CULTIVO EM MASSA DE PÓS-LARVAS DE PENAEUSJAPON/CUSEM TANQUES COMMICROALGAS NANNOCHLOROPS/S SP.

MARco A . IGARASffi"

ROBERTO K. KOBAYASffi""

JEFFERSON M. PENAFORT""

JOSÉRENATODEO. CÉSAR""

RESUMO

um sistema intensiw sem troca de água, na presença de micrvalgas, N annochloropsis sp. Aproximadamente 62. 700 pós-

10.000 litros. A temperatura da água de cultiw variou de 21,15 a 27,40°C Os camarões foram alimentados com ração

constituida de camarão ~ japonicus) e ~ão (Myti1us edulis). Geralmente, o.bserva-se uma alta mortalidade de cama-

foi de 81,34% até o vigésimo nono dia de cultiro A densidade de Nannochloropsissp. variou de 0,48x 1 Q6 a 38,72 x 1 Q6

células/ml

PALAVRAS-CHAVE: Camarão marinho, cultivo, microalgas.

SUMMARY

Nannochloropsissp.1emperature of the culture

waterrangedfrom 21,15 to 27,40°C lhe shrimps~fed with E japoIÚcusshrimpsandMytilus edulis mussel rations.ln

thepost-larvasurvival ratewas 81,34%atthe 29thdayofculture. 1hemicroalgadensityvariedfrom O,48xl06 to 38, 72x Ia' cells/rnl

KEY - WORDS: Shrimp, intensive culture, microalgae.

. Professor Adjunto Ph.D. do Departamento de Engenharia de Pesca da Unive~idade Federal do Ceará

.. Alunos do Mestrado em Engenharia de Pesca da U nive~idade Federal do Ceará

Diariamente foram observados os parâmetros:temperatura, salinidade, pH e densidade de células/ml de Nannochloropsis sp.

RESULTADOS E DISCUSSAO

Hudinaga demonstrou a praticabilidade do cul-tivo de P. )'aponicus (KIn'AKA 6), ao passo que JiroKittaka, em 1964, desenvolveu uma nova técnica decultivo de larvas em tanques grandes, nos quais foramcultivadas microalgas cujo desenvolvimento fora in-duzido por fertilização química da água de cultivo.Desta forma, com o aperfeiçoamento da carcinicultura,passou-se a empregar os métodos de cultivo extensi-vo, semi-intensivo e intensivo. Este último tem sidopraticado em vários países e envolve uma troca de águarelativamente mais elevada em relação ao sistema ex-tensivo. A boa qualidade da água constitui um fatordeterminante para o sucesso de um cultivo, devendoestar isenta de compostos tóxicos e contaminantesperniciosos à sobrevivência dos camarões.

De acordo com SHIODA & I<ITTAKA8, naágua de cultivo de filosomas em que se introduziuNannochloropsis, a amônia foi provavelmente absorvi-da por estas algas, durante seu crescimento. Por ou-tro lado, sugere-se que Nannochloropsis produzsubstâncias inibidoras do desenvolvimento de bacté-rias poluentes (IGARASHI3). Portanto a microalgaNannochloropsis sp. foi escolhida para ser utilizada naágua do cultivo neste experimento.

Quando se faz o bombeamento de água, nostanques de cultivos intensivos de camarões, em geralhá um gasto de energia elétrica maior que nos culti-vos extensivos. Isto porque, no sistema intensivo, háuma maior necessidade de água. Por conseguinte, esteexperimento foi realizados com vistas à obtenção demaiores informações acerca de um cultivo de pós-larvas de P. japonicus sem troca de água, em um siste-ma intensivo, na presença de microalgas

Nannochloropsis sp.

A temperatura é um fator que pode interferirno metabolismo do camarão, conseqüentemente in-fluenciando no crescimento. A temperatura da águapode variar de 24 a 28°C (IGARASHI5)sendo queem temperaturas abaixo de 20°C ou acima de 31°C,pode retardar o crescimento. Os camarões, coloca-dos em água gradualmente resfriada a 12°C -14°C,tomam-se inativos, movendo somente os pereiópodose pleópodos (SHIGUENO~.

Neste experimento, verificou-se que tempera-tura da água de cultivo variou de 21,15 a 27,40°C; opH de 7,42 a 9,04; e a salinidade de 26,0 a 33,5%0

(Tabela 1, Figura 1).Assumindo que os alimentos ministrados con-

têm uma mistura ideal de proteínas e minerais, estefato requer que todo o alimento oferecido às pós-larvas seja consumido. Na prática, isto é raro pois emmuitos casos uma porção da dieta é inaproveitável,por esta e outras razões a freqüência, tamanho doalimento e tempo de permanência deste foram ajus-tados para as pós-larvas consumirem e crescerem aomáximo. A quantidade de alimentos constituídos deM. edu/is e ração para P. }'aponicus, fomecida às pós-larvas, variou de O a 390 e 300g, respectivamente (Ta-

bela!). Segundo SHIGUEN07, Myti/us é umexcelente alimento para camarões.

Normalmente, uma alta mortalidade de cama-rões é verificada quando a água do cultivo não éreciclada durante um longo período. Neste experi-mento, a sobrevivência de pós-larvas foi de 81,34%no vigésimo nono dia de cultivo. A densidade deNannoch/oropsis sp. variou de 0,48 x 106 a 38,72 x 106células/ml (Tabela 1, Figura 1). Observamos que atéo décimo terceiro dia de cultivo, a Nannoch/oropsis sp.não apresentou um desenvolvimento satisfatório, o

que conseqüentemente baixou o pH para 7,77. Alémdo mais, no vigésimo quinto dia, quando a densidadede Nannoch/oropsis começou a diminuir, o pH tambémdeclinou, ficando abaixo de 8,0. E as pós-larvas di-minuíram o consumo de M. edu/is e começaram aapresentar sinais de debilidade. Este fato sugere queum pH abaixo de 8,0 pode influenciar negativamenteum cultivo intensivo. Assim, IGARASHI4 recomen-

MATERIAL E MÉTODOS

Este experimento foi realizado na Universida-de de Kitasato, Sanriku, Japão. Em um tanque retan-gular de 10.000 litros de capacidade foi estocada umaalta densidade de pós-larvas de P.japonicus, aproxima-damente 62.700, de mesma idade (PLs-J e tamanho.Este tanque foi abastecido com água do mar filtradaem fIltros de 10J.tm de espessura. A água não foitrocada durante o cultivo. Para as pós-larvas minis-trou-se Myti/us edu/is e ração peletizada para camarãoP. j"aponicus.

da que a água do cultivo de camarões apresente umpH levemente alcalino, entre 8,0 e 8,5.

Geralmente, em um cultivo, deve-se trocar aágua freqüentemente, evitando que a sua qualidadetorne-se precária. A quantificação da contribuiçãode Nannoch/oropsis no processo de purificação da águaé difícil, mas pode-se sugerir que a sua presença me-lhora a sobrevivência de pós-larvas de P. japonicuscultivadas na mesma água por um longo período.Na larvicultura de crustáceos dos gêneros Penaeus,Homarus e Jasus, sugere-se que esta microalga podecontrolar (IGARASHI et al.1) e limitar (IGARASHI& KITTAKA Z) o desenvolvimento de bactérias naágua de cultivo, melhorando conseqüentemente asobrevivência destes indivíduos. A operação contí-nua deste sistema intensivo requer uma certa habili-dade e sugere-se que é mais apropriado para paísesaltamente desenvolvidos, nos quais a terra e a mão-de-obra são caras e também onde haja um mercadogarantido para camarões vivos, a exemplo do Japão.

. o cultivo do tipo intensivo sugere ser aplica-

do para países com terra e mão-de-obra caras.. A microalga Nannochloropsis na água do cul-

tivo pode melhorar a taxa de sobrevivência das pós-larvas.

REFERÊNCIAS BIBLIOGRÁFICAS

AGRADECIMENTOS

Ao professor Jiro Kittaka da Universidade deKitassato, Sanriku, Japão, que concedeu total apoiona realização deste experimento.

CONCLUSÕES

. o camarão marinho P. ;"aponicus demonstrou ser

resistente na presença da microalga Nannoch/orop-sis sp.. Sugere-se que a presença das microalgas da

espécie Nannochloropsis sp. evitou uma variação exa-gerada do pH.

. A dieta natural à base de mexilhão (Mytilus

edulis) mostrou-se eficiente e com aceitabilidade óti-ma pelos camarões do cultivo e constatou-se que opH abaixo de 8,0 pode influenciar negativamente nocultivo do tipo intensivo.

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2. IGARASHI, M. A., KITrAKA,J. Water qualityof phyllosoma culture water. Proceeding ofthe Autumn Symposium on Aquaculture,

1991, p.446-465.3. IGARASHI, M. A. Bacteriological studies of

larval culture of crustaceans. Sanriku, Ja-pão: Universidade de Kitassato, 1991. 170p.(Dissertação de Doutorado).

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phyllosoma water. Proceedings of theAutumn Symposium on Aquaculture.1991. p. 446.

TABELA 1 - Condições do cultivo de pós-larvas de Panaeus }"aponicus com microalgas.

01020304050607080910111213141516171819202122232425262728?C)

25,3524,5023,75

25,6025,40

24,65

24,00

25,60

24,45

27,00

24,55

21,60

21,15

23,70

23,20

23,0024,60

27,4024,65

24,7026,60

26,30

25,60

26,25

27,25

24,85

22,25

22,1021_50

8,779,048,878,848,468,558,118,197,977,747,778,618,188,768,888,928,968,768,118,128,448,438,568,758,278,017,567,6274.'

32,032,032,032,533,533,031,030,029,026,028,029,030,029,531,532,031,031,028,528,027,026,026,026,026,027,527,026,5ns

10048

152184136136297184192284220140128396820

1268124

1584178411881660168826042520387237123684319629RO

10103010301030

140100300150

O12020

10070

10080

1901702605075

200200200200200200

o12128

10O666O6OO44443OO4

1003901601550OO

60

8124

204036285248

10052

22810437227272

132164 51.000

FIGURA 1 - Variação da temperatura, pH e salinidade da água do cultivo de Penaeus ;"aponicus.

~"Z3~-Qj

~

o,~u-.~" ~

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. . . . . . . . .~ c . . . ~ = . . " ...--- pH Salin.(%o)-.- Te~.(.C)

I I I

5 10 15 20

Dias de cultivo

3525 30

40.,.

:1251

20 t15 '

f10

5

0-.-O

FIGURA 2 - Variação do número de células de microalgas Nannochropsis e Phaeodactylum na água docultivo de pós-larvas de P. j"aponicus.

o 5 10 25 30 3515 20

Dias de cultivo