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Por que estou aqui hoje? Dulce Helena Ferreira de Souza 1981-1985: Bacharelado em Química, UFSCar 1985-1989: Mestrado em Química Inorgânica, UFSCar 1989-1996: Doutorado no IQSC, USP; Orientador: Prof. Glaucius Oliva; trancamento da matrícula por 2 anos; docente na UNESP/Iha Solteira; 1 filha

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Por que estou aqui hoje?Dulce Helena Ferreira de Souza

1981-1985: Bacharelado em Química, UFSCar

1985-1989: Mestrado em Química Inorgânica, UFSCar

1989-1996: Doutorado no IQSC, USP; Orientador: Prof. Glaucius Oliva;

trancamento da matrícula por 2 anos; docente na UNESP/Iha Solteira; 1 filha

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Primeiro projeto: Cristalização da Troponina C;

colaboração com Prof. Fernando Reinach, USP-SP

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Tese: Estrutura cristalográfica da enzima gliceraldeído-3-fosfa to des idrogenase de T. cruz i : impl icações nos mecanismos catalítico e potenciais sítios especifícos de inibição

Expressão da enzima em E. coli;Cinética;Cristalização;Coleta de dados;Resolução da estrutura

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SBBq em Caxambu, 1995

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1996-1998: PD no DCF/UFSCar- Proteínas de venenos de serpentes (Sup. Profa Helo isa Sel is t re-de-Araujo/FAPESP)

1999-2001: PD no IFSC/USP (Sup. Prof. Glaucius Oliva/ FAPESP)(Enzimas de Xylella fastidiosa envolvidas na síntese da goma fastidiana)

-alunos de IC

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2001-2005: Técnica de nível superior no IFSC

-Coordenadora de Projeto Regular da FAPESP (processo 01/07545-5),2001-2003

-Recursos complementares para projetos de pesquisa Pró-Reitoria de Pesquisa da USP, 2001-2003

-Supervisora de PD da Dra Renata Krogh Andricopulo 2002-2005, Bolsista Fapesp

-Credenciada como orientadora no PPG do IFSC:- 4 alunos de Mestrado (Celina; João Renato; Danielle; Ana Letícia)- 3 alunos de doutorado (Celina; Claudia; João Renato)

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Agosto de 2005 Docente no Departamento de Química da UFSCar

Após 10 anos no Grupo de Cristalografia de Proteínas:Churrasco de despedida

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Grupo de Química Orgânica do DQ

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Proteínas de venenos de serpentes; Estudos de proteínas nativas e recombinantes de

fungos; Enzimas da formiga saúva; Análise de expressão gênica; Estudos usando interferência por RNA (RNAi).

Técnicas de Biologia Molecular e Bioquímica no estudo de proteínas de

interesse biotecnológico

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Prof. Maria Fátima F. da SilvaNational Institute of Science And Technology for the Biorational Control of Pest-insect (INCT) Prof. João Batista FernandesIntegrated studies for leaf cutting control (Temático-FAPESP) Prof. Odair Correa BuenoCentro de Estudos de Insetos Sociais, CEIS, UNESP, Rio Claro

Atta sexdens ; formiga cortadeira; acetilcolinesterase, quitinases

L. gongylophorus, fungo simbionte da cortadeira; lacases, xilanases, poligalacturonases

Fungos; enzimas com características termofílicas

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PCR

- primers (F and R)-Taq DNA polimerase; - dNTPs;- DNA molde

Extração de RNA

cDNA (DNA molde)

Transcriptase reversa

DNA amplificados foram sequenciados

primers

mRNA

DNA

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Novos primers(com sequências obtidas

para larva/pupa e operária)

12

qPCR para sintase de quitina

Gene CHS é mais quantitativamente expresso em pupaLarva Pupa Operária

0

1

2

3

4

5Ex

pres

são

rela

tiva

AsCH

S to

tal

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Coleta de pupasNinho

Construção de sub-ninhos artificiais

O p e r á r i a s e o f u n g o

simbionte; 10 pupas em cada ninho;

5 ninhos; duplicatas

MicroinjeçõessiRNA AsCHS (300 ng)

Controles: 1- H2O2- siRNA complementar a DNA que não existe em formigas (Sigma)

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qPCR

14

18% de redução de transcrito de CHS após 3 dias (72 hs) de tratamento com siRNA

AsCHS

Controle água Controle siRNA siRNA AsCHS0.0

0.5

1.0

1.5

2.0

Expr

essã

o re

lativ

aAs

CH

S to

tal

0 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 110

20

40

60

80

100Controle siRNAControle águasiRNA AsCHS

Dias após injeção

% d

e M

orte

50% de mortalidade, após 4 dias

Análise fenotípic

a

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Biomassa lignocelulósica

Adaptado de ESPRO et al., 2017.

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Expressão das lacases nativas pelo fungo C. cupreum

Caracterização de 3 lacases

Aplicação biotecnológica

Fungo: Chaetomium cupreum URM 5066

Isolado: Raiz de cana-de-açúcar

Fonte: Micoteca URM de Recife-PE

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Aplicação das lacases na deslignificação do bagaço de cana-de-açúcar (BCA) antes da fermentação pela bactéria Paraclostridium benzoelyticum

Colaboração com Profa. Dra. Maria Bernadete A. Varesche - EESC

Pré-tratamento Fermentação Açúcares

disponíveis Biocombustível H2 Lacases P. benzoelyticum

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BCA in natura + LacaseBCA in naturaBCA autoclavado + LacaseBCA autoclavadoControle

Aumento de 46 % na produção de H2 com BCA in natura com o pré- tratamento com as Lacases

No momento: Otimização das condições

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LBFE

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2009

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2009, 2019, 2029….