo de México, India, Sur de Brasil (Morris,
1973).
103
11.1.2.2 Nerita tesellata
GMELIN: (Tomado de Abbott, 1954; Morris, 1973). Diámetro 0.5-1 cm. 4 a 5
espirales separados por suturas. Superficie con 12 espirales redondeados. Numerosos
pequeños dientes en el margen de la columnela.
Color: Blanco y Negro.
Hábitat: Aguas someras, Raíces de Rhizophora mangle.
Distribución: Colombia: Bahía de Chengue PNNT (Reyes & Campos, 1992). Florida
a India (Morris, 1973), Texas, Bermuda (Abbott, 1954).
104
11.1.2.3 Littorina angulifera
(BEGUAERT, 1943): (Tomado de Abbott, 1954; Morris, 1973; Cadavid et al., 1991)
Dos y medio centímetros de longitud. Sus dos o tres espinas son suaves, terminando
en varias muescas en forma de espiral. Suturas acanaladas.
Color: Amarillo- naranja y franjas oscuras. La columnela de cobe púrpura pálida,
bordes blancuzcos. Opérculo carmelito pálido.
Hábitat: Sobre línea de marea adheridas a troncos y ramas de los mangles.
Distribución: Colombia: Bahía de Chengue PNNT (Reyes & Campos, 1992), Laguna
de Cocoliso PNN Corales del Rosario (Cadavid et al., 1991), Bahía de Cartagena
(Pérez & Victoria, 1977), Bahía de Barbacoas (Mosquera & Bernal, 1975). Florida,
Bermudas (Morris, 1973), Golfo de México, Mar Caribe, Costa continental de Sur
América hasta Brasil (Cadavid, 1991).
105
11.1.2.4 Strombus alatus
GMELIN: (Tomado Abbott, 1954; Morris, 1973). De 3 a 4 pulgadas de longitud.
Espinas cortas sobre él ultimo espiral. Periostracum delgado. Concha sólida con cerca
de 7 espirales. Espinas sobre el último espiral. Apertura larga y delgada. Opérculo en
forma de pinza.
Color: Amarillo- café, interior café oscuro.
Hábitat: Aguas someras.
Distribución: Sur de Carolina, Florida, Texas (Abbott, 1954). Norte de Carolina
(Morris, 1973).
106
11.1.2.5 Cymatium vespaceum
LAMARCK: (Tomado de Morris, 1973). 1.5 pulgadas de alto. De 5 a 6 espirales
dirigidos hacia la punta con distintas suturas. Líneas fuertes y varices prominentes.
Abertura pequeña, dentada. Canal largo y casi cerrado.
Color: Amarillo- blanco, varices café- blanco.
Hábitat: Aguas moderadamente profundas.
Distribución: Sur de Florida hasta Indias Occidentales (Morris, 1973).
107
11.1.2.6 Murex recurvirostris
BAKER: (Tomado de Abbot, 1954; Keen, 1960; Morris, 1973). 1 a 2 pulgadas de
longitud. Canal cifonal largo y delgado, con tres pares de espinas cerca de la cima.
Varices con cortas espinas en la punta. Entre las varices 3 nervaduras protuberantes, 2
de las cuales más largas que la tercera. Abertura redonda, canal largo y casi cerrado.
Color: Gris- blanco.
Hábitat: Aguas someras.
Distribución: Pacífico Este (Abbott, 1954), Florida hasta Indias Occidentales
(Morris, 1973).
108
11.1.2.7 Thais rustica
LAMARCK: (Abbott, 1954; Morris, 1973). 1.5 pulgadas de largo. Con dos líneas de
espinas en espiral, uno en la parte superior y la otra en el centro del cuerpo.
Color: Gris- café
Hábitat: Zona intertidal.
Distribución: Sudeste de Florida, Bermudas, Indias occidentales (Abbott, 1954).
11.1.2.8 ANASPIDEA sp.
(Tomado de Ruppert & Barnes, 1996) Simetría bilateral más o menos clara, concha
reducida y envuelta por el manto, branquia y cavidad paleal presentes, el borde
posterior del manto está enrollado para formar un sifón exalante, libera una tinta de
109
color púrpura al ser molestado que deriva de los pigmentos de las algas rojas de que
se alimenta.
Color: Café Oscuro con manchas negras a lo largo del cuerpo.
Hábitat: Pastos marinos, arrecifes de coral. Se encontró sobre la raíz de Rhizophora
mangle.
Distribución: Ciénaga de Puerto Naito Isla de Barú, PNN Corales del Rosario.
11.1.2.9 Arca imbricata
BRUG: (Tomado de Morris, 1973). 2 pulgadas de longitud, con forma de caja y
elongada. Picos prominentes separados por un área gruesa en patrones geométricos.
Borde anterior redondeado y el posterior agudo. Valvas abiertas en el margen ventral.
Superficie irregular atravesada por líneas gruesas. Borde liso.
Color: Púrpura y blanco.
Hábitat: Adherida a rocas en aguas someras.
110
Distribución: Desde el Norte de Carolina hasta las Indias Occidentales (Morris,
1973).
11.1.2.10 Brachidontes exustus
LINNÉ: (Tomado de Abbot, 1954; Morris, 1973; Cadavid et al., 1991). 1 pulgada de
longitud. Concha delgada, afilada en un extremo. Superficies con nervaduras axiales
y fuertes márgenes. Margen anterior con dos dientes púrpuras pequeños. Detrás del
ligamento del margen posterior 5 a 6 dientes pequeños de igual tamaño sobre el final
de la concha.
Color: Café- amarillo.
Hábitat: Sobre conchas y valvas de ostras, en bancos de ostras, mangles, piedras y
otros substratos duros. Aguas con salinidad reducida hasta 15ppm.
Distribución: Colombia: Bahía de Chengue PNNT (Reyes & Campos, 1992), Bahía
de Cartagena (Pérez & Victoria, 1977), Bahía de Barbacoas (Mosquera & Bernal,
1975), Laguna de Cocoliso PNN Corales del Rosario (Cadavid et al., 1991);
Bermudas, Florida, Bahamas, Yucatán, Antillas, Venezuela, Indias Occidentales
(Abbott, 1954).
111
11.1.2.11 Isognomon alatus
(GMELIN, 1791): (Tomado de Abbott, 1954; Morris, 1973; Cadavid et al., 1991). 2 a
3 pulgadas de longitud. Concha irregular, comúnmente elongada y comprimida.
Líneas de bisagra corta, perpendicular con surcos en su interior. Superficie lisa.
Juveniles rayados. Forma de abanico.
Color: Parte externa va desde púrpura pardusco hasta gris oscuro. En su parte interna
presenta color perla moderado con manchas carmelitas.
Hábitat: Abundante en las raíces del mangle.
Distribución: Colombia: Bahía de Chengue PNNT (Reyes & Campos, 1992), Laguna
de Cocoliso PNN Corales del Rosario (Cadavid et al., 1991), Bahía de Cartagena
(Pérez & Victoria, 1977), Bahía de Barbacoas (Mosquera & Bernal, 1975);
Bermudas, Sudeste de Florida, Golfo de México, Mar Caribe, Costa Continental de
Sur América hasta Norte del Brasil, Indias occidentales (Abbott, 1954).
112
11.1.2.12 Pinctada radiata
(LEACH): (Tomado de Morris, 1973) De 2 pulgadas de longitud, más larga en la
parte posterior, valvas aplanadas y casi de igual tamaño, bisagra fuerte, muesca
debajo de la valva derecha, superficie esculpida con proyecciones concéntricas
fuertes.
Color: Amarillo- verde, interior muy aperlado.
Hábitat: Aguas someras y adheridas a rocas.
Distribución: Colombia: Laguna de Cocoliso PNN Corales del Rosario (Cadavid et
al., 1991- Pinctada imbricata); Sur de Florida a las Indias Orientales (Morris, 1973).
113
11.1.2.13 Crassostrea rhizophorae
GUILDIN, 1828: (Tomado de Abbott, 1954; Morris, 1973; Cadavid et al., 1991). 6
pulgadas de longitud, pliegues radiales en la superficie de la valva inferior izquierda,
impresión muscular redonda.
Color: Grisácea, interior blanco.
Hábitat: Sobre raíces de mangle y substrato duro de toda clase entre marea baja y
poca profundidad.
Distribución: Colombia: Bahía de Cartagena (Pérez & Victoria, 1977), Laguna de
Cocoliso PNN Corales del Rosario (Cadavid et al., 1991), Bahía de Chengue PNNT
(Reyes & Campos, 1992); Antillas mayores y menores, Mar Caribe, Costa
Continental de Sur América hasta el estado de Santa Catalina (Abbott, 1954; Morris,
1973).
114
11.1.2.14 Teredo sp.
Foto tomada de http://softlib.rice.edu/crpc/gt/jholzapf/gulf/toredo.html
(Tomado de Abbott, 1954; Morris, 1973). Valvas de ¼ pulgadas de longitud,
comprimidas y simétricas, parte anterior de las valvas provistas de nervaduras
escamosas y agudas para perforar. Cuerpo con nervaduras ventrales cubierto por una
epidermis quitinosa.
Color: Blanco, rosado pálido.
Hábitat: Túneles perforados dentro de la madera y las raíces de Rhizophora mangle.
Distribución: Colombia: Bahía de Cartagena (Pérez & Victoria, 1977). Ambas costas
de los Estados Unidos, Europa, Africa (Abbott, 1954), Costa Atlántica (Morris,
1973).
115
11.1.3 ANNELIDA
La característica principal es la metamerización o metamerismo, que divide el
cuerpo en partes similares. La parte segmentada del cuerpo se limita al tronco,
mientras que la cabeza o acrón, está representada por prostonio, mientras que el
pigidio es la parte terminal del cuerpo llevando el ano. Las estructuras segmentarias
principales se derivan de la división del celoma por septos transversales. Cada septo
se compone de dos capas de peritoneo. En cada segmento se encuentra cerdas
quitinosas laterales y pareadas, denominadas sedas o quetas, las cuales aumentan la
tracción del sustrato. La pared del cuerpo está formada por la epidermis glanular, la
cual es una cutícula de fibras de colágeno, y una dermis o cutis formada por tejido
conguntivo Ruppert & Barnes, 1996; Pechenik, 2000).
11.1.3.1 Sabellastarte magnifica
SHAW, 1800: (Tomado de Day, 1967; Dueñas, 1977; Laverde & Rojas, 1983;
Salazár et al., 1985; Caicedo et al., 1991). Cuerpo grande robusto de más de 16 cm,
collar con un par de lóbulos triangulares en su final y ventrales, con 8 segmentos
torácicos, setas notopodiales limbadas con las hojas anchas y angostas, que salen de
los lóbulos conspicuos, los uncinos neuropodiales del tórax son auriculares, abdomen
con setas neuropodiales limbadas de hoja ancha y con una fila de uncinos auriculares
116
similares a lo torácicos, penacho sin estiloides ni ejes compuestos compuesto por 62
pares de radiolas unidas en la base por una membrana ancha, tubo apergaminado.
Color: Cuerpo café oscuro, penacho con bandas crema sobre fondo rojo.
Hábitat: Sobre arena calcárea entre 1-3m de profundidad. Raíces de Rhizophora
mangle. Grietas de coral.
Distribución: Colombia: Laguna de Cocoliso PNN Corales del Rosario (Cadavid et
al., 1991), Isla Tesoro PNN Corales del Rosario (Laverde & Rojas, 1983), Bahía de
Cartagena (Dueñas, 1979). Mar Caribe y Pacífico Mexicano (Salazár et al., 1985),
Madagascar (Day, 1967).
11.1.3.2 Hydroides dianthus
ZIBROWIUS, 1770: (Tomado de Day, 1967; Dueñas, 1979). Cuerpo pequeño,
penacho branquial conformado por más de 15 pares de radiolas, opérculo funcional
del lado derecho conformado por una estructura cónica con 26 dientes marginales,
verticilo superior formado por 13 espinas que se proyectan hacia fuera con su base
gruesa y su final distal puntudo, a lo largo de la espina se presentan pequeños dientes
que se alternan en largos y cortos a cada lado pero que a partir de la mitad no
117
aparecen más dejando la espina lisa en su parte distal, collar bilobulado que lleva
setas capilares y setas con dientes subapicales de distintos tamaños y el final de la
seta también es ligeramente dentado, los otros segmentos torácicos llevan setas
limbadas capilares, los uncinos tienen 8 o 9 dientes con un pequeño manubrio, el
abdomen lleva setas enganchadas con su borde dentado, los uncinos son pequeños
con 5 dientes y un manubrio corto muy romo, tubo calcáreo delgado.
Color: Abdomen y tórax color crema, penacho con bandas conspicuas blancas y rojas.
Hábitat: Sobre conchas de bivalvos en raíces de Rhizophora mangle, fondos de botes,
rocas. Aguas cálidas.
Distribución: Bahía de Cartagena y alrededores (Dueñas, 1979); Carolina del Norte
(Day, 1967).
11.1.3.3 Eunice filamentosa
GRUBE, 1856: (Tomado de Day, 1967; Dueñas, 1979). Prostomio con 5 antenas algo
arrugadas biarticuladas siendo más larga la central, cirros prestomiales lisos y
distalmente puntudos, parapodios con cirros dorsal y ventral gruesos en los primeros
setígeros pero se adelgazan y reducen hacia la región media y posterior del cuerpo, 118
branquias apartar del setígero 22 presentando un total de 5 filamentos cuando logra su
máximo desarrollo, los filamentos son largos y delgados, setas simples limbadas
compuestas, heterogonfa falciger con diente subapical y de hoja encapuchada, gancho
subacicular distalmente bidentado y fuertemente picudo encapuchado, en los
setígeros anteriores de encuentra una acícula bidentada.
Color: Cuerpo pardo- verdoso con líneas transversales a los segmentos de un color
más oscuro que el cuerpo y ventralmente crema- verdoso.
Hábitat: Sobre Bivalvos y macroalgas.
Distribución: Bahía de Cartagena y alrededores (Dueñas, 1979); Bahía de Chengue
PNNT (Reyes & Campos, 1992). Atlántico desde Carolina del Sur hasta la Florida,
Ghana, Angola (Day, 1967).
11.1.3.4 Eunice mutilata
WEBSTER, 1894: (Tomado de Day, 1967; Dueñas, 1979). Cuerpo largo bien
segmentado cilíndrico, Prostomio bilobulado con cinco antenas siendo la central de
mayor tamaño, lisas y en su región distal sin color, tercer setígero o el quinto
segmento carente de color, branquias a partir del sexto setígero como un filamento
bífido, en el setígero #10 aparecen tres filamentos, en el setígero #15 o 17 presenta su
119
máxima ramificación de 5 filamentos, en la región posterior se reducen a filamentos
bífidos y finalmente desaparecen antes del final del cuerpo, parapodio presenta cirros
dorsal y ventral, en los primeros setígeros el cirro dorsal es grueso digitiforme
mientras que el ventral es corto y romo de apariencia cónica, en la región media los
cirros se reducen y adelgazan quedando el ventral más pequeño con dos acículas en
los setígeros anteriores distalmente puntudas, en las posteriores se encuentra un
gancho subacicular bífido y encapuchado, las setas son simples y espiníferas
pectinadas con los dientes externos más largos en la región media, heterogonfa
falciger con hoja distalmente bífida y encapuchada.
Color: Dorso de color café encendido o carmín, región ventral crema
Hábitat: Raíces de Rhizophora mangle.
Distribución: Bahía de Cartagena y alrededores (Dueñas, 1979); Bahía de Chengue
PNNT (Reyes & Campos, 1992). Indias Orientales (Day, 1967).
11.1.4 CRUSTACEA
Portan cinco pares de apéndices, en la parte anterior se encuentran el primer par de
antenas o antenulas, y el segundo par de antenuilas que se denominan antenas. El
tercer apéndice son las mandíbulas las cuales cubren a menudo la boca, las cuales
están compuestas por varios artejos y generalmente son cortas y gruesas. Detrás de
las mandíbulas aparecen dos pares de apéndices alimentarios: las primeras maxilas o
maxilulas y las segunda maxilas. El tronco está compuesto por una serie de
segmentos bien definidos y similares, además de un telsón terminal en cuya base está
el ano. En algunos crustáceos los segmentos uno a tres se fusionan formando el
escudo cefálico con uno varios apéndices orientados hacia delante llamados
maxilípedos. Los apéndices son generalmente birrámos. Existe un protopodio basal
120
compuesto por el coxopodito o coxa y el basipodito o base. Al basipodito se le une
el endopodio (rama interna) y el exopodio (rama externa) compuestas por uno o
varios artejos (Ruppert & Barnes, 1996; Pechenik, 2000).
11.1.4.1 Balanus sp.
(Tomado de Cadavid et al., 1991; Barnes, 1996) Cirrípedos sésiles, simétricos, con
una pared con los pares de tergos y escudos móviles superpuestos, 0.8cm de largo por
2.8cm de ancho.
Color: Blanco, crema, gris.
Hábitat: Adherido a las conchas de Isognomon alatus y raíces de Rhizophora mangle,
rocas y substratos duros. Zona intermareal.
Distribución: Colombia: Bahía de Barbacoas (Mosquera y Bernal, 1975), Bahía de
Cartagena (Pérez & Victoria, 1977), Laguna de Cocoliso PNN Corales del Rosario
(Cadavid et al., 1991), Bahía de Chengue PNN Tayrona (Reyes & Campos, 1992).
121
11.1.4.2 Synalpheus minus
(SAY, 1818): (Tomado de Chace, 1972; Rodríguez, 1980; Austin, 1984; Chace,
1988; Holtuis, 1993). Frente del caparazón con tres dientes en forma de triángulo
equilátero, rostro usualmente dilatado en la base, comprimido, ojos completamente
cubiertos por una larga cubierta orbital. Procesos orbitales y rostro más o menos
triangulares y de igual tamaño, anténula tiene los artejos en proporción 2; 1.5; 1, el
estilocerito alcanza el tercio distal del artejo medio, la antena lleva en la porción
superior del basicerito una espina de largo variable, la espina lateral llega hasta la
extremidad del artejo basal del pedúnculo antebular, la espina lateral del escafocerito
es del mismo largo o más corta que el capocerito. La que la mayor es regularmente
ovoidea, lleva una espina aguda y delgada sobre el ángulo anterior posterior. El
dactilo es ligeramente curvado, con los ganchos casi paralelos.
Color: Cuerpo traslucido, amarillo- blanco, la que la blanca o translucida- gris, dedos
naranjas con las puntas rojas, cuerpo dotado con cromatóforos verdes.
Hábitat: Hasta profundidad de 68m, escondido dentro de las esponjas, coral muerto,
roca de coral, caparazones de gasterópodos abandonados, sobre Porites y
Pocillopora, pastos marinos. En raíces de Rhizophora mangle.
122
Distribución: Colombia: Bahía de Cartagena (Pérez & Victoria, 1977). Carolina del
Norte, Bermudas hasta Brasil (Rodríguez, 1980; Chace, 1972)
11.1.4.3 Periclimenes americanus
(KINGSLEY, 1878): (Tomado de Chace, 1972; Rodríguez 1980; Austin, 1984;
Holtuis, 1993). Rostro alto ligeramente arqueado hacia arriba, el ápice llega hasta la
extremidad del pedúnculo antenular o más allá, lleva 7 a 10 dientes sobre el margen
superior de los cuales dos están por detrás de la órbita, él ultimo en forma de una
espina epigástrica, un poco por delante de la mitad del caparazón, el margen inferior
tiene 2 ó 3 dientes hacia la mitad, el rostro se prolonga en una carina dorsal sobre la
parte anterior del caparazón formada por la base del rostro. El ángulo orbital forma
por debajo de la órbita un diente redondeado, la espina antenal es delgada y
proyectada hacia afuera, la espina hepática es aguda y proyectada lateralmente
situada en un línea que pasa por entre las dos últimas espinas del rostro, el surco
branquiostegal está débilmente indicado por debajo de la espina hepática, el
caparazón es glabro y liso, excepto por la pubescencia de los espacios frente a los
dientes rostrales. Todos los somitos abdominales tienen la superficie dorsal
redondeada, el tercero tiene la porción media del margen posterior reducido formando
123
una comba, todos los somitos son lisos y glabros. El primer segmento de la anténula
es aplanado y expandido lateralmente, el margen externo termina en un diente agudo
del ángulo anterolateral, el estilocerito es fuerte y agudo. El tercer maxilípedo cuando
está extendido llega más allá de la mitad del escafocerito, el carpo del primer par de
periópodos es 1.4 veces más largo que la quela y ligeramente más largo que el mero,
los dedos son tan largos como la palma. El telson lleva tres pares de espinas sobre el
margen distal, de los cuales las dos internas son el doble de largo de las dos
intermedias.
Color: Translucido, gris- blanco, caparazón con tres líneas laterales naranja- café, y
un par de líneas dorsales que van desde la base del rostro, segmento abdominal
atravesado por líneas cafés y pequeñas manchas oscuras en el margen posterior.
Hábitat: Aguas costeras, entre las rocas del fondo, entre corales y algas, pastos
marinos. Entre esponjas de Rhizophora mangle. Hasta 73 m de profundidad.
Distribución: Colombia: Bahía de Chengue PNNT (Reyes & Campos, 1992), Bahía
de Cartagena (Pérez & Victoria, 1977). Bermuda, Carolina del Norte hasta Florida,
Antillas (Rodríguez, 1980; Chace, 1972)
124
11.1.4.4 Lysmata grabhami
RISO, 1816: (Tomado de Chace, 1972; Rodríguez, 1980) Rostro de tamaño
moderado, flagelo antenular superior bíramo, mandíbula sin palpo ni proceso
incisivo, tercer maxilípedo provisto con un exognato y flagelo, pereipodio sin
artrobranquias, con epipoditos en los cuatro primeros pares, carpo del segundo
pereipodio multiarticulado con más de 10 artejos.
Color: Cuerpo translucido con bandas rosadas o naranjas y el cuerpo amarillo
cremosos.
Hábitat: Pastos marinos, sobre Porites y Pocillopora, asociado con algas de arrecifes
de coral. A menos de 55 metros de profundidad.
Distribución: Nordeste del Golfo de México, cayos de la Florida, Bahamas y las
Antillas, Hawaii e islas adyacentes (Chace, 1972); Venezuela (Rodríguez, 1980).
125
11.1.4.5 Macrobrachium sp.
BATE, 1868: (Tomado de Holtuis, 1993; Rodríguez, 1993) El rostro está bien
desarrollado comprimido y provisto de dientes, las espinas antenal y hepática
presentes, surco branquiostegal bien definido, mandíbula lleva un palpo de tres
artejos, dactilo de los tres últimos pares de pereiópodos es simple, telson con dos
pares de espinas dorsales y dos pares de espinas sobre el margen posterior.
Color: Translucido blanco o rosado.
Hábitat: Dentro de las esponjas de las raíces de Rhizophora mangle. Este género es
característico de aguas dulces.
Distribución: Especies con rango amplio.
126
11.1.4.6 Clibanarius vittatus
(BOSC, 1802): (Tomado de Rodríguez, 1980; Austin, 1984) Cara anterior del
caparazón subcuadrada, ranura detrás del margen anterior, mechones de cabello a lo
largo del margen lateral, rostro agudo triangular, ojos más largos que la anchura del
caparazón, cilíndricos, córnea no dilatada, el derecho más corto que el izquierdo,
aflechados en la punta separados en la base, margen con 1 a 4 espinas, pedúnculos
antenales ¾ el largo de los ojos, aciclas agudas con 3 a 5 espinas en el margen
interior, quelípedos iguales con bello esparcidos, quelas gruesas aplanadas dos veces
el largo del ancho, cubiertas con algunas espinas, dedos abiertos horizontalmente,
duros, dentados y abiertos en la base, borde distal córneo, extendiéndose a lo largo
del lado superior, carpo tan largo como la palma, patas ambulatorias (patas 2 y 3)
excediendo los quelípedos por la mitad del tamaño de los dactilos, puntas córneas,
segundos artículos distales con numerosos mechones de bello.
Color: grisáceo a café oscuro con bandas longitudinales gises o blancas, pedúnculos
antenulares oscuros lateralmente con un flagelo naranja, tubérculos en la superficie
exterior de la quela azul- blanco.
Hábitat: común en las playas de los puertos especialmente en el borde de las zonas
pandas lodosas, dentro de variadas conchas de gasterópodos, sobre rocas y raíces de
Rhizophora mangle, hasta 22 metros de la línea de agua.
127
Distribución: Colombia: Bahía de Cartagena (Pérez & Victoria, 1977), Bahía de
Barbacoas (Jácome, 1984); Venezuela (Rodríguez, 1980), costa atlántica desde Santa
Catalina hasta Brasil (Austin, 1984).
11.1.4.7 Petrolisthes galathinus
(BOSC, 1802): (Tomado de Weding, 1972; Rodríguez, 1890; Austin, 1984)
Caparazón cubierto con fuertes cilios rugosos transversales, suavemente
interrumpidos por ranuras separando regiones marcadas, región frontal granulada,
región metabranquial plisada, rostro ancho triangular, con una ancha depresión
usualmente cubierta por una corta pubescencia, espina supraorbital presente, ángulo
postorbital en pequeña espina dentada, fuerte espina epibranquial, ojos bien
desarrollados, antena con el primer articulo movible con espina aguda y lóbulo
lamelado, segundo y tercer articulo rugosos, quelípedos largos cubiertos con fuertes
cilios que van a través del carpo y la quela, quela ancha aplanada rugosa en el margen
exterior, margen exterior cubierto por bellos plumosos, carpos el doble de largo que
el ancho, margen anterior con 4 a 6 espinas serradas, línea de espinas en el margen
posterior, tres primeros pares de patas rugosas cubiertas de bellos plumosos, margen
anterior del primer y el segundo par de patas con 6 a 9 espinas, el tercero con 5 a 7,
primer y segundo con espinas posterior distal, todos los artículos cubiertos por largas
128
setas desnudas, cubierto por fuertes estrías en el caparazón, abdomen, maxilípedos,
quelíceros y patas, telson compuesto por 7 elementos.
Color: Grisáceo- café, estrías de azul- grisáceo a blancas con púrpura.
Hábitat: Debajo de piedras y asociado con esponjas, corales y anémonas en el litoral,
suelos arenosos y algunos en aguas profundas. En raíces de Rhizophora mangle.
Distribución: Colombia: Santa Marta (Weding, 1972), Bahía de Cartagena (Pérez &
Victoria, 1977); desde cabo Hatteras hasta el sur de Brasil, Golfo de México y caribe,
también se conoce en el Pacífico desde la isla San Lucas en Costa Rica hasta la
Libertad en el Ecuador (Weding, 1972; Austin, 1984), Venezuela (Rodríguez, 1980).
11.1.4.8 Petrolisthes amoneus
(GUERIN, 1855): (Tomado de Weding, 1972; Rodríguez, 1980) Márgenes laterales
del caparazón con 1-3 espinas pequeñas, superficie del propodus de las quelas lisa,
espinas epibranquiales presentes, carpus de los quelípedos con 5 dientes
distanciados, caparazón sin arrugas transversales marcadas, carpus de los quelípedos
con dientes en el margen anterior.
129
Color: Oscila entre gris y anaranjado, dibujo de puntos negros sobre todo el
caparazón y las extremidades.
Hábitat: Profundidades mayores de tres metros en acumulaciones de cantos en
posiciones expuestas con fuertes movimientos de agua.
Distribución: Colombia: Santa Marta (Weding, 1972); desde Cuba sobre las Antillas
hasta Alagoas en el Brasil (Weding, 1972; Rodríguez, 1980).
11.1.4.9 Mithraculus coryphe
(HERBST, 1801): (Tomado de Rathbun, 1925; Velez, 1977; Wagner,
1991)Caparazón más ancho que largo, mas bien convexo y superficie branquial sin
ranuras transversales, rostro pequeñamente avanzado con una muesca aflechada,
segmento basal de la antena subtriangular y tiene dos espinas lobiformes de las cuales
la segunda se ubica en el ángulo anterior externo y es cuatro veces más larga que la
primera, la primera espina está situada en la base de la segunda, antenas 0.2 veces
más largas que el caparazón, órbita armada con un lóbulo por debajo y dos por
encima, estos dos lóbulos son los lóbulos preorbital y postorbital, el caparazón tiene
tres lóbulos anterolaterales, quelípedos 1.5 veces más largos que el primer par de
patas ambulatorias, merus triangular en la sección transversal y presenta dos lóbulos
en el margen interior superior, cuatro lóbulos en el margen exterior superior y dos
130
tubérculos entre estos, carpo nodoso con dos tubérculos en el margen superior
interior, palma lisa y comprimida, dedos con una larga y ancha brecha, un largo
diente se presenta en 1/3 de la hendidura en el margen del dactilo y otro diente largo a
2/3 de la hendidura del margen del propodio, el primer par de patas ambulatorias son
1.25 veces más largas que el caparazón, están cubiertas por bellos y delgadas setas,
espinas pequeñas están presentes en la mitad del borde superior del carpo y el
propodio.
Color: Verde- café, pereiópodos con uñas azules y manchas rojas.
Hábitat: Praderas de Thallassia, entre cuevas de los cantos de rocas y coral muerto.
Distribución: Colombia: Santa Marta (Velez, 1977); desde la Florida, Golfo de
México, Bahamas, las Antillas, Panamá, Venezuela, Colombia hasta Brasil (Wagner,
1991)
11.1.4.10 Microphrys bicornotus
(LATREILLE, 1825): (Tomado de Rathbun, 1925; Velez, 1977; Austin, 1984,
Cadavid et al., 1991) Caparazón subtriangular moderadamente velludo, todas las
partes levantadas cubiertas por tubérculos redondeados, línea de 4 tubérculos en la
131
región intestinal, región branquial con 2 o 3 espinas cortas y otra espina en el ángulo
lateral, rostro compuesto por dos cuernos gruesos, divergentes en la base y extremos
curvos, articulo basal de la antena con una espina conspicua en el ángulo anterior y
tubérculo marginal detrás de esta, ángulo preorbital rectangular, quelípedos con
manchas, merus con 3 o 4 tubérculo o corto, carpo nodoso, quelas planas, patas
ambulatorias disminuidas notablemente en longitud en comparación al primer y
cuarto par.
Color: Tonos café, amarillo y verdes.
Hábitat: Aguas someras hasta 30m, arrecifes de coral, playas arenosas. Raíces de
Rhizophora mangle. Se caracteriza por tener el caparazón cubierto por esponjas,
Hydroides, anémonas y algas.
Distribución: Colombia: Bahía de Barbacoas (Mosquera & Bernal, 1974), Bahía de
Cartagena (Pérez & Victoria, 1977), Laguna de Cocoliso PNN Corales del Rosario
(Cadavid et al., 19991), Santa Marta (Velez, 1977) Bahía de Chengue PNN Tayrona
(Reyes & Campos, 1992); Desde Golfo de México hasta Brasil, Bermudas (Austin,
1984)
132
11.1.4.11 Stenorhynchus seticornis
(HERBST, 1788): (Tomado de Cadavid et al., 1991) Rostro horizontal adelgazándose
progresivamente hasta el ápice, generalmente de 1.5 a 2 veces más largo que el resto
del caparazón, caparazón liso, artejo basal de la antena lleva una espina fuerte en el
medio dirigida hacia delante, margen anterior sin espina sobre el ángulo interno,
periópodos espinulosos y armados con dos series de espinas sobre el mero y dos o
tres espinas terminales sobre ambos artejos, primer par de periópodos ambulatorios es
8 a 9 veces más largo que la porción rostral del caparazón.
Color: Café- amarillo, punta de las quelas azules.
Hábitat: Hasta 2 metros de profundidad, sobre anémonas, esponjas y raíces de
Rhizophora mangle.
Distribución: Colombia: Laguna de Cocoliso PNN Corales del Rosario (Cadavid et
al, 1991), Bahía de Chengue PNN Tayrona (Reyes & Campos, 1992); desde Carolina
del Norte hasta Florida, Bermudas, Bahamas (Cadavid et al., 1991)
133
11.1.4.12 Pachygrapsus gracilis
(SAUSSURE, 1858): (Tomado de Rodríguez, 1980; Cadavid et al., 1991) Frente 2/3
la anchura del caparazón, margen convexo, sin líneas granuladas sobre la superficie,
lóbulos postfrontales poco marcados, el par exterior considerablemente mayor que el
par interno, superficie de las regiones cardiaca e intestinal lisa, superficie interna de la
palma con tubérculos, el segundo par de pereiópodos no tiene un área de pelos largos
y blanquecinos sobre la superficie interna del propodo y dactilo, dedos móviles de los
quelípedos con el borde superior tuberculados.
Color: Pardo oscuro, negro.
Hábitat: Aguas someras, raíces de Rhizophora mangle.
Distribución: Colombia: Bahía de Barbacoas (Mosquera & Bernal, 1974; Jácome;
1984), Bahía de Cartagena (Pérez & Victoria, 1977), Laguna de Cocoliso PNN
Corales del Rosario, San Bernardo (Cadavid et al., 19991), Bahía de Chengue PNN
Tayrona (Reyes & Campos, 1992); Florida, Bahamas, Cuba, Jamaica, Puerto Rico,
Colombia, Venezuela, Surinam, Brasil, Bermuda (Rodríguez, 1980).
134
11.1.4.13 Panopeus herbstii
H. MILNE EDWARDS, 1834: (Tomado de Rathbun, 1930; Rodríguez, 1980;
Manning & Holtuis, 1981; Austin, 1984; Cadavid et al., 1991) Caparazón
aproximadamente 2/3 de largo del ancho, regiones bien demarcadas, superficie
granulada, margen antenolateral con 5 dientes, los dos primeros coalecentes, el
tercero y el cuarto largos y prominentes, quinto pequeño y agudo, cresta transversa
extendida sobre el quinto diente y una pequeña hendidura en el cuarto, quelípedos
fuertes granulados, carpos sin hendidura en la superficie superior y con una espina
interna, quelas desiguales, la más larga con un diente curvo y grueso en la base, dedos
oscuros extendiéndose el color sobre la palma, dedo fijo de la quela mayor con un
gran diente basal, cinco (5) dientes laterales, los dos primeros siempre distintos o más
o menos fusionados, borde de la frente sin surco transversal, el tercer segmento
abdominal del macho llega a la coxa del último par de periópodos.
Color: Café oscuro- verde hasta café- anaranjado, dedos de las quelas oscuros.
Hábitat: Zona intermareal entra las raíces del manglar, común en la zona de flujo de
mareas.
Distribución: Colombia: Bahía de Barbacoas (Mosquera & Bernal, 1974; Jácome;
1984), Bahía de Cartagena (Pérez & Victoria, 1977), Laguna de Cocoliso PNN
135
Corales del Rosario, San Bernardo (Cadavid et al., 19991); desde Massachusetts
hasta Desterro en Brasil, Bermudas, Venezuela (Rodríguez, 1980, Austin, 1984).
11.1.4.14 Rocinela signata
Foto tomada de http://phylogeny.arizona.edu/tree/eukaryotes/animal/arthropoda/custacea/isopoda/
accesory/caguide/flabelifera.html/ de la Universidad de Arizona.
SCHIOEDTE & MEINERT, 1879: (Tomado de Kensley & Schotte, 1989) Cabeza
ancha y angular, terminando en la base de las antenas, ojos bien separados, flagelo de
la antena con 10 o 11 artículos, periópodos 1-3, propodio desarmado o con una espina
en el margen posterior, pleotelson con el margen posterior redondeado, usualmente
con una banda de pigmento.
Color: Cuerpo blanco y cabeza negra.
Hábitat: Aguas someras en la arena y escombros de coral.
Distribución: Florida, Islas Vírgenes, Bahamas, Jamaica, Haití, México, Puerto Rico, 136
Venezuela. En el Pacífico: Sur de California Panamá y Costa Rica (Kensley &
Schotte, 1989)
11.1.4.15 Paracerceis sp.
Foto tomada de http://biology.unm.edu/ de la Universidad de Nuevo Mexico
(Tomado de Kensley & Schotte, 1989) Pleopodio con 3 exópodos con una sutura
transversa en la parte distal, pleon con dos suturas largas bordeando el margen
postlateral. Machos: Ramificación penial separada. Pleotelson con área basal fuerte
en forma de baúl, muesca posterior con dentículos en el margen interior y un diente
en la base de la muesca, endopodios de uropodio cortos, fusionados con el simpodio,
exopodio elongado. Hembras: Partes de la boca metamorfoseadas, mandíbula
fusionada con la cabeza, marsupio con cuatro pares de oostegitos, los tres pares
posteriores sobrepuestos, la camada dentro del marsupio, pleon menos ornamentado
que en el macho y con una muesca.
Color: Café oscuro.
137
Hábitat: Dentro de la madera en túneles perforados por ellos.
Distribución: Colombia: Bahía de Chengue PNN Tayrona (Reyes & Campos, 1992-
P. Caudata); Bermudas, Florida, Yucatán, Golfo de México, Venezuela, Cuba, Puerto
Rico, Bahamas (Kensley & Schotte, 1989).
11.1.4.16 Excorallana sexticornis
Foto tomada de Schotte (1989)
(RICHARDSON, 1901): (Tomado de Kensley & Schotte, 1989) Ojos bien separados,
articulo basal antenular peduncular en los machos es corto anterodorsalmente, cabeza
con dos pares de tubérculos prominentes, el par anterior más corto que el posterior, el
segundo situado en la mitad de los ojos, lamina frontal el largo el doble del ancho,
lados paralelos y convergen en la parte anterior, apicalmente redondeada y extensa,
margen posterior de los pleonitos 2-5 con dos pequeños tubérculos redondeados cerca
de la línea media dorsal, pleotelson con dos tubérculos basales, numerosas espinas
dorsales, márgenes laterales con incisiones, ápice redondeado.
Color: Blanco- cremoso.
138
Hábitat: Aguas someras, sobre raíces muertas de mangle rojo.
Distribución: Cayos de la Florida, Cuba, Puerto Rico, Belice (Kensley & Schotte,
1989).
11.1.4.17 Excorallana tricornis Foto tomada de Schotte (1989)
(HANSEN, 1890): (Tomado de Kensley & Schotte, 1989) Articulo antenular basal
aflechado, cabeza en los machos con dos cuernos dorsales y uno medio, ojos largos
bien separados, lamina frontal entre dos y tres veces más largos que el ancho basal,
lados subparalelos, anteriormente redondeados, pereon suave, márgenes de la incisión
lateral bordeados con espinas cortas, espinas esparcidas a lo largo del dorso del
telson, exópodo uropodial largo 2.3-2.5 veces el ancho, muesca apical simétrica.
Color: Blanco- cremoso.
Hábitat: Escombros de coral, sobre sedimentos gruesos de praderas de Syringodium y
Thallassia, en algas cafés Turbinaria, sobre esponjas Madracis, sobre coral Agaricia,
Raíces de Rhizophora mangle.
Distribución: Colombia: Bahía de Chengue PNN Tayrona (Reyes & Campos, 1992);
Islas Vírgenes, Cuba, Puerto Rico, Belice, Golfo de México (Kensley & Schotte,
1989)
139
11.1.4.18 Gonodactylus sp.
(Tomado de Schmit, 1940) Protuberancia suave y redondeada, cresta del diente del
telson sin espinas, láminas oculares usualmente cuadradas con el margen anterior más
o menos convexo y al mismo tiempo subcircular, ángulos anterolaterales de la lámina
del rostro redondeado.
Color: Café oscuro o rosado- anaranjado.
Hábitat: Colombia: Bahía de Cartagena (Pérez & Victoria, 1977- G. oerstedii); Desde
Carolina del Norte hasta Brasil incluyendo Bermudas, Bahamas, Golfo de México.
En el Pacífico: Golfo de California, México, Costa Rica (Schmit, 1940).
140
11.1.4.19 GAMMARIDEA sp.
Foto tomada de Barnard (1969)
(Tomado de Barnard, 1969; Ortíz, 1983) Flagelo accesorio bien desarrollado con 4 o
más artículos, campo de la boca cuadriforme, mandíbula con 3 palpos articulados, el
tercer articulo más largo que él artículo 1, molar presente con dientes, labio inferior
con el lóbulo principal sin dividir, maxila con un lóbulo interior, lóbulo externo
espinoso y un palpo fuerte inflexible de 2 artículos, maxila 2 con lóbulos setosos bien
desarrollados, cada lado de los maxilípedos con un largo lóbulo interior y un lóbulo
exterior, cuatro palpos articulados, articulo 4 agudo, gnatopodio bien desarrollado y
subquelado, gnatopodio 2 más largo que el primero en los machos, articulo 3 del
gnatopodio 2 corto, articulo 4 de los pereopodios 1-2 no extensible, pereopodios 3-5
en estructura congruente, tres pares de largos urupodios todos birrámicos,
lanceolados, pedúnculo del uropodio 3 no elongado, telson profundamente agrietado,
coxa de forma elongada rectangular, placas con bordes cuadrados o redondeados,
coxa 1-4 de forma uniforme, coxa 4 excavada posteriormente, todo el cuerpo
segmentado libremente, metasoma solamente es largo a partir del quinto pereonito,
cabeza subcuboidal, no masiva, rostro pequeño.
141
Color: Translucidos- blanco
Hábitat: Raíces de Rhizophora mangle, en simbiosis con Ascidia nigra e hydroides,
fondos arenosos, sobre Thallassia testudinum, charcas supralitorales y sobre
cianofíceas.
Distribución: Colombia: Santa Marta (Ortíz, 1983).
11.1.5 ECHINODERMATA
Presenta simetría pentarradial, ya que su cuerpo se encuentra dividido en cinco
partes dispuestas alrededor de un eje central. Presenat un esqueleto interno
constituido por una serie de osículos calcareos que pueden articularse entre si.
Normalmente esta dotado de una serie de espinas o tubérculos, que sobresalen de la
superficie del cuerpo dándole una specto rugoso o espinoso. El caracter más
exclusivo de los equinodermos es la presencia de un sistema peculiar de canales
celomáticos y una serie de apéndices superficiales que constituyen el sistema
vascular acuífero o sistema ambulacral (Ruppert & Barnes, 1996; Pechenik, 2000).
142
11.1.5.1 Ophiactis savignyi
Foto tomada de http://w.w.w.nrm.se/ del museo de Historia Natural de Suecia.
(MULLER & TROSCHEL): (Tomado de Hendler et al., 1995) Individuos con seis
brazos, diámetro del disco de 3.8mm y diámetro con los brazos de 16.3mm, cubierto
con pequeñas espinas, las dos papilas orales aplanadas y en forma de escamas, las
cinco o seis espinas de los brazos de tamaño similar excepto por la espina ventral, la
punta de la espina es espinulosa con un pequeño diente en la esquina opuesta, algunas
veces con un pequeño lóbulo distal sobre la placa.
Color: Verde, con tonos cafés y crema, usualmente con parches blancos sobre la
concha.
Hábitat: Arrecifes de Coral, pastos marinos, raíces de manglar, dentro de las algas,
corales, esponjas y escombros. Aguas someras pero se ha reportado hasta 518m.
143
Distribución: Colombia: Bahía de Cartagena (Pérez & Victoria, 1977), Ciénaga de
Cholón (Avila & Bonilla, 1993); Indo Pacífico, Océano Atlántico, Bermudas, Golfo
de México, Brasil (Hendler et al., 1995).
11.1.5.2 Ophiothrix orstedii
LUTKEN: (Tomado de Hendler et al., 1995) Hasta 12mm de diámetro el disco, con
brazos de hasta 65mm de longitud, cubierto de delgadas espinas en los sectores
interdidales de la parte dorsal del disco terminando en dos o tres espineletes, al igual
que en los brazos, las espinas en el borde y la superficie ventral del disco con puntas
bífidas, la espina superior del brazo delgada redondeada y aguda, las espinas
inferiores aplanadas y serradas, el borde dentado, las mandíbulas sin papilas orales
pero lleva un racimo proximal de papilas dentales, tubo alimenticio papilloso.
Color: Verde, café, café rojizo, azul, púrpura o gris, brazos con bandas de color
amarillo bordeados con negro que continúan hasta el disco.
Hábitat: Arrecifes de coral, pastos marinos, debajo de rocas, sobre esponjas y corales
de fuego. Aguas someras hasta 31m.
Distribución: Bahamas, cayos de la Florida, Cuba, Jamaica, Haití, Puerto Rico,
Barbados, Tobago, Belice, en Colombia en la Isla de Providencia, Venezuela
(Hendler et al., 1995).
144
11.1.6 UROCHORDATA
Se conocen como tunicados, la mayoría son sésiles y su cuerpo esta cubierto por una
compleja túnica exoequeletica. Carecen de columna vertebral pero en algún
momento de su ciclo de vida presentan características típicas de los cordados:
notocorda, cordón nervioso dorsal hueco, hendiduras branquiales y una cola
posnatal. En la etapa adulta la notocorda y el cordón nervioso desaparecen (Ruppert
& Barnes, 1996; Pechenik, 2000).
11.1.6.1 Ascidia sp.
(Tomado de Ruppert & Barnes, 1996) Tunicados solitarios con vasos longitudinales
en la faringe, gónadas dentro del asa digestiva, sin postabdomen, asa digestiva por
detrás o a un lado de la faringe.
Color: Negro o rojo.
Hábitat: Adherido a las raíces de Rhizophora mangle.
Distribución: Colombia: Bahía de Barbacoas (Mosquera & Bernal, 1975), Laguna de
Cocoliso PNN Corales del Rosario (Cadavid et al, 1991).
145
11.1.6.2 Botryllus sp.
(Tomado de Ruppert & Barnes, 1996) Tunicados coloniales con revestimiento
faríngeo plegado con vasos longitudinales, asa digestiva en un lado de la faringe, sin
epicardio.
Color: Verde- café o Morado con visos naranjas.
Hábitat: Cubriendo las raíces de Rhizophora mangle.
Distribución: Colombia: Bahía de Chengue PNN Tayrona (Reyes y Campos, 1992).
146
Foto1. Morfología del manglar de la Isla de Barú, Departamento de Bolívar. Estación Ciénaga de Cholón. Octubre 25 de 2000.
Foto 2. Morfología del manglar de la Bahía de Barbacoas, Departamento de Bolívar. Estación Arroyo de Plata. Octubre 25 de 2000.
147
Foto 3. Comparación entre las raíces de Rhizophora mangle, en las estaciones de Arroyo Hondo y Puerto Naito.
148
Foto 4. Comparación entre las raíces de Rhizophora mangle, en las estaciones de Ciénaga de Cholón y Arroyo de Plata.
149
Foto 5. Raíz de Rhizophora mangle con macroinvertebrados asociados. Estación de Puerto Naito. Octubre 25 de 2000.
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