11

Edna Marques de Araújo SilvaEdna Marques de Araújo Silva

Ciclo vital dos principais parasitos de importância para o

homem. Métodos para diagnóstico de

protozoários intestinais, helmintos intestinais e parasitos

do sangue e tecido.

PARASITOLOGIAPARASITOLOGIA

22

Ciclo vital dos principais parasitos de importância

para o homem

Edna Marques de Araújo SilvaEdna Marques de Araújo Silva

33

Introdução

Agentes Etiológicos

Protozoários Helmintos

CISTOSTROFOZOÍTOS

OOCISTOSESPOROS

VERMES ADULTOSLARVAS

OVOS

44

Localizações mais freqüentes dos parasitas

55

Protozoários

66

PROTOZOÁRIOS INTESTINAIS MAIS COMUMENTEENCONTRADO EM AMOSTRAS FECAIS

PROTOZOÁRIOS PROTOZOÁRIOS

  AmebasAmebas

 Entamoeba histolytica/dispar, Entemoeba coli,

Endolimax nana, Iodoamoeba butschlii, Balantidium

coli

FlagelosFlagelos   Giardia lamblia, Chilomastix mesnilli    CoccídiosCoccídios   Cryptosporidium parvum, Isopora belli, Ciclospora sp.Cryptosporidium parvum, Isopora belli, Ciclospora sp.

77

PROTOZOÁRIOS INTESTINAIS MAIS COMUMENTE

ENCONTRADO EM AMOSTRAS FECAIS

88

Ciclo evolutivo das Amebas

1-Cistos

2-Metacistos

3-Trofozoítos metacísticos

4-Pré-cistos

5-Cistos

99

PROTOZOÁRIOS INTESTINAIS MAIS COMUMENTE

ENCONTRADO EM AMOSTRAS FECAIS

Oocistos

Cryptosporidium sp.

Oocisto

Isospora belli

Oocisto de

Ciclospora cayetanesis

Coccídios

1010

Isospora belli Ciclospora cayetanensis Cryptosporidium sp.

1111

PROTOZOÁRIOS INTESTINAIS MAIS COMUMENTE

ENCONTRADO EM AMOSTRAS FECAIS

Giardia lambliaChilomastix mesnili

Flagelados

Tichomonas vaginalis

1212

Giardia lamblia

1313

Balantidium coli

1414

PRINCIPAIS HELMINTOS INTESTINAIS DO HOMEM

1515

HELMINTOS INTESTINAIS MAIS COMUMENTEENCONTRADO EM AMOSTRAS FECAIS

HELMITOSHELMITOS   NeomatódeosNeomatódeos

Ascaris lumbricoides, Ancilostomideos, Enterorobius vermucularis, Strongyloides stercolaris, Trichuris trichiura, Filárias  

Trematódeos Trematódeos Schistosoma mansoni, Fasciola hepáticaSchistosoma mansoni, Fasciola hepática

 Cestódeos     Taenia sp., Taenia sp., Hymenolepis diminuta, Hymenolepis nanaHymenolepis diminuta, Hymenolepis nana

1616

HELMINTOS INTESTINAIS MAIS COMUMENTEENCONTRADO EM AMOSTRAS FECAIS

Nematódeos

1717

Cestódeos

HELMINTOS INTESTINAIS MAIS COMUMENTEENCONTRADO EM AMOSTRAS FECAIS

Trematódeos

1818

Ascaris lumbricoides (Ciclo monoxênico)

1919

Ancilostomideos (Ciclo monoxênico)

2020

Enterorobius vermucularis (Ciclo monoxênico)

2121

Strongyloides stercolaris (Ciclo monoxênico)

2222

Trichuris trichiura (Ciclo monoxênico)

2323

Filarias (Ciclo heteroxênico)

2424

ciclo vital dos principais nematóides no homem

2525

Schistosoma (Ciclo heteroxênico)

2626

Taenia sp. (Ciclo heteroxênico)

2727

Himenolepis nana (Ciclo monoxênico/heteroxênico)

Himenolepis diminuta

(Ciclo heteroxênico)

2828

CESTÓIDES

2929

ciclo vital dos principais hemoparasitas

3030

Tripanosoma cruzi

3131

PLASMÓDIOS DA MALÁRIA

Mosquito-Anopheles obs.formas hipnozoítos

3232

O ciclo de vida dos plasmódios envolve dois hospedeiros:

•Hospedeiro vertebrado - homemCICLO PRÉ-ERITROCITÁRIO -Fígado,hepatócitos –esporozoíta, criptozoíta, esquizonte, (hipnozoítas) CICLO ERITROCITÁRIO -Hemácias- merozoíta, trofozoíta, esquizonte, merócito ou rosacéa e gametócito, •Hospedeiro invertebrado - inseto (Anopheles)- gametócitos - gametas e ocorre a reprodução. zigotos oocistos   esporozoítas

3333

Leishmanias

ESFEROMASTÍGOTAS-PARAMASTÍGOTAS

Gênero inseto - Lutzomyia

3434

Toxoplasma gondii

3535

Toxoplasma gondii

3636

Métodos para diagnóstico de protozoários

intestinais, helmintos intestinais e parasitos do

sangue e tecidos

Edna Marques de Araújo Silva

3737

DIAGNÓSTICO LABORATORIAL DAS ENTEROPARASITOSES HUMANAS

O exame parasitológico de fezes ainda é a ferramenta fundamental no diagnóstico das parasitoses que tem na via anal a via de eliminação das formas evolutivas.(Coura, 2005).

O diagnóstico baseado em parâmetros morfológicos ainda é o mais realizado por ser realizado por técnicas mais acessíveis e mais econômicas.

3838

Material – Fezes, urina, escarro, secreções urogenitais, aspirados, tecidos, conteúdo duodenal e espécimes obtidos por biópsia

Parasitas intestinais e do sangue- demonstração morfológica do(s) estágio (s) de diagnóstico

Infecções dos tecidos- (sorologia) Ex. toxoplasmose, leishmaniose visceral, amebíase extra-intestinal, esquistossomose crônica

DIAGNÓSTICO LABORATORIAL DAS ENTEROPARASITOSES HUMANAS

3939

O Diagnóstico dos parasitas no organismo humanoO Diagnóstico dos parasitas no organismo humano Decorre peculiaridade de cada parasitose Decorre peculiaridade de cada parasitose

As técnicas usadasAs técnicas usadas

Biologia do parasita (leveza, localização, tropismos, Biologia do parasita (leveza, localização, tropismos,

etc.)etc.) Densidade de suas formasDensidade de suas formas Diagnóstico exigido (inquérito)Diagnóstico exigido (inquérito)

Assim para se investigar uma parasitose muitas vezes é Assim para se investigar uma parasitose muitas vezes é

necessário a utilização de mais de um métodonecessário a utilização de mais de um método

DIAGNÓSTICO LABORATORIAL DAS ENTEROPARASITOSES HUMANAS

4040

Diagnóstico laboratorial

INDIRETO: reações antígeno/anticorpo

( FRC, PCR, Elisa)

DIRETO: visualizar o causador da patologia

MACROSCÓPICO e MICROSCÓPICO

Evidencia vermes Ex. direto, Prep. salinas,

Características físicas Coloração, Temperatura.

DIAGNÓSTICO LABORATORIAL DAS ENTEROPARASITOSES HUMANAS

4141

protozoários intestinais

DIAGNÓSTICO LABORATORIAL DAS ENTEROPARASITOSES HUMANAS

Exame de fezes a fresco trofozoítas

Esfregaços corados: Hematoxilina férrica Ziehl Nelseen mod.

Amostras formadas técnicas de concentração Exame de fezes coradas pelo lugol oocistos, cistos,

ovos, larvas

Amostras mucosas, liquefeitas ou pastosas

4242

Métodos utilizados:

♦Métodos de concentração ou Métodos de enriquecimento: *ovos ou larvas dos helmintos, cistos e trofozoítas de

protozoários

♦ Método de sedimentação: espontânea, centrifugação *utiliza líquidos de baixa densidade

♦Método de suspensão: espontânea, centrifugação*utiliza líquidos de alta densidade

♦Método de indução: ação da gravidade *ação da temperatura, tropismos dos parasitas

DIAGNÓSTICO LABORATORIAL DAS ENTEROPARASITOSES HUMANAS

4343

EXAME PARASITOLÓGICO DE FEZES

EXAME DIRETOTÉCNICAS DE

CONCENTRAÇÃO

POR SEDIMENTAÇÃO

POR FLUTUAÇÃO

ESPONTÂNEALutz 1919

Hoffmann,Pons e Janer 1934

CENTRIFUGAÇÃOESPONTÂNEA

Willis 1921

CENTRÍFUGAÇÃOFaust et al 1939(Protozoários)

MATERIAL CONSERVADO

Ritchie 1948MIFIC(Blagg et al. 1955

MATERIAL COLETADO A FRESCO Baermann Morais 1948

Rugai, Matos e Brizola 1954

TÉCNICAS ESPECIAISGraham 1941

Harada-Mori 1955Kato-katz et al. (1972)

4444

MÉTODOS PARASITOLÓGICOS

MÉTODO DE FAUST et al.

PESQUISA DE SANGUE OCULTO

PESQUISA DE LEUCOCITOS NAS FEZES

MÉTODO DE TAMIZAÇÃO, E CLARIFICAÇÃO DE PROGLOTES

MÉTODO DE HOFFMAN, POSNS E JANER

MÉTODO DE BLAGG et al..

MÉTODO DE GRAHAM OU SWAB ANAL

MÉTODO DE WILLIS

4545

MÉTODOS PARASITOLÓGICOS

MÉTODO DE TELEMAN RIVAS

MÉTODO DE BAERMANN

MÉTODO DE RUGAI, MATOS E BRIZOLA

MÉTODO DE KATO-KATZ

MÉTODO DE VERCAMEN GRANDJEAN

4646

1- EXAME À FRESCO

Método indicado para material fecal emitido recentemente (menos de 30 minutos), de consistência líquida ou pastosa, onde se suspeita a presença de trofozoítas de protozoários.

Em uma lâmina coloca-se uma gota de solução salina e uma do material fecal, cobre-se com lamínula e observa-se ao microscópico na objetiva de 10x, confirmando na de 40x.

2- MÉTODO DIRETO

Empregado em fezes de consistência variada, recentemente emitidas ou não, onde a infestação parasitária é reconhecidamente intensa, também em inquéritos epidemiológicos.

4747

3-COLORAÇÃO PERMANENTE DE ESFREGAÇOS

Produz contraste de coloração entre os artefatos do fundo da preparação e os parasitas presentes. Utilizado no diagnosticar protozoários intestinais.

Observar através da objetiva de imersão (100x) que permite ao exame o reconhecimento de detalhes morfológicos do organismo.

A hematoxilina férrica, tionina, tricrômicoColoração por fluorocromos - Auramina,

RodaminaColoração por Ziehl-Neelsen e derivados, etc.

.

4848

5 - MÉTODO DE RITCHIE - 1948(sedimentação por centrifugação)

Emprega o formol e o éter com finalidade de fixar e concentrar as estruturas parasitárias e separá-las dos detritos e gorduras fecais. Indicado na pesquisa de protozoários e/ou helmintos nas fezes.

6 - MÉTODO DE BLAGG et al. ( MIFC) - 1955(sedimentação por centrifugação)

Emprega-se em amostras conservadas (MIF) através de centrifugação.

Mais de uma amostra conservada.Coprotest (sistema comercial) éter ou acetato de

etila.

4949

-Métodos qualitativos

4- MÉTODO HOFFMAN, PONS & JANER – 1934(sedimentação espontânea)

Fundamenta-se na sedimentação espontânea do material fecal diluído em água sob a ação da gravidade.

Visualiza-se: partículas, cistos, ovos e larvas de parasitos no fundo do cálice de sedimentação.

5050

7- MÉTODO DE FAUST et al. 1939 (flutuação por centrifugação)

Fundamenta-se na flutuação das formas parasitárias em solução de sulfato de zinco a 33%. É indicado na pesquisa de cistos de protozoários (ovos leves de helmintos)Imprópria para espécimes fecais que contenham grande quantidade de gorduras.

8- MÉTODO DE WILLIS - 1921 (flutuação espontânea)Baseia-se na capacidade de flutuação dos ovos de ancilostomídeos em solução saturada de cloreto de sódio (dens. 1.130). Após 10 min corre a distorção dos ovos na solução.

5151

11- MÉTODO DE GRAHAM ou SWAB ANAL OU FITA ADESIVA- 1941 (método direto)

Fundamenta-se na utilização da fita na apreensão de estágios evolutivos de parasitos na região anal ou perianal. Pode-se detectar o E. vermicularis, eventualmente ovos de Taenia sp.

12- MÉTODO DE TAMISAÇÃO 1957 -1982(método direto)

Fundamenta-se na peneiração do bolo fecal total para pesquisa de proglotes e de escólex.

5252

9- MÉTODO DE BAERMANN-MORAES 1948 (sedimentação por centrifugação)

Esse procedimento fundamenta-se no termo hidrotropismo positivo das larvas de nematóides em água aquecida a 40º a 42ºC, por 90 min. que tendem a sedimentar. Pesquisa de larvas de nematóides intestinais como Strongyloides stercoralis e de Ancilostomídeos.

Obs. As amostras líquidas submetidas ao método de Baermann-Moraes deverão ser misturadas com pedaços de lenço de papel ou de papel higiênico.

Fezes armazenadas sob refrigeração devem ser evitadas.

10- MÉTODO DE RUGAI, MATOS E BRIZOLA- 1954Simplificação da técnica de Baermann-Moraes.

5353

11- MÉTODO DE GRAHAM ou SWAB ANAL OU FITA ADESIVA- 1941 (método direto)

Fundamenta-se na utilização da fita na apreensão de estágios evolutivos de parasitos na região anal ou perianal. Pode-se detectar o E. vermicularis, eventualmente ovos de Taenia sp.

12- MÉTODO DE TAMISAÇÃO 1957 -1982 (método direto)

Fundamenta-se na peneiração do bolo fecal total para pesquisa de proglotes e de escólex.

5454

-MÉTODO QUANTITATIVO

12- MÉTODO DE KATO-KATZ (1954-1972)(método direto)

Baseia-se na contagem de ovos de helmintos em lâmina e contato com substância conservadora (verde de malaquita). Indicado para avaliação da carga parasitária no diagnóstico e controle de cura após o tratamento. Empregado com muita freqüência para detectar ovos de Schistosoma mansoni.

Preconizado pela OMS para avaliação das helmintíases transmitidas pelo solo. (WHO 1998).

5555

13- GOTA ESPESSA CAMADA DELGADA

Indicado para o estudo e diagnóstico das hemoparasitoses. São preparações sangüíneas que usam quantidades relativamente grandes de sangue em pequena área, para oferecer melhores resultados ao exame microscópico.

5656

Outros Métodos utilizados no diagnóstico dos parasitos

16- MÉTODO DE HARADA-MORI (Cultura de Fezes para Larvas)

Cultura para larvas de helmintos em papel-filtro em tubo de ensaio contendo água destilada.

17-TÉCNICA DE KNOTT (Técnica de concentração)Pesquisa de filárias na corrente circulatória

18- MÉTODO DE VERCAMEN GRANDJEANPesquisa de ovos de Schistosoma em fezes diluídas