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Mesa-redonda - O impacto do controle biológico aplicado de pragas agrícolas, nos programas MIP: utopia ou realidade?

Dr. Bruno Zachrisson, (IDIAP, Panamá)

Dra. Regiane Bueno, (UNESP, Botucatu, Brasil)

Dr. Dirceu Pratissoli (UFES, Alegre, Brasil)

Dr. José Roberto Postali Parra (ESALQ-USP), Piracicaba,, Brasil)

Actualidad y Perspectiva do Controle Biológico de Insectos Plagas, em América Latina

Dr. Bruno Zachrisson, Instituto de Investigación Agropecuaria de Panamá, IDIAP, Panamá

TÍTULO e SUB TÍTULO do SLIDE

Impacto Ecológico:

• Reducción de la biodiversidad nativa

• Dispersión de la especie

• Desequilibrio en el agroecosistema

Establecimiento de las Plagas:

• Escape de los enemigos naturales

• Capacidad de competir con especies nativas

• Adaptación a los agro-ecosistemas alterados

Halyomorpha halys (Heteroptera: Pentatomidae)

Distribución Geográfica: Halyomorpha halys

(chinche marrón marmoleada) es un insecto

originario de Asia. Actualmente está distribuida

en Asia (China, Japón, ambas Coreas y Taiwán),

en América (Estados Unidos y Canadá), en

Europa (Francia, Alemania, Italia, Liechtenstein

y Suiza) y en Oceanía (Guam y Nueva Zelanda)

(CABI, 2014). Esta plaga ha sido introducida

accidentalmente a distintos países. En Estados

Unidos fue detectada en 2001 y rápidamente

se dispersó del este al oeste de la Unión

Americana.

UF; 2010

Halyomorpha halys (Heteroptera: Pentatomidae) - Daños

Daños

H. halys es altamente polífaga ataca más de 100 especies de plantas

principalmente árboles frutales, maderables, ornamentales y

cultivos agrícolas. Para alimentarse extrae los jugos de la planta,

los adultos generalmente se alimentan de frutos y las ninfas de

hojas, tallos y frutos. El daño más importante es causado

cuando el insecto se alimenta de los frutos o semillas. Aunado a

esto H. Halys es considerado vector del fitoplasma Paulownia

sp, aunque solo ha sido detectado en Asia. La diseminación es

mediante el movimiento de mercancías y en vehículos

automotores.

Aphis glycines (Aphididae)

Huésped : Soja.

Huespedes alternativos: Más de 100,

incluyendo especies del género Rhamus.

Transmisión de virus: Soybean stunt virus,

Bean yellow mosaic virus y Peanut mosaic

virus, entre otros.

INVASIVE PENTATOMOIDEA Bagrada hilaris (Burmeister) C. Scott Bundy, Thomas M. Perring, Darcy A. Reed, John C. Palumbo, Tessa R. Grasswitz, and Walker A. Jones Halyomorpha halys (Stål) George C. Hamilton, Jeong Joon Ahn, Wenjun Bu, Tracy C. Leskey, Anne L. Nielsen, Yong- Lak Park, Wolfgang Rabitsch, and Kim A. Hoelmer Megacopta cribraria (F.) J. E. Eger, W. A. Gardner, J. K. Greene, T. M. Jenkins, P. M. Roberts, and D. R. Suiter Murgantia histrionica (Hahn) J. E. McPherson, C. Scott Bundy, and Thomas P. Kuhar Nezara viridula (L.) Jesus F. Esquivel, Dmitry L. Musolin, Walker A. Jones, Wolfgang Rabitsch, Jeremy K. Greene, Michael D. Toews, Cristiano F. Schwertner, Jocélia Grazia, and Robert M. McPherson Piezodorus guildinii (Westwood) C. Scott Bundy, Jesus F. Esquivel, Antônio R. Panizzi, J. E. Eger, Jeffrey A. Davis, and Walker A. Jones POTENTIALLY INVASIVE PENTATOMOIDEA Oebalus spp. and Arvelius albopunctatus (De Geer) J. E. McPherson and C. Scott Bundy

Regresión linear ajustada (R2 ) de la relación dependiente de la temperature en

función del diferentes biotipos de Telemomus podisi desarrollados en huevos de

Oebalus insularis

Biotipo a (SE) b (SE) T0 K adjR2

Señora -0.10131 (0.019906) 0.007807 (0.000822) 12.98 128.09 0.9469

Naranjal -0.10509 (0.022998) 0.007974 (0.000950) 13.18 125.41 0.9328

Calesa -0.10500 (0.025249) 0.008024 (0.001043) 13.09 124.63 0.9209

J. Hombron -0.10171 (0.020851) 0.007892 (0.000861) 12.89 126.72 0.9431

Chichebre -0.09996 (0.019631) 0.007767 (0.000811) 12.87 128.75 0.9478

General -0.10275 (0.021521) 0.007896 (0.000889) 13.01 126.65 0.9397

Tasa de desarrrollo de biotipos de Telenomus podisi en huevos de Oebalus insularis, a

diferentes temperaturas

• Adaptación a un

rango elevado de

plantas hospedantes

• Capacidad de

dispersion

• Elevado potencial

reproductivo

Número total de huevos y tasa de parasitismo de especies de Pentatomidae

(Heteroptera), recolectadas en el agro-ecosistema arroz (Oryza sativa) en las localidades

de Juan Hombrón, Coclé y Chichebre, Panamá.

Especie / Pentatomidae Número total de

masas

(posturas) de

huevos

Número total de

huevos

recolectados

(%)

Número de

huevos

parasitados

Tasa de

Parasitismo (%)

Oebalus insularis 84 1,512 (43.2%)1 1,298 85.8

Oebalus ornatus 32 480 (13.7%) 192 40.0

Oebalus pugnax 25 425 (12.4%) 94 22.1

Oebalus poecilus 7 98 (2.8%) 18 18.4

Mormidea pictiventris 35 420 (12.0%) 67 15.9

Mormidea ypsilon 12 120 (3.4%) 24 20.0

Euschistus nicaraguensis 19 228 (6.5%) 26 11.4

Proxis punctulatus 9 126 (3.6%) 11 8.7

Nezara viridula 5 90 (2.6%) 39 43.3 1Porcentaje de huevos recolectados, entre la floración y la fase de grano lechoso.

Tasa de parasitismo y especie de parasitoides de huevos de Oebalus insularis, en plantas

hospedantes asociadas al cultivo de arroz, en Panamá.

Especies Familia Tasa de parasitismo

(%)

Tasa de parasitismo /

Telenomus podisi

(%)


Trissolcus basalis

(%)

Cyperus iria Cyperaceae 14.2 e1 89.4 b 10.6 c

Cyperus rotundus Cyperaceae 9.8 f 81.2 c 18.8 b

Echinochloa colona Poaceae 92.6 a 96.4 a 3.6 e

Echinoclhoa crus-pavonis Poaceae 78.3 b 82.4 c 17.6 b

Eleusine indica Poaceae 23.1 d 78.3 d 21.7 a

Ischaemun rugosum Poaceae 21.9 d 82.6 c 17.4 b

Paspalum virgatum Poaceae 38.9 c 86.1 b 13.9 d

1Médias seguidas de la mesma letra, en cada columna no presentan diferencia estadística significativa, por medio de la prueba de Duncan (P<0.05).

“Innovación tecnológica para el desarrollo sostenible del agro y la soberanía alimentaria”

Tabla 4. Tasa de parasitismo y especie de parasitoides de huevos de Oebalus insularis, en plantas

hospedantes asociadas al cultivo de arroz, en Panamá.

Especies Familia Tasa de parasitismo

(%)


Telenomus podisi

(%)


Trissolcus basalis

(%)

Cyperus iria Cyperaceae 14.2 e1 89.4 b 10.6 c

Cyperus rotundus Cyperaceae 9.8 f 81.2 c 18.8 b

Echinochloa colona Poaceae 92.6 a 96.4 a 3.6 e

Echinoclhoa crus-pavonis Poaceae 78.3 b 82.4 c 17.6 b

Eleusine indica Poaceae 23.1 d 78.3 d 21.7 a

Ischaemun rugosum Poaceae 21.9 d 82.6 c 17.4 b

Paspalum virgatum Poaceae 38.9 c 86.1 b 13.9 d

1Médias seguidas de la mesma letra, en cada columna no presentan diferencia estadística significativa, por medio de la prueba de Duncan (P<0.05).


Ninfas de O. insularis

alimentándose con arroz Ninfas de O. insularis

alimentándose con E.

colona

Postura de O. insularis

en E. alba

Evaluación de parámetros biológicos y reproductivos de Oebalus insularis Stal

(Heteroptera: Pentatomidae), en diferentes huéspedes (Oryza sativa, Eclipta

alba, Echinocloa colona).

TÍTULO e SUB TÍTULO do SLIDE

(a) (b)

Ninfa (a) y Adulto (b) de Oebalus insularis alimentándose de

Echinochloa colona, en parcelas de malezas colindantes al cultivo

del arroz.

Control Biológico Clásico de Plagas, en América Central (Antes – 1970)

Andrews et al., 1988

Plaga Enemigo Natural

E. Natural País Año Resultado

Aleurocanthus woglumi

Encarsia opulenta

Parasitoide Panamá, Costa Rica, El Salvador

1931 No establecido

Cosmopolites sordidus

Plaeius javanius Depredador Honduras 1942 No establecido

Ceratitis capitata Pachicrepoides vindemia

Parasitoide Costa Rica, Nicaragua

1955 Resultados no reportados

Diatraea saccharalis

Lixophaga diatraea Cotesia flavipes

Parasitoide Parasitoide

Panamá Panamá

1963 1963- 1978

Se estableció Se estableció (Supresión)

Control Biológico Clásico de Plagas, en América Central (Posterior - 1970)

Andrews et al., 1988

Plaga Enemigo Natural

E. Natural País Año Resultado

Hypothenemus hampei

Prorops nasuta Cephalonomia stephanoderes

Parasitoide El Salvador, Guatemala, Honduras

1974 Resultados no reportados

Planococcus citri Cryptolemus monstrozieri

Depredador Costa Rica 1975 Resultados no reportados

Diatraea saccharalis

Lixophaga diatraea Cotesia flavipes


Panamá Panamá, Honduras, El Salvador Costa Rica

1963 1984 – 1985 1994

Se estableció Se estableció en Panamá; en Honduras y El Salvador no se estableció Se estableció

Control Biológico de Plagas, en América Central (1970 - 2005)

Zachrisson & Barba, 2017 (IOBC-SRNT)

Plaga Enemigo Natural E. Natural País Año

Spodoptera frugiperda

Telenomus remus Parasitoide Honduras, Nicaragua, El salvador

1987

Plutella xylostella Diadegma semiclausum

Paraitoide Honduras, Guatemala, Panamá

1984 1990

Diaphania hyalinata Diaphania Nitidalis

Trichogramma sp. Trichogramma sp.


Panamá Panamá

2004 2004

Control Biológico de Plagas, en América Central (2005-2016)

Zachrisson & Barba, 2017 (IOBC-SRNT)

Plaga Enemigo Natural E. Natural País Año

Steneotarsonemus spinky (Ácaro)

Neoseiulus baraki N. barabensis

Depredador Panamá 2010

Diaphania hyalinata

Diaphania Nitidalis Rupela albinella

Trichogramma sp. Trichogramma sp. Telenomus rowani (Control natural)

Parasitoide Parasitoide Parasitoide

Panamá Panamá Panamá

2004 2004 2012

VIROSIS Y ALTERACIONES FISIOLÓGICAS, TRANSMITIDAS POR Bemisia tabaci (GENN.)

Distribución de Biotipos A y B de Bemisia tabaci, en Cucurbitáceas y Solanáceas, de las provincias de Coclé y

Panamá. 2004

0

10

20

30

40

50

60

70

1 2

Serie1

Serie2

Serie3

Parcelas Infectadas (%)

A

A + B

B

A

A + B

B

Cucurbitáceas Solanáceas

BIOTIPOS

Mediante la investigación e innovación en manejo integrado de plagas (MIP), se manejo el complejo ¨ácaro-bacteria¨, Steneotarsonemus spinki en las zonas arroceras del país, logrando un incremento en el rendimiento de 68qq a 100qq/ha.

MANEJO INTEGRADO DE

Steneotarsonemus spinki

Distribución geográfica de la plaga

Steneotarsonemus spinki

• Daños reportados en: Bocas del Toro, Coclé, Panamá

(Chepo), Los Santos (Tonosí) y Chiriquí (Chiriquí)

• Disminución de los rendimientos 40-60%

País Año

EU (Louisiana)

China

Taiwán

Asia Tropical

Cuba

Haití y Republica

Dominicana

Panamá

1967

1970

1976

1985

1997

1998

2003

Reporte de Brachyplatys vahlii (Plataspidae),

en Panamá

BioInvasions Records (2016) Volume 5 in press © 2016 The Author(s). Journal compilation © 2016 REABIC

Open Access

Brachyplatys vahlii (Fabricius, 1787), an introduced

bug from Asia: first report

in the Western Hemisphere (Hemiptera: Plataspidae:

Brachyplatidinae)

Annette Aiello1*, Kristin Saltonstall1 and Victor Young2

1Smithsonian Tropical Research Institute, Apartado 0843-03092 Balboa,

Ancón, Panamá, Rep. de Panamá

2PO Box 0843-01466, Balboa, Ancón, Panamá, Rep. de Panamá

E-mail: [email protected] (AA), [email protected] (KS), victor-

[email protected] (VY)

*Corresponding author

Received: 22 August 2015 / Accepted: 22 October 2015 / Published online:

20 November 2015

Abstract

Brachyplatys vahlii (Fabricius, 1787) (Hemiptera: Plataspidae) was

first detected in Panama in 2012. It represents the second

introduction of the Plataspidae into the New World, its first report

from the Neotropics, and the first introduction of the genus

Brachyplatys into the New World. The bug was identified using

morphological characters and confirmed using molecular

techniques. This bug poses a potentially serious threat to several

important crops in Panama, including the popular Cajanus cajan,

known locally as guandú, and peach palm/pixbae palm (Bactris

gasipaes), widely cultivated throughout the Neotropics.

Key words: Bactris, Cajanus, Heteroptera, Panama, Plataspididae

A) Adultos de Brachyplatys vahlii,

alimentándose de Cajanus cajan

B. Vista dorso-lateral de adultos B.

vahlii.

C. Vista ventral de adultos de B.

valhii.

D. Masas de huevos de B. vahlii.

Paratelenomus saccharalis (Dr. Jones Walker – USDA – Stoneville – MS )


Fig. 1. Muestreo del complejo de especies de Cicadellidae,

asociadas a la vegetación circundante a las palmas en estudio,

utilizando la red entomológica

• La identificación taxonómica de las especies de Cicadellidae recolectadas en el

área circundante a las palmas muestreadas, se realizó con apoyo de las claves

específicas (Ball, 1927; Young, 1952; 1968; Young y Davidson, 1959; Mead,

1965; Kramer, 1971; Linnavuori y DeLong, 1979; Cwikla, 1988; Marucci et al.,

2002; Dietrich, 2005; Lu et al., 2013). Las estructuras morfológicas características

de las especies de Cicadellidae, fueron observadas posterior al proceso de

clarificación de los ejemplares utilizando Hidróxido de Potasio al 10% (KOH

10%).

Muestreo del complejo de especies de Cicadellidae, asociadas

a la vegetación circundante a las palmas en estudio, utilizando

la red entomológica

0

50

100

150

200

250

300

350

400

450

500

MB-Sanas MB-SCAF G-Sanas G-SCAF RI-Sanas RI-SCAF

Nú

mer

o t

ota

l d

e in

div

idu

os

Agallinae Cicadellinae Deltocephalinae Gyponidae Typhlocybinae

Número total de individuos agrupados por las sub-familias de Cicadellidae, asociadas a la

vegetación circundante de palmas de coco sanas y las que presentan síntomas con

características aparentes de fitoplasma (SCAF), en las localidades de Miguel de la Borda

(MB), Gobea (G) y Río Indio (RI), provincia de Colón, Panamá.


Análisis de correspondencia simple al 95% de confianza, aplicado a las sub- familias de

Cicadellidae, presentes en la vegetación circundante a las plantas sanas y con

síntomas con características aparentes de fitoplasma (SCAF), en las localidades

muestreadas en la provincia de Colón, Panamá.

Palmas Sanas Palmas SCAF

Agallinae Cicadellinae Deltocephalinae Gyponinae Typhlocybinae

-0,2

-0,1

0

0,1

-0,2 -0,1 0 0,1 0,2 0,3

F2 (

0.0

0 %

)

F1 (100.00 %)

Symmetric plot (axes F1 and F2: 100.00 %)

Columns Rows

0

100

200

300

400

500

600

Nú

mer

o d

e es

pec

ies

Palmas sanas Palmas con SCAF

Número total de individuos distribuidos por especies de Cicadellidae, asociadas a la

vegetación circundante a las palmas de coco sanas y con síntomas con características

aparentes de fitoplasma (SCAF), provincia de Colón, Panamá.


Fig. 8. Redes tróficas de conectancia de Agallia panamensis en vegetación circundante a palmas sanas y con

sintomatología característica de fitoplasma. MB-Miguel de la Borda, G-Gobea, RI-Río Indio ---- conectancia

de Palmas sanas, ____ conectancia de Palmas enfermas. (Los valores representan la proporción de la relación

del número de la especie colectada en el complejo de malezas entre el número total de las especies).

0.73

Agallia Panamensis

(Cicadellidae)

P17 Sana y P35 SCAF (RI)

Sphagneticola trilobata (Asteraceae)

Hydrocotyle bonariensis (Araliaceae)

Panicum sp. (Poaceae)

0.28

Cochinilla rosada Maconellicoccus hirsutus (Hemiptera:

Pseudococcidae)

• 1994 Caribe 1997 (Colombia, Guyana Francesa y Venezuela) 2013 - Brasil

• Ataca: Más de 200 especies de plantas: cacao,

algodón, café, cítricos, camote, higo, varios legumbres, hibisco, pepino, papaya, uva y plantas ornamentales.

• Durante la alimentación, al alimentarse de las plantas, los insectos inyectan una toxina que atrofia el crecimiento de las hojas, inflorescencias y de los frutos jóvenes.

Anagyrus kamali

Cryptolaemus montrouzieri

Cryptolaemus montrouzieri

Agentes de Control Biológico de Maconellicoccus hirsutus (Hemiptera: Pseudococcidae)

Daño de Phyllocnitis citrella (Minador de los Cítricos)

Ageniaspis citricola (Hymenop.: Encyrtidae)

Control biológico de Phyllocnistis citrella

Psilido asiáticos de los cítricos Diaphorina citri (Hemiptera: Psyllidae)

Adulto

Ninfa

• Enero 2003 Caribe –Actualmente Brasil e Florida.

• Transmite la enfermedad “Citrus greening”

• Áreas tropicales y subtropicales : Asia, Arabia Saudita, Honduras, Guadalupe, Brasil y Florida.

• Alta tasa de reproducción (las hembras pueden depositar hasta 800 huevos).

Tamarixia radiata (Hymenoptera: Eulophidae), parasitoide de Diaphorina citri

Helicoverpa armigera (Lepidoptera: Noctuidae)

/ Brasil-Panamá

Huésped: Adaptada a

los principales

rubros agrícola de

Brasil.

Distribución

geográfica: Europa,

Asia, Australia y

Oceanía.

EMBRAPA; 2014

Spodoptera frugiperda – Daños en el continente africano

Drosphila suzukii (Diptera: Drosophilidae)

•Comportamiento y la bioecología, del insecto-plaga.

• La correcta identificación, tanto del insecto-plaga como del enemigo natural (falta de taxonomistas).

•Infraestructura adecuada (laboratorios y equipos), necesarios para la investigación básica y aplicada, para programas de control biológico.

• El desarrollo de dietas artificiales, para la multiplicación de insectos-plagas, como plataforma de los porgramas de control biológico.

•El cambio de mentalidad del productor, dirigido al uso uni lateral del control químico. (Implementación de proyectos de plaguicidas selectivos a los enemigos naturales).

Desafíos del Control Biológico, en América

Latina

• La falta de apoyo en la inversión de ciencia y tecnología, dirigida a líneas de investigación innovadoras, como el control biológico.

• La falta de divulgación de resultados en revistas especializadas, debidamente indexadas, en la región.

• Formación de recurso humano especializado y permanente, que fortalezcan los programas de control biológico.

• La vinculación con centros de excelencia, líderes en control biológico, formación de grupos de trabajo con instituciones internacionales (Colaboración Internacional).

• La aparición y adaptación de plagas invasoras, producto de alteración de los

ecosistemas agrícolas y cambio climático, analizado integralmente

(plasticidad plantas hospedantes).

•Fortaleza de las instituciones de docencia superior e investigación y de

programas de control biológico.

• Replantear las estrategias de manejo de plagas, frente a los desafíos

actuales.

Sustentabilidad de los Ecosistemas

Agrícolas

• Solidez de Conocimiento

• Flujo de información (Sector Público – Privado)

• Credibilidad en los técnicos y productores

• Innovación Tecnológica

• Cambio de mentalidad del productor

La integración del Control

Biológico de Plagas em

los programas MIP, es una

Utopía o realidad?

MIP

CONTROL BIOLÓGICO

Feromonas

Par

asit

oid

es

Dep

red

ado

res

Pat

óg

eno

s

Parra, 2000

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