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Antonio Carlos A. Gheller

1 – A importância das mudas sadias na cana-de-açúcar

2 – Legislação da produção de mudas vegetais

3 – Planejamento do sistema

- Origem das mudas dos viveiros iniciais

- Tipos de viveiros

- Dimensionamento

- Implantação dos viveiros

4 – Controles fitossanitários nos viveiros

5 – Outros controles

6 – Técnicas de multiplicação rápida das mudas

PRODUÇÃO DE MUDAS EM CANA-DE-AÇÚCAR

1 – A IMPORTÂNCIA DAS MUDAS SADIAS NA CANA-DE-AÇÚCAR

Aspectos a considerar:

◊ CULTURAL

◊ FITOSSANITÁRIO

◊ ESTRATÉGICO

2 – LEGISLAÇÃO DA PRODUÇÃO DE MUDAS VEGETAIS


FUNGOS

CARVÃO -- Ustilago scitaminea

FERRUGEM -- Puccinea melanocephala

Puccinea kuehnii

PODRIDÃO-VERMELHA -- Fusarium moniliforme

-- Colletotrichum falcatum

POKKAH BOENG -- Fusarium moniliforme

MANCHA PARDA -- Cercospora longipes

MANCHA ANELAR -- Leptophaeria sacchari ?

MANCHA OCULAR -- Helminthosporium sacchari

PODRIDÃO-ABACAXI -- Ceratocystis paradoxa

Mais de 150 doenças registradas

15 doenças com ocorrência de importância econômica no Brasil

PRINCIPAIS DOENÇAS DA CANA-DE-AÇÚCAR

VIRUS

MOSAICO

SÍNDROME DO AMARELINHO (YLS)

PRAGAS ASSOCIADAS ÀS MUDAS

BICUDO DA CANA-DE-AÇÚCAR -- Sphenophorus levis

BACTÉRIAS

RAQUITISMO-DA-SOQUEIRA -- Leifsonia xyli

ESCALDADURA –DAS-FOLHAS -- Xanthomonas albilineans

ESTRIA VERMELHA -- Xanthomonas campestris

-- Acidovorax avenae

PRINCIPAIS DOENÇAS DA CANA-DE-AÇÚCAR

DOENÇAS VETORES CONTROLES

RAQUITISMO-DA-SOQUEIRA FACÃO / MUDA VT + TT

CARVÃO VENTO /SOLO / MUDA VT + TT + ROG

MOSAICO PULGÕES / MUDA VT + ROG

ESCALDADURA-DAS FOLHAS FACÃO / MUDAVT + ROG

FERRUGEM VENTO VT

ESTRIAS-VERMELHAS VENTO / CHUVA VT

VT = variedade tolerante TT = tratamento térmico ROG = roguing


FERRUGEM ALARANJADA – SP89-1115R.Sordi

FERRUGEM ALARANJADA – SP89-1115

FERRUGEM MARROM – RB835486

R. Sordi

Puccinea kuehnii

Matsuoka, 1976 Matsuoka, 1984 Planalsucar, 1975

Gheller, 1985 Sanguíneo, 1993 Chaves ECT al., 2002

PERDAS RELATADAS DEVIDO AO RAQUITISMO

Giglioti e outros -2002

OU GANHOS PELO CONTROLE

E.Giglioti e outros - 2002

INCIDÊNCIA DO RAQUITISMO DA SOQUEIRA EM VIVEIROSDE MUDAS MONITORADAS PELO INDEXACANA


CONTROLE DO RAQUITISMO DA SOQUEIRA

◊ Tratamento térmico a 50º C (50,5ºC) por 2 horas ou 52ºC por 30 – 45 minutos

Toletes de 2 a 3 gemas

Gemas isoladas

Mini – toletes de 1 gema com algum tecido de reserva

◊ Tratamento térmico e mutiplicação dos meristemas (BIOFÁBRICAS)

MATERIAL BÁSICO PARA IMPLANTAÇÃO DOS VIVEIROS PRIMÁRIOS

CANA DOENTE

CANA SADIA

CANA DOENTE CANA SADIA

INATIVAÇÃO DO AGENTE CAUSAL DO RSD

Control of Ratoon Stunting Disease of sugarcane in Louisiana

with seedcane produced through micropropagation and resistent cultivars

J. W. Hoy1 and J. L. Flynn2

1-Louisiana State University 2-ThermoTrilogy Inc

Louisiana : incidência média de colmos infectados por RSD

• até 1997 12%

• 1998 a 2000 3%

Mudas da Kleentek 1% desde 1998

“A incidência média de colmos infectados com RSD em todos os campos

originados da Kleentek foi de 1 % ou menos desde 1998”

Controle de Doenças na Produção de Mudas de Cana-de-Açúcar

L. Guevara and W. Ovalle

XXV Congresso ISSCT vol. 25 2005

Colmos infectados por:

X. albilineans – ESCALDADURA DAS FOLHAS

L. Xyli subsp. Xyli – RAQUITISMO-DA-SOQUEIRA

Sugarcane yellow leaf virus - AMARELINHO

Tratamentos:

HWT – Hot water treatment

3 horas / 50ºC para X. albilineans

30 minutos / 52ºC para L. xyli e Amarelinho

PT – Plant thermoterapy + 3 weeks at 41º + MTC

MTC – Meristem tissue culture

Untreated

Controle de Doenças na Produção de Mudas de Cana-de-Açúcar

L. Guevara and W. Ovalle

XXV Congresso ISSCT vol. 25 2005

RESULTADOS

Após 8 meses

% de infecção determinada por DOT BLOT para X. albilineans e L. xyli,

e por TBIA para amarelinho

I - Combinação de HWT, PT e MTC resultaram em baixa incidência de

X. albilineans (2%). Para os colmos não tratados = 78%

I I - Para L. xyli TODOS OS TRATAMENTOS ELIMINARAM COMPLETAMENTE

O AGENTE CAUSAL ENQUANTO OS COLMOS NÃO TRATADOS

APRESENTARAM 97% DE INCIDÊNCIA

1 – Microscopia de Contraste de Fase

2 – Sorologia (Dot – Blot)

- Técnica imunológica

3 – Tissue Blot Enzyme Immunoassay (TBIA)

- Semelhante ao Dot-Blot

- Mostra os vasos colonizados

4 – Staining by Transpiratory Method (STM)

- Coloração de vasos

- CXFT

5 – Polymerase Chain Reaction (PCR)

Reação da Cadeia da Polimerase

DIAGNÓSTICO DO RAQUITISMO DA SOQUEIRA (RSD)

REAÇÃO EM CADEIA DA POLIMERASE

PCR

CLASSES / CATEGORIAS DE MUDAS DE CANA-DE-AÇÚCAR

EVOLUÇÃO DO RAQUITISMO DA SOQUEIRA

nov/72 fev/74 75 76 77 78

TT 2h - VP → VS VT VQ VQUI

VIVEIROM 1 M 2 M 3 M 4

RTT 2h = VP ENSAIO

INOCULADO TT 3h - VS → VS VT VQ VQUI →

MULT = VSEX LONGEVIDADE

COM M 5

DO EFEITO DO

RSD TT 2h = VP

MULT - M M M M M → TRATAMENTO

TÉRMICO

MULT

C1 + C2 + C3 = ENSAIO COMPARATIVO ENTRE TT 2h E TT 3h

Longevidade e efeito do tratamento térmicoSTAB 3 - São Paulo, 1984

Longevidade e efeito do tratamento térmicoSTAB 3 - São Paulo, 1984

Conclusões:

Variedades: CB41-76 – CB49-260 – IAC52-326

Inoculação em caldo contaminado diluído 1:5

1- Não há ganho em se estender o TT de 2 h para 3 h a 50,5˚ C.

2- Apenas uma operação de tratamento térmico deixa residual contaminante de

bactérias que se propaga, de modo que após 5 multiplicações sucessivas,

o nível de RSD volta a ser tão alto quanto à cana não tratada.

3- Há necessidade de tratamentos térmicos cíclicos.

4- Recuperação de TCH (t/ha/ano):

CP CS CR

CB41-76 + 14% +25% +27%

CB49-260 + 17% + 21% +40%

IAC52-326 + 9% + 26% + 44%

EQUIPAMENTO PARA TRATAMENTO TÉRMICO

DE TOLETES (MODELO PLANALSUCAR)

EQUIPAMENTO PARA TRATAMENTO TÉRMICODE TOLETES

(MODELO IVAICANA/PR)

EQUIPAMENTO PARA TRATAMENTO TÉRMICO DE TOLETES

(MODELO UTT I – IACO/Chapadão do Sul/MS)

MÉTODOS DE PROPAGAÇÃO VEGETATIVA

EM CANA-DE-AÇÚCAR

E TAXAS DE MULTIPLICAÇÃO ALCANÇADAS


1 ha

Produção média = 85 t / ha aos 11 – 12 meses

E = 1,4 m = 7.142 m. lineares / ha

Perfilhamento médio = 10 colmos / m. l. = 71.420 colmos/ ha

1 COLMO / METRO DE SULCO PLANTADO

Aproximadamente 15 gemas / metro de sulco

RENDIMENTO - 1 : 10

Taxa de propagação = 1 : 0,83 por mês

ESQUEMA DE PROPAGAÇÃO CONVENCIONAL DE MUDAS

1

1:5

1:4

1 1 6

305

244

5

20 120

1:4

*

*

*

*

1:6* =

OUT MAR OUT MAR

ANO 1 ANO 2

PLANTIO CORTE EPLANTIO

CORTE E PLANTIO

PLANTIOCOMERCIAL

1 : 180

18 MESES

Taxa de propagação = 1 : 10 por mês

ESQUEMA DE PROPAGAÇÃO RÁPIDA DE MUDAS

Taxa de propagação = 1 : 3,3 por mês

1 : 6018 MESES

OUT MAR MAR

ANO 1 ANO 2

PLANTIO CORTE EPLANTIO

PLANTIOCOMERCIAL

1

1:5

1 10

505*

1:10 (CONVENCIONAL)* =

*

ESQUEMA DE PROPAGAÇÃO RÁPIDA DE MUDAS COM MEIOSI

Esquema de campo

5 sulcos5 sulcos

10 sulcos

15,4-16,5 m

11 entrelinhas

25-26 ruas de soja a 0,6m

2 sulcos de cana

E = 1,4-1,5 m2 sulcos de cana

E = 1,4-1,5 m

Cada sulco de cana fornece mudas para 5 sulcos adjacentes

1 : 5

M E I O S I

Método Intercalar Ocorrendo Simultaneamente

MULTIPLICAÇÃO VIA CULTURA DE MERISTEMAS *

Fase 1 – Extração dos meristemas

• Tratamento térmico convencional

• Avaliação de incidência de RSD (Dot-Blot)

• Tratamento térmico pré-brotação

• Brotação das gemas em laboratório (60 dias)

• Avaliação de incidência de RSD

• Extração dos meristemas (3 mm)

• Cultivo em meio de cultura (28º C / 12 h luz)

Fase 2 – Multiplicação e desenvolvimento das plântulas

• Plântulas da fase 1 com 3 – 4 semanas (30 cm)

• Cultivo em meio de cultura

• Repicagens sucessivas a cada 3 semanas

• Máximo de 5 repicagens

*V. Moraes e A. Sanguino – CTC / Copersucar

MULTIPLICAÇÃO VIA CULTURA DE MERISTEMAS *

Fase 3 – Enraizamento

• Transferidas para meio de cultura

• Mantidas a 26 – 30º C com 12 h luz

• Enraizam em 3 semanas (21 dias)

• Touceiras da fase 2 são desmembradas

• Novamente desmembradas e transferidas (repicadas) para substrato

• Aclimatação


MULTIPLICAÇÃO VIA CULTURA DE MERISTEMAS

TAXAS DE PROPAGAÇÃO

FASE 1 - 1 MERISTEMA

FASE 2 - 1 : 10 a cada repicagem com 3 semanas

FASE 3 - Ao final de 6 meses tem-se aproximadamente

20.000 plantas, suficientes para formar 1 ha de viveiro pré-primário

V. Moraes e A. Sanguino – CTC / Copersucar

1 MERISTEMA 6 MESES 1 HECTARE

MULTIPLICAÇÃO VIA MUDAS PRÉ-BROTADAS (IAC)

Estágio 1 – Retirada dos colmos, corte e preparo dos minirrebolos

Estágio 2 – Tratamento das gemas

Estágio 3 – Brotação

Estágio 4 – Individualização ou “repicagem”

Estágio 5 – Aclimatação fase 1

Estágio 6 – Aclimatação fase 2

PLANTIO

Retirada dos colmos, corte e preparo dos minirrebolos

Brotação

Individualização ou “repicagem”

Tubete - Dimensões

Aclimatação fase 1

Aclimatação fase 2

Enraizamento da gema no tubete

PLANTIO

DESINFECÇÃO DOS INSTRUMENTOS DE CORTE

1 – Solução de creolina a 1%

• Tempo de espera = 15’

2 – Solução de Composto de Amônia Quaternária a 0,2%*

• Cloreto de bensalcônio

(Cloreto de alquil dimetil amônio - 30% vv)

• Misturar 2 ml de cloreto – 30% por litro de água

• Pulverizar as partes a serem desinfetadas

• Tempo de espera = 30’’

3 – Flambagem

• Modelo COPERSUCAR

• Outros


PRODUÇÃO DE MUDAS

PARA DIFERENTES SISTEMAS DE PLANTIO MECANIZADO

EM CANA-DE-AÇÚCAR


SISTEMAS DE PLANTIO MECANIZADO EM CANA-DE-AÇÚCAR

1 – Plantio semi-mecanizado – colmos inteiros

-Colheita das mudas com corte manual

2- Plantio mecanizado

- Colheita das mudas mecanizado em rebolos (toletes)

3- Plantio em mini-rebolos ou toletes pré-ativados

“SISTEMA SYNGENTA” (em desenvolvimento)

AUSTRÁLIA

BRASIL

P. H . C. LUZ

MUDANÇA DE CONCEITO DE PLANTIO

0 DAP 10 DAP

50 DAP 90 DAP

CONVENCIONAL

PRIMEIRA PLATAFORMA PARA CANA: PLANTIO ÚNICO

TECNOLOGIAS VIABILIZADORAS

+

INOVAÇÕES SYNGENTA

™

• Moléculas e ingredientes

ativos e formulações ™

• Coating e Protetores ™

• Tecnologias de vigor ™

• Equipamentos de corte e

tratamento ™

• Conceito de sistema do

Plantio único ™

ACORDOS DE

DESENVOLVIMENTO

TECNOLOGICO

• Equipamentos de Plantio

• Equipamentos de

Tratamento

GERMOPLASMA

• Brasil

• Global

MUDAS COM MODDUSMUDAS SEM MODDUS

APLICAÇÃO DE MODDUS PARA REDUÇÃO DO COMPRIMENTO DOS ENTRENÓS

APLICAÇÃO DE MODDUS PARA REDUÇÃO DO COMPRIMENTO DOS ENTRENÓS

Porém ,

quais as variedades que eu devo multiplicar ?


Sairam do plantio entre as 20 +: RB72454 – 1,6% (13) ; RB835486 – 1,4% (16)

Adaptado de PMGCA UFSCar – 2012 - Plantio = 550.746 ha - Corte = 3.095.345 ha - 110unidades amostradas

CENSO VARIETAL 2012 – SÃO PAULO

----0,919-IAC95-50001,5 (14)2,59 –CTC 9

0,9 (19)0,920-RB8350540,9 (20)1,710-CTC 4

1,4 (15)0,918-SP91-10494,5 (4)3,18-SP83-2847

1,8 (11)1,017-SP80-32801,8 (10)3,67-CTC 15

1,7 (12)1,116-SP80-18164,3 (5)4,56-RB855156

1,4 (17)1,215-RB9357443,0 (7)5,85-RB92579

2,3 (8)1,314-RB8555367,8 (3)6,14-RB855453

1,3 (18)1,413-CTC 213,5 (2)9,83-SP81-3250

-----1,512-CTC 174,1 (6)10,82-RB966928

2,0 (9)1,611-SP80-184226,4 (1)27,01-RB867515

CORTE

%

PLANTIO

%VARIEDADE

CORTE

%

PLANTIO

%VARIEDADE

CULTIVADAS / (PLANTADAS) - 2012 S. P. LIBERADAS

1-RB867515 (1) 16-RB835486 --- CTC1 a CTC 16 IAC91-2195 * RB965902 SP

2-SP81-3250 (3) 17- RB935744 (15) CTC3 a CTC 18 IAC91-5155 * RB965917

3-RB855453 (4) 18-CTC2 (13) CTC5 a CTC 19 IAC91-2218 * RB946903 PR

4-SP83-2847 (8) 19- RB835054 (20) CTC6 b CTC 20 IACSP93-6006 * RB956911

5-RB855156 (6) 20-CTC4 (10) CTC7 b CTC 21 IACSP93-3046 ** RB937570 MG

6- RB966928 (2) CTC8 b CTC 22 IACSP94-2094 ** RB931003 AL

7- RB92579 (5) ( PLANTADAS ) CTC10 c CTC 23 d IACSP94-2101 ** RB931011

8-RB855536 (14) CTC17 (12) CTC11 c CTC 24 d IACSP94-4004 ** RB951541

9-SP80-1842 (11) IACSP95-5000 (19) CTC12 c CTC 9001 IAC91-1099 *** RB98710

10-CTC15 (7) CTC13 c CTC9002 IACSP93-2060 *** RB99395

11-SP80-3280 (17) CTC14 c CTC9003 IACSP95-3028 *** RB962962 PE

12-SP80-1816 (16) RB002504

13-RB72454 --- (a 2005) (b 2006) (c 2007) (d 2011) (* 2004) (** 2005) (*** 2007) (2009)

14- CTC9 (9) CLONES

15-SP91-1049 (18) SP83-5073 RB93509 IACSP95-5094 RB845197* (*2001)

SP84-1431 RB928064 IACSP96-2042 RB865230*

BRASIL (4)SP91-3011 IAC87-3396 IACSP96-3060 (2010) RB925268** (**2006)

SP91-1285 RB865513

RB945961

(15) (10) (30) (14) (17)

TOTAL = 86 VARIEDADES / CLONES

VARIEDADES DISPONÍVEIS PARA CULTIVO NO ESTADO DE SÃO PAULO

Rua Belo Horizonte, 91 – Jd. Novo Cândida CEP 13 603-128 - ARARAS SP.

Fones: 19 3541 6132 - 19 9728 5234

Soluções Integradas • Desenvolvimento Avançado

Otimização do potencial de produção genético e ambiental Antonio Carlos A. Gheller

[email protected]

RB72454

mailto:[email protected]

mailto:[email protected]

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