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GUIA DE COLETA DE AMOSTRAS

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01

Diretrizes para coleta da amostra

As análises laboratoriais e seus resultados dependem da coleta adequada da amostra, como também, do armazenamento e transporte apropriados até o laboratório. A equipe de Patologistas Clínicos Veterinários do LabsaN está sempre disponível para esclarecer qualquer dúvida em relação as análises laboratoriais, assim como, para a sua facilidade, o LabsaN também disponibiliza em nosso site www.labsan.com.br os detalhes de coleta, interferentes e estabilidade especí�cas para cada teste.

Jejum alimentar

Para a grande maioria das amostras recomenda-se jejum alimentar de 8 a 12 horas e água à vontade, ou a critério do médico veterinário solicitante.

Coleta de amostras de pacientes em tratamento

Para exames de PCR e culturas, as amostras devem ser coletadas antes do tratamento antibiótico, antifúngico e antiviral dirigido contra o organismo de interesse, ou coletadas pelo menos 2 semanas após a interrupção destes tratamentos. Amostras recebidas no prazo de 12 horas para culturas e 24-48 horas para PCR após a colheita são preferidos.

Identi�cação das amostras e requisições

A adequada identi�cação das amostras (nome paciente, proprietário e clínica) e completo preenchimento da requisição confere segurança no transporte e �dedignidade dos resultados.

Refrigeração

Todas as amostras devem ser armazenadas e transportadas refrigeradas, salvo indicação contrária. Veri�car nas observações individuais dos testes quando o mesmo deve ser encaminhado em temperatura ambiente ou congelado.

A requisição deve ser encaminhada juntamente com a amostra e está disponível na forma impressa ou online em nosso site.

Requisições devem ser encaminhadas em saquinhos plásticos para evitar que entrem em contato direto com o gelo.

Não encostar diretamente os tubos de coleta nos gelos de transporte, pois a exposição direta ao extremo calor ou frio podem promover dano e lise celular.

Proteger as lâminas, esfregaços sanguíneos ou citológicos da condensação e contato direto com o gelo de transporte. Preferencialmente encaminhar as lâminas em porta-lâminas.

HemogramaContagem de plaquetasContagem de reticulócitosPesquisa de HemoparasitasPesquisa de Micro�láriasFluidos cavitários para análises

Tubo com tampa roxa (E.D.T.A)

Respeitar a proporção de anticoagulante do frasco é importante para um resultado acurado. Após inserir a amostra no frasco homogeneizar por inversão por 8-10 vezes. Manter em refrigeração por até 24 horas.*

Plasma em EDTA não pode ser utilizado para muitos bioquímicos. O sangue de algumas aves (avestruzes, emas, mutuns) e de alguns répteis (iguanas, jabutis) sofre hemólise intensa em contato com EDTA, nestes casos usar heparina ou citrato.

* Quando utilizada seringa, abrir a tampa do tubo, retirar a agulha da seringa e transferir o sangue para o tubo deixando-o escorrer pela parede do frasco. Garrote prolongado e repetidas tentativas de coleta promovem agregação plaquetária e hemólise.

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DE C

OLET

A DE A

MOS

TRAS

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Dosagens bioquímicasDosagens hormonaisFluidos cavitários para análiseMonitoramento terapêutico de drogasTestes sorológicosPesquisa de células L.E.

Dosagens bioquímicasDosagens hormonaisTestes sorológicos

Testes de coagulação

Algumas análises bioquímicasTestes toxicológicosHemogramas para algumas aves e répteis

GlicoseLactato

Tubo com tampa vermelha (seco)

Tubo com tampa amarela (gel separador de coágulo)

Tubo tampa azul(Citrato de Sódio)

Tubo tampa verde (Heparina)

Tubo tampa cinza (Fluoreto de Sódio)

Inserir a amostra no frasco, deixar de 5 a 10 minutos em temperatura ambiente e logo após manter em refrigeração por até 24 horas.*

Inserir a amostra no tubo e inverter 5 vezes, deixar de 5 a 10 minutos em temperatura ambiente e logo após manter em refrigeração por até 24 horas.*

Respeitar a proporção de anticoagulante do frasco é importante para um resultado acurado. Após inserir a amostra no frasco homogeneizar por inversão por 8-10 vezes. *

Após inserir a amostra no frasco tampar e homogeneizar por inversão por 8-10 vezes. Manter em refrigeração por até 24 horas.

Após inserir a amostra no frasco tampar e homogeneizar por inversão por 8-10 vezes. Manter em refrigeração por até 24 horas.

Para algumas análises é recomendada centrifugação e separação do soro do coágulo em um curto período de tempo (consulte testes individuais). Ativador de coágulo pode interferir nos exames citológicos.

O gel interfere nos testes de monitoramento de certas drogas terapêuticas (fenobarbital, digoxina) e progesterona, por exemplo.

A amostra deve ser centrifugada e o plasma separado do coágulo imediatamente (máximo 20 minutos). Encaminhar ao laboratório sob refrigeração imediatamente. Garrote prolongado e repetidas tentativas de coleta interferem nos resultados.

Algumas análises bioquímicas como a amônia, por exemplo, precisam ser centrifugadas em no máximo 20 minutos após a coleta para obtenção do plasma e transportadas sob refrigeração. Veri�que as observações individuais dos testes.

Nas amostras tratadas com antiglicolítico a concentração de glicose permanece estável por 8 horas a 25 °C e por 48 horas entre 2 a 8 °C.

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Parasitológico de fezesUrináliseFluidos cavitários para análiseAnálise de cálculo urinárioCultura para fungos dermató�tos

Cultura para bactérias aeróbicas

Frasco Coletor

Swab Estéril em Meio de Stuart

Volume necessário das amostras:Fezes: 50 gramas, evitar contaminação ambientalUrina: 6-10 mL coletada preferencialmente por cistocentese e evitar exposição à luzFluidos cavitários: 2-3 mL. Fracionar parte da amostra também em frasco com EDTACálculos urinários: lavar os cálculos com solução �siológica, deixar secar ao ar e encaminhar todos os que foram coletadosPêlos para cultura de fungos dermató�tos: limpar a pêle e pêlos com álcool sem humedecer a pelagem e coletar os pêlos da borda da lesão com raíz.

Coletar a amostra com swab estéril e inserir o swab no gel. Manter o tubo em temperatura ambiente após a coleta e encaminhar preferencialmente no prazo de 12 horas.

Manter as amostras de fezes, urina e �uidos cavitários sob refrigeração. Cálculos urinários e pêlos manter em temperatura ambiente. Tempo de envio das amostras ao laboratório:Fezes: 12-24 horasUrina: 4 horasFluidos cavitários: 2 horas Cálculos urinários e pêlos �cam estáveis por maior tempo

Procedimentos para diferentes sítios:Cultura de lesões profundas fechadas: realizar rigorosa antissepsia da região externa e puncionar com seringa e agulha. Em casos de pouco volume, despejar o material no swab levemente umidecido com solução salina estéril. Fístulas e abscessos abertos: realizar tricotomia e rigorosa antissepsia da região externa e coletar a secreção com swab ou seringa.Ouvidos: realizar rigorosa antissepsia da região externa do pavilhão auricular e coletar diretamente do conducto com swab.Vagina/Útero: realizar rigorosa antissepsia da região vulvar e colher com swab.

* Inserir o swab no meio de stwart.

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Citologia- Bacterioscopia

Histopatológico

Fluidos cavitários para análises citológicas e/ou bacteriológicasUrina para urinálise

Análise de líquorTransporte de soro e/ou plasma para análises

Lâminas e porta-lâminas

Frasco coletor com Formol a 10%

Seringas

Tubo Eppendorf

Após a coleta desacople a agulha da seringa;Preencha a seringa de ar e acople novamente a agulha;Com o orifício do bisel da agulha voltado para lâmina de microscopia, empurre o êmbolo depositando o conteúdo contido na agulha contra esta. Promova a extensão estendendo suavemente uma lamina na outra.

Inserir fragmento de tecido em frasco coletor com formol a 10% e manter em temperatura ambiente.

O transporte de material biológico em seringas (�uidos cavitários e urina) pode ser realizado, porém não é a forma de escolha pelo risco no transporte de acidente perfurocortante e extravasamento do material. Manter sob refrigeração e encaminhar �uidos em até 2 horas e urina em até 4 horas evitando exposição a luz.

Armazenar 0,5 mL de líquor em um frasco de eppendorf e 0,5 mL em frasco com EDTA quando na presença de contaminação por sangue. Armazenar sob refrigeração e encaminhar imediata-mente ao laboratório.

Secar as lâminas ao ar e encaminhá-las em porta lâminas. Manter em temperatura ambiente.Nunca refrigeradas e em local úmido.

A amostra deve estar completamente submersa no formol a 10% para evitar degradação tecidual.

Recomenda-se transferir o material coletado para um frasco coletor ou frasco estéril com tampa para evitar extravasamento. Para �uidos cavitários recomenda-se envio de parte da amostra também em EDTA.

O envio de líquor apenas em frasco com EDTA pode ser impeditivo para a realização de algumas análises bioquímicas. Este material necessita de rápida análise para preservação da morfologia celular.

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Dra. Cynthia Cristina Venancio da SilvaPatologista Clínica VeterináriaDiretora Técnicae-mail: cynthiavenancio@labsan.com.brFone: +55 (41) 9177-0282

EM CASO DE DÚVIDAS EM RELAÇÃO À COLETA, ARMAZENAMENTO E ENVIO DAS AMOSTRAS, ENTRE EM CONTATO COM A NOSSA EQUIPE DE PATOLOGISTAS CLÍNICOS VETERINÁRIOS. ESTAMOS A SUA DISPOSIÇÃO!