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Dr.N.K.Nayuni
Avaliação da eficácia de limpeza do Endozime
Xtreme Power e um Detergente Alcalino.
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Protocolo: Estudo quantitativo de instrumental cirúrgico em CME
Preparado para: Ruhof Corporation, USA
Preparado por:
Dr.N.K.Nayuni
Cientista, Bioanálise
Instituto de Pesquisas William Harvey
Londres. EC1M 6BQ.
Glossário:
- 1mg (miligrama) = 1000μg (micrograma)
- 1μg (micrograma) = 1000ng (nanograma)
- SSD (Sterile Services Departament) = Centro de Materiais e Esterilização
(CME)
- LoD: Limite de detecção
- LoQ: Limite de quantificação
- RFU: Unidade de Fluorescência Relativa
- BSA: (Bovine Serum Albumin) - Albumina de soro bovino
- OPA/NAC – Reagente patenteado a base de o-ftaldialdeído
Introdução:
A eficácia de limpeza de dois detergentes foi testada usando o protocolo para
detergentes de lavagem V020712 preparado para a Ruhof. A aplicação do
protocolo requisitado foi para realizar um estudo quantitativo em instrumental
cirúrgico em uma CME. Foi usado tecido de cérebro de rato no estudo, pois foi
demonstrado no nosso laboratório que as proteínas de tecido de cérebro
aderem fortemente ao aço inoxidável e fornecem um teste realístico da eficácia
de limpeza de detergentes de lavagem.
Instrumentos de aço inoxidável de uso único foram usados para o estudo. A
análise usou a recente tecnologia de detecção de proteína fluorescente
desenvolvida no Barts (Escola de Medicina e Odontologia de Londres) onde o
método foi otimizado e validado.
Materiais
Cérebros de rato: Cérebros de rato foram coletados de ratos machos Wistar
(Laboratórios Charles River).
Reagente OPA/NAC: Reagente patenteado
Sistema ProReveal: Sistema patenteado de detecção de proteína.
Instrumentos cirúrgicos: Adquiridos da Surgical Holdings Ltda. (G.B –
Inglaterra).
Lavadora: BHT Hygienetechnik
Detergentes de Lavagem:
1) Endozime XP (Ruhof)
2) Detergente alcalino
Ciclo de lavagem
Programa: Ver apêndice A para detalhes na íntegra.
Tempo de limpeza na presença do Endozime XP = 10 minutos e 50 segundos.
Temperatura: 45°C – 55°C
Diluição do detergente
1) Endozime XP : 2ml/L em água filtrada por Osmose Reversa
2) Alcalino: 4ml/L em água filtrada por Osmose Reversa
Método:
Estudo quantitativo de instrumento cirúrgico (em lavagem de CME
usando lavadora desinfectora - LD - (BHT Hygienetechnik)
40 instrumentos cirúrgicos novos de uso único comprados para o estudo. Os
instrumentos foram inicialmente lavados na CME para remover quaisquer
fragmentos de fabricação e potencial contaminação por proteína devido ao
manuseio.
Os instrumentos lavados foram acondicionados em sacos estéreis na sala de
limpeza com ambiente controlado de CME antes de serem transportados para
o laboratório.
Os instrumentos foram contaminados com tecido de cérebro de rato através da
manipulação dos cérebros. O peso do tecido aderido foi determinado usando
uma balança analítica de 4 unidades. Os cérebros foram homogeneizados e a
proteína total medida usando um reagente Biuret (Bio-RAd Ltda.).
Após as manipulações os instrumentos foram colocados para secar em uma
temperatura ambiente por 48 h.
Os instrumentos foram imediatamente transportados para a CME onde foram
limpos em uma das lavadoras desinfectoras (LD) hospitalares (BHT Hygiene
technik) usando ciclos padronizados. Cada LD foi otimizada para um dos
detergentes de lavagem por engenheiros usando testes de acordo com as
diretrizes do fabricante.
Os instrumentos lavados e secos foram vedados em sacos estéreis em um
ambiente limpo de CME e retornaram ao laboratório do Barts para análise.
A proteína residual em cada instrumento foi medida em relação ao padrão de
proteína (BSA) usando o método de detecção de proteína OPA/NAC.
Resultados:
Um padrão BSA foi medido antes da análise dos instrumentos cirúrgicos
lavados na CME. A regressão linear de fluorescência é mostrada na
Figura 1.
Figura 1: Regressão linearde BSA (0 – 20 μg) usando o método de detecção
de proteína OPA/NAC. O RFU é registrado em relação à concentração de
proteína. A equação da linha do R² = 0.99 é Y=73.9x + 9.98.
LoD: O limite de detecção do método é calculado a partir de um padrão em
submicrograma.
O LoD (Limite de Detecção) do método é de 5 ng (0,005 μg).
LoQ:
O LoQ (Limite de quantificação) do método é de 17 ng (0,017μg).
Seis tipos diferentes (S,C,B,E,D e P) de instrumentos foram testados sob cada
condição. O conteúdo total de proteína de tecido aderido foi de 369 ± 48 e 336
± 28 μg / instrumento em fórceps (Tipo E) e tesouras (Tipo D) respectivamente
(Tabelas 2 e 3). A porcentagem de proteína remanescente por instrumento
após uma lavagem Alcalina em CME nas condições descritas foi de 7.7 ± 1.6 (n
= 6) e 13.9 ± 0.9 (n = 8) para fórceps (Tipo E) e tesouras (TipoD)
respectivamente(Figura 2). Quando os instrumentos foram lavados com
Endozime XP em CME o % de proteína remanescente por instrumento foi de
0.3 ± 0.2 (n = 6) e 2.3 ± 0.9 (n = 8) para fórceps (TipoE) e tesouras(TipoD)
respectivamente(Figura 2). O % de proteína remanescente por instrumento em
ambos os tipos de instrumentais foi significativamente menor (P<0.001) quando
lavados com o Endozime XP comparados com a lavagem Alcalina usando a
Lavadora Desinfectora (LD) BHT Hyginetechnik (Figura 2, 3,4 e 5).
Lavagem Alcalina
Instrumento Proteína total aderida no
RFU Proteína % de Proteína
tecido (Volume total)
remanescente após
remanescente/
lavagem Instrumento (μg/Instrumento) (μg/ Instrumento)
MPS1 666. 7637068 103.25 15.48
MPC1 443 682314 9.10 2.05
MPB2 116 59638 0.67 0.58
MPB1 245 65324 0.75 0.30
MPE2 121 600595 8.00 6.60
MPE1 235 1365267 18.35 7.78
MPE4 84 487314 6.46 7.64
MPE3 461 4585914 61.95 13.41
MPE5 396 367251 4.84 1.22
MPE6 485 3517194 47.48 9.78
UD11(P) 388 4759824 64.30 16.53
UD32(P) 265 2786146 37.58 14.13
UD17(P) 270 3149155 42.50 15.74
UD33(p) 562 5410828 73.12 13.01
UD15(P) 582 6262106 84.64 14.53
UD16(P) 227 2495100 33.64 14.78
UD12(P) 233 2508778 33.83 14.47
UD37 (P) 239 1470835 19.78 8.25
MPA1 616 6260796 84.62 13.72
MPP1 62 104056 1.27 2.04
Tabela 1: Tabela sumária de instrumentos lavados com detergente
Alcalino na análise final.
Lavagem com Endozime XP
Instrumento Proteína total aderida no
RFU Proteína % de Proteína
tecido (Volume total)
remanescente após
remanescente /
lavagem Instrumento (μg/Instrumento) (μg/
Instrumento)
MES1 409.0 705043. 9.41 2.30
MEC1 511.8 775564 10.36 2.03
MEB2 294.2 <LoD <LoD <LoD
MEB1 205.5 <LoD <LoD <LoD
MEE4 296.2 <LoD <LoD <LoD
MEE2 304.3 <LoD <LoD <LoD
MEE6 467.5 124296 1.55 0.33
MEE1 483.6 31316 0.29 0.06
MEE3 439.3 35960 0.35 0.08
MEE5 652.5 760100 10.16 1.55
UD13 ( E ) 350.6 390538 5.15 1.47
UD14 ( E ) 298.2 398933 5.27 1.77
UD28 ( E ) 255.9 939585 12.58 4.92
UD27 ( E ) 328.4 1900277 25.59 7.79
UD21 ( E ) 300.2 240643 3.12 1.04
UD19 ( E ) 253.9 177431 2.27 0.89
UD 18 ( E ) 396.9 59193 0.67 0.17
UD38 ( E ) 429.2 60548 0.68 0.16
MEA1 346.6 <LoD <LoD <LoD
MEP1 98.7 <LoD <LoD <LoD
Tabela 2: Tabela sumária de instrumentos lavados com Endozime XP na
análise final.
Figura 2: Remoção comparativa de proteínas de cérebro secas usando LD
em uma CME.
Fórceps e tesouras foram usados para manipular tecido de cérebro de rato por
5 minutos, logo após os instrumentos foram secados a ar por 48 h. O peso do
tecido aderido foi medido e o total de proteína calculado. Os instrumentos
foram lavados em uma Lavadora Desinfectora BHT Hyginetechnik em uma
CME usando os ciclos otimizados para o produto Alcalino (Barras Vermelhas) e
Endozime XP (Barras Azuis). Os instrumentos lavados foram borrifados com
reagente OPA/NAC e a proteína residual foi medida em relação ao padrão
BSA. Os resultados foram em média ± SEM. N=6 para fórceps e n=8 para
tesouras em cada lavagem. *** = P<0.001. A diferença estatística foi
determinada pela ANOVA.
Figura 3: Imagens de fluorescência típica de tesouras contaminadas
lavadas em uma CME usando Prolystica Alcalino (acima à direita) e
Endozime XP (abaixo ao centro). A coloração do amarelo ao vermelho
demonstra mais proteína na região avermelhada.
Figura 4: Imagens de fluorescência típica de Fórceps contaminados
lavados em uma CME usando o Alcalino (acima à direita) e Endozime XP
(abaixo ao centro). A coloração do amarelo ao vermelho demonstra mais
proteína na região avermelhada.
Figura 5: Imagens de fluorescência típica de poços de Spencer
contaminados lavados em uma CME usando o Alcalino (acima à direita) e
Endozime XP (abaixo ao centro). A coloração do amarelo ao vermelho
demonstra mais proteína na região avermelhada.
Conclusões:
O estudo revelou que uma simples manipulação de tecido cerebral com
instrumentos cirúrgicos resulta em cerca de 33± 10 mg ( 33000 ± 10 μg ) de
tecido aderido na ponta de manuseio. Em média 369 ± 48 μg de proteína total
estava presente no tecido aderido em cada lado de um fórceps. Quando esses
instrumentos foram lavados com detergente alcalino em uma CME, 7.7 ± 1.6 %
de proteína permaneceu no instrumento, enquanto que os instrumentos
lavados com Endozime XP possuíam apenas 0.3 ± 0.2 % de proteína residual.
Isso o torna 25 vezes mais eficaz que o detergente alcalino na limpeza.
Tesouras possuíam 336 ± 28 μg de proteínas totais no tecido aderido e,destes,
13.9 ± 0.9 % de proteína permaneceu após uma lavagem Alcalina. Uma
lavagem com EndoZime XP desses instrumentos possuía 2.3 ± 0.9 % de
proteína remanescente na superfície do instrumento com melhora de 6 vezes
na remoção de proteína.
Proteínas hidrofóbicas ligam-se fortemente no aço inoxidável e são difíceis de
remover com água apenas. A proteína que estiver seca por mais de 24h torna-
se muito difícil de ser removida porque adere firmemente às superfícies. O uso
de enzimas proteolíticas em detergentes, como no detergente enzimático
Endozime XP, proporciona melhor remoção de proteína comparada a
detergentes de lavagem alcalinos.
Embora o Endozime XP seja melhor na remoção de proteínas, existem
instrumentos com quantidades μg de proteínas ainda aderidas no final do
trabalho com os instrumentos (Figuras 3,4 e 5). O uso de spray que
mantenham os instrumentos contaminados úmidos (evitando que a proteína
seque) irá melhorar a eficácia da limpeza do Endozime XP.
Recomendações:
1) Testes suplementares da eficácia da limpeza com Endozime XP em
condições de umidade.
Declaração:
Esse estudo foi conduzido usando o protocolo acordado V020712 e o método
de medição de detecção de proteína aprovado e validado desenvolvido em
nosso laboratório. Esse relatório descreve com precisão os procedimentos
usados e os resultados e conclusões refletem precisamente os dados básicos
do estudo. Os registros originais desse relatório estão armazenados no
laboratório.
Esse relatório é destinado para o uso exclusivo da Ruhof Corporation, USA.
Esses resultados são válidos e estão relacionados apenas aos instrumentos e
amostras usadas e testadas aqui. Quaisquer extrapolações devem ser
confirmadas pelo cientista e é requerida uma comunicação por escrito. A
significância dos dados está sujeita aos detergentes de lavagem usados nas
CME’s e os números das cargas correspondentes. Qualquer responsabilidade
por perdas ou danos resultantes da publicação ou uso desses resultados na
literatura é unicamente do patrocinador do estudo e não do cientista que
realizou os testes.
Dr. N.K. Nayuni
15/08/2012.