método de bradford (1976)
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Método de Bradford (1976)
Quantificação de proteínas totais
Prof. Luiz Edson Mota de Oliveira
Fernanda Nery; Fernanda Soares; Francyane Braga; Samantha Dignart
Setembro - 2004
Introdução
As proteínas são os maiores constituintes de toda célula viva, e cada uma delas, de acordo com sua estrutura molecular, tem uma função biológica associada às atividades vitais.
Práticas de laboratório para purificação de proteínas requerem um método rápido e sensível para a quantificação destas.
Métodos mais utilizados
Reação de Biureto
Método de Lowry
Método de Bradford
Método micro-Kjeldahl
Reação de Biureto
O método por biureto foi proposto por Riegler em 1914, baseado na observação de que substâncias que contêm duas ou mais ligações peptídicas formam um complexo de cor roxa com sais de cobre em soluções alcalinas. A intensidade da cor formada é proporcional à quantidade de proteína, e a medida é feita num colorímetro.
Interferências:• Tris• Amônia• Glicerol
NH
CO
RC
CO
NH
RC
Cu2+H
OC
HN
CR
C O
HN
CR
H
HH
Procedimento de Lowry (1951)
Aumenta a sensibilidade da reação de Biureto: composto de proteína-Cu2+ reage com Folin-Ciocalteus = coloração azul (650 nm).
ComplejoProteína-Cu 2+
Reactivo Folin oxid.
AA red.
ComplejoProteína-Cu 2+
AA oxid.
Reactivo Folin
red.AZULAMARILLO
Interferências: íon potássio; íon magnésio; EDTA; Tris; Reagentes de Thiol; Carboidratos.
O corante que se liga à proteína é o Comassie Blue G–250;
É considerado mais simples e sensível do que o método de Lowry;
Lowry indicou menos proteínas do que os resultados obtidos com o de Bradford, mas estas diferenças não foram significativas (Pinto, 1982);
Métodos colorimétricos: são sensíveis a íons, tampões e mudanças no pH ou na temperatura;
Clorofila e outros pigmentos podem afetar os valores de absorbância;
Apesar dessas limitações, os métodos colorimétricos são efetivos e justificam sua utilização (Passos, 1996).
Método de Bradford
Comassie Blue G-250
azul vermelho
Ligação com proteína
Materiais e Métodos
Reagentes:
Coomassie Brilliant Blue G-250
2-Mercaptoethanol
Triton X-100
Dodecil Sulfato de Sódio
outros
Preparação da solução de proteína
Albumina de soro Bovino (2x cristalizada)
Quimiotripsinogênio A
Citocromo C (Coração de cavalo)
Albumina de Soro Humano
Hemoglobina
0,15 M NaCl
Espectrofotômetro
200 uv
Método Gravimétrico
Preparação do reagente Comassie-blue G-250
Dissolver 100 mg de Comassie blue em 50 mL de etanol 95%. Adicionar 100 mL de H3PO4 85% e completar para 1 L. Dessa forma, as concentrações finais serão: 0,01% de Comassie, 8,5% de ácido fosfórico e 4,7% de etanol.
Ensaio Protéico
10 a 100 µg de proteína
Pipetou em tubos volumes que foram ajustado para 0,1 mL com solução tampão
Adicionou 5 mL do reagente protéico e agitou em vórtex
Leitura de absorbância: 595 nm (depois de 2 minutos e antes de 1 hora)
Obtenção da Curva Padrão:
Concentração vs Absorbância
Resultados
Reprodutibilidade, sensibilidade e linearidade
BSA = alta reprodutibilidade
Sensibilidade de 5 µg de proteína/mL no volume final
Linearidade = Lei Lambert-Beer
Precisão do método
Bradford Lowry
Interferências de Componentes Não Protéicos
1) Reagentes
Comassie Blue G-250, H3PO4 e etanol
Soro Albumina Bovina (BSA) (1 mg/mL ou 10 µg/0,1 mL)
Marcha analítica seguida no Laboratório
2) Metodologia
Preparação do reagente Comassie-blue G-250
Dissolver 100 mg de Comassie blue em 50 mL de etanol 95%
Adicionar 100 mL de H3PO4 85%
Completar para 1 L
Deixar overnight com agitação constante e filtrar
Concentrações finais: 0,01% de Comassie, 8,5% de ácido fosfórico e 4,7% de etanol
Obs.: Ácido fosfórico deve ser adicionado ao Comassie dissolvido em etanol e nunca o contrário.
Procedimento para obtenção da curva padrão
Tubos BSA
(1 mg/mL) (mL)
Água (mL)
Comassie Blue G-250
(mL)
µg Protéina
1 0,00 0,10 5,0 0
2 0,02 0,08 5,0 20
3 0,04 0,06 5,0 40
4 0,06 0,04 5,0 60
5 0,08 0,02 5,0 80
6 0,10 0,00 5,0 100
Tabela 1. Procedimento para obtenção da curva padrão de proteínas utilizando-se como padrão BSA (1 mg/mL).
*Volume reacional = 5,1 mL
Erros de pipetagem podem ser minimizados utilizando-se alíquotas de 0,1 mL retiradas de soluções de 20, 40, 60, 80 e 100 µg de BSA / 0,1 mL. Se assim for, a curva seguirá o padrão mostrado na Tabela 2.
Tabela 2. Procedimento para obtenção da curva padrão de proteínas utilizando-se como padrão soluções diluídas de BSA.
*Volume reacional = 5,1 mL
Tubos BSA (X µg / 0,1 mL) (mL)
Comassie Blue G-250
(mL)
µg Proteína
1 0,1 de H2O 5,0 0
2 0,1 5,0 20
3 0,1 5,0 40
4 0,1 5,0 60
5 0,1 5,0 80
6 0,1 5,0 100
Após, agitar os tubos em vortex
Leitura no espectrofotômetro U.V. =
595 nm.
Curva Padrão
Método de Bradford
y = 0,0076x - 0,0043
R2 = 0,9888
00,20,40,60,8
1
0 20 40 60 80 100
Concentração (ug/mL)
Ab
s 5
95
nm
OBRIGADO!!
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