reproducao de peixes ornamentais (piscicultura)

APOSTILA DO CURSO

REPRODUÇÃO DE PEIXES ORNAMENTAIS DE ÁGUA DOCE NOÇÕES BÁSICAS

Palestrante: Mauricio K. Nagata – Zootecnista, Pesquisador Científico do Centro de Pesquisas e Desenvolvimento de Peixes Ornamentais do Instituto de Pesca 1. INTRODUÇÃO

1.1. Mercado 1.2. Instalações 1.3. Saúde 1.4. Qualidade de água para a reprodução 1.5. Alimentação para a reprodução 1.6. Outros fatores que podem influenciar a reprodução

2. REPRODUÇÃO, LARVICULTURA E ALEVINAGEM

2.1. “Vivíparos” 2.2. “Killifishes” 2.3. “Ciprinídeos” (Cipriniformes) 2.4. “Caracídeos” (Caraciformes) 2.5. “Anabantídeos” (Anabantóides) 2.6. Ciclídeos 2.7. “Catfishes” (Siluriformes)

3. ALIMENTAÇÃO E CRIAÇÃO DOS ALEVINOS 4. LITERATURA CONSULTADA

1. INTRODUÇÃO A reprodução dos peixes de aquário seria o ponto culminante do aquarismo,

pois, para obtê-la, o aquarista deve ter certa experiência na manutenção dos mesmos, além de que, para muitas espécies, deve-se proporcionar condições adequadas para que ela ocorra. Assim, o interessado deve adquirir o máximo de informações, através de literatura, troca de idéias com criadores e aquaristas mais experientes, “internet” e outras fontes de conhecimento.

Reprodução de peixes de aquário 1. Seleção de espécies

• disponibilidade • facilidade de reprodução, instalações e condições requeridas

2. Seleção de estoque reprodutor com características desejadas • coloração, forma do corpo, nadadeiras, olhos, cabeça • saúde, vigor, alimentação

3. Condicionamento para reprodução • temperatura, fotoperíodo (comprimento do dia) • qualidade da água • dieta

4. Reprodução • temperatura, fotoperíodo • qualidade da água • compatibilidade dos reprodutores • meio (substrato) de desova • sobrevivência de ovos e larvas

5. Recuperação dos reprodutores • separação dos sexos • retorno ao item 3 (condicionamento para a reprodução)

6. Larvas • seleção constante (triagem) • crescimento e terminação • venda ou retorno ao item 2 (seleção de estoque reprodutor com

características desejadas)

1.1. Mercado Definir a finalidade da criação: lazer (“hobby”, desafio), pesquisa (manutenção de espécies raras ou não), comércio (lucro). Criação comercial Registro de Aqüicultor – Instrução Normativa no 5, de 18 de janeiro de 2001(IN no 5) – aqüicultores deverão fazer o cadastramento junto às Delegacias Federais do Ministério da Agricultura de seus Estados (endereços no site http://www.agricultura.gov.br/dfa/index.htm) – apresentar documento de identidade e CPF (pessoa física) e CGC (pessoa jurídica), formulário preenchido (encontrados nas delegacias do MA e ou no site do DPA http://www.agricultura.gov.br/dpa/aquicola/aquicola27.htm ou http://www.agricultura.gov.br/dpa/aquicola/instnormativa04.doc, depósito da taxa anual (o pagamento do valor do registro de aqüicultor será calculado com base no somatório das áreas de todas as Unidades de Aqüicultura de propriedade do requerente). Escolha da espécie ou variedade a ser criada vai depender:

• da pesquisa de mercado do local onde se pretende vender a produção. A demanda varia conforme a região (localização geográfica), época do ano, modismos, “marketing”;

• da verificação da “concorrência” ou fornecedores habituais quanto às espécies ou variedades oferecidas, quantidade e qualidade dos produtos, periodicidade de entrega, preços;

• das condições disponíveis: qualidade e quantidade de água, clima e a possibilidade de controle das variáveis ambientais (temperatura, fotoperíodo), sistema de cultivo (ver “Instalações”);

• da viabilidade de desenvolvimento e crescimento do animal nessas condições (adaptação e resistência ao manejo geral, alimentar e sanitário);

• da possibilidade do controle da reprodução (natural ou induzida). Dependendo do tipo e tamanho da produção pode-se optar pelo escoamento (venda) para:

• atacadistas – grandes volumes, menor preço unitário; • lojas – menor volume, maior variedade, preço geralmente um pouco

melhor; • hobistas (aquaristas) especializados – produto diferenciado (espécies,

populações ou variedades mais raras, elaboradas ou “difíceis”), poucos exemplares, preços elevados.

Obs.: Levar em consideração despesas de embalagem e frete.

Normas de exportação e importação de peixes ornamentais vivos (informações no IBAMA) Exportação – considerar o envio de amostra de material – verificar viabilidade de cumprimento do contrato (qualidade, quantidade e fornecimento regular) – planejamento (cooperativa – tradição, experiência). Importação – todas as espécies de peixes ornamentais estão liberadas. Para criação de alguma espécie, deve-se enviar uma carta-consulta ao IBAMA para análise de cada caso.

1.2. Instalações Varia conforme o sistema de produção

• sistema semi-intensivo – áreas rurais – tanques externos (terra, alvenaria, revestimentos plásticos, caixas d’água, piscinas) para reprodução, crescimento e terminação – proteção contra predadores e competidores;

• sistema intensivo – áreas rurais/urbanas – estufas para reprodução, larvicultura e alevinagem em aquários, tanques ou caixas d’água, permitindo um maior controle ambiental. O crescimento e a terminação são realizados em tanques externos (mesmos do sistema semi-intensivo);

• sistema super-intensivo – áreas urbanas – ambiente controlado em todas as fases da criação (estufas ou salas de criação com aquários, caixas d’água e outros recipientes) – alto investimento – escolha de espécies, variedades ou linhagens mais valorizadas (raras e/ou exigentes).

1.3. Saúde

O plantel (matrizes e reprodutores) deve ser saudável, através de sua obtenção em criadores idôneos e pela realização de quarentena (imprescindível, independente da origem) e, se necessário, a aplicação de tratamentos adequados conforme diagnósticos confiáveis. A profilaxia (prevenção), fornecimento de ambiente ideal e manejo adequado são importantes para a manutenção da saúde e conseqüente produção e reprodução dos peixes. 1.4. Qualidade de água para a reprodução

1.4.1. Temperatura – faixa térmica ideal para cada espécie 1.4.2. pH – determina a acidez do ambiente (água), existindo uma amplitude

ideal para cada espécie 1.4.3. “Dureza”

1.4.3.1. Alcalinidade – concentração total de sais em mg/L (ppm) de equivalente de carbonato (CO3-2) e bicarbonato (HCO3-) – é a capacidade de neutralização das oscilações de pH (poder tampão). Em piscicultura recomenda-se acima de 60 mg/l.

1.4.3.2. Dureza – teor de íons de Ca+2 e Mg+2 combinados a carbonatos e bicarbonatos. Também medida em graus alemães (dHo).

Água mg/litro CaCO3 (ppm) dHo

Mole (macia) 0-50 3 Moderadamente mole 50-100 3-6 Levemente dura 100-200 6-12 Moderadamente dura 200-300 12-18 Dura 300-450 18-25 Muito dura Acima de 450 Acima de 25

1.4.3.3. Condutividade elétrica – indica a quantidade de sais (íons) dissolvidos na água – disponibilidade de nutrientes.

1.4.4. Compostos nitrogenados – aminoácidos (relacionados com a reprodução de algumas espécies), amônia (quanto mais alcalina está a água, maior é quantidade de amônia na forma tóxica para os organismos aquáticos; também é a forma mais facilmente absorvida pelos vegetais aquáticos), nitrito (também tóxico, o sal pode diminuir seus efeitos) e nitratos (tóxico em concentrações elevadas, utilizados por plantas palustres e terrestres).

1.4.5. Gases dissolvidos 1.4.5.1. Oxigênio – importante para os animais, vegetais e bactérias

aeróbias (ciclo do nitrogênio) 1.4.5.2. Gás Carbônico – importante para os vegetais, auxilia na eclosão

dos ovos de algumas espécies (“killifishes”) 1.4.6. Cloro, Flúor, Cobre – a água de torneira das cidades geralmente sofre

tratamento com produtos que, dependendo das concentrações, poderão ser tóxicos para os organismos aquáticos. Assim, ela deve ser tratada antes de seu uso (descanso em recipientes neutros, aeração, filtro de carvão ativado, adição de produtos que neutralizam o cloro e outros metais pesados)

1.4.7. Esterilização da água – reprodução de espécies sensíveis, controle de microrganismos e algas unicelulares – equipamentos adequados para evitar problemas

1.4.7.1. Ozônio 1.4.7.2. Raios (Luz) ultra-violeta

1.5. Alimentação para a reprodução

Deve suprir as exigências de manutenção e fornecer elementos necessários para o desenvolvimento dos produtos sexuais, evitando-se excessos de alimentos inadequados, isto é, deve-se ter informações sobre a predominância do hábito alimentar do animal (carnívoro, onívoro ou herbívoro)

1.5.1. Alimentos vivos 1.5.1.1. Vermes (tubifex, minhoca, enquitréia, microverme) 1.5.1.2. Insetos (larvas de quironomídeo – “bloodworm”, de mosquitos,

larvas e adultos de drosófila e mosca) 1.5.1.3. Crustáceos (artemia, cladóceros – dáfnias, copépodos – cíclopes)

1.5.2. Alimentos frescos 1.5.2.1. Origem animal (carne, fígado, coração de mamíferos, aves e

peixes) 1.5.2.2. Origem vegetal (algas, verduras e legumes)

1.5.3. Alimentos industrializados 1.5.3.1. Rações (“em flocos”, granulada, peletizada, tabletes) 1.5.3.2. Alimentos desidratados (mesmos dos vivos e frescos) 1.5.3.3. Alimentos congelados (mesmos dos vivos e frescos)

1.6. Outros fatores que podem influenciar a reprodução

1.6.1. Fotoperíodo (comprimento do dia) e temperatura 1.6.2. Estímulos químicos (feromônios), visuais, de som (vibração) ou toque

(tato) do sexo oposto 1.6.3. Uso de hormônios – naturais ou sintéticos, na água ou no animal

(injetados)

2. REPRODUÇÃO, LARVICULTURA E ALEVINAGEM Os peixes apresentam os mais variados mecanismos de reprodução como o gonocorístico ou bissexuado (ovuliparidade, oviparidade, ovoviviparidade, viviparidade), o hermafrodita (simultâneo ou seqüencial), o partenogenético (ginogenético), hibridogênese e superfetação. 2.1. “Vivíparos” – são representados principalmente pela família dos Poecilídeos

(lebistes, platis, espadas e molinésias com diversas variedades de cor e formas de nadadeira e corpo) na qual os machos possuem a nadadeira anal modificada em órgão reprodutor (gonopódio) que permite a deposição dos espermatóforos no poro genital das fêmeas, ocorrendo a fecundação interna, “prenhez” e parição (as fêmeas podem armazenar os espermatóforos, podendo parir várias vezes após uma única fecundação). Deve-se utilizar métodos que permitam a fuga dos recém nascidos da voracidade dos adultos (telas, plantas). Os alevinos aceitam náuplios de artêmia e alimentos finamente moídos logo após algumas horas do nascimento. Outros “vivíparos” são os meio-bico (Dermogenys), tralhoto (Anableps),etc.

Métodos para proteção dos recém nascidos Aquário com adensamento de plantas

Uso de “maternidades” (vidro, tela)

Para a produção ou manutenção de variedades ou linhagens deve-se: selecionar matrizes com as características desejadas, separar a prole por sexo (assim que possível), oferecer ótimas condições de crescimento e reiniciar a seleção de novos reprodutores. Utilizar-se de informações genéticas (herdabilidade, consangüinidade, cruzamentos,etc.).

Tabela de dados reprodutivos – “Vivíparos” Espécie Temp.

(o C) pH “Dureza”

(ppm CaCO3)

Dias entre partos

Número de crias / parto

Primeira alimentação

Lebiste ou guppy (Poecilia reticulata)

23-26 7,0 100-150 28-32 20-200 Náuplios de artêmia, ração finamente moída

Molinésia (P. sphenops)

23-28 7,5 150-180 0,5 a 1,5 g /L sal

40-70 20-60 Náuplios de artêmia, ração finamente moída

Molinésia (P. latipinna)

23-28 7,8 150-180 0,5 a 1,5 g /L sal

70 20-80 Náuplios de artêmia, ração finamente moída

Molinésia (P. velifera)

23-28 7,5 150-180 0,5 a 1,5 g /L sal


Plati (Xiphophorus maculatus)


Espada (X. helleri)


Meio-bico (Dermogenys pusillus)

26 7,0 0,5 a 1,5 g /L sal


2.2. “Killifishes” – são os “ciprinodontídeos”, principalmente da família dos aploqueilídeos, subfamília dos aploqueilíneos (Aphyosemion, Nothobranchius) e dos rivulíneos (Cynolebias, Rivulus). Para a reprodução, preferem água ligeiramente ácida e mole. São muito suscetíveis à doença do veludo (“oodinum”). Recomenda-se a utilização de sal (1 colher de café para cada 4 litros de água). Conforme o comportamento reprodutivo podem ser divididos em:

2.2.1. Anuais - desova em substrato no fundo como turfa, xaxim, esfagno (musgo), fibra de coco (bem moídos e fervidos) ou lã acrílica (podem ser colocados dentro de potes para facilitar sua coleta). Após uma ou duas semanas, o substrato é coado, seco (umidade semelhante ao fumo de cachimbo) e armazenado em sacos plásticos por período adequado a cada espécie (1 a 6 meses). Após esse período, adiciona-se água para que ocorra a eclosão. Geralmente são oferecidos infusórios (espécies que nascem menores) ou náuplios de artêmia (espécies que nascem maiores).

2.2.1.1. Aradores (Nothobranchius) – desovam na superfície do substrato

2.2.1.2. Mergulhadores (Cynolebias) - “mergulham” dentro do substrato,

que deve ter uma maior profundidade

2.2.2. Não-anuais - desova em substrato na superfície da água, raízes de plantas flutuantes, ninhos artificiais confeccionadas de lã acrílica presa em flutuadores (isopor, cortiça), em plantas submersas. O ninho ou ovos são colocados em recipientes à parte para incubação em água, que dura de 10 a 21 dias para os rívulos e afiosêmions (média de 14 dias). A alimentação é semelhante aos anuais.

2.2.3. Semi-anuais - desova facultativa no fundo e na superfície (Fundulopanchax). O tempo de incubação é geralmente intermediário entre os não-anuais e os anuais (45 dias ou mais).

Aquário de desova de não-anuais e semi-anuais

Tabela de dados reprodutivos – “Killifishes” Espécies Temp

(oC) pH “Dureza” (ppm

CaCO3) Número de ovos

Tipo de desova

Australe (Aphyosemion australe)

24 6,5 20-50 200-300 Não-anual

Bivitato (A. bivittatum)

24 6,5 20-50 200-250 Não-anual

Blue gularis (Fundulopanchax sjoestedti)

24 6,5 20-50 100-200 Semi-anual (facultativo)

Lineatus (Aplocheilus lineatus)

25 6,5 80-120 100-150 Não-anual

Nigripínis (Cynolebias nigripinnis)

18 6,2 10-50 50-80 Anual (mergulhador)

Rívulo (Rivulus cilindraceus)

25 6,8 80-100 100-150 Não-anual

2.3. “Ciprinídeos” (Cipriniformes) – são as carpas, kinguios, barbos, dânios e rásboras. Normalmente desovam em cardumes. Os ovos podem ser adesivos a substratos como plantas submersas, raízes de plantas flutuantes ou ninhos artificiais (carpa, kinguio, rásbora arlequim). Os ovos não adesivos são produzidos pelos dânios (paulistinha, dânio leopardo, pérola, gigante), indo ao fundo e alojando-se entre pedras e seixos. Os barbos e outras espécies de rásbora são dispersadores de ovos, onde parte se adere a substratos e parte vai ao fundo (semi-adesivos). Retira-se os pais. De um a quatro dias ocorre a eclosão, espera-se mais três ou quatro dias para a absorção do saco vitelínico, iniciando-se a alimentação com infusórios, náuplios de artêmia ou ração finamente moída, dependendo do tamanho da pós-larva.

Ovos adesivos Kinguios e carpas

Rásbora arlequim

Ovos não adesivos

Dânios

Ovos semi-adesivos Barbos, tanícts e outras espécies de rásbora

Tabela de dados reprodutivos - Cipriniformes

Espécie Temp. (o C)

pH “Dureza” (ppm CaCO3)

Número de ovos Eclosão

Tipo de ovos


Kinguio (Carassius auratus)

>15 6,8 100-150 1000-3000, 3-4 dias

Adesivos “Água verde”, “infusórios”, alimento líquido para ovíparos

Rásbora arlequim (Rasbora heteromorpha)

28 5,5 a

6,0

20-60 50-250, 24-30 horas

Adesivos, na parte

inferior de folhas largas

“Infusórios”, alimento líquido para ovíparos e náuplios de artêmia

Dânios, paulistinha – Danio (=Brachydanio)

22-24 6,8 a

7,0

100-150 100-400, 24 horas

Não adesivos

– de fundo


Barbo sumatrano (Capoeta tetrazona)

26-28 6,5 a

6,8

80-120 150-300, 36 horas

Semi-adesivos – plantas e fundo

Náuplios de artêmia, ração finamente moída

Taníctes (Tanichthys albonubes)

18-24 7,2 100-150 50-150, 24 horas

Semi-adesivos – plantas e fundo

Náuplios de artêmia

2.4. “Caracídeos” (Caraciformes) – em aquários, são representados principalmente pelos tetras. Para a reprodução, geralmente são mais exigentes, em relação aos cipriniformes, quanto à qualidade da água (mole e ácida). O par se afasta do cardume e acasala perto de plantas ou áreas livres

(alguns, como os rodóstomos, acasalam-se em cardume). Os pais são retirados.Os ovos são semi-aderentes aos substratos (plantas, ninhos artificiais), podendo cair ao fundo e são sensíveis à qualidade de água e à luz. A incubação leva de 24 a 36 horas e no 5o ou 6o dia já absorveram o saco vitelínico, devendo-se iniciar a alimentação adequada ao tamanho das pós-larvas (infusórios, alimento líquido para ovíparos, microverme, náuplios de artêmia).

Tabela de dados reprodutivos - Caraciformes




Tipo de ovos


Neon verdadeiro (Paracheirodon innesi)

23-24 5,5 a

6,0

0-40 80-120, 24

horas

Semi-adesivos

– plantas e fundo

“Infusórios”, alimento líquido para ovíparos

Neon cardinal (Paracheirodon axelrodi)

28 5,5 a

6,5

0-40 80-120, 24

horas

Semi-adesivos

– plantas e fundo


Tetra preto (Gymnocorymbus ternetzi)

25 6,8 100-150

150-250 Adesivos “Infusórios”, alimento líquido para ovíparos e náuplios de artêmia

Mato Grosso (Hyphessobrycon eques)

25 6,5 50-80 100-150 Semi-adesivos

– plantas e fundo


Tetra Congo (Phenacogrammus interruptus)

25 6,0 a

7,0

<80 >300, 6 dias

Semi-adesivos

– de fundo

Náuplios de artêmia

2.5. “Anabantídeos” (Anabantóides) – têm como característica principal um

órgão respiratório suplementar chamado labirinto, que lhes permite aproveitar o oxigênio diretamente do ar. Os mais conhecidos (beta, tricogáster, colisa, paraíso) são da família dos osfronemídeos. Os machos têm um comportamento territorial, sendo agressivos com sua própria espécie quando em aquários de tamanho inadequado. Para a reprodução, deve-se elevar a temperatura para 26-28oC (24-25oC para o paraíso). Os machos constroem um ninho de bolhas, na superfície, com uma secreção bucal. Adiciona-se uma fêmea madura (ventre abaulado, ovipositor aparente, listras verticais claras em betas de cor escura). Geralmente, no dia seguinte ocorre a desova, através de abraços. Os ovos são coletados pelo macho com a boca e colocados no ninho (beta) ou os ovos flutuam para o ninho (tricogáster, colisa, paraíso). Retira-se a fêmea. A eclosão ocorre em 24 a 48 horas. As larvas absorvem o saco vitelínico em 3 ou 4 dias quando retira-se o macho e inicia-se a alimentação com infusórios e náuplios de artêmia.

Tabela de dados reprodutivos – Anabantóides




Tipo de ovos


Beta ou Peixe de Briga (Betta splendens)

26-28 7,0 150-180 100-300, 24-48 horas

Densos em ninhos de bolhas


Colisa (Colisa lalia)

28-30 7,0 150-180 100-200, 24 horas

Flutuantes em ninhos de Bolhas


Tricogáster (Trichogaster trichopterus, T. leeri)

26-28 6,8-7,0

120-150 200-600 24-48 horas



Paraíso (Macropodus opercularis)

22-24 7,0 150-180 250-300, 24-30 horas



2.6. Ciclídeos – apresentam cuidado de um ou ambos os pais, conforme os hábitos reprodutivos podem ser divididos em :

2.6.1. Desova em substratos (folhas, pedras, troncos, ladrilhos, cano de PVC) em locais abertos - bandeira, disco, oscar, Cichlasoma spp.

Acará bandeira

Acará disco

Acará severum Ramirezi

2.6.2. Desova em substratos em locais fechados ou protegidos (esconderijos – cavernas de pedra, conchas, vasos, casca de coco) - vários ciclídeos anões – Apistogramma spp, Pelvicachromis spp.

Kribensis

2.6.3. Incubadores bucais – vários ciclídeos africanos dos gêneros Pseudotropheus, Labeotropheus, Haplochromis.

As pós-larvas (depois da absorção do saco vitelínico) podem ser alimentadas com náuplio de artêmia e ração finamente moída. As pós-larvas de algumas

espécies têm como primeiro alimento exógeno uma secreção (muco) da pele dos pais, sendo recomendável mantê-los juntos por um período de pelo menos algumas semanas (acará disco, uaru). Nas outras espécies, os substratos com desova e a própria desova (incubadores bucais) são separados dos pais e desenvolvidos artificialmente. Isto acaba acelerando uma nova desova, podendo-se aumentar a produção.

Tabela de dados reprodutivos - Ciclídeos Espécie Temp.

(o C) pH “Dureza”

(ppm CaCO3)


Tipo de desova


Acará bandeira (Pterophyllum scalare)

26-28 <7,0 <100 >1000, 48-72 horas

Superfície plana vert.,

ambos cuidam da

prole

Náuplios de artêmia, alimento líquido para ovíparos

Acará disco (Symphysodon aequifasciata)

28-32 5,5 a

6,5

<80 150-400, 48-60 horas

Superfície plana vert.,

ambos cuidam da

prole

Muco da pele dos pais, náuplios de artêmia, alimento líquido para ovíparos

Oscar, Apaiari ou Acará-Açu (Astronotus ocellatus)

26-30 7,0 150-180

500-800 Superfície plana, ambos

cuidam da prole


Acará festivo (Mesonauta = Cichlasoma festivum)

25-28 6,8 100-150

250-350 Superfície plana, ambos

cuidam da prole


Kribensis (Pelvicachromis pulcher)

25-28 7,0 150-180

100-250, 72-96 horas

Teto de caverna, ambos

cuidam da prole


Auratus (Melanochromis auratus)

25-28 7,5-8,5

150-200

10-50, saem da

boca com 3

semanas

Incubação bucal, fêmea

cuida da prole


2.7. “Catfishes” (Siluriformes) – os mais comumente encontrados são as coridoras, limpa-vidros, cascudos e bagres (mandis). As coridoras desovam em grupos (uma fêmea e vários machos). Após uma substancial troca de água, a

fêmea limpa os possíveis locais de desova como pedras, plantas e vidro do aquário. Imediatamente antes da desova a fêmea pressiona sua boca no ventre de um dos machos (posição em “T”) e inicia a postura. Os pais são retirados, ocorrendo a eclosão em três a cinco dias. Levam cerca de 24 horas para absorver o saco vitelínico, quando devem ser alimentadas com náuplios de artêmia e ração finamente pulverizada.

Posição em “T”

A família Loricariidae (cascudos e limpa-vidros) tem quatro tipos básicos de comportamento reprodutivo que são: 1) reprodução em locais abertos sem cuidado parental (limpa-vidros Otocinclus eParotocinclus), 2) reprodução em locais abertos com cuidado parental (Sturisoma e Farlowella), 3) carregadores externos (embriões ligados ao lábio inferior dos machos – Loricariichthys) e 4) reprodução em locais protegidos (cavernas)(cascudos dos gêneros Hypostomus, Ancistrus, Peckoltia, Panaque). Os cascudos geralmente são reproduzidos aos pares. Deve-se condicioná-los para a reprodução alimentando-os com abobrinha, pepino, ervilhas, quironomídeos (“bloodworm”) e artêmia congelados e pastilhas de spirulina (ração comercial com algas), fornecendo-se troncos e esconderijos (túneis de pedra ou tubos de PVC) onde ocorre a desova. O macho cuida dos ovos, larvas e alevinos. Oferecer alimentos de origem vegetal macios (pedras com algas, vegetais cozidos e amassados), náuplios de artêmia e ração finamente pulverizada.

Macho de Ancistrus cuidando dos ovos Os machos de Ancistrus cuidam da prole até ela

atingir por volta de 1 cm

Par de Sturisoma desovando. O macho (à direita) dedica-se sozinho aos cuidados com aos ovos.

Tabela de dados reprodutivos - Siluriformes Espécie Temp.

(o C) PH “Dureza”

(ppm CaCO3)


Tipo de desova


Limpa-fundo ou Coridoras (Corydoras spp)

23-24 <7,2 <180 >200, 3-5 dias

Ovos adesivos em plantas e superfícies

planas (vidro)

Náuplios de artêmia, ração finamente pulverizada

Cascudo ancistro (Ancistrus spp)

23-27 5,8-7,8

100-150 120, 4-5 dias

Túneis de pedra ou canos

de PVC, macho cuida dos ovos e

larvas

Alimentos macios , picados ou esmagados à base de vegetais, náuplios de artêmia

Limpa-vidro (Otocinclus vittatus)

25 7,0 100-150 100-150 Superfícies planas, folhas,

pedras; não apresentam

cuidado parental

Rotíferos, folhas de alface esmagada, introduzir pedra com algas

Tamboatá ou Caborja (Callichthys, Haplosternum)

24-25 7,0-7,2

100-150 100-200 Ninho de bolhas


3. ALIMENTAÇÃO E CRIAÇÃO DOS ALEVINOS Início da alimentação – os filhotes dos “vivíparos” e dos “killifishes” geralmente já

nascem prontos para ingerirem seus primeiros alimentos (adequados ao tamanho da boca). Os outros ovíparos, geralmente possuem o saco vitelínico (reserva de alimento endógena) após a eclosão, ficando alguns dias para absorverem o vitelo e terminarem essa fase de desenvolvimento, estando prontos para iniciarem com a alimentação exógena. É uma fase de transição bastante crítica. Deve-se monitorar a qualidade e quantidade de alimento de tamanho adequado e a freqüência de seu fornecimento para que não hajam deficiências ou excessos, ambos prejudiciais e até mortais. A primeira por não suprir as exigências nutricionais do animal e a última por deteriorar a qualidade da água.

Alimentos industrializados – líquidos ou em pó, específicos para filhotes de peixes ovíparos ou vivíparos. Ficar atento, pois deterioram rapidamente.

Alimentos vivos – infusórios (protozoários ciliados) e rotíferos cultivados em “água velha” mais folhas de vegetais secos; microvermes cultivados em recipientes com uma papa de farinha de aveia e leite e náuplios de artêmia obtida de cistos de resistência secos (vendidos no comércio) postos a eclodir em água salgada e aerada (dentro de 24 a 48 horas conforme a temperatura e luz) no momento adequado, os náuplios devem ser separados das cascas dos cistos, coados, lavados em água doce e só assim fornecidos aos peixes em quantidades que possam ser consumidos antes de morrerem (vivem algumas horas em água doce).

Os alimentos devem ser fornecidos várias vezes ao dia e em pequenas quantidades. Conforme os animais forem crescendo deve-se fornecer alimento de qualidade e

tamanhos adequados, assim como espaço suficiente para não impedir o desenvolvimento, realizando um desbaste ou dividindo em mais aquários os peixes de tamanho semelhante para evitar o canibalismo. Nessas triagens faz-se uma seleção das características desejada (descartando-se os defeituosos ou fora de padrão). O manejo será diferenciado dependendo da espécie criada (ex.:beta – quando os machos começarem a se diferenciar devem ser colocados em recipientes individuais; lebiste – os machos vão sendo separado das fêmeas para evitar acasalamentos não programados).

A qualidade da água deve ser mantida nas melhores condições em todas as fases do desenvolvimento, através de trocas parciais freqüentes (ficar atento quanto à temperatura e pH), utilização de filtro de esponja “maduro”, isto é já colonizado pelas bactérias que completarão o ciclo do nitrogênio, alimentação suficiente e adequada (qualidade, quantidade, tamanho). A adição de plantas aquáticas e pequenos caramujos pode ajudar na manutenção da qualidade da água pelo consumo de nutrientes e restos de alimentos – desde que eles sejam originários de fontes confiáveis para não introduzirmos doenças, predadores ou competidores.

4. LITERATURA CONSULTADA

• Vida no Aquário – 3 volumes – Editora Três • Peixes (You & Your Aquarium) – 1 volume – JB Indústrias Gráficas S.A. • Guia de Mantenimiento y Cría – Vol. 1 – Trichos; Vol. 2 – Banderitas; Vol. 5 –

Lebistes – D. Carnevia y G. Dittrich – Indice SRL. • Tropical Freshwater Aquária – George Cust & Peter Bird – Bantam Book –

Grosset & Dunlap, Inc. - 1972 • A Fishkeeper’s Guide to Fish Breeding – Dr. Chris Andrews – Salamander Book

Limited, London – New York – 1986 • Aquarium Fish of the World – Atsushi Sakurai et al. – Chronicle Books, San

Francisco – 1993 • Exotic tropical Fishes – Expanded Edition (Looseleaf) – Herbert R. Axelrod; Cliff

W. Emmens; Warren E. Burgess; Neal Pronek; T.F.H. Publications, Inc. – 1996 • Biologia da Reprodução de Peixes Teleósteos: Teoria e Prática – Anna Emília

de M. Vazzoler – Editora da Universidade Estadual de Maringá – 1996 • Criação de Peixes de Aquário – Inês Scheurmann - Editorial Presença, Lisboa –

1997 • Apostila do “1o Curso Internacional de Criação de Peixes Ornamentais do

Instituto de Pesca” – Daniel Carnevia – 31/03 a 02/04 de 2000 • Panorama da Aqüicultura – Vol. 11, no 63 – jan/fev – 2001 • Panorama da Aqüicultura – Vol. 12, no 71 – mai/jun – 2002

BIBLIOGRAFIA RECOMENDADA Geral • Vida no Aquário – 3 volumes – Editora Três • Peixes (You & Your Aquarium) – 1 volume – JB Indústrias Gráficas S.A. • Dr. Axelrod’s Mini Atlas of Freshwater Aquarium Fishes – Dr. Herbert R. Axelrod et

al. - T.F.H. Publications, Inc. – 1987 • Aquarium Fish of the World – Atsushi Sakurai et al. – Chronicle Books, San

Francisco – 1993 Reprodução de peixes ornamentais • Breeding Aquarium Fishes, book 2 – Dr. Herbert Axelrod - T.F.H. Publications, Inc.

–1971 • Breeding Aquarium Fishes, book 3 – Dr. Herbert Axelrod & Lourdes Burgess -

T.F.H. Publications, Inc. –1973 • Breeding Aquarium Fishes, book 4 – Dr. Herbert Axelrod - T.F.H. Publications, Inc.

–1976 • A Fishkeeper’s Guide to Fish Breeding – Dr. Chris Andrews – Salamander Book

Limited, London – New York – 1986

• A Criação de Peixes Tropicais – Earl Schneider - Editorial Presença, Lisboa – 1989 • Exotic tropical Fishes – Expanded Edition (Looseleaf) – Herbert R. Axelrod; Cliff W.

Emmens; Warren E. Burgess; Neal Pronek; T.F.H. Publications, Inc. – 1996 – Conteúdo: Plantas de aquário, Criação comercial de peixes tropicais, Peixes tropicais (Fichas em ordem alfabética), Manejo do aquário

• Biologia da Reprodução de Peixes Teleósteos: Teoria e Prática – Anna Emília de

M. Vazzoler – Editora da Universidade Estadual de Maringá – 1996 • Criação de Peixes de Aquário – Inês Scheurmann - Editorial Presença, Lisboa –

1997 • Breeding Aquarium fishes – A Complete Introduction – Herbert R. Axelrod – T.F.H.

Publication Inc Saúde • Enfermedades de los Peces Ornamentales – Daniel Carnevia – Editorial Agrovet

S.A., Buenos Aires, Argentina – 1993 • Doenças Infecciosas e Parasitárias de Peixes – Mauricio Laterça Martins – Boletim

Técnico no 3 - 2a edição – Centro de Aqüicultura da UNESP – Jaboticabal – SP – 1998

• Principais Parasitoses e Doenças dos Peixes Cultivados – Fernando Kubitza &

Ludmilla M. M. Kubitza – 3 ed. rev. – Jundiaí - 1999

reproducao de peixes ornamentais (piscicultura)

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