universidad nacional de loja Área de la salud …...desarrollo y culminación del presente trabajo....
TRANSCRIPT
I
UNIVERSIDAD NACIONAL DE LOJA ÁREA DE LA SALUD HUMANA
CARRERA DE LABORATORIO CLÍNICO
TÍTULO:
PERFIL TIROIDEO Y SU RELACIÓN CON LA PROLACTINA EN MUJERES EMBARAZADAS QUE ASISTEN A CONSULTA EXTERNA DEL HOSPITAL PROVINCIAL GENERAL ISIDRO AYORA DE LOJA.
AUTOR:
EVELYN TATIANA ENCALADA ONTANEDA
ASESOR:
Dra. ELIZABETH BETANCOURT P.
Loja-Ecuador
TESIS PREVIO A LA
OBTENCIÓN DEL TÍTULO
DE LINCECIADA EN
LABORATORIO CLÍNICO.
V
DEDICATORIA
Durante nuestra vida se presentan
ante nosotros diversos retos y metas
que nos proponemos cumplir por
muy difíciles que parezcan y es así
como yo he podido alcanzar uno
más, ¡Culminar mi carrera
profesional! Este sueño cumplido se
lo debo especialmentea mis padres
Héctor, Letty y Chelita, es por ello
que surge el deseo que este logro lo
sientan como suyo, por la confianza
que depositaron en mí, queriendo
que sepan que la fuerza que me
ayudó a conseguirlo fue su apoyo y
ayuda incondicional. A mis hermanos
Edison y Vanessa, mi familia que
siempre serán mi motivación pues si
no hubiera sido por ustedes quienes
me guiaron de la mano sin soltarme
un solo instante, no hubiera podido
terminar este camino.
VI
AGRADECIMIENTO
Al culminar la presente investigación, dejo constancia de mi sincero
agradecimiento a todas las personas que ofrecieron su apoyo, para el
desarrollo y culminación del presente trabajo.
A mi directora de tesis Dra. Elizabeth Betancourt, por su apoyo y disposición
para orientarme a lo largo de su desarrollo y compartir con ideas, consejos y
literatura técnica.
Mi gratitud a la Universidad Nacional de Loja; a la Carrera de Laboratorio
Clínico y a todos los docentes que a lo largo de mis estudios impartieron sus
conocimientos y me acogieron en mi formación profesional.
A mis queridos amigos (as) incondicionales, que de alguna manera me
apoyaron y me animaron a la elaboración de este trabajo.
VII
TÍTULO
PERFIL TIROIDEO Y SU RELACIÓN CON LA PROLACTINA EN
MUJERES EMBARAZADAS QUE ASISTEN A CONSULTA
EXTERNA DEL HOSPITAL PROVINCIAL GENERAL ISIDRO
AYORA DE LOJA.
VIII
RESUMEN
En la actualidad la determinación del Perfil Tiroideo y Prolactina en mujeres
embarazadas no está incluida en el control prenatal. Siendo éste de gran
interés, particularmente en el primer trimestre de gestación, ya que en este
periodo el feto depende únicamente de las reservas de hormonas tiroideas de
la madre debido a que no sintetiza sus propias hormonas, sino hasta las 11 o
12 semanas de gestación .(19)
En nuestro país no se han realizado estudios acerca de hormonas tiroideas
versus prolactina en mujeres embarazadas que respalden la inclusión de estas
pruebas en el control prenatal, por esta razón se realiza la determinación del
perfil tiroideo y se lo relaciona con la prolactina para luego difundir los
resultados a las pacientes y su médico tratante, complementando la
información con trípticos.En esta investigación se determinó los niveles de
Triyodotironina (T3), Tiroxina (T4), Tirotropina (TSH) y Prolactina (PRL) en 112
mujeres embarazadas utilizando métodos de electroquimioluminicencia con un
análisis inmunológico totalmente automatizado.
En la concentración de TSH se evidencia niveles superiores a los referenciales
alcanzando el 24,10%, lo mismo sucede con la hormona T3 en la que el 9.82%
presentaron niveles elevados, mientras que 2,67% niveles bajos de la misma
hormona. La determinación de T4 manifiesta que 20.53% presentaron niveles
disminuidos y 79.46% niveles normales; en cuanto a los resultados de PRL se
encontró 32.14% con niveles elevados, 4.46% niveles bajos y 63.39% niveles
normales.
Se recomienda el seguimiento de los parámetros hormonales e inmunológicos
del perfil hormonal, aun en los casos donde no se evidencie patología clínica
tiroidea.
Palabras clave: PERFIL TIROIDEO, TSH, T3, T4, PROLACTINA.
IX
SUMMARY
Today the determination of thyroid profile and prolactin in pregnant women is
not included in antenatal care. Being of great interest, particularly in the first
trimester of pregnancy, since during this period the fetus depends solely on the
reserves of maternal thyroid hormones since it does not synthesize their own
hormones, but up to 11 or 12 weeks of gestation.(19)
In our country not been studies on thyroid hormones versus prolactin in
pregnant women who support the inclusion of these tests on the prenatal
control, for this reason is the profile definition tiroideoy relates it to prolactin to
then disseminate the results to the patients and their treating physician,
complementing the information with brochures.This research identified levels of
triiodothyronine (T3), thyroxine (T4), Thyrotropin (TSH) and prolactin (PRL) in
112 pregnant women using electroquimioluminicencia with a fully automated
immunological analysis methods.
In the concentration of TSH levels above the reference is evidence reaching
24.10%, the same happens with the T3 hormone which the 9.82% had elevated
levels, while 2.67% the same hormone low levels. Determination of apparent T4
to 20.53% had levels decreased and 79.46% normal levels; in terms of the
results of PRL met 32.14% with high levels, 4.46% levels low and 63.39%
normal levels.
Recommended monitoring of hormonal and immunological parameters of
hormonal profile, even in cases where clinical pathology thyroid are evident.
Key words: THYROID PROFILE, T3, T4, TSH, PROLACTIN.
10
I.INTRODUCCIÓN
11
La presente investigación se refiere al tema Perfil tiroideo y su relación con
la prolactina en mujeres embarazadas donde se puede definir que la
glándula tiroides es una glándula endócrina cuya función es la síntesis de
hormonas como la Triyodotironina o T3, Tiroxina o T4 y la Tirotropina o TSH(2).
La característica principal es que éstas hormonas cumplen un papel
fundamental en el desarrollo y función del ser humano; alguna alteración en su
funcionamiento y producción puede provocar procesos irreversibles y hasta
mortales sobre todo en mujeres en edad fértil y embarazadas ya que en esta
última etapa el feto depende únicamente de la producción de hormonas
tiroideas de la madre debido a su incapacidad para producirlas hasta las 11 a
12 semanas de gestación (2)
Según la OMS el riesgo previsto de contraer cáncer de tiroides a lo largo de la
vida es de aproximadamente el 0,75% en mujeres, y el riesgo de otras
alteraciones tiroideas es de 3-10%; éstas alteraciones tiroideas pueden ser
causadas por diferentes factores como la edad, factores genéticos,
alimentación y estilo de vida(8).
Es necesario establecer que los valores de hormonas tiroideas en el plasma,
que se relacionan con la baja concentración de T4 (menor de 6.5 ug/dL; 3.7
nmol/litro) y un nivel elevado de TSH (mayor de 20 uU/ml) en suero, sugiere
hipotiroidismo. Esta enfermedad puede presentarse asintomática o con
múltiples síntomas de muy variada intensidad y si esto se produce durante el
embarazo, pueden confundirse los síntomas con los producidos normalmente
en la etapa de gestación, desarrollando complicaciones y una grave
repercusión en el desarrollo del bebé como cretinismo, retraso mental,
mortalidad perinatal, bajo peso al nacer y otros (3). Los problemas de
hipotiroidismo en mujeres embarazadas son muy comunes, tanto así que tiene
una prevalencia de 2,5 – 3% en el mundo según un estudio realizado en Bolivia
en el año 2008. (41)
Para el hipertiroidismo nos referimos a valores más altos que 0,44 ng/dl de T3
en suero y 1,70ng/dl de T4, mientras que el nivel de TSH desciende a valores
12
menores que 0,27Uui/ml para no estimular la tiroides,ésta es una enfermedad
en la cual la glándula tiroides libera demasiada cantidad de hormonas en un
periodo de tiempo corto (aguda) o largo tiempo (crónica),puede ser ocasionado
por muchos factores como: recibir demasiado yodo, enfermedad de Graves,
inflamación de la tiroides (tiroiditis), infecciones virales, tumores u otras causas
que ocasionan alteraciones a nivel del organismo afectando el metabolismo,
produciendo nerviosismo, aumentando la transpiración, latidos cardíacos,
temblor en las manos, pérdida de peso, dificultad para dormir, etc.(5)
Cuando se presenta alguna alteración en la producción de las hormonas
tiroideas se ven afectadas todas las demás hormonas, entre ellas la prolactina
(la hormona responsable de la producción de leche luego del parto) ya que las
hormonas trabajan en equipo y cuando unas disminuyen otras hormonas tienen
que tratar de compensarlas, aumentando su nivel en el organismo. Según el
autor Aguayo M. en la publicación ¨La Lactancia Materna¨ dependiendo de la
alteración que se presente, sea hipotiroidismo o hipertiroidismo, podría
presentarse un aumento o disminución en la prolactina que está asociada a la
producción de leche u otras enfermedades. Una producción deficiente de esta
hormona presumen mala alimentación para él bebe luego del parto y por
supuesto desnutrición por falta de producción de leche que podría asociarse
con el síndrome de Sheehan; por el contrario un aumento de prolactina puede
causar dolores de cabeza y problemas de vista, amenorrea, galactorrea, etc. lo
que puede ser indicio de prolactinoma u otras afecciones. (24)
En Ecuador no se registran estudios de Tiroides en relación con la prolactina
en mujeres embarazadas, pero según estadísticas en otros países nos
confirman que las alteraciones tiroideas en mujeres son muy comunes, además
en la actualidad, la determinación de Hormonas Tiroideas en mujeres
embarazadas no está incluida en el control prenatal, es así que en América
Latina, únicamente el 49% de los recién nacidos fueron tamizados para
detectar hipotiroidismo congénito. (3)
Por ello el presente trabajo buscó obtener datos reales de ésta problemática en
nuestro medio que puedan concientizar a los médicos y la comunidad en
13
general sobre la importancia de realizarse exámenes de tiroides sobre todo
durante el embarazo y servir de base para futuros estudios sobre el tema.
Es por esta razón que ha sido conveniente realizar el tema ¨Perfil Tiroideo y
su relación con la prolactina en mujeres embarazadas que asisten a
consulta externa del Hospital Provincial General Isidro Ayora de Loja.¨
cuyo objetivo es determinar los niveles de Perfil tiroideo (TSH, T3 y T4) y
Prolactina en mujeres embarazadas que cumplan con los criterios de inclusión,
realizar una comparación entre éstos resultados y difundirlos a las pacientes y
su médico tratante complementado la información con trípticos.
14
II.MARCO TEÓRICO
15
2.1 GLÁNDULA TIROIDES
La glándula tiroides debe su nombre a Thomas Wharton, quien le denominó así
en 1656. Es la primera glándula endócrina en desarrollarse en el embrión
alrededor de 24 días después de la fertilización, iniciando como un
engrosamiento en el piso de la faringe y unido a la lengua por el conducto
tirogloso, pesa aproximadamente de 15 a 20g en adultos normales.(5) Está
formado por dos lóbulos que se encuentran situados uno a cada lado de la
tráquea y unidos por una banda de tejido tiroideo llamado istmo, en la parte
posterior de cada lóbulo se encuentran dos pequeñas glándulas
paratiroideas.(6)
Para funcionar correctamente la glándula tiroides se encuentra irrigada por
cuatro arterias principales, una en cada lado de los lóbulos, esta irrigación es
abundante y aumenta cuando la glándula crece.( 5 )
La función de la glándula tiroides solo inicia alrededor de las 11 semanas
después de la fertilización con la producción de tiroxina y es completamente
funcional al final del primer trimestre del embarazo. Las hormonas tiroideas
atraviesan la placenta en pequeñas cantidades, por lo que el feto dependerá de
su propia producción de hormonas tiroideas para su correcto desarrollo. (10)
2.1.1 FISIOLOGÍA DE LAS HORMONAS TIROIDEAS
La síntesis de hormonas tiroideas se produce gracias al aporte de yodo en el
organismo a través de su consumo en la dieta, éste es absorbido en forma de
yoduro a través del intestino delgado, luego es transportado en el plasma
hacia la glándula tiroides mediante transporte activo mediado por una bomba
de yodo, es lo que se llama captación. Una vez que ingresa a la glándula es
oxidado y se une a la tiroxina (1) pero para que esto ocurra el yodo debe ser
transformado de yodo inorgánico a orgánico mediante la acción de la
Tiroperoxidasa (TPO), sin la cual no se podría formar la hormona tiroidea. (3)
Una vez que el yodo ha pasado por el proceso de oxidación se une con los
residuos de tirosina presentes en la tiroglobulina para formar las iodotirosinas
(monoidotirosinas y diiodotirosinas).( 6 )
16
La unión de una o dos moléculas de yodo a la Tirosina produce la
Monoiodotirosina (T1) o Diiodotirosina (T2). A su vez la unión de dos moléculas
de T2, dará origen a la Tiroxina (T4) con cuatro átomos de yodo y el de una
molécula de T1 y otra de T2 formará la T3 o Triyodotironina. Todos estos
elementos se combinan y forman un producto más complejo que es la
Tiroglobulina (TGB). (10)
La Tiroglobulina es el depósito de hormonas tiroideas en el tiroides y a partir de
ella, por hidrólisis, se formaran la T4 y la T3 que pasan a la sangre, como
hormonas tiroideas.
La tiroxina o T4 es la principal hormona tiroidea liberada por la glándula tiroides
en individuos sanos, se caracteriza porque tiene 4 átomos de yodo y es el
único componente de la fisiología de los vertebrados que contienen yodo,
aunque también se produce la liberación de triyodotironina o T3 (con tres
átomos de yodo), éstas hormonas pueden circular en forma libre (0.03% de T4
y 0,3% de T3) o unidas a proteínas, a la albúmina y una - globulina específica
(9)
Una vez sintetizadas las hormonas tiroideas son almacenadas en el coloide
folicular hasta que el organismo necesite su secreción, cuando esto ocurre son
separadas de la tiroglobulina y finalmente liberadas a través del torrente
sanguíneo.
La T3 y T4 entran en las células a través de difusión para ser metabolizadas y
cumplir sus acciones biológicas, la T3 es producida en células de los tejidos
periféricos por lo tanto puede ser liberada a la circulación o ligarse al receptor
nuclear para producir la acción biológica, por el contrario la T4 se manifiesta
más lentamente, pero su acción dura más tiempo (tiempo medio de actividad
biológica= 6 días) que en el caso de la T3 (tiempo medio de actividad biológica
= 1,5 días).(11)
17
2.1.2 REGULACION DE LAS HORMONAS TIROIDEAS
Si bien la producción de hormonas tiroideas en el organismo se produce
lentamente, también se realiza en forma constante, es por ello que se requiere
de un mecanismo que controle y regule su secreción. (12)
Esta regulación está dada en gran parte por la hormona estimulante de tiroides,
tirotropina o TSH por sus siglas en inglés (ThyroidStimulating Hormone) la cual
es una glucoproteína de 28 kDa producida por células tirotropas de la
adenohipófisis, la cual actúa sobre la tiroides estimulando la producción y
secreción de hormonas tiroideas además de estimular el crecimiento de la
glándula tiroidea, lo que produce vasodilatación, aumento del flujo sanguíneo y
se estimula la angiogénesis. (12)
La TSH es la encargada de estimular todos los pasos para la biosíntesis de
hormonas tiroideas y de su liberación por el tiroides, también es responsable de
todos los acontecimientos metabólicos que se producen en la célula tiroidea,
estimulando la síntesis de proteínas y ácidos nucleicos, mecanismos por los
que ocurre la hiperplasia e hipertrofia de la glándula.(13)
La regulación de la secreción de tirotropina (TSH) depende de la hormona
liberadora de tirotropina o TRH (thyrotropin – releasing hormone) producida por
las neuronas localizadas en el núcleo periventricular del hipotálamo. La
regulación de la TSH también está dada por catecolaminas, sobre todo por DA
y por somatostatina hipotalámica.(12)
Otro proceso de regulación de hormonas tiroideas es el sistema de
retroalimentación negativa que se lleva a cabo por las propias hormonas
tiroideas las cuales actúan inhibiendo la secreción de TSH por una actuación
directa sobre la hipófisis y también actúan de forma indirecta inhibiendo la
producción de TRH. Es decir, cuando el nivel de hormonas tiroideas baja en
sangre, la hipófisis lo detecta y aumenta la producción de TSH que estimula al
tiroides para que produzca y libere más hormona tiroidea; cuando el nivel de
hormonas tiroideas es alto, la hipófisis se frena, baja la TSH en sangre y el
tiroides ralentiza su actividad.
18
Durante este proceso de retroalimentación predominara la acción inhibidora de
hormonas tiroideas y de la intensidad de esta inhibición dependerá la liberación
de TSH. El objetivo de todo este proceso es lograr niveles normales de
hormonas tiroideas en el organismo. (13)
2.1.3 FUNCIÓN DE LAS HORMONAS TIROIDEAS
Las hormonas tiroideas son imprescindibles en el organismo, ya que cumplen
varias funciones, las mismas que podemos dividir en dos grupos:
1.- Funciones en el metabolismo
2.- Funciones sobre el crecimiento y maduración. (14)
En el metabolismo porque a través de sus acciones sobre las mitocondrias y la
bomba de Na+/K+ regulan el metabolismo basal. También ejercen su acción
sobre el metabolismo de proteínas, lípidos e hidratos de carbono, esto se
demuestra ya que cuando existe un déficit de hormonas tiroideas tanto la
síntesis como degradación de las proteínas esta disminuida, lo que nos indica
que las hormonas tiroideas estimulan los dos procesos.
Las hormonas tiroideas también han sido catalogadas como las responsables
de modificar todos los aspectos del metabolismo de los hidratos de carbono, es
así que cuando aumenta la absorción intestinal de glucosa, se estimula la
glucogenólisis y la glucogenogénesis hepática favoreciendo la utilización de
glucosa en hígado, músculo y tejido adiposo, todos estos cambios
proporcionan más glucosa la cual es consumida por acción de las mismas
hormonas tiroideas que aumentan la utilización periférica de la misma.(14)
Finalmente podemos mencionar el efecto lipolitico que las hormonas tiroideas
ejercen además que estimulan la - oxidación de los ácidos grasos, lo que
contribuye a su efecto termogénico. Como resultado el exceso de hormonas
tiroideas provoca una depleción de los depósitos de grasa, y su deficiencia
produce la disminución de la capacidad de movilizar ácidos grasos de los
depósitos lipídicos que se manifiesta como un aumento de adiposidad.(13)
19
En cuanto a su función sobre el crecimiento, ésta se da principalmente sobre el
sistema nervioso y esquelético. Durante la vida fetal hasta el segundo año de
vida las hormonas tiroideas cumplen un papel vital para el desarrollo del
sistema nervioso ayudando en el desarrollo, proliferación y diferenciación
neuronal, el crecimiento de las prolongaciones neuronales, establecimiento de
la sinapsis y la síntesis de mielina.(14)
Además se las relaciona con el desarrollo y crecimiento normal, pues aunque
no se ha demostrado que ejerzan algún papel directo sobre los huesos y
cartílagos si estimulan la maduración ósea y el cierre de los cartílagos
epifisiarios, adicionalmente tienen acción sobre la liberación de GH y otros
factores que influyen sobre el crecimiento esquelético. (12).
2.1.4 VALORES DE REFERENCIA
Los valores de hormonas tiroideas considerados como normales en el suero
sanguíneo de una persona son los siguientes:
TSH: 0,3-3,0 mU / ml
T3: 0.8-1.8 mg / l ; 80 a 180 ng / dl
T3 libre 230-619 pg / d
T4: 46-120 mg / l ; 4,6-12,0 mg / dl
T4 libre: 0.03-0.005%
Fracción T4 libre: 7.18 ng / l ; 0,7-1,8 ng / dl
2.1.5 ALTERACIONES DE LAS HORMONAS TIROIDEAS
Existen diversos factores que pueden alterar las hormonas tiroideas en plasma,
unos elevándolas y otros inhibiéndola. Una producción excesiva de hormonas
tiroideas se denomina hipertiroidismo, mientras que la producción deficiente se
denomina hipotiroidismo. Estas alteraciones se pueden evidenciar con un
aumento en el tamaño de la glándula que se presenta más en personas con
hipertiroidismo que las que tienen hipotiroidismo.
20
2.1.5.1 HIPERTIROIDISMO
Esta enfermedad se caracteriza por una excesiva producción de tiroxina o
triiodotironina o de las dos al mismo tiempo y sus síntomas se deben a una
aceleración en general del metabolismo.(16)
Estos síntomas van desde temblores, taquicardia, pérdida de masa corporal a
pesar del aumento de apetito, fatiga y debilidad muscular. Las principales
causas de este padecimiento son la enfermedad de Graves o bocio tóxico
difuso (etiología más común con 70–80%), adenoma tiroideo tóxico, bocio
multinodular tóxico, tiroiditis subaguda, los efectos de algunos medicamentos,
inflamación (tiroiditis) de la tiroides debido a infecciones virales u otras causas,
tumores no cancerosos de la glándula tiroidea o de la hipófisis, tumores de
los testículos o de los ovarios, tomar grandes cantidades de hormona
tiroidea.(16)
2.1.5.2 HIPOTIROIDISMO
Esta es una enfermedad causada por la deficiente cantidad de hormonas
tiroideas en plasma sanguíneo (baja concentración de T4 y un nivel elevado de
TSH en suero)que puede deberse a una alteración orgánica o funcional de la
glándula tiroides o por un déficit de la estimulación de tirotropina. Se puede
presentar en cualquier edad, pero es más frecuente en edad avanzada.
Los síntomas que esta enfermedad presentan son los siguientes letargia,
estreñimiento, la intolerancia al frío, rigidez y contractura muscular,
el síndrome del túnel carpiano ,menorragia, cansancio, agotamiento, debilidad
muscular, dolores e inflamación muscular, piel seca y escamosa, caída del
cabello, menstruaciones irregulares, infertilidad, depresión y ansiedad.(15)
Además se pueden presentar algunos signos en los rasgos faciales como
amimia (se le llama cara empastada o cara de payaso), blefaroptosis (es la
caída del párpado superior por parálisis), edema palpebral o periorbitario(
bolsas en los párpados inferiores), labios gruesos, voz ronca, piel engrosada,
entre otras.
El según el origen el hipotiroidismo se clasifica en:
21
Hipotiroidismo Primario
También se llama hipotiroidismo tiroideo, pues su causa se debe a una
insuficiencia de la propia glándula tiroidea. Constituye el 95%
aproximadamente de todas las formas de hipotiroidismo. A su vez puede cursar
bocio.(20)
• Congenito: Disgenesia tiroidea. El hipotiroidismo congénito es aquel de
origen genético que aparece en el momento del nacimiento del bebé. Es
importante su detección precoz mediante análisis clínicos pues los niños
pueden no presentar signo aparente tras el nacimiento. Las hormonas tiroideas
son necesarias para el normal desarrollo del crecimiento y de importantes
órganos como el cerebro, el corazón y el aparato respiratorio. Si no se trata
adecuadamente de forma precoz puede provocar discapacidad física y mental.
En España y también en Argentina existe un protocolo de detección precoz,
diagnosis y tratamiento que se realiza a todos los neonatos, es la llamada
prueba del talón.
• Iatrógenico: Post Iodo Radioactivo o Cirugia. Supone un tercio de todos los
casos de hipotiroidismo. La falta de glándula tiroides puede ser por
tiroidectomía, como por ejemplo la practicada en el cáncer de tiroides, por
ablación radiactiva con yodo 131 ante una tirotoxicosis o por radioterapia de
tumores de cabeza y cuello.
• Síndrome endocrino poliglandular: Donde se ve afectada junto a otras
glándulas en el contexto de entidades sistémicas como la diabetes mellitus,
anemia perniciosa, lupus eritematoso sistémico, artritis reumatoide, síndrome
de Sjögren, etc.
Hipotiroidismo Secundario
Ocurre un paso más arriba de la tiroides, en la hipófisis. Hay un déficit de
hormona TSH encargada de liberar las hormonas tiroideas. Puede ocurrir por
necrosis hipofisaria, Síndrome de Sheehan, etc.
22
Hipotiroidismo Terciario
Ocurre un paso más arriba de la hipófisis, en el hipotálamo y se debe a un
déficit o secreción inadecuada del factor hipotalámico liberador de tirotropina
(TRH) que es el encargado de liberar la TSH. Es menos frecuente aún y se
debe a un déficit o secreción inadecuada del factor hipotalámico liberador de
tirotropina (TRH).
Hipotiroidismo Cuaternario
Aquí cambiamos la dirección ya que este ocurre en el nivel de más abajo. Se
debe a la resistencia periférica a las hormonas tiroideas en los órganos blancos
o a anticuerpos circulantes contra hormonas tiroideas. (17)
Hipotiroidismo subclínico
Es una enfermedad asintomática en la mayoría de los casos, en la que la
reducción del funcionamiento de la tiroides no es tanto como para que
aparezcan signos clínicos. Se conoce que 8% de la población femenina a partir
de los 45 – 50 años podía tener molestias o alteraciones a las que
habitualmente no se les concedía mucha importancia, pero que son causadas
por el hipotiroidismo subclínico y que deben y pueden tratarse.
El hipotiroidismo subclínico es relativamente común, sobre todo en las mujeres
mayores de 40 años, causándoles molestias difíciles de definir y afectando su
calidad de vida. Los síntomas son poco específicos, cansancio, tendencia a la
obesidad, ligera elevación de los niveles de colesterol, etc.(20)
2.1.6 VARIACIONES EN LOS RESULTADOS DE HORMONAS TIROIDEAS
La innovación de técnicas de laboratorio ha conferido mayor sensibilidad,
precisión y exactitud, lo que permite establecer el diagnóstico oportuno de la
enfermedad tiroidea. Puede estimarse la concentración de TSH, T3 y T4 de
manera rutinaria y sin costo elevado, pero deben considerarse las condiciones
en que circulan las hormonas y los procesos que pueden interferir en su
producción.(19)
23
La T3 y T4 se encuentran unidas a proteínas y sólo una mínima proporción se
encuentra en forma libre, capaz de reaccionar con los receptores celulares; por
tanto, las condiciones que modifican la concentración de las proteínas afectan
los resultados de laboratorio. Cerca de 0.3% de T3 y 0.002% de T4 circulan en
forma libre en el organismo y la mayor parte de T3 resulta de la conversión
periférica (80%) de T4 (principal producto secretado por la glándula), lo que
refleja la actividad secretora total.
La determinación de T3 es útil para establecer el diagnóstico de hipertiroidismo,
pero no de hipotiroidismo; la de TSH en suero, mediante técnicas de tercera
generación, es clave para el diagnóstico, ya que alcanza sensibilidad hasta con
0.01 mU/L y cifras inferiores indican hipertiroidismo; las cifras apenas por arriba
de 4 mU/L indican hipotiroidismo subclínico y cifras mayores hipotiroidismo
evidente.
La determinación de TSH es la mejor forma de ajustar las dosis de la hormona
tiroidea en pacientes con hipotiroidismo y en casos de seguimiento de cáncer
de tiroides ya tratado. La tiroglobulina es una proteína sintetizada,
exclusivamente, en la glándula tiroides que sirve como precursor de T3 y T4;
sin embargo, su determinación se limita en pacientes que tuvieron cáncer y se
les extirpó la tiroides. Asimismo, se determina para diagnosticar tirotoxicosis
farmacológica (facticia) e hipotiroidismo congénito (límite normal de 3 a 50
ng/mL).
La prueba de T3 reversa (rT-3) se utiliza poco; no obstante, permite conocer si
las alteraciones en las pruebas de tiroides son ocasionadas por algún trastorno
no tiroideo. Las concentraciones pueden encontrarse elevadas (límites
normales entre 10-24 ng/dL) en pacientes sin control de la diabetes,
traumatismo, intervención quirúrgica, desnutrición y enfermedad sistémica.(19)
Existen otros procesos que pueden variar o alterar los resultados de las
hormonas tiroideas, como por ejemplo la pubertad, etapa que se distingue por
un ajuste hormonal sistémico, en algunas adolescentes se incrementa el
24
volumen de la tiroides (bocio simple). Se llama así porque se conserva la
función tiroidea y las dos hormonas principales, triyodotironina (T3) y tiroxina
(T4), permanecen en límites normales. También es frecuente el bocio simple
durante el embarazo; en esta etapa resultan alterados los exámenes de
laboratorio, debido a las elevadas concentraciones de estrógenos y
progesterona, lo que genera duda diagnóstica.
Enfermedades como el hipotiroidismo es consecuencia de un proceso
autoinmunitario que se inicia con tiroiditis en la mayoría de las pacientes, pues
los exámenes de laboratorio resultan con elevadas concentraciones de TSH,
bajas de hormonas tiroideas y altas de anticuerpos antitiroideos. Hasta el
momento, la prueba más efectiva para apoyar el diagnóstico de hipotiroidismo
es la medición de TSH en sangre, ya que su sensibilidad y especificidad
permiten que las cifras apenas elevadas de esta hormona sean suficientes para
establecer el diagnóstico
También se ha reportado hipotiroidismo subclínico (combinación de
concentraciones elevadas de TSH y normales de T4) que evoluciona a
hipotiroidismo evidente en 50% de los casos.(19)
En el caso de Hipertiroidismo La producción excesiva de T3 y T4 inhibe la
secreción de TSH, lo cual se confirma en los exámenes de laboratorio; en
particular, el decremento de TSH, que coincide con mínimos síntomas, puede
indicar hipertiroidismo subclínico en algunos casos.
Y en Tiroiditis las pruebas de laboratorio demostraran incremento en
tiroglobulina circulante, acompañada o no de elevadas concentraciones de T3 y
T4. (19)
2.2 PROLACTINA
La prolactina (PRL) fue descubierta en 1928 en la hipófisis de vaca, y es
considerada la hormona más antigua del reino animal.Es una hormona
polipeptídicade cadena única es sintetizada y secretada principalmente por
células especializadas de la hipófisis anterior denominadas lactotropos, tiene
un peso molecular aproximado 22,500 daltons, siendo la hormona
25
adenohipofisiaria que interviene en la lactación, por medio
de eventos fisiológicos y bioquímicos.
Su cadena polipeptídica está constituida por unos 198-200 residuos
aminoácidos cuya secuencia completa no ha sido conocida. En una persona
normal del 80 al 90% consiste en una forma pequeña pero funcional que se
denomina l-PRL (littleProlactin) constituida por 199 monómeros de
aminoácidos también llamada nativa. También encontramos una forma
hormonal de mayor peso molecular (40,000-50,000 daltons) llamada prolactina
grande (big-PRL) la cual se presupone es una forma de depósito, que pocas
veces es detectada en el suero y su actividad biológica es casi nula. Sin
embargo se le detecta en los padecimientos de hiperprolactinemia sin
manifestaciones clínicas patológicas, tal vez segregada directamente por la
hipófisis o representa una forma de agregados poliméricos.(22)
Además se ha reportado una forma dimérica de la big-PRL que quizás este
unida a una inmunoglobulina IgG, se le ha llamado macroprolactina (bigbig-
Prolactin) con un peso molecular superior a los 100,000 daltons y sin actividad
biológica.
La PRL participa en una amplia variedad de procesos biológicos. Su estudio
ha sido muy complejo ya que en un principio fue difícil su aislamiento pues
su estructura es semejante (en un 16%) a la hormona de crecimiento (GH) y
ambas se localizan en la hipófisis, solamente que la GH en mayor
concentración. Fue luego de algunos estudios que se la diferencio de la
hormona del crecimiento y se identificó el lugar donde se lleva a cabo su
secreción y función.(19)
Durante mucho tiempo se consideraba que esta hormona servía únicamente
para la producción de leche materna, pero según los estudios realizados se ha
demostrado que la prolactina actúa afectando desde la proliferación celular
hasta el estado inmune del individuo. Tanto así que hoy en día la prolactina ya
no se considera como una hormona sino como una citocina.(18)
26
2.2.1 FISIOLOGÍA DE LA HORMONA PROLACTINA
Al igual que otras células que se encargan de la secreción de hormonas, la
síntesis y liberación de prolactina sigue un esquema en el que se incluyen la
activación de los receptores, mensajeros y transcripción de genes.
Como ya es conocido el sistema inmunológico está conformado por distintos
tipos de células que provienen de una célula madre, esta célula es generada en
la médula ósea y luego sufre procesos de diferenciación que dan origen a
distintas clases celulares con características y funciones específicas. Dentro de
estas células se encuentran las células mononucleares (CMN) que tienen un
solo núcleo, dentro de las cuales encontramos a los linfocitos T, linfocitos B y
los monocitos. Según los autores de algunos estudios, estos linfocitos son los
sitios de síntesis de la prolactina.
Una vez que la prolactina ha sido sintetizada la prolactina es almacenada en el
citoplasma para luego ser liberada.(20)
2.2.2 CONTROL Y REGULACION DE LA PROLACTINA
La regulación de la síntesis y liberación de prolactina está a cargo del
hipotálamo que ejerce un poder inhibidor, pero no es el único factor que influye
en esta regulación, también están involucrados diversos factores
farmacológicos y fisiológicos que interaccionan con elementos
neurohormonales hipotalámicos, llevando a cabo una regulación de la actividad
de la prolactina
El sistema nervioso central también tiene un papel importante en la regulación
de la secreción de prolactina mediante un mecanismo de inhibición, vía
conexiones hipotálamo-hipófisis. El hipotálamo ejerce una función importante
inhibitoria para establecer el nivel normal de secreción de prolactina, a través
de un factor no identificado llamado factor PIF (ProlactinInhibitor Factor) su
efecto tónico inhibitorio es predominante, y cuando se presenta una
desconexión hipotálamo-adenohipofisiaria por sección del tallo hipotalámico o
por lesiones destructivas hipotalámicas lleva consigo una hipersecreción de
prolactina.(23)
27
Además se habla mucho del papel de la dopamina en cuanto a la regulación de
esta hormona, ya que su concentración en la circulación portal es
inversamente proporcional con los niveles de prolactina en plasma. Esto se
debe a que la dopamina está ligada a los receptores dopaminérgicos sobre el
lactótropo con el resultado de la inhibición de prolactina.(20)
En conclusión podemos decir que la PRL es una hormona que no
posee un órgano blanco específico pero sí una heterogenicidad funcional,
cuyos mecanismos de acción endocrinos, paracrinos y autocrinos, le
permiten comportarse como hormona y como factor de crecimiento, como
neurotransmisor y como inmunomodulador. Puede ser sintetizada en
cualquiera de los órganos que poseen receptores específicos y no
exclusivamente por los lactótropos de la hipófisis, sin embargo, una parte
importante de la síntesis de PRL se lleva a cabo en las células somatotropas.
2.2.3 FUNCIONES DE LA PROLACTINA EN EL ORGANISMO
Es bien conocido que la principal función de la prolactina es la producción de
leche para la alimentación del recién nacido, sin la función de esta hormona en
el organismo la vida de los mamíferos, incluido el hombre se vería amenazada.
El mecanismo de acción para la producción de leche materna es el siguiente en
la glándula mamaria la prolactina estimula las células secretoras alveolares
induciendo la síntesis y secreción de leche, pero también se requiere de
insulina e hidrocortisona para que las hormonas corticoesteroides trabajen
sinérgicamente estimulando el sistema lactosa-sintetasa.(24)
Pero esta no es la única función de la PRL, actualmente se conocen más de
300 acciones biológicas de la hormona que no están relacionadas con la
lactancia o el área reproductiva, sino también con la homeostasis del
organismo. Por ejemplo a continuación se citaran algunas otras funciones en
la que la PRL está involucrada:
Se la relaciona con la regulación del ciclo reproductivo,
el mantenimiento del embarazo y el crecimiento fetal, mediante un efecto
sobre el metabolismo materno actuando sobre diferentes órganos
28
efectores para facilitar sus funciones por sinergia con otras hormonas o
bien por inhibición de otras hormonas.
Podemos decir que desempeña funciones de "tramitadora de permiso",
modificando la sensibilidad de ciertos órganos efectores para que
puedan actuar sobre ellos otras hormonas.
Tiene efectos sobre estructuras ectodérmicas y sinergia con hormonas
esteroides.
En los varones el comportamiento de la prolactina puede afectar la
función adrenal, el equilibrio electrolítico, ginecomastia, algunas veces
galactorrea, decremento del libido e impotencia y otras funciones como
la de la próstata, vesículas seminales y testículos.
Otras funciones atribuidas se presentan en sinergismo con las hormonas
esteroideas gonadales, como es la permanencia de la estructura del
cuerpo lúteo y su producción de progesterona, con acción en los
procesos reproductivos
Se han reportado funciones secundarias o de menor potencia,
relacionándola con la andrógenesis que se lleva a cabo en la zona
reticular de la corteza suprarrenal, pues se han encontrado receptores
específicos para prolactina, la unión con dichos receptores estimula la
secreción de dehidroepiandrosterona y su sulfato.
La PRL también está implicada en funciones del sistema inmunológico
como la diferenciación celular y la expresión de distintos factores
En concentraciones fisiológicas, la PRL colabora con el factor
estimulador de colonias de granulocitos–monocitos (GM–CSF) en la
promoción de la diferenciación de monocitos circulantes a células
dendríticas y aumenta la efectividad de la presentación del antígeno por
estas células induciendo la síntesis de receptores para el GM–CSF.
En los granulocitos, los linfocitos y el endometrio, la PRL induce la
transcripción del gen del factor de transcripción regulador del interferón
(IRF–l), que es un regulador importante de la diferenciación y la
maduración de los linfocitos T y B.
29
Asimismo, en los granulocitos, la PRL regula la síntesis de la sintasa de
óxido nítrico inducible (iNOS), enzima que produce óxido nítrico que
media la respuesta inmunológica y la inflamación.
Algunos estudios han sugerido que la PRL contribuye en la actividad
hematopoyética y en el desarrollo y mantenimiento de la masa ósea.
Otra de las acciones de la PRL consiste en mediar el tránsito de IgA a
través del epitelio celular durante el desarrollo de la glándula mamaria.
La PRL tiene un papel fisiológico importante en el mantenimiento de la
supervivencia y funcionalidad del sistema inmunológico en estados de estrés,
en los que tanto las concentraciones de PRL como de glucocorticoides se
elevan, pero sus funciones se contrarrestan, ya que la PRL previene la
apoptosis inducida por los glucocorticoides en los linfocitos. Así, la PRL puede
ser considerada como un modulador de la supervivencia celular.(25)
2.2.4 VALORES DE REFERENCIA
Los valores de referencia para la prolactina son los siguientes:
Mujeres que no estén embarazadas: 2 a 29 ng/mL
Mujeres embarazadas: 10 a 209 ng/mL
Se debe tomar en cuenta que estos valores pueden variar según la técnica a
utilizar y algunos factores como por ejemplo:
En la mujer las variaciones a lo largo de la vida aumentan hasta un nivel
máximo y descienden hacia el final de la vida, es así que en mujeres
posmenopáusicas y hombres de edad avanzada, los niveles descienden, no
está claro si por deficiencia hipofisiaria o por insuficiencia gonadal,
demostrando cierto papel en la función gonadal y del envejecimiento.
La presencia de diferentes estímulos inespecíficos, como pueden ser el coito,
el ejercicio, situaciones de estrés como una cirugía, curso de hipoglucemia
insulínica, etc. también provocan variaciones en la secreción de prolactina,
pudiendo ser algunas de naturaleza adaptativa como la ocurrida en
hipoglucemia.
30
Además se debe tomar en cuenta las variaciones diarias, ya que podemos
encontrar un ritmo circadiano con aumentos o picos secretorios durante la
etapa de sueño, iniciando entre los 10 minutos y poco más de 1 hora de
iniciado el sueño y alcanzando los valores más altos principalmente en las
etapas más profundas. Estos valores no descienden sino hasta dos horas
después de haber despertado y poco a poco disminuyen hacia el final de la
tarde, sin una tendencia a repetirse en el mismo sujeto en días posteriores, una
vez en circulación la vida de la prolactina media se estima en 14 minutos. Al
parecer las variaciones por horario y durante el sueño se deben a que el
estímulo dopaminérgico del hipotálamo se va modificando(27)
2.2.5 ALTERACIONES EN EL NIVEL DE PROLACTINA
Las alteraciones en la secreción o falta de inhibición de la prolactina pueden
desencadenar múltiples trastornos en el organismo de un ser humano entre los
que podemos mencionar los siguientes:
HIPERPROLACTINEMIA
La hiperprolactinemia es un trastorno en el cual la persona tiene un nivel
anormalmente alto de la hormona prolactina en la sangre que puede provocar
anovulación y amenorrea secundaria de aparición espontánea, como en el
síndrome de Forbes-Albright, causada por tumor o también el síndrome de
Chiari-Frommel que cursa con galactorrea persistente después del embarazo
debido a un trastorno funcional.(22)
Una causa común de la hiperprolactinemia es una masa o tumor en la glándula
pituitaria llamado prolactinoma, este tumor produce un alto nivel de prolactina.
Estos tumores pueden ser grandes o pequeños, y generalmente son benignos,
los tumores grandes también pueden causar dolores de cabeza, problemas de
la vista o ambos. Los prolactinomas son más comunes entre las mujeres que
los hombres y son poco comunes en niños.
31
Otra de las condiciones que puede provocar esta enfermedad es la supresión
de la liberación pulsátil de la hormona luteinizante (LH) interfiriendo con el
mecanismo de retroalimentación positiva de estrógenos en la liberación de LH
modificando la secreción cíclica hipotalámica de la hormona liberadora de
hormona luteinizante (LRH), habiendo mencionado esto se puede comprender
mejor el papel de la prolactina en padecimientos como la anovulación,
amenorrea, oligomenorrea, fase lútea corta, síndrome de ovarios poliquísticos,
esterilidad, etc.(21)
HIPOPROLACTINEMIA
La hipoprolactinemia se refiere a la disminución en los niveles de prolactina
circulantes en sangre, este fenómeno es causado por la incapacidad de las
células lactotropas presentes en la hipófisis de producir prolactina. También
puede ser causada por el síndrome de Sheehan que es una necrosis
hipofisiaria producida después del parto, una disfunción de la adenohipófisis, o
la ingesta de medicamento para bajar los niveles de prolactina.
Esta enfermedad es muy rara y no tiene repercusión clínica, a menos que
la paciente se encuentre en período de lactancia, en cuyo caso puede producir
disminución en la producción de leche materna y por ende la mala alimentación
del bebe.
2.2.6 PROLACTINA EN EL EMBARAZO
En el caso de una mujer que está amamantando, la demanda de leche por
parte del lactante es, en realidad, el regulador del suministro de leche de la
madre. Cuando el bebé succiona el seno de la madre, la glándula pituitaria de
la mujer libera más prolactina en el torrente sanguíneo, aumentando la
producción de leche. Si la madre no amamanta a su bebé, la prolactina vuelve
a sus niveles normales una vez que da a luz.(22)
A veces, sin embargo, los niveles de prolactina son elevados aun cuando la
mujer no está embarazada o amamantando, o si se trata de un hombre. La
32
causa más común es una prolactinoma, un tumor productor de prolactina, por
lo general benigno (no canceroso), en la glándula pituitaria.
Durante la gestación los niveles de prolactina en el líquido amniótico llegan
hasta 1000 ng/mL., mayor concentración que en cualquier otro fluido orgánico,
esto sucede entre la 15ª y 20ª semana de gestación y desciende poco a poco
hasta el final del embarazo a 450 ng/mL. Se presupone que es producida por la
hipófisis fetal y la materna, con una posible función de osmorregulación
del feto, para la supervivencia en el medio acuático intrauterino, contribuyendo
así a la maduración pulmonar con aumento en el contenido de fosfolípidos y
cambios en la relación lecitina-esfingomielina.(22)
2.3 PERFIL TIROIDEO Y SU RELACION CON LA PROLACTINA EN EL
EMBARAZO
Como ya se ha descrito las hormonas tiroideas cumplen un papel fundamental
en todo el organismo, sobre todo en el proceso de gestación en la que tanto el
feto como la madre requieren de las cantidades adecuadas de hormonas
tiroideas. El periodo de gestación es la etapa más bonita para una mujer pero
también la más peligrosa ya que su organismo hace un esfuerzo por atender
las necesidades propias y las del feto, la glándula tiroides por ejemplo realiza
un esfuerzo para producir 30 a 50% más secreción y como consecuencia de
ello tendremos un posible hipotiroidismo por la cantidad deficiente de hormonas
que le corresponderá a la madre.(28)
Cuando una mujer ya ha sido diagnosticada con hipotiroidismo y se encuentra
en tratamiento correcto y ordenado, no supone ningún problema, el problema
surge cuando la mujer no sabe que es hipotiroidea y continua con el embarazo
sin saber las graves consecuencias que esto puede desatar en su organismo y
el de su bebé. Además éste no es un problema apartado, puede ser más
frecuente de lo que se estima ya que actualmente se están diagnosticando
muchos casos de Hipotiroidismo Subclínico, que antes pasaban desapercibidos
al no disponerse de valoraciones analíticas tan sensibles como las actuales,
sobre todo de la TSH.
33
Como es de imaginarse los problemas que ocasiona una disfunción tiroidea en
la madre como en el bebé son muy serios y deberían tomarse en
consideración, a continuación nombrare algunos de ellos:(29)
Posibles efectos de valores bajos de hormonas tiroideas sobre el bebé:
Bajo peso al nacimiento
Trastornos en el desarrollo psicomotor
Coeficiente intelectual disminuido
Hipotiroidismo congénito
Posibles efectos de valores bajos de hormonas tiroideas sobre la madre:
Preeclampsia (hipertensión del embarazo)
Aborto en el primer trimestre de embarazo
Parto prematuro
El hipotiroidismo puede continuar al menos 6 meses después del parto,
en el mejor de los casos.
Ahora bien no son los únicos problemas que podrían darse ya que según
estudios realizados, se ha demostrado que un aumento en la producción de
hormonas tiroideas (hipertiroidismo) puede provocar una deficiencia en la
producción de leche materna, mientras que la disminución de hormonas o
hipotiroidismo puede producir el aumento de prolactina en algunos casos o la
dificultad de producción de leche materna en otros cuando el caso no es
tratado, lo que supone un grave problema en la alimentación del bebé cuando
éste nazca y todas las complicaciones subsecuentes.(22)
El hipotiroidismo en una mujer embarazada puede expresarse como
galactorrea de diversa cuantía. En el hipotiroidismo primario el ascenso de TSH
va acompañado de aumento de prolactina, ambos en respuesta al incremento
de TRH, para responder secretoriamente al ascenso de prolactina, la mama
requiere estar sensibilizada por estrógenos, lo que en la mujer en edad fértil
sucede espontáneamente, mientras que en otras edades, por estrógenos
34
exógenos. Los niveles de prolactina que se alcanzan debido al hipotiroidismo
son en general moderados e inferiores a 100 ng/dl.
Una situación especial puede darse en el hipotiroidismo primario de larga
evolución, donde la conjunción de hiperprolactinemia, amenorrea y crecimiento
hipofisiario por hiperplasia de los tirotropos, puede simular un prolactinoma
genuino (adenoma o tumor hipofisario). Por ello, ante una hiperprolactinemia
siempre se debe medir TSH.(36)
Es más común encontrar un aumento de prolactina (hiperprolactinemia) que su
disminución en casos de hipotiroidismo y su prevalencia oscila entre el 29,5 4 y
el 57%.(37)
Ahora bien la disminución de prolactina puede deberse al síndrome de
Sheehan que es una necrosis hipofisaria post parto, disfunciones
adenohipofisarias (hipogonadismo), medicación para bajar los niveles de
prolactina en la sangre y panhipopituitarismo que producen destrucción
hipofisiaria. Todos estos casos se relacionan de una u otra forma con el
hipotiroidismo.
2.4 EVALUACIÓN DE LAS HORMONAS TIROIDEAS
Examen anatómico
Ecografía
Tomografía computarizada
Resonancia nuclear magnética
Radiografía de partes blandas cervicales.
Exámenes funcionales
In vivo
Captación de I131
Prueba de perclorato (se usa poco)
Frenación con T3 (se usa poco)
Prueba de TRH
Efectos periféricos
35
In Vitro
T3 y T4 totales, TSH
T3 y T4 libres
Determinación de T3 reverso.
Determinación de tiroglobulina (Tg)
Exámenes mixtos.
Cintigrama tiroideo
Tiroglobulina
Otros exámenes.
Anticuerpos antitiroídeos (antiperoxidasa, antitiroglobulina) (45)
2.4.1 MÉTODOS PARA DETERMINAR HORMONAS TIROIDEAS
Inmunoensayo por quimioluminiscencia
Se basa en el principio de emisión de energía luminosa a través de una
reacción química (Enzima-Sustrato). Mide saltos de energía (fg),
fotodetectores, contadores de centelleo líquido, sistemas de detección
fotográficos y de imágenes utilizando: éster de acridina, peróxido acido,
hidróxido de sodio, fosfatasa alcalina.
Actualmente es el método más sensible debido a la posibilidad de
multiplicación y amplificación de la señal. Las reacciones de luminiscencia se
mide en RLU (Unidades Relativas de Luz), que son proporcionales a la
cantidad de muestra.
Ensayo inmunoadsorbente ligado a enzima (ELISA)
Se basa en la detección de un antígeno inmovilizado sobre una fase sólida
mediante anticuerpos que directa o indirectamente producen una reacción cuyo
producto, por ejemplo un colorante, puede ser medido
espectrofotométricamente.
36
Radioinmunoensayo (RIA)
Es un ensayo de competición. La técnica se basa en medir la cantidad de
antígeno marcado que se desplaza de los lugares de unión del anticuerpo
debido a la llegada posterior de un antígeno frío, conociendo así la cantidad de
antígeno frío que teníamos en nuestra muestra. La medición se realiza de la
fracción libre que queda, antes y después de la adición del antígeno frío. (45)
37
III.MATERIALES Y
MÉTODOS
38
TIPO DE ESTUDIO
Es un estudio descriptivo de corte transversal realizado durante el periodo de
Diciembre de 2012 hasta Febrero del 2013.
ÁREA DE ESTUDIO
El presente estudio se llevó a cabo en el Hospital Provincial General Isidro
Ayora de la ciudad de Loja.
UNIVERSO
Mujeres embarazadas que acudieron al servicio de consulta externa del
Hospital Provincial General Isidro Ayora de la ciudad de Loja
MUESTRA
La muestra constó de 112 Mujeres embarazadas que solicitaron exámenes de
perfil tiroideo y prolactina en el Laboratorio Clínico del Hospital Provincial
General Isidro Ayora de la ciudad de Loja, que cumplieron con los criterios de
inclusión.
CRITERIOS DE INCLUSIÓN:
Mujeres que se encuentren en periodo de gestación.
Mujeres embarazadas que acepten ser parte del estudio a través del
consentimiento informado.
Mujeres embarazadas que acudan al Hospital Provincial General Isidro
Ayora de Loja a través del servicio de consulta externa para recibir
atención prenatal.
CRITERIOS DE EXCLUSIÓN
Mujeres que no estén embarazadas.
Mujeres embarazadas que estén en tratamiento para hipotiroidismo e
hipertiroidismo
Mujeres embarazadas que no quieran participar del presente estudio.
39
Mujeres embarazadas que no cumplan con los criterios de inclusión.
TRÁMITE LEGAL
Los datos personales de cada paciente, así como los resultados obtenidos en
el presente estudio se guardaron con absoluta confidencialidad y se realizaron
solamente a las personas que previamente dieron su autorización a través del
consentimiento informado.
INSTRUMENTOS PARA LA RECOLECCIÓN DE DATOS.
Consentimiento informado
En este documento se recolectaron los datos de las pacientes con su firma y
fecha, autorizando la realización del presente estudio.
Registro interno
Se diseñó este documento con la finalidad de recolectar toda la información
necesaria de las pacientes como nombres completos, número de cédula,
código y fecha en la que se realizó el examen; así como los resultados
obtenidos para cada prueba. Todo esto con la finalidad de tener un respaldo
legal y evitar errores en el reporte de resultados.
Cámara fotográfica.
Las fotografías capturarán todos los momentos durante el proceso investigativo
a realizarse.
TÉCNICAS Y PROCEDIMENTOS
El presente trabajo investigativo se realizó en tres fases, las cuales se
detallarán a continuación:
40
Fase Pre-analítica
Para realizar la presente investigación el primer paso a seguir fue pedir
la autorización correspondiente al director del Hospital Provincial
General Isidro Ayora de la ciudad de Loja, a la Gerente General y a la
encargada del laboratorio clínico de la misma institución con la finalidad
de que se me permita desarrollar el tema “Perfil tiroideo y su relación
con la prolactina en mujeres embarazadas” en las instalaciones del
establecimiento que dirigen.(Anexo N°1, 2 y 3).
Una vez obtenidos los permisos respectivos se comunicó a todos los
médicos con especialidad en ginecología que rotan en consulta externa
la autorización del director para que ellos soliciten las pruebas
requeridas en el presente estudio.
Se comunicó a las pacientes el tema de estudio y se elaboró un
documento el que constan los datos y firma respectiva de las pacientes
autorizando la realización del estudio (Anexo N°3).
Se realizó la toma de muestras sanguíneas, que se realizó mediante una
punción venosa y siguiendo siempre los protocolos establecidos y las
normas de bioseguridad. (Anexo N° 6)
Fase Analítica
Se analizaron las muestras en el equipo Cobas 411 marca Roche
utilizando métodos de electroquimioluminicencia con un análisis
inmunológico totalmente automatizado. Para ello se siguió
cuidadosamente la técnica de manejo del equipo y reactivos establecida
por el fabricante. (Anexo N° 7, Anexo N°8).
Fase Post-analítica
Se reportó los resultados obtenidos en una hoja de registro de
resultados pre elaborada. (Anexo N° 5)
41
Se entregaron los resultados directamente a la paciente o en su defecto
al médico tratante (Anexo N° 9).
DIFUSIÓN DE LOS RESULTADOS:
Se realizó la difusión de resultados mediante la entrega de trípticos con
la información más relevante acerca de las hormonas tiroideas, sus
alteraciones, su relación con la prolactina y las complicaciones que
podrían presentarse durante el embarazo, todo esto con el único fin de
alertar a los médicos y población en general de la importancia de
realizarse análisis tiroideos sobre todo en la etapa de gestación y así
mejorar la calidad de vida de la madre y el bebé.
PLAN DE TABULACIÓN Y ANÁLISIS DE DATOS
Los resultados obtenidos del procesamiento de muestras se
representarán en tablas estadísticas y gráficos de frecuencia con el
programa Microsoft Office Excel que permitirá la facilidad en el manejo
de datos con sus respectivas interpretaciones.
IV.RESULTADOS
43
TABLA N°1
VALORES DE TSH EN MUJERES EMBARAZADAS QUE ACUDEN AL
SERVICIO DE CONSULTA EXTERNA EN EL HOSPITAL PROVINCIAL
GENERAL ISIDRO AYORA DE LOJA.
VARIABLES
Tiroestimulante (TSH)
Frecuencia
Porcentaje
%
ELEVADOS >4,20
27
24.10
BAJOS < 0,27
0
0
NORMALES VN: 0,27-4,20
85
75.89
TOTAL
112
100
Fuente: Registro interno del Laboratorio Clínico del Hospital Provincial General Isidro Ayora.
Elaborado por: Evelyn Tatiana Encalada Ontaneda.
44
GRÁFICO N°1
VALORES DE TSH EN MUJERES EMBARAZADAS QUE ACUDEN AL
SERVICIO DE CONSULTA EXTERNA EN EL HOSPITAL PROVINCIAL
GENERAL ISIDRO AYORA DE LOJA.
Fuente: Registro interno del Laboratorio Clínico del Hospital Provincial General Isidro Ayora.
Elaborado por: Evelyn Tatiana Encalada Ontaneda.
INTERPRETACIÓN DE RESULTADOS
El 24,10% presentó niveles elevados de TSH, mientras que el 75,89% mostró
niveles normales de la hormona, sin presentar niveles bajos.
24,1
75,89
0
10
20
30
40
50
60
70
80
TSH
ELEVADOS
BAJOS
NORMALES
45
TABLA N°2
VALORES DE T3 EN MUJERES EMBARAZADAS QUE ACUDEN AL
SERVICIO DE CONSULTA EXTERNA EN EL HOSPITAL PROVINCIAL
GENERAL ISIDRO AYORA DE LOJA.
VARIABLES
Triyodotironina (T3)
Frecuencia
Porcentaje
%
ELEVADOS >0,44
11
9,82
BAJOS < 0,20
3
2,67
NORMALES VN:0,20-0,44
98
87.5
TOTAL
112
100
Fuente: Registro interno del Laboratorio Clínico del Hospital Provincial General Isidro Ayora.
Elaborado por: Evelyn Tatiana Encalada Ontaneda.
46
GRÁFICO N°2
VALORES DE T3 EN MUJERES EMBARAZADAS QUE ACUDEN AL
SERVICIO DE CONSULTA EXTERNA EN EL HOSPITAL PROVINCIAL
GENERAL ISIDRO AYORA DE LOJA.
Fuente: Registro interno del Laboratorio Clínico del Hospital Provincial General Isidro Ayora.
Elaborado por: Evelyn Tatiana Encalada Ontaneda
INTERPRETACIÓN DE RESULTADOS
El 9,82% presentó niveles elevados de T3; 2,67% niveles bajos, mientras que
el 87,5 mostró niveles normales de la hormona.
9,82
2,67
87,5
0
10
20
30
40
50
60
70
80
90
100
T3
ELEVADOS
BAJOS
NORMALES
47
TABLA N°3
VALORES DE T4 EN MUJERES EMBARAZADAS QUE ACUDEN AL
SERVICIO DE CONSULTA EXTERNA EN EL HOSPITAL PROVINCIAL
GENERAL ISIDRO AYORA DE LOJA.
VARIABLES
Tiroxina (T4)
Frecuencia
Porcentaje
%
ELEVADOS
>1,70
0
0
BAJOS < 0,93
23
20,53
NORMALES VN:0,93-1,70
89
79,46
TOTAL
112
100
Fuente: Registro interno del Laboratorio Clínico del Hospital Provincial General Isidro Ayora.
Elaborado por: Evelyn Tatiana Encalada Ontaneda.
48
GRÁFICO N°3
VALORES DE T4 EN MUJERES EMBARAZADAS QUE ACUDEN AL
SERVICIO DE CONSULTA EXTERNA EN EL HOSPITAL PROVINCIAL
GENERAL ISIDRO AYORA DE LOJA.
Fuente: Registro interno del Laboratorio Clínico del Hospital Provincial General Isidro Ayora.
Elaborado por: Evelyn Tatiana Encalada Ontaneda.
INTERPRETACIÓN DE RESULTADOS
El 79,46 presentó niveles normales de T4, mientras que el 20,53% niveles
bajos de la hormona sin presentarse niveles elevados.
20,53
79,46
0
10
20
30
40
50
60
70
80
90
T4
ELEVADOS
BAJOS
NORMALES
49
TABLA N°4
VALORES DE PROLACTINA EN MUJERES EMBARAZADAS QUE ACUDEN
AL SERVICIO DE CONSULTA EXTERNA EN EL HOSPITAL PROVINCIAL
GENERAL ISIDRO AYORA DE LOJA.
VARIABLES
Prolactina (PRL)
Frecuencia
Porcentaje
%
ELEVADOS
>23,30
36
32,14
BAJOS < 4,79
5
4,46
NORMALES VN:4,79-23,30
71
63,39
TOTAL
112
100
Fuente: Registro interno del Laboratorio Clínico del Hospital Provincial General Isidro Ayora.
Elaborado por: Evelyn Tatiana Encalada Ontaneda.
50
GRÁFICO N°4
VALORES DE PROLACTINA EN MUJERES EMBARAZADAS QUE
ACUDEN AL SERVICIO DE CONSULTA EXTERNA EN EL HOSPITAL
PROVINCIAL GENERAL ISIDRO AYORA DE LOJA.
Fuente: Registro interno del Laboratorio Clínico del Hospital Provincial General Isidro Ayora.
Elaborado por: Evelyn Tatiana Encalada Ontaneda.
INTERPRETACIÓN DE RESULTADOS
El 63,39% presentó niveles normales de PRL; 32,14% niveles elevados,
mientras que el 4,46% mostró niveles bajos de la hormona.
32,14
4,46
63,39
0
10
20
30
40
50
60
70
PRL
ELEVADOS
BAJOS
NORMALES
51
TABLA N° 5
NIVELES DE TSH EN RELACION CON EL TIEMPO DE GESTACIÓN
TIROESTIMULANTE (TSH)
Tiempo de gestación
VARIABLES
ELEVADOS
>4,20
BAJOS < 0,27
NORMALES
VN: 0,27 – 4,20
Frecuencia
Porcentaje
%
Frecuencia
Porcentaje
%
Frecuencia
Porcentaje
%
1Trimestre
0-12 semanas
25
22,32
0
0
37
33,03
2Trimestre
13-24 semanas
0
0
0
0
32
28,57
3Trimestre
25-40 semanas
2
1,78
0
0
16
14,28
TOTAL
27
24,1
0
0
85
75,88
Fuente: Registro interno del Laboratorio Clínico del Hospital Provincial General Isidro Ayora.
Elaborado por: Evelyn Tatiana Encalada Ontaneda.
52
GRÁFICO N° 5
NIVELES DE TSH EN RELACION CON EL TIEMPO DE GESTACIÓN
INTERPRETACIÓN DE RESULTADOS
Los niveles de TSH demuestran que durante el primer trimestre de gestación el
22,32% presentó niveles elevados y 33,03% bajos; en el segundo trimestre el
28,57% mostró niveles normales; mientras que en el tercer trimestre, el 1,78%
presentó niveles elevados y 14,28% niveles normales de la hormona.
22,32
0
1,78
33,03
28,57
14,28
0
5
10
15
20
25
30
35
1° TRIMESTRE 2° TRIMESTRE 3° TRIMESTRE
ELEVADOS
BAJOS
NORMALES
53
TABLA N° 6
NIVELES DE T3 EN RELACION CON EL TIEMPO DE GESTACIÓN
TRIYODOTIRONINA (T3)
Tiempo de gestación
VARIABLES
ELEVADOS
>0,44
BAJOS <0,20
NORMALES
VN:0,20 – 0,44
Frecuencia
Porcentaje
%
Frecuencia
Porcentaje
%
Frecuencia
Porcentaje
%
1Trimestre
0-12 semanas
9
8,03
1
0,89
52
46,42
2Trimestre
13-24 semanas
1
0,89
2
1,78
29
25,89
3Trimestre
25- 40 semanas
1
0,89
0
0
17
15,17
TOTAL
11
9,82
3
2,67
98
87,5
Fuente: Registro interno del Laboratorio Clínico del Hospital Provincial General Isidro Ayora.
Elaborado por: Evelyn Tatiana Encalada Ontaneda.
54
GRÁFICO N° 6
NIVELES DE T3 EN RELACION CON EL TIEMPO DE GESTACIÓN
INTERPRETACIÓN DE RESULTADOS
Para la determinación de T3, durante el primer trimestre el 8,03% presentó
niveles elevados; 0,89% bajos y 46,42% normales, en el segundo trimestre el
0,89% mostró niveles elevados; 1,78% bajos y el 25,89% niveles normales,
mientras que en el tercer trimestre el 0,89% con niveles elevados y el 15,17%
con niveles normales de la hormona.
8,03
0,89 0,89 0,89 1,78 0
46,42
25,89
15,17
0
5
10
15
20
25
30
35
40
45
50
1° TRIMESTRE 2° TRIMESTRE 3° TRIMESTRE
ELEEVADOS
BAJOS
NORMALES
55
TABLA N° 7
NIVELES DE T4 EN RELACION CON EL TIEMPO DE GESTACIÓN
TIROXINA (T4)
Tiempo de gestación
VARIABLES
ELEVADOS
>1,70
BAJOS <0,93
NORMALES
VN:0,93 – 1,70
Frecuencia
Porcentaje
%
Frecuencia
Porcentaje
%
Frecuencia
Porcentaje
%
1Trimestre
0-12 semanas
0
0
18
16,07
44
39,28
2Trimestre
13-24 semanas
0
0
3
2,65
29
25,89
3Trimestre
25-40 semanas
0
0
2
1,78
16
14,28
TOTAL
0
0
23
20,53
89
79,46
Fuente: Registro interno del Laboratorio Clínico del Hospital Provincial General Isidro Ayora.
Elaborado por: Evelyn Tatiana Encalada Ontaneda.
56
GRÁFICO N° 7
NIVELES DE T4 EN RELACION CON EL TIEMPO DE GESTACIÓN
INTERPRETACIÓN DE RESULTADOS
Para la determinación de T4 durante el primer trimestre de gestación el 16,07%
presentó niveles bajos y el 39,28% niveles normales; durante el segundo
trimestre el 2,65% mostró niveles bajos y 25,89% con niveles normales,
mientras que en el tercer trimestre el 1,78% con niveles bajos y 14,28% con
niveles normales de la hormona.
16,07
2,65 1,78
39,28
25,89
14,28
0
5
10
15
20
25
30
35
40
45
1° TRIMESTRE 2° IMESTRE 3° TRIMESTRE
ELEVADOS
BAJOS
NORMALES
57
TABLA N° 8
NIVELES DE PRL EN RELACION CON EL TIEMPO DE GESTACIÓN
PROLACTINA (PRL)
Tiempo de gestación
VARIABLES
ELEVADOS
>23,30
BAJOS <4,79
NORMALES
VN:4,79 – 23,30
Frecuencia
Porcentaje
Frecuencia
Porcentaje
Frecuencia
Porcentaje
1Trimestre
0-12 semanas
7
6,25
3
2,67
52
46,42
2Trimestre
13-24 semanas
12
10,71
1
0,89
19
16,96
3Trimestre
25-40 semanas
17
15,17
1
0,89
0
0
TOTAL
36
32,14
5
4,46
71
63,39
Fuente: Registro interno del Laboratorio Clínico del Hospital Provincial General Isidro Ayora.
Elaborado por: Evelyn Tatiana Encalada Ontaneda.
58
GRÁFICO N° 8
NIVELES DE PRL EN RELACION CON EL TIEMPO DE GESTACIÓN
m
INTERPRETACIÓN DE RESULTADOS
La determinación de PRL demuestra que durante el primer trimestre de
gestación el 6,25% presentó niveles elevados; 2,67% niveles bajos y 46,42%
niveles normales, durante el segundo trimestre el 10,71% presentó niveles
elevados; 0,89% niveles bajos y 16,96% niveles normales; mientras que en el
tercer trimestre el 15,17% con niveles elevados y el 0,89% con niveles bajos.
6,25
10,71
15,17
2,67 0,89 0,89
46,42
16,96
0 0
5
10
15
20
25
30
35
40
45
50
1° TRIMESTRE 2° TRIMESTRE 3° TRIMESTRE
ELEVADOS
BAJOS
NORMALES
59
TABLA N°9
NIVELES DE TSH EN RELACION CON LA PROLACTINA
PROLACTINA
TIROESTIMULANTE (TSH)
Elevado
>4,20
Bajo <0,27
Normal
VN: 0,27-4,20
Frecuencia
Porcentaje %
Frecuenci
a
Porcentaje
%
Frecuencia
Porcentaje
%
Elevado >23,30
10
8,92
0
0
28
25
Bajo <4,79
1
0.89
0
0
3
2,67
Normal VN:4,79-23,30
16
14,2
0
0
54
48,21
TOTAL
27
24.01
0
0
85
75.88
Fuente: Registro interno del Laboratorio Clínico del Hospital Provincial General Isidro Ayora.
Elaborado por: Evelyn Tatiana Encalada Ontaneda.
60
GRÁFICO N°9
NIVELES DE TSH EN RELACION CON LA PROLACTINA
Fuente: Registro interno del Laboratorio Clínico del Hospital Provincial General Isidro Ayora.
Elaborado por: Evelyn Tatiana Encalada Ontaneda.
INTERPRETACION DE RESULTADOS
Un 8,92% presentaron niveles elevados de prolactina y TSH, un 0,89% con el
nivel de TSH elevado y bajo el de prolactina, el 14,2% con aumento en el nivel
de TSH y la prolactina normal.De las pacientes que presentaron niveles
normales de TSH un 25% presentó niveles elevados de prolactina, un 2,67%
con niveles bajos y un 48,21% con niveles normales de la hormona.
0%
10%
20%
30%
40%
50%
60%
70%
80%
90%
100%
PRL Elvada PRL Baja PRL Normal
8,92 0,89 14,2
25 2,67 48,21 TSH Normal
TSH Bajo
TSH Elevado
61
TABLA N°10
NIVELES DE T3 EN RELACION CON LA PROLACTINA
Fuente: Registro interno del Laboratorio Clínico del Hospital Provincial General Isidro Ayora.
Elaborado por: Evelyn Tatiana Encalada Ontaneda.
PROLACTINA
TRIYODOTIRONINA (T3)
Elevado
>0,44
Bajo <0,20
Normal
VN:0,20-0,44
Frecuencia
Porcentaje
%
Frecuencia
Porcentaje
%
Frecuencia
Porcentaje
%
Elevado >23,30
6
5,35
1
0,89
30
26,78
Bajo <4,79
0
0
2
1,78
3
2,67
Normal VN:4,79-23,30
5
4,46
0
0
65
58,03
TOTAL
11
9,82
3
2,67
98
87,48
62
GRÁFICO N°10
NIVELES DE T3 EN RELACION CON LA PROLACTINA
Fuente: Registro interno del Laboratorio Clínico del Hospital Provincial General Isidro Ayora.
Elaborado por: Evelyn Tatiana Encalada Ontaneda.
INTERPRETACION DE RESULTADOS
De las muestras con niveles aumentados de T3, un 5,35% presentó aumento
de PRL y el 4,46% niveles normales de la misma. El 1.78% presentó niveles
bajos de T3 con PRL baja, el 0,89% de T3 baja mostró niveles elevados de
PRL y el 1,78% presentó niveles bajos de PRL y T3. Con niveles normales de
T3, un 26,78% demostró elevada la PRL, el 2,67% con niveles bajos y el
58,03% niveles normales de la hormona.
0%
10%
20%
30%
40%
50%
60%
70%
80%
90%
100%
PRL Elevado PRL Bajo PRL Normal
5,35
0 4,46
0,89 1,78
0
26,78
2,67
58,03 T3 Normal
T3 Bajo
T3 Elevado
63
TABLA N°11
NIVELES DE T4 EN RELACION CON LA PROLACTINA
Fuente: Registro interno del Laboratorio Clínico del Hospital Provincial General Isidro Ayora.
Elaborado por: Evelyn Tatiana Encalada Ontaneda.
PROLACTINA
TIROXINA (T4)
Elevado >1,70
Bajo <0,93
Normal
VN:0,93-1,70
Frecuencia Porcentaje
% Frecuencia Porcentaje
% Frecuenci
a
Porcentaje %
Elevado >23,30
0
0
11
9,82
26
23,21
Bajo <4,79
0
0
2
1,78
3
2,67
Normal VN:4,79-23,30
1
0,89
9
8,03
60
53,57
TOTAL
1
0,89
22
19,63
89
79,45
64
GRÁFICO N° 11
NIVELES DE T4 EN RELACION CON LA PROLACTINA
Fuente: Registro interno del Laboratorio Clínico del Hospital Provincial General Isidro Ayora.
Elaborado por: Evelyn Tatiana Encalada Ontaneda.
INTERPRETACION DE RESULTADOS
Un 9,82% presentó elevado el nivel de prolactina y T4 baja, el 1,78% presentó
disminuida T4 y prolactina y el 8,03% presentó T4 baja y PRL normal, un
23,21% presentó niveles elevados de Prolactina con T4 normal, 53,57%
resultados normales de ambas hormonas y el 2,67% niveles bajos de PRL con
T4 normal; Un 0,89% con niveles elevados de T4 presenta niveles normales de
prolactina.
0%
10%
20%
30%
40%
50%
60%
70%
80%
90%
100%
PRL Elevado PRL Bajo PRL Normal
0 0 0,89
9,82 1,78
8,03
23,21 2,67
53,57 T4 Normal
T4 Bajo
T4 Elevado
V. DISCUSIÓN
En el presente trabajo se evidencia que la mayor parte de las mujeres
embarazadas presentaron resultados normales tanto en hormonas tiroideas
como en prolactina, pero existen algunos casos que muestran cambios. Siendo
de gran interés resultados como la determinación de TSH en la que un 24,10%
presenta niveles elevados en su mayoría (25%) durante el primer trimestre de
gestación; T4 con un 20,52% de niveles bajos durante el primer trimestre (18%)
y PRL con 32,14% de niveles elevados durante el primer y segundo trimestre.
Además la relación entre perfil tiroideo y prolactina proyecta resultados de gran
utilidad como la relación entre TSH y PRL en la que un14,2% presenta elevada
TSH con PRL normal y un 8,92% con las dos hormonas elevadas; la relación
entre T3 y PRL demuestra que 26,78% presenta elevada la PRL y TSH normal;
mientras que la relación entre T4 y PRL manifiesta que un 23,21% presenta
PRL elevada y T4 normal; 9,82% con T4 baja y PRL elevada. Lo que nos
evidencia que puede existir una leve alteración en la producción hormonal.
Según un estudio de Perfil Tiroideo (T3,T4 Y TSH) en mujeres embarazadas
que cursan el primer trimestre de gestación en La Paz-Bolivia durante el año
2009 realizado en 30 pacientes, se determinó que el 43,36% presenta niveles
normales de TSH, un 16,66%, con niveles elevados y un 6,66% presentaron
niveles bajos de la misma hormona; Un 6,66% presentaron T4 con valores
bajos y 13.33% presentaron niveles elevados; un 10% presentaron niveles
elevados de T3, mientras que el 3,33% presentó niveles bajos. Realizando una
comparación del estudio realizado en Bolivia con el presente podemos
evidenciar que en ambos casos los valores normales son más sobresalientes
con un promedio de 75,89%, los valores de TSH elevados con 24,10%; bajos
de T4 con un 20,53%;elevados de T3 con un 9,82% y bajos con un 2,67%
estos resultados son similares al estudio anterior, lo que corrobora el presente
estudio y a la vez determina que aunque con estadísticas menores, las
alteraciones durante el periodo de gestación representan un gran peligro para
la madre y el bebé.
Según un estudio realizado en Sevilla-España por médicos del Hospital de
Jerez. Cádiz, se determinó que de 142 mujeres embarazadas, un
4,22%presentaron hipotiroidismo subclínico, un 3%hipotiroidismo clínico, el
66
0,7%hipertiroidismo subclínico y con un 16,19%. Enfermedad tiroidea
autoinmune .En el presente estudio al igual que el anterior se determinó que
los niveles bajos de hormonas tiroideas (baja concentración de T4 con un
23,53% y elevado de TSH con un 24.10%) son más sobresalientes que los
niveles elevados (TSH bajo con un 0% y T3 elevado 9,82%) comparándose
éstos resultados con enfermedades a nivel tiroideo.
Un estudio realizado en Cuba por la Dra. Daysi Navarro Despaigne y publicado
por la Revista Cubana de Endocrinología en el año 2009 demuestran que la
prevalencia de hipertiroidismo fue de 4 en 1000 mujeres cada año y la de
hipotiroidismo de 39 en 1000 mujeres y el 9-10 % de las personas presentaron
bocio. Podemos apreciar que en ambos casos se destacan alteraciones en la
producción de hormonas tiroideas ya sean elevadas con un 66.6% o
disminuidas con el 27,66%; lo que podrían provocar complicaciones en el
embarazo y que definitivamente deberían ser motivo de control y seguimiento
médico.
Otro estudio realizado en Julio de 2008 por el personal médico del Hospital
Universitario La Fe, en Valencia- España en la que se estudiaron 78 mujeres
embarazadas con una edad media de 17-49 años se destaca la presencia de
hiperprolactinemia. Los niveles de PRL oscilaron entre 29 y 722,5 ng/ml. Así,
en 39 casos (50%) la hiperprolactinemia fue de origen hipofisario y en 31 casos
(39,8%) se consideraron idiopáticas. En los 8 casos restantes, la
hiperprolactinemia fue de origen hipotalámico (3 casos), neurológico (2 casos)
y farmacológico (2 casos). En los dos estudios se evidencian valores similares
de aumento en la producción de Prolactina, ya que un 32.14% de la población
en estudio presento valores elevados, cabe destacar que los resultados
alterados podrían deberse al estado de gestación así como también podrían
influir en la producción de la leche de lactancia para el bebé.
Se realizó otro estudio similar en Cuba en el que se realizó un estudio en 30
mujeres embarazadas con una edad promedio entre 19 y 26 años,en el que se
determinó que el 50% de la población presentó valores medios elevados de
prolactina desde el primer trimestre de gestación, manteniendo valores altos
67
durante todo el embarazo.(40)Esto concuerda con los resultados obtenidos en el
presente estudio en el que 32,14% presentó niveles elevados de la hormona,
confirmándonos el aumento de prolactina durante el periodo de gestación.
Realizando un análisis entre las hormonas tiroideas y prolactina de cada
paciente podemos darnos cuenta que la estadística de niveles bajos de
prolactina que corresponden a un 4,46% es disminuida, lo que no representa
mayores problemas para la madre y su bebé, pero se debería realizar un
seguimiento de los casos que si presentaron cifras disminuidas para evitar
problemas futuros de desnutrición.
Es así que podemos llegar a concluir que la oportuna determinación de
alteraciones tiroideas es fundamental para evitar complicaciones en la madre y
el bebé durante el periodo de embarazo y luego del parto, ya que la
repercusión de las alteraciones tiroideas pueden acompañar al niño durante
toda su vida, tal y como lo podemos evidenciar en un estudio realizado en
recién nacidos por la Secretaría de Salud de México, DF, en el año 2006
donde se encontraron 57.46% tiroides ectópicas, 35.91% agenesias tiroideas y
6.63% defectos de la función de las hormonas tiroideas. Es decir 1 de cada 2
recién nacidos presentó hipotiroidismo (en 426 recién nacidos), con predominio
femenino (2:1), siendo la ectopia tiroidea su forma más común, la hernia
umbilical y la ictericia sus datos clínicos prominentes.
68
VI.CONCLUSIONES
70
Al finalizar la presente investigación denominada PERFIL TIROIDEO Y SU
RELACIÓN CON LA PROLACTINA EN MUJERES EMBARAZADAS QUE
ASISTEN A CONSULTA EXTERNA DEL HOSPITAL PROVINCIAL
GENERAL ISIDRO AYORA DE LOJA puedo concluir que:
Se determinaron los valores de Perfil tiroideo (T3, T4 y TSH) y Prolactina
en mujeres embarazadas que acudieron al servicio de consulta externa
en el Hospital Provincial General Isidro Ayora de Loja, encontrando con
mayor significado clínico los valores aumentados de TSH con un
24,10% siendo éste de mayor predominio durante el primer trimestre de
gestación con un 25% y Prolactina con un 32,14% durante el segundo y
tercer trimestre de gestación con un 12 y 17% respectivamente , al igual
que los valores disminuidos de T4 con un 20,53% prevaleciendo estos
valores durante el primer trimestre de gestación con un 18%. Es preciso
tomar en cuenta que algunas alteraciones, sobre todo durante el primer
trimestre de gestación podrían deberse a los cambios hormonales y
fisiológicos propios del embarazo.
Se relacionaron los resultados de Prolactina y Perfil tiroideo en las
pacientes estudiadas,donde predominan los niveles normales de
prolactina con cada una de las hormonas tiroideas, pero también
sobresalen niveles elevados de la misma y con un índice menor los
niveles bajos, sin embargo es necesario realizar un seguimiento a cada
una de las pacientes que presentaron niveles alterados ya sean bajos o
elevados para monitorear el correcto desarrollo del bebé y evitar
complicaciones durante y después del embarazo
Se difundieron los resultados del estudio realizado a las pacientes
implicadas en el estudio y a su médico tratante, además se
complementó con información relevante del tema de estudio mediante
trípticos.
71
VII.RECOMENDACIONES
72
Incentivar a los estudiantes de la carrera de Laboratorio Clínico a la
realización de nuevos estudios investigativos con el propósito de contar
y contribuir con estadísticas reales a nivel regional sobre las
alteraciones en el perfil tiroideo y prolactina en mujeres embarazadas, lo
cual puede incentivar a las autoridades a tomar acciones preventivas
para disminuir las tasas de morbi-mortalidad de la madre y el bebè.
Es necesario que el médico solicite de forma pertinente realizar las
pruebas de perfil tiroideo a todas las embarazadas como pruebas de
control para evitar problemas futuros en la madre y su bebe realizando el
seguimiento en las gestantes como una herramienta diagnóstica que
permita monitorear un aumento o disminución fuera de lo normal,
llevando un adecuado control prenatal y por ende disminuir mediante
intervenciones sencillas el desarrollo de los trastornos tiroideos y sus
complicaciones
Que el personal técnico de laboratorio tome en cuenta las normas de
bioseguridad durante las fases pre analítica, analítica y post analítica
para evitar accidentes dentro del laboratorio. Considerando siempre que
toda muestra debe ser tratada como potencialmente infecciosa
73
VIII.BIBLIOGRAFÍA
1. Dr.Velazco Esteben J. “Tiroides” (http://www.tiroides.net/como.htm).
Mayo 2012.
2. Balcells A. Prieto Ma. Jesus. La Clínica y el Laboratorio 20th Ed.
Barcelona España. Ed Elsevier – Masson. 2004. Actualizacion
02/12/2011Pag 363-621.
3. Mónica L. Ferrado. “La hormona que manda en el metabolismo”
(http://sociedad.elpais.com/sociedad/2010/04/10/actualidad/1270850403
_850215.html) 10 ABR 2010.
4. OPS “Intervenciones basadas en evidencia”
(http://www2.pho.org/hq/dmdoc
uments/2009/final_intervenciones_evidencia.pdf) Washington 2009
5. Casanueva F. VasquezJ.A.Endocrinología Clínica. 1ra Ed. España.
Ediciones Díaz de Santos S.A. 2005. Cap.6, pag73-101.
6. El diario.ec “El consumo de sal en grano mantiene vigente
enfermedades” (http://www.eldiario.com.ec/noticias-manabi-
ecuador/33280-el-consumo-de-sal-en-grano-mantiene-vigente-
enfermedades/) Abril 2007.
7. O P S. “Salud del Recién Nacido, Niño y Joven Área de Salud Familiar y
Comunitaria”(http://www2.paho.org/hq/dmdocuments/2009/final_interven
ciones_evidencia.pdf) Washington 2009
8. John B. Henry. El Laboratorio en el Diagnóstico Clínico. 20th Ed. España.
Marban Libros. 2007. Cap 16, pag 305-314.
9. Reyes,Oscar.“Hipotiroidismo”(http://www2.paho.org/hq/dmdocuments/20
09/final_intervenciones_evidencia.pdf) 2009.
10. Universidad de Oviedo. Álvarez, Ma. Jesús. Galectina -3 como
marcador en los nódulos tiroideos. 1 Ed. España. Univesidad de Oviedo.
2009. Pag 967-970.
11. Fuentes X.-CastineirasM.J-QueraltonJ.M. Bioquímica Clínica y patología
molecular. 2da Ed. Barcelona. Editorial Reverté.2005. Cap 59, pag 931-
939.
12. Arce V.M.CatalinaP.F. Mallo Federico. Universidad de Santiago de
Compostela. Endocrinología. 1ra Ed. Imprentauniversitaria. 2006.Cap
20,21. Pag 153-168.
13. Davies TF, Larsen PR. Tirotoxicosis. En: Kronenberg HM, melmer S,
PolonskyKS, Larsen PR, eds. libro de Endocrinología de Williams. 11th
Ed. Philadelphia, Pa: Saunders Elsevier; 2008: Cap 11.
14. Ladenson P, Kim M. Tiroides. Eds. Cecil medicina.23.Philadelphia.
Saunders Elsevier; 2007: Pag 244.
15. Yasalud “Hipotiroidismo” (http://yasalud.com/hipotiroidismo/) Agosto 15
de 2011.
16. ShehzadTopiwala, MD, Chief Consultant Endocrinologist. Biblioteca
Nacional Medica de EEUU.”Hipertiroidismo”
(http://www.nlm.nih.gov/medli-neplus/spanish/ency/article/000356.htm)
Abril 2012.
17. Baskin HJ, Cobin RH, Duick DS, et al. American Association of Clinical
Endocrinologists medical guidelines for clinical practice for the evaluation
and treatment of hyperthyroidism and hypothyroidism. EndocrPract.
2002;8(6):457-469.
18. Méndez, I. Cariño, C. Díaz L. La prolactina en el sistema inmunológico:
aspectos de síntesis y efectos biológicos. Rev. invest.
clín. (v.57 n.3) ISSN 0034-8376 México may./jun. 2005
19. Zárate A. Basurto, L. Saucedo, R. Hernández, M.Enfermedad tiroidea:
un tema de revisión constante por el ginecólogo, por su frecuencia en las
mujeres. Ginecologia y Obstetricia de México.Mex 2009;77(2):96-102
(http://www.medigraphic.com/pdfs/ginobsmex/gom-2009/gom092e.pdf)
20. Diaz E. J.”Prolactina” (http://www.monografias.com/trabajos1
1/laprolac/laprolac.shtml) 24-10-2012.
21. Yen.Jaffe.Barbieri. Endrocrinologia de la Reproducción. 4ta Ed.
Argentina. Editorial Panamericana.2001.Cap 16, pag447-454.
22. Pombo Arias M. Tratado de endocrinología pediátrica. 2da Ed. España.
Diaz de Santos S.A. 2006. Cap 6, pag139-150.
23. Isidro. ML. CordidoF.”Hiperprolactinemia” (http://www.fisterra.com/guias-
clinicas/hiperprolactinemia/) Abril 2011
24. Aguayo M.J. La Lactancia Materna. 1ra Ed. Sevilla. Grafitrés. 2004. Pag
115-120.
25. Yen.Jaffe.Barbieri. Endrocrinologia de la Reproducción. 4ta Ed.
Argentina. Editorial Panamericana.2001. Cap 16, pag 947-454.
26. Biblioteca médica del hospital General de Culiacan. Cap X. “Alteraciones
Tiroideas y reproduccion” (http://hgcualiacan.com/biblioteca%20 medica/
endocrinología%20gineco/tiroides.htm) octubre 2012.
27. Ranke M B. Diagnóstico Endocrinológico en niños y adolescentes. 1ra
Ed. Madrid-España. Editorial Diaz de Santos S.A. 2006. Pag 43-50.
28. Schatszberg A. Nemeroff C. Tratado de Psicofarmacología. 1ra Ed.
Barcelona- España. EdicionElsevier – Masson. 2006.Pag 128-130.
29. Gomella. Cunningham. Eyal. Zhenk. Neonatología. 5ta Ed. Madrid -
España . editorial Panamericana. 2004. Cap7.pag 652.
30. Velez H. Rojas W. Borrero J. Restrepo J. Endocrinología. 6ta Ed. Bogotá
Colombia. Quebecord Word Bogotá. 2004.Cap 1,2.
31. Díaz J. Fernandez MT. Parede F. Aspectos Básicos de Bioquímica
Clínica. 1ra Ed. Madrid España. Editorial Díaz de Santos SA. 2000. Pag
140- 150
32. Shoemaker.Ayres. Grenvik. Hoolbrok. Tratado de medicina crítica y
terapia intensiva . 4ta Ed. Uruguay. Editorial Panamericana. 2002.
Sección 6, pag 771-779.
33. Pagana Kthleen. Guía de pruebas diagnósticas y de Laboratorio. 5ta Ed.
Madrid España. Ed Elsevier. 2006. Pag 719-824.
34. Macchia, C. Lorena; Sanchez,J. Augusto. HIPOTIROIDISMO EN EL
EMBARAZO Revista Colombiana de Obstetricia y Ginecología, vol. 58,
núm. 4, 2007, pp. 316-321
35. Dr. Nelson Wohllk; ARTÍCULO, Profesor de Medicina, Universidad de
Chile Ex-Presidente, Sociedad Latinoamericana de Tiroides Presidente,
Sociedad Chilena de Endocrinología y Diabetes. Octubre 2012.
36. Dr. López José M. Boletín de la escuela de Medicina ”Hipotiroidismo”
(http://escuela.med.puc.cl/publ/boletin/tiroidea/hipotiroidismo.html)Vol 29,
N° 3, 2000. 20/11/2012.
37. Pietrobell D. J. Artese R. “Hiperprolactinemia en el hipotiroidismo
subclínico”(http://www.medicinabuenosaires.com/revistas/vol601/3/hiper
prolactinemia.htm) Volumen 61 - Nº 3, 2001.MEDICINA (Buenos Aires)
2001; 61: 275-278.
38. Klibanski A, md Schlechte Janet. “Hiperprolactinemia”
(http://www.hormone.
org/Spanish/upload/FS_APD_Hipeprolactinemia_SP-6-12.pdf) Enero del
2010.
39. Briceño Y.Dislipidemia y disfunción tiroidea en niños yadolescentes con
diabetes mellitus tipo 1: Relacióncon el control metabólico e índice de
masa corporal. Rev. Venez. Endocrinol.
Metab. v.7 n.3 Mérida sep. 2009. Mérida-Venezuela ISSN 1690-3110
40. Dr. Valdés Carrillo R. Dirección: Morales R. Afecciones hipofisarias
durante la gestación: un seguimiento de cinco años. Rev. Ciencias
Médicas vol.8 no.2 Pinar del Río Mayo-ago. 2004. Editorial Ciencias
Médicas. Pinar del Río. Cuba. ISSN 1561-3194
41. Pérez G. Determinación del perfil tiroideo (TSH, T4 total, T3 libre y T3
total) en mujeres embarazadas que cursan el primer trimestre de
gestación y mujeres no embarazadas en edad fértil, que acuden al
instituto Seladis en periodo de junio a diciembre del 2008. La Paz-
Bolivia.2009
42. N. Sucunza, M.J. Barahona y S.M. Webb¿Cómo instaurar el tratamiento
sustitutivo en un paciente con hipotiroidismo?.Servicio de
Endocrinología. Hospital de Sant Pau. UniversitatAutònoma de
Barcelona. Barcelona. España.N.º 1. FEBRERO- MARZO 2006.
43. E. Mayayo, A. Ferrández Longás y J.I. Labarta. Interpretación de las
pruebas tiroideas. Unidad de Endocrinología Pediátrica. Hospital Infantil.
Universitario Miguel Servet. Zaragoza.(An Esp Pediatr 2002; 56 [Supl 4]:
42-52)
IX. ANEXOS
ÍNDICE DE ANEXOS
Anexo N°1 Oficio dirigido al Director del Hospital Provincial General Isidro
Ayora de Loja
Anexo N°2 Oficio dirigido a la Gerente General del Hospital Provincial
General Isidro Ayora de Loja.
Anexo N°3 Oficio dirigido a la encarda de Laboratorio Clínico del Hospital
Provincial General Isidro Ayora de Loja.
Anexo N°4 Consentimiento informado
Anexo N°5 Registro interno para la recolección de datos.
Anexo N°6 Protocolo para la recolección de muestras de sangre.
Anexo N°7 Técnica de manejo para el equipo Cobas 411- marca Roche
Anexo N°8 Técnica para la determinación de Hormonas: T3, T4, TSH y
Prolactina.
Anexo N°9 Modelo para el reporte de resultados
Anexo N°10 Certificado por parte de biblioteca
Anexo N°11 Certificación por parte del laboratorio clínico del Hospital Provincial
General Isidro Ayora.
Anexo N°12 Acta de entrega-recepción de reactivos
Anexo N°13 Fotografías.
Anexo N°14 Tríptico
ANEXO N°1
Loja, 29 de Noviembre de 2012
Sr.
DR. JORGE GUAPULEMA
DIRECTOR RESPONSABLE DEL HOSPITAL REGIONAL ISIDRO AYORA
DE LA CIUDAD DE LOJA
De mis consideraciones:
Yo Evelyn Tatiana Encalada Ontaneda, con cédula de identidad 1104661291,
en calidad de egresada de la CARRERA DE LABORATORIO CLÍNICO,
solicito a usted muy comedidamente se me conceda permiso para desarrollar el
proyecto de tesis denominado “PERFIL TIROIDEO Y SU RELACION CON LA
PROLACTINA EN MUJERES EMBARAZADAS QUE ASISTEN A CONSULTA
EXTERNA DEL HOSPITAL PROVINCIAL GENERAL ISIDRO AYORA DE
LOJA”, con el afán de contribuir con datos reales, he creído oportuno realizar
esta trabajo.
Esperando la aceptación a esta solicitud anticipo mis agradecimientos,
deseándole éxitos en su vida profesional.
Atentamente,
………………………………… Evelyn Encalada
Egresada de la carrera de Laboratorio Clínico
CI 1104661291
ANEXO N°2
Loja, 29 de Noviembre de 2012
Sra.
INGENIERA YADIRA GAVILANES
GERENTEDEL HOSPITAL REGIONAL ISIDRO AYORA DE LA CIUDAD DE
LOJA
De mis consideraciones:
Yo Evelyn Tatiana Encalada Ontaneda, con cédula de identidad 1104661291,
en calidad de egresada de la CARRERA DE LABORATORIO CLÍNICO,
solicito a usted muy comedidamente se me conceda permiso para desarrollar el
proyecto de tesis denominado “PERFIL TIROIDEO Y SU RELACION CON LA
PROLACTINA EN MUJERES EMBARAZADAS QUE ASISTEN A CONSULTA
EXTERNA DEL HOSPITAL PROVINCIAL GENERAL ISIDRO AYORA DE
LOJA”, con el afán de contribuir con datos reales, he creído oportuno realizar
esta trabajo investigativo.
Esperando la aceptación a esta solicitud anticipo mis agradecimientos,
deseándole éxitos en su vida profesional.
Atentamente,
………………………………… Evelyn Encalada
Egresada de la carrera de Laboratorio Clínico
CI 1104661291
ANEXO N°3
Loja, 29 de Noviembre de 2012
Sra.
Dra. CLARA BRAVO
ENCARGADA DE LABORATORIO DEL HOSPITAL REGIONAL ISIDRO
AYORA DE LA CIUDAD DE LOJA
De mis consideraciones:
Yo Evelyn Tatiana Encalada Ontaneda, con cédula de identidad 1104661291,
en calidad de egresada de la CARRERA DE LABORATORIO CLÍNICO,
solicito a usted muy comedidamente se me conceda permiso para desarrollar el
proyecto de tesis denominado “PERFIL TIROIDEO Y SU RELACION CON LA
PROLACTINA EN MUJERES EMBARAZADAS QUE ASISTEN A CONSULTA
EXTERNA DEL HOSPITAL PROVINCIAL GENERAL ISIDRO AYORA DE
LOJA” en las instalaciones del laboratorio que usted dirige,con el afán de
contribuir con datos reales, he creído oportuno realizar esta trabajo.
Esperando la aceptación a esta solicitud anticipo mis agradecimientos,
deseándole éxitos en su vida profesional.
Atentamente,
………………………………… Evelyn Encalada
Egresada de la carrera de Laboratorio Clínico
CI 1104661291
ANEXO N° 4
CONSENTIMIENTO INFORMADO
Loja_________ de 20___
Señora
Ciudad.
En forma libre y voluntaria yo ___________________________
identificada con la cédula de ciudadanía número ________________
manifiesto que:
1. He recibido información acerca del estudio “Perfil tiroideo y su
relación con la prolactina en mujeres embarazadas que asisten al
Hospital Provincial General Isidro Ayora de Loja” que se me realizará
con la finalidad de obtener datos reales acerca de este problema y
así evitar alteraciones en el proceso de gestación.
2. Para garantizar el derecho a la privacidad la información y datos, así
como los resultados del análisis, estarán sometidos a
confidencialidad.
Firmado en la ciudad de ________ a los ____ días del mes de _________del
año _____
____________________
Firma
CI:…………………………
ANEXO N° 5
REGISTRO INTERNO PARA LA RECOLECCCION DE DATOS
Código Nombres y Apellidos
CI
Edad
Tiempo RESULTADOS
de
Fecha gest. T3 T4 TSHProlactina
ANEXO N° 6
PROTOCOLO PARA LA RECOLECCIÓN DE MUESTRAS
Antes de la toma de muestra se deben tomar en cuenta las siguientes
indicaciones:
Acudir al laboratorio durante las primeras horas de la mañana.
Evitar el estrés, antes y durante la toma de la muestra.
No hacer ejercicios vigorosos durante 3 días antes de tomar la muestra.
No ingerir bebidas alcohólicas antes ni durante la toma de la muestra.
No fumar antes ni durante la toma de la muestra.
Los pacientes en reposo no deberán cambiar de postura al tomar la muestra.
Protocolo para punción con jeringuilla
1. Antes de realizar el procedimiento se deberá verificar si se cuenta con todos
los instrumentos necesarios (jeringuilla, torniquete, torundas con alcohol,
curitas, recipiente para desechos, etc).
2. Rotular los tubos en los que se colocarán las muestras con el código
correspondiente y verificando siempre la información.
3.- Colocar la aguja en la jeringuilla y verificar que el émbolo suba y baje con
facilidad expulsando todo el aire de su interior.
4.- Colocar el torniquete a unos 5cm. del lugar en el que posiblemente se
realice la punción.
5.- Localizar la vena más factible (normalmente en el antebrazo).y desinfectar
la zona de la punción con una torunda empapada en alcohol. No tocar esta
zona con los dedos, a no ser que se haya esterilizado las manos o esté
usando guantes estériles.
6. Introducir la aguja con el bisel hacia arriba directamente en la vena y extraer
la cantidad de sangre requerida (de 3 a 5 cm.).
7.- Sacar el torniquete y luego la aguja cuidadosamente y colocar en su lugar
la torunda para evitar sangrados excesivos.
8.- Colocar el capuchón de la aguja con la técnica de una sola mano para evitar
pinchazos y eliminarla en el recipiente de cortopunzantes.
9.- Colocar la muestra de sangre en el recipiente adecuado (tubos sin
anticoagulante).
4. Una vez que la sangre esté en el tubo se debe transportar a la zona de
análisis para procesar la muestra.
Protocolo para punción con vacutainer
1. Antes de realizar el procedimiento se deberá verificar si se cuenta con todos
los instrumentos necesarios (tubos vacutainer, torniquete, torundas con alcohol,
curitas, recipiente para desechos, etc).
2. Rotular los tubos en los que se colocarán las muestras con el código
correspondiente y verificando siempre la información.
3.- Colocar la aguja en la campana cuidando que quede bien segura.
4.- Colocar el torniquete a unos 5cm. del lugar en el que posiblemente se
realice la punción.
5.- Localizar la vena más factible (normalmente en el antebrazo).y desinfectar
la zona de la punción con una torunda empapada en alcohol. No tocar esta
zona con los dedos, a no ser que se haya esterilizado las manos o esté
usando guantes estériles.
6. Introducir la aguja con el bisel hacia arriba directamente en la vena y colocar
el tubo vacutainer (tapa roja) en el otro extremo de la campana.
7.- Realizar una ligera presión en el tubo para que éste se introduzca
completamente en la campana y la aguja.
8.- Obtener la cantidad de sangre deseada.
9.- Sacar el torniquete y luego el tubo cuidadosamente sin mover la aguja.
10.- Sacar la aguja cuidadosamente y colocar en su lugar la torunda para evitar
sangrados excesivos.
11.- colocar el capuchón de la aguja con la técnica de una sola mano para
evitar pinchazos y eliminarla en el recipiente de cortopunzantes.
12. Una vez que la sangre esté en el tubo se debe transportar a la zona de
análisis para procesar la muestra.
ANEXO N° 7
TÉCNICA DE MANEJO PARA EL EQUIPO COBAS 411 MARCA ROCHE
El Cobas 4000 e 411 es un sistema de análisis inmunológico totalmente automático, basándose en el sistema de detección por
Electroquimioluminiscencia y en las micropartículas magnéticas recubiertas de estreptavidina.
El nuevo sistema combina estas características innovadoras con la experiencia y el compromiso adquiridos por ROCHE en el campo del inmunodiagnóstico: optimización de la tecnología de la fase sólida (sistema estreptavidina-biotina) y de las interacciones antígeno/anticuerpo y métodos de supresión de interferencias. La célula de medición donde se produce la reacción electroquimioluminiscente permite la obtención de unos resultados excepcionales en 9 ó 18 minutos, a una velocidad de aproximadamente 90 determinaciones por hora. Características del Sistema El sistema de rack permite adaptarse perfectamente a la organización del laboratorio. Los racks admiten una carga de 75 muestras, siendo compatibles con otros analizadores de ROCHE. Un rotor de reactivos con 18 canales permite cargar 15 parámetros que mediante el novedoso código de barras bidimensional (PDF 417) incorporan toda la información de la aplicación (curvas master, tiempos de incubación calibración, estabilidad) Comparado con el código de barras convencional de una dimensión, el de dos dimensiones tiene dos ventajas fundamentales: a) el volumen de información transferido es superior en un factor de 50-100, b) la seguridad en la lectura está significativamente incrementada debido a la redundancia del código. Todos los datos de información relevante, se suman los datos de reactivos, controles y calibradores presentes con códigos de barras. La apertura y cierre automático de los reactivos evita la evaporación y conjuntamente con un rotor a temperatura controlada de 20°C, permite que los mismos puedan estar entre 4 y 8 semanas en el sistema a disposición del usuario. Capacidad para 180 cubetas y 360 puntas lo que significa 2 horas de trabajo continuo. Las puntas de pipetas descartables eliminan la contaminación por arrastre. Un software de fácil manejo orientado a la rutina, sin pantallas accesorias y complejas. Interactivo con el operador gracias a su pantalla táctil (touch-screen). Órdenes simples y ejecutables, con sólo apretar un START. La programación de muestras urgentes es tan sencilla como pulsar una tecla
El recipiente de desechos sólidos (puntas de pipeta, cubetas, etc) evita el contacto del usuario con los mismos ya que, una vez lleno, se extrae del sistema y se puede tirar íntegramente. POCEDIMIENTO
1.- Con el equipo apagado: se elimina los desechos y se abre las tapas de los
reactivos de lavado.
2.- se enciende el equipo del costado y la parte delantera
3.- se eliminan las puntas desechables y se colocan otras nuevas
4.- se verifica el nivel de agua destilada y si es necesario se lo llena hasta la
señal.
5.- se borraran los resultados de trabajos anteriores.
6.- salir hacia la pantalla principal con la opción E.
7.- realizar el mantenimiento diario del equipo con las opciones 3 y 4 (limpieza
de pipeta Tam y Clab).
Todo el procedimiento de mantenimiento se lo realiza con el equipo en
Stand By
8.- Salir hacia la pantalla principal
9.- Se coloca todos los reactivos a utilizar en el equipo con la tapa semi-abierta
10.- escoger la opción: escaneo de reactivos
11.- se colocan las muestras en orden de numeración y con el código hacia
afuera .
12.- escoger la opción INICIO.
ANEXO N° 8
FT3 TRIYODOTIRONINA LIBRE
Uso previsto Test inmunológico in vitro para la determinación de la triyodotironina libre en suero y plasma humano. Principio del test Principio de competición con una duración de 18 minutos.
1aincubación: La muestra (15ul) y un anticuerpo específico anti-t3 marcado con quelato de rutenio.
2daincubación: Tras la incorporación de T3 marcado con biotina y micropartículas recubiertas de estreptavidina, los puntos de fijación aun libres del anticuerpo marcado se ocupan formándose un complejo anticuerpo-hapteno. El complejo entero se fija a la fase sólida por la interacción entre la biotina y la estreptavidina.
La mezcla de reacciones es trasladada a la célula de lectura donde, por magnetismo, las micropartículas se fijan a la superficie del electrodo. Los elementos no fijados se eliminan posteriormente con el reactivo ProCell. Al aplicar una corriente eléctrica definida se produce una reacción quimioluminiscente cuya emisión de luz se mide directamente con un fotomultiplicador.
Los resultados se obtienen mediante una curva de calibración generada por el sistema a partir de una calibración y una curva master incluida en el código de barras del reactivo.
Reactivos – soluciones de trabajo
M Micropartículas recubiertas de estreptavidina (tapa transparente), 1 frasco, 12ml. Micropartículas recubiertas de estreptavidina :0,72mg/ml; conservante.
R1 Anticuerpo anti-T3-Ru-(bpy, tapa gris) 1 frasco 18mL; Anticuerpo monoclonal anti-T3 (oveja)marcado con quelato de rutenio 10ng/mL; tampón fosfato 100mmol/L, pH 7,0, conservante.
R2 T3-biotina (tapa negra), 1 frasco 18mL; T3 biotinilada 2 ng/mL; tampón fosfato 100mmol/mL, pH7,0: conservante.
Preparación de los reactivos Los reactivos incluidos en el estuche están listos para el uso y forman una unidad inseparable. La información necesaria para el correcto funcionamiento se introduce en el analizador a través de los códigos de barras de los reactivos. Conservación y estabilidad
Conservar a 2-8°C. Conservar el estuche de reactivos Elecsys FT3 en posición vertical para garantizar la disponibilidad de todas las micropartículas durante la mezcla automática antes del uso. Estabilidad:
En frasco cerrado, a 2-8°C Hasta la fecha de caducidad
Una vez abierto, a 2-8°C 12 se manas
En los analizadores 6 semanas
Obtención y preparación de muestras Solo se considera apto: Suero sin diluir recogido con tubos estándar de muestras o tubos con gel de separación. Plasma sin diluir con heparina de litio y EDTAbi-tripotásico. Estable durante 7 días a 2-8°C, 1 mes a -20°C. Congelar solo una vez. Debido a los posibles efectos de evaporación, determinar las muestras, controles y calibradores dentro de un lapso de 2 horas. Cálculos El analizador calcula automáticamente la concentración de analito de cada muestra (en pmol/L ó ng/dL) Factores de conversión: pmol/L x 0,651= pg/mL pg/mL x 1,536 = pmol/L pg/ mL x 0,1 = ng/dL. Limitaciones – interferencias El test no se ve afectado por ictericia, hemólisis ni biotina. Solamente la furosamida en dosis terapéuticas diarias proporciona valores aumentados de T3 libre. Dilución No diluir las muestras destinadas a la determinación de FT3 ya que la T3 en sangre se encuentra en equilibrio entre la hormona libre y la ligada a proteína. Si se produce un cambio en la concentración de las proteínas de fijación, este equilibrio también sufre alteraciones. Valores teóricos
EDAD
2,5 porcentil
IC 95% del porcentil 2,5
97,5 porcentil
IC 95% del porcentil 97,5
Unidad
4-30 días 3.0 3.0 8,1 7,3-8,3 pmol/L
2-12 meses
2,4 2,4-3,1 9,8 8,8-9,8 pmol/L
2-6 años 3,0 2,9-3,6 9.1 8,2-9,5 pmol/L
7-11 años 4,1 2,5-4,9 7,9 7,6-9,2 pmol/L
12-19 años 3,5 3,1-3,7 7,7 7,3-9,2 pmol/L
Adulos 3,1 3,07-3,19 6,8 6,65-6,87 pmol/L
FT4 TIROXINA LIBRE
Uso previsto Test inmunológico in vitro para la determinación cuantitativa de la tiroxina libre en suero y plasma humano. Principio del test Principio de competición con una duración total de 18 minutos
1aincubación: La muestra (15ul) y un anticuerpo específico anti-t4 marcado con quelato de rutenio.
2daincubación: Tras la incorporación de T4 marcado con biotina y micropartículas recubiertas de estreptavidina, los puntos de fijación aun libres del anticuerpo marcado se ocupan formándose un complejo anticuerpo-hapteno. El complejo entero se fija a la fase sólida por la interacción entre la biotina y la estreptavidina.
La mezcla de reacciones es trasladada a la célula de lectura donde, por magnetismo, las micropartículas se fijan a la superficie del electrodo. Los elementos no fijados se eliminan posteriormente con el reactivo ProCell. Al aplicar una corriente eléctrica definida se produce una reacción quimioluminiscente cuya emisión de luz se mide directamente con un fotomultiplicador.
Los resultados se obtienen mediante una curva de calibración generada por el sistema a partir de una calibración a 2 puntos y una curva master incluida en el código de barras del reactivo.
Reactivos – soluciones de trabajo
M Micropartículas recubiertas de estreptavidina (tapa transparente), 1 frasco, 12ml. Micropartículas recubiertas de estreptavidina :0,72mg/ml; conservante.
R1 Anticuerpo anti-T4-Ru-(bpy, tapa gris) 1 frasco 18mL; Anticuerpo monoclonal anti-T4 (oveja)marcado con quelato de rutenio 50ng/mL; tampón fosfato 100mmol/L, pH 7,0, conservante.
R2 T4-biotina (tapa negra), 1 frasco 18mL; T4 biotinilada 2,5 ng/mL; tampón fosfato 100mmol/mL, pH7,0: conservante.
Preparación de los reactivos Los reactivos incluidos en el estuche están listos para el uso y forman una unidad inseparable. La información necesaria para el correcto funcionamiento se introduce en el analizador a través de los códigos de barras de los reactivos. Conservación y estabilidad Conservar a 2-8°C. Conservar el estuche de reactivos Elecsys FT4 en posición vertical para garantizar la disponibilidad de todas las micropartículas durante la mezcla automática antes del uso.
Estabilidad:
En frasco cerrado, a 2-8°C Hasta la fecha de caducidad
Una vez abierto, a 2-8°C 12 se manas
En los analizadores 4 semanas
Obtención y preparación de muestras Solo se considera apto: Suero sin diluir recogido con tubos estándar de muestras o tubos con gel de separación. Plasma tratado con heparina ( litio, sodio, amonio) y EDTAtripotásico. Estable durante 7 días a 2-8°C, 30 días a -20°C. Congelar solo una vez. Debido a los posibles efectos de evaporación, determinar las muestras, controles y calibradores dentro de un lapso de 2 horas. Cálculos El analizador calcula automáticamente la concentración de analito de cada muestra (en pmol/L, ng/L ó ng/dL) Factores de conversión: pmol/L x 0,077688 = ng/dL ng/dL x 12,872 = pmol/L pmol/L x 0,77688 = ng/L. Limitaciones – interferencias El test no se ve afectado por ictericia, hemólisis ni biotina. Solamente la furosamida en dosis terapéuticas diarias proporciona valores aumentados de T4 libre. Dilución No diluir las muestras destinadas a la determinación de FT4 ya que la T4 en sangre se encuentra en equilibrio entre la hormona libre y la ligada a proteína. Si se produce un cambio en la concentración de las proteínas de fijación, este equilibrio también sufre alteraciones. Valores teóricos Eutiroide: 12-22 pmol/L (0.93 – 1,7ng/dl). Los valores corresponden a los porcentiles 2,5 y 97,5 de los resultados de un total de 801 sujetos sanos.
TSH Tirotropina-Hormona estimuladora de la tiroides
Uso previsto Test inmunológico in vitro para la determinación cuantitativa de la tirotropina en suero y plasma humano. Principio del test Técnica sándwich con una duración de 18 minutos.
1aincubación:50ul de muestra, un anticuerpo monoclonal biotinilado anti TSH y un anticuerpo monoclonal específico anti-TSH marcado con quelato de rutenio forman un complejo sándwich.
2daincubación: Tras la incorporación de micropartículas recubiertas de estreptavidina el complejo formado se fija a la fase sólida por la interacción entre la biotina y la estreptavidina.
La mezcla de reacciones es trasladada a la célula de lectura donde, por magnetismo, las micropartículas se fijan a la superficie del electrodo. Los elementos no fijados se eliminan posteriormente con el reactivo ProCell. Al aplicar una corriente eléctrica definida se produce una reacción quimioluminiscente cuya emisión de luz se mide directamente con un fotomultiplicador.
Los resultados se obtienen mediante una curva de calibración generada por el sistema a partir de una calibración a 2 puntos y una curva master incluida en el código de barras del reactivo.
Reactivos – soluciones de trabajo
M Micropartículas recubiertas de estreptavidina (tapa transparente), 1 frasco, 12ml. Micropartículas recubiertas de estreptavidina :0,72mg/ml; conservante.
R1 Anticuerpo anti-TSH-biotina( tapa gris) 1 frasco 14mL; Anticuerpo monoclonal biotinilado anti-TSH (ratón) 2,0mg/L; tampón fosfato 100mmol/L, pH 7,2, conservante.
R2 Anticuerpo anti TSH-Ru (tapa negra), 1 frasco 12mL. Anticuerpo monoclonal anti-TSH (ratón/humano) marcado con quelato de rutenio 1,2mg/L; tampón fosfato 100mmol/L, pH 7,2, conservante.
Preparación de los reactivos Los reactivos incluidos en el estuche están listos para el uso y forman una unidad inseparable. La información necesaria para el correcto funcionamiento se introduce en el analizador a través de los códigos de barras de los reactivos. Conservación y estabilidad Conservar a 2-8°C. Conservar el estuche de reactivos ElecsysTSH en posición vertical para garantizar la disponibilidad de todas las micropartículas durante la mezcla automática antes del uso. Estabilidad:
En frasco cerrado, a 2-8°C Hasta la fecha de caducidad
Una vez abierto, a 2-8°C 12 se manas
En los analizadores MODULAR ANALYTICS E170, cobas e 601 y cobas e 603
6 semanas
En los analizadores Elycsys 2010 y cobas e 411
8 semanas
Obtención y preparación de muestras Solo se considera apto: Suero recogido con tubos estándar de muestras o tubos con gel de separación. Plasma con heparina ( litio, sodio, amonio) y EDTAtripotásico. Estable durante 7 días a 2-8°C, 1 mes a -20°C. Congelar solo una vez. Debido a los posibles efectos de evaporación, determinar las muestras, controles y calibradores dentro de un lapso de 2 horas. Cálculos El analizador calcula automáticamente la concetración de analito de cada muestra (en uUl/mL ó mUl/L) Limitaciones – interferencias El test no se ve afectado por ictericia, hemólisis ni biotina. La presencia de anticuerpos puede inducir la formación de complejos de alto peso molecular causante de valores aumentados de TSH. Dilución Las muestras con concentraciones de TSH superiores al intervalo de medición pueden diluirse con ElecsysDiluentMultiAssay. Se recomienda una dilución de 1:10. Valores teóricos 0,270-4,20 uUl/mL. Los valores corresponden a los porcentiles de 2,5 y 97,5 de los resultados obtenidos a partir de un total de 516 personas sanas.
PROLACTINA Uso previsto Test inmunológico in vitro para la determinación cuantitativa de la prolactina en suero y plasma humano. Principio del test Técnica sándwich con una duración de 18 minutos.
1aincubación: 10ul de muestra, un anticuerpo monoclonal biotinilado específico anti-prolactina forman un primer complejo.
2daincubación: tras añadir un anticuerpo específico monoclonal anti-prolactina marcado con quelato de rutenio se forma un complejo sándwich que, con el auxilio de micropartículas recubiertas de estreptavidina se fija a la fase sólida por la interacción entre la biotina y la estreptavidina
La mezcla de reacciones es trasladada a la célula de lectura donde, por magnetismo, las micropartículas se fijan a la superficie del electrodo. Los elementos no fijados se eliminan posteriormente con el reactivo ProCell. Al aplicar una corriente eléctrica definida se produce una reacción quimioluminiscente cuya emisión de luz se mide directamente con un fotomultiplicador.
Los resultados se obtienen mediante una curva de calibración generada por el sistema a partir de una calibración a 2 puntos y una curva master incluida en el código de barras del reactivo.
Reactivos – soluciones de trabajo
M Micropartículas recubiertas de estreptavidina (tapa transparente), 1 frasco, 6,5ml. Micropartículas recubiertas de estreptavidina :0,72mg/ml; conservante.
R1 Anticuerpo anti-Prolactina-biotina( tapa gris) 1 frasco 10mL; Anticuerpo biotinilado monoclonal anti-Prolactina (ratón) 0,7mg/L; tampón fosfato 50mmol/L, pH 7,0, conservante.
R2 Anticuerpo anti Prolactina-Ru (tapa negra), 1 frasco 10mL. Anticuerpo monoclonal anti-Prolactina (ratón) marcado con quelato de rutenio 0,35mg/L; tampón fosfato 50mmol/L, pH 7,0, conservante.
Preparación de los reactivos Los reactivos incluidos en el estuche están listos para el uso y forman una unidad inseparable. La información necesaria para el correcto funcionamiento se introduce en el analizador a través de los códigos de barras de los reactivos. Conservación y estabilidad Conservar a 2-8°C. Conservar el estuche de reactivos ElecsysTSH en posición vertical para garantizar la disponibilidad de todas las micropartículas durante la mezcla automática antes del uso
Estabilidad:
En frasco cerrado, a 2-8°C Hasta la fecha de caducidad
Una vez abierto, a 2-8°C 12 se manas
En los analizadores 8 semanas
Obtención y preparación de muestras Solo se considera apto: Suero recogido con tubos estándar de muestras o tubos con gel de separación. Plasma con heparina de litio y EDTAtripotásico. Estable durante 14 días a 2-8°C, 6 meses a -20°C. Congelar solo una vez. Debido a los posibles efectos de evaporación, determinar las muestras, controles y calibradores dentro de un lapso de 2 horas. Cálculos El analizador calcula automáticamente la concentración de analito de cada muestra (en uUl/mL, ng/Ml ó mUl/L). Limitaciones – interferencias El test no se ve afectado por ictericia, hemólisis ni biotina. Nose han observado interferencias por factores reumatoides ni por el consumo de fármacos. Dilución Las muestras con concentraciones de Prolactina superiores al intervalo de medición pueden diluirse con ElecsysDiluent Universal. Se recomienda una dilución de 1:10. Valores teóricos
Porcentiles
50° 2,5-97,5° 50° 2,5-97,5°
N uUl/mL ng/mL Hombres 102 155 86-324 7,30 4,04-15,2
Mujeres (no embarazadas)
198 225 102-496 10,6 4,79-23,3
ANEXO N° 9
HOSPITAL PROVINCIAL GENERAL ISIDRO AYORA DE LOJA.
EXÁMENES DE LABORATORIO
ANÁLISIS HORMONAL
REPORTE DE RESULTADOS
TIPO DE EXAMEN: Hormonal
MUESTRA: Suero
PARÁMETROS RESULTADOS VALORES DE REFERENCIA
T3 0,20 – 0,44 ng/dl
T4 0,93 – 1,70 ng/dl
TSH 0,27 - 4,20 uUI/ml
PROLACTINA 4,79 – 23,30 ng/ml
OBSERVACIONES: ………………………………………………………………………………………………………………………………………………………………………………………………………………………………………………………………………………………………………………………
Firma del jefe encargado
DATOS DEL PACIENTE
Nombres: Código:
Apellidos: Edad:
Historia Clínica: Fecha:
Tiempo de gestación:
Médico tratante:
ANEXO N° 10
ANEXO N°11
CERTIFICACION DEL LAB. CLINICO
ANEXO N°12
ANEXO N° 13
Consentimiento informado
Recolección de muestras
Análisis de muestras
Entrega y difusión de resultados
INDICE DE CONTENIDOS
CERTIFICACIÓN ............................................................................................. IVI
AUTORÍA .......................................................................................................... III
CARTA DE AUTORIZACIÓN ............................................................................ IV
DEDICATORIA ................................................................................................... V
AGRADECIMIENTO ....................................................................................... VIII
TÍTULO ........................................................................................................... VIII
RESUMEN ...................................................................................................... VIII
SUMMARY ........................................................................................................ IX
I.INTRODUCCIÓN ........................................................................................... 10
II.MARCO TEÓRICO ....................................................................................... 14
2.1 GLÁNDULA TIROIDES ........................................................................... 15
2.1.1 FISIOLOGÍA DE LAS HORMONAS TIROIDEAS ............................. 15
2.1.2 REGULACION DE LAS HORMONAS TIROIDEAS .......................... 17
2.1.3 FUNCIÓN DE LAS HORMONAS TIROIDEAS ................................ 18
2.1.4 VALORES DE REFERENCIA ........................................................... 19
2.1.5 ALTERACIONES DE LAS HORMONAS TIROIDEAS ...................... 19
2.1.5.1 HIPERTIROIDISMO ...................................................................... 20
2.1.5.2 HIPOTIROIDISMO ......................................................................... 20
2.1.6 VARIACIONES EN LOS RESULTADOS DE HORMONAS TIROIDEAS
...................................................................................................................... 22
2.2 PROLACTINA ............................................................................................ 24
2.2.1 FISIOLOGÍA DE LA HORMONA PROLACTINA .................................. 26
2.2.2 CONTROL Y REGULACION DE LA PROLACTINA ............................ 26
2.2.3 FUNCIONES DE LA PROLACTINA EN EL ORGANISMO .................. 27
2.2.4 VALORES DE REFERENCIA .............................................................. 29
2.2.5 ALTERACIONES EN EL NIVEL DE PROLACTINA ............................. 30
2.2.6 PROLACTINA EN EL EMBARAZO ...................................................... 30
2.3 PERFIL TIROIDEO Y SU RELACION CON LA PROLACTINA EN EL
EMBARAZO ..................................................................................................... 32
2.4 EVALUACIÓN DE LAS HORMONAS
TIROIDEAS………………………….324
2.4.1 MÉTODOS PARA DETERMINAR HORMONAS TIROIDEAS
………….325
III.MATERIALES Y MÉTODOS ........................................................................ 37
IV.RESULTADOS ............................................................................................ 42
V. DISCUSIÓN ................................................................................................. 65
VI.CONCLUSIONES ........................................................................................ 69
VII.RECOMENDACIONES ............................................................................... 71
VIII.BIBLIOGRAFÍA .......................................................................................... 73
IX. ANEXOS ..................................................................................................... 79