anÁlise de parasitismo por haemonchus … · haemonchus contortus, que pertence ao filo...
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Mostra de Iniciação Científica e Mostra de Criação e Inovação – ISSN: 2316-1566 – Getúlio Vargas – RS – Brasil 1
INSTITUTO DE DESENVOLVIMENTO
EDUCACIONAL DO ALTO URUGUAI
FACULDADES IDEAU
ANÁLISE DE PARASITISMO POR HAEMONCHUS CONTORTUS EM
OVINOS NA CIDADE DE ERECHIM- RS
MENEGATTI, Ana Luiza1
MONTANO, Bruna1
PIGATTO, Dara1
TONIAZZO, Débora1
MIORANDO, Lucas da Rosa1
RANGHETTI, Álvaro Luís2
FACCIN, Ângela2
ROSÉS, Thiago2
OLIVEIRA, Franciele2
RITTER, Felipe2
1 Acadêmico do curso de Medicina Veterinária, Nível 4 2015/2- Faculdade IDEAU–Getúlio Vargas/RS 2 Docente do curso de Medicina Veterinária, Nível 4 2015/2- Faculdade IDEAU–Getúlio Vargas/RS
RESUMO: A Hemoncose é uma enfermidade caracterizada pela anemia e uma forma simples de medir o grau
da mucosa ocular pelo uso da tabela de FAMACHA (faffa malan chart). O parasitismo gastrointestinal é o
responsável pelas grandes perdas em criações de ovinos. O Haemonchus contortus é um parasita gastrointestinal
encontrado principalmente no abomaso dos ovinos e tem ciclo evolutivo direto. O objetivo do presente trabalho é
realizar testes em ovinos para saber se os mesmos estão sendo parasitados por H. contortus.. Para se evitar o
parasita deve ser realizado vermifugação periodicamente e avaliando os animais pelo método de FAMACHA.
Foram realizadas dez analises e empregado o Método Laboratorial OPG (ovos por gramas de fezes) e Método de
Sedimentação Natural que consistem nos exames caracterizados de maior precisão na obtenção de resultados
com maior média de variação significativa. Constatou-se que quatro apresentaram mucosas de nível dois, três
apresentaram mucosas de nível três, uma apresentou mucosa de nível quatro e duas de nível cinco; sendo que
dessas dez analises apenas três apresentaram o parasita. Verificou-se a presença do parasita H. contortus em três
ovinos analisados, junto com o exame de FAMACHA, OPG e Sedimentação Natural.
PALAVRAS-CHAVE: Ovinos, Hemoncose ovina, OPG, FAMACHA.
ABSTRACT: The Hemoncose is a disease characterized by anemia and a simple way to measure the degree of
ocular mucosa when using FAMACHA table (Faffa malan chart). Gastrointestinal parasitism is responsible for
heavy losses in sheep creations. The Haemonchus contortus is a gastrointestinal parasite mostly found in the
abomasum of sheep and has a direct life cycle. The objective of this study is to conduct tests on sheep to know if
they are being infected by H. contortus .. To prevent the parasite deworming should be performed periodically
and evaluating the animals at FAMACHA method. Ten analyzes were performed and used the Method
Laboratory EPG (eggs per gram of feces) and Natural sedimentation method consisting in tests characterized
more accurate in getting results with higher mean significant variation. It was found that four had levels of
mucous two, three presented three level of mucous, he presented an amount of mucosa four two level five; of
which only three of the ten analysis showed the parasite. It is the presence of the parasite H. contortus in sheep
three analyzed, along with the examination FAMACHA, OPG and natural sedimentation.
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KEYWORS: Sheep, Sheep Hemoncose, OPG, FAMACHA.
1 INTRODUÇÃO
Os ovinos apresentam um problema muito comum em épocas de verão, a verminose
gastrintestinal. Mesmo com a existência de inúmeros tratados técnicos, o conhecimento
disponível é pouco aplicado na prática para o controle eficaz dos parasitas (SOTOMAIOR,
MORAES, SOUZA, MILCZEWSKI, PASQUALIN, 2009).
A verminose gastrintestinal ou a hemoncose é causada por um parasita chamado de
Haemonchus contortus, que pertence ao filo Nematelminto, classe Nematoda, ordem
Strongylida, da superfamília Trichostrongyloidea, família Trichostrongylidae, e do gênero
Haemonchus (MELO, 2005).
O H. contortus se alimenta de sangue e, em média, podem retirar um quinto do volume
total de eritrócitos da corrente sanguínea. O local de parasitismo é o abomaso do animal,
podendo ser facilmente observado, pois mede de 1 a 2,5 cm de comprimento. A doença causa
nos animais anemia, edemas submandibulares, emagrecimentos e pode levar a morte. Os
efeitos patogênicos da infecção por H. contortus resultam na inabilidade do hospedeiro em
compensar a perda sanguínea. Se a quantidade de sangue perdida é pequena, com completa
restituição pelo hospedeiro, não resulta em enfermidade clínica. Entretanto, se a taxa de perda
de sangue, excede a capacidade hematopoiética, seja porque o desafio foi excessivo, ou a
resposta é prejudicada por uma má nutrição ou estresse, uma anemia leva rapidamente a morte
(BOWMAN, 2010).
Segundo Bowman (2010), endoparasitas vivem dentro do corpo dos hospedeiros,
causando prejuízos e infecções. Nenhum outro problema é de maior gravidade na criação de
ovinos do que a verminose. Em nosso país, onde a criação de ovinos ainda não mereceu a
devida atenção por parte dos criadores, as doenças de ordem parasitária ocupam o primeiro
lugar entre as causas de maior prevalência no baixo desempenho produtivo dos nossos
rebanhos (VIEIRA, 2007).
Uma forma simples de medir o grau de anemia devido à hemoncose em ovinos,
juntamente com a indicação de qual animal necessita de tratamento, é o uso da tabela de
FAMACHA (Faffa Malan Chart) que segundo Costa, Simõesm, Riet-Correa (2011), é a
técnica mais conhecida de tratamento seletivo que auxilia na classificação do estado clínico
relacionado com a carga parasitária dos animais de um rebanho. Além disso, permite a
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identificação de animais passíveis e resistentes. Na avaliação desse método é definida a
coloração da conjuntiva frente a um cartão composto de cinco cores, tendo como função o
grau que o animal apresentará de anemia. E o teste mais aplicado é o que determina a
quantidade de ovos por grama de fezes (OPG), realizado antes e/ou após o tratamento
(BOWMAN, 2010).
Os animais incapazes de enfrentar um desafio parasitário serão alvos de atenção
especial, devendo ser descartados do rebanho, quando identificados ou tratados repetidas
vezes. Existe um grande número de medicamentos destinados ao combate dessa verminose,
sendo alguns medicamentos na forma líquida, outros, em pastilhas, e ainda, em pó. Quando
for preparada a fórmula do vermífugo a ser utilizado, é necessário que haja a máxima atenção
na pesagem das substâncias empregadas, assim como na aplicação da dose para cada animal,
pois em casos de excesso de medicamentos o animal poderá ir a óbito e se for fornecido
dosagem menor do que a necessária, não irá fazer efeito (VIEIRA, 2007).
Segundo Molento, Tasca, Gallo, Ferreira, Bononir, Stecca (2003), o parasitismo
gastrointestinal é o responsável pelas grandes perdas em criações de ovinos. O tempo úmido e
quente favorece o desenvolvimento dos vermes em certos períodos do seu ciclo evolutivo. Os
períodos de seca prolongada reduzem os efeitos da verminose, pela destruição natural dos
ovos e larvas, que deixam de ter condições para o seu desenvolvimento, principalmente
àqueles que necessitam certo grau de umidade. Outros vermes, no entanto, podem suportar a
ação do sol e as mais adversas condições de tempo. Além disso, o estado de nutrição dos
animais tem notável influência na capacidade de resistência à verminose (VIEIRA, 2007).
O Sintoma que mais chama a atenção é uma inflamação de aspecto mole como uma
bolsa de água sob a pele, localizada embaixo da mandíbula, o qual chamamos de edema
submandibular. Geralmente, não existe diarreia, pelo contrário, as fezes apresentam-se um
pouco mais secas que o normal e, o apetite fica inalterado até o último momento (BOWMAN,
2010; CLIMENI, , 2008). Na fase aguda tem-se uma anemia moderada, gastrenterite catarral,
desidratação, retardo de desenvolvimento, diarreia líquida ou pastosa e pelos arrepiados e sem
brilho, podendo levar o animal subitamente a morte como consequência de gastrite
hemorrágica grave. Na fase crônica, é o período mais avançado dos sintomas, observa-se
debilidade orgânica geral, edema submandibular, diminuição significativa na produção de
leite e carne, emagrecimento, anemia acentuada e morte (CLIMENI, MONTEIRO, CICOTI,
2008; MELO,2005).
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O objetivo do presente trabalho é realizar testes em ovinos para saber se os mesmos
estão sendo parasitados por H. contortus.
2 MATERIAL E MÉTODOS
A parte laboratorial do trabalho foi desenvolvida no laboratório de bioquímica do
Instituto de Desenvolvimento Educacional do Alto Uruguai na cidade de Getúlio Vargas-RS,
as coletas de fezes e método de FAMACHA foram realizadas durante três dias, aonde foram
escolhidos dez animais de três propriedades, todas da cidade de Erechim, entre eles sete
fêmeas e três machos, das raças Dorper e Texel. Nas propriedades realizou-se a coleta das
fezes diretamente da ampola retal dos animais (figura 1 ), após a coleta foram colocados em
recipientes específicos, os quais foram lacrados para não ocorrer contaminação com o
ambiente.
Figura 1: Coleta das fezes diretamente da ampola retal de um ovino, a campo-Foto:
Menegatti, A.L., 2015. Erechim-RS
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Foram colocados os recipientes em pequenas caixas de isopor com gelo para ficarem
conservados até o momento de ser feito as análises, com a finalidade de encontrar ovos do
parasita H. contortus. Após as coletas das fezes foi efetuado o método FAMACHA (figura 2).
Figura 2: Análise da mucosa ocular através do método de FAMACHA – Foto: Menegatti,
A.L., 2015. Erechim-RS.
Na avaliação desse método, foi definida a coloração da conjuntiva de todas as ovelhas
amostradas junto a um cartão composto de cinco cores que foi preestabelecido com auxílio de
computação gráfica. Nesses cinco tipos de coloração variam de um (coloração vermelho
brilhante) até cinco (coloração pálida, quase branca), (figura 3).
Figura 3: Cartão de FAMACHA para análise da mucosa ocular – Foto: VIEIRA, L.S., 2007.
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No laboratório foram realizadas as análises das fezes através dos métodos de
contagem de ovos por gramas de fezes (OPG) e Sedimentação Espontânea. No método de
Gordon e Whitlock (OPG), primeiramente foram pesadas 2 g de fezes ovinas, colocadas em
um copo de vidro, adicionou-se 58 ml de solução saturada para homogeneizar a solução fecal
para poder ser passada por um tamís. Foi retirada uma alíquota da solução e preenchida nos
dois lados da câmara McMaster, aguardou-se 2 minutos para ser examinado no microscópio
óptico (figura 4), havendo ovos se faz a contagem nos dois lados e multiplica-se por 100,
aonde o resultado se dá por ovos por gramas de fezes (tabela 1). Através desse método é
possível avaliar a sanidade do rebanho (FERNANDES, 2010).
Figura 4: Preparação das amostras e observação em microscópios ópticos - Foto: Menegatti,
A. L., 2015. Laboratório de bioquímica da Faculdades IDEAU, Getúlio Vargas, RS.
Tabela 1: Grau de infecção para interpretação do OPG sobre o helminto H. contortus.
Helminto Leve Moderada Pesada
H. contortus 100-2.500 2.500-8.000 > 8.000
Fonte: Ueno & Gonçalves.
O segundo método que é de Sedimentação Natural que tem como objetivo realizar um
processo de lavagem das fezes. Primeiramente foram colocadas 5 a 10 g de fezes em um
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Becker (figura 5), adicionando 60 ml de água para homogeneizar com um bastão e mais 300
ml de água. Logo após foi filtrado à solução fecal para um copo de sedimentação, através de
um tamís e aguardou-se 10 a 20 minutos (figura 6). Adicionou-se água fresca até a boca do
copo de sedimentação (figura 7), e esperou-se por mais 20 minutos, foi repetido este processo
até clarificar a suspensão, logo após foi decantado o líquido, mantendo o sedimento no fundo
(figura 8).
Figura 5 e 6: 5 a 10 g de fezes em um Becker, logo após fazer a homogeneização- Foto:
Menegatti, A. L., 2015. Laboratório de bioquímica da Faculdades IDEAU, Getúlio Vargas,
RS.
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Figura 7 e 8: Água fresca até a superfície do copo de sedimentação e após retirar o líquido
mantendo o sedimento no fundo - Foto: Menegatti, A. L., 2015. Laboratório de bioquímica da
Faculdades IDEAU, Getúlio Vargas, RS.
Foram retirados os sedimentos com pipeta e colocados em lâminas cobrindo com
lamínulas e observados no microscópio óptico (figura 9).
Figura 9: Observação no microscópio óptico – Foto: Menegatti, A. L., 2015. Laboratório de
bioquímica da Faculdades IDEAU, Getúlio Vargas, RS.
Apresentar um referencial teórico, relacionado com a intervenção feita na organização
em questão. Este referencial serve para enquadrar o artigo do ponto de vista teórico e
propiciar comparações com a teoria existente.
3 RESULTADOS
Dentre as propriedades analisadas, em uma delas foi possível notar a falta de controle
de verminose e a não efetuação periódica de testes de FAMACHA. As demais propriedades
realizaram o controle contra os helmintos. Conforme Climeni, Monteiro, Cicoti, (2008) a
correta vermifugação deve ser efetuada de 15 em 15 dias em regiões semiáridas e de 10 em 10
dias em regiões secas. Nessas duas propriedades os proprietários praticam as vermifugações
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estratégicas junto com uma vermifugação a cada 25 a 40 dias. Os resultados encontrados
referentes às análises do método FAMACHA são apresentadas na tabela 2.
Tabela 2: Valores das análises coletadas através do método FAMACHA em ovinos a campo
na cidade de Erechim-RS
Ovelha: Grau
FAMACHA:
Apresentou
endoparasita:
Método
Utilizado:
Resultado:
Ovelha 1 2 Não OPG Não
Ovelha 2 2 Não OPG Não
Ovelha 3 3 Não OPG Não
Ovelha 4 2 Não Sedimentação
Espontânea
Não
Ovelha 5 3 Não Sedimentação
Espontânea
Não
Ovelha 6 3 Não Sedimentação
Espontânea
Não
Ovelha 7 2 Não Sedimentação
Espontânea
Não
Ovelha 8 5 Sim OPG 7.400-
Moderado
Ovelha 9 5 Sim OPG 6.900-
Moderado
Ovelha 10 4 Sim OPG 3.500-
Moderada
FAMACHA: Faffa Malan Chart.
OPG: Ovos por grama de fezes.
Nas análises realizadas, foram identificadas três ovelhas que possuíam ovos do
parasita H. contortus. Todas as ovelhas, pertencentes à propriedade 3. (figura 10)
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Figura 10: Observação da lâmina no microscópio óptico - Foto: Menegatti, A. L, 2015.
Laboratório de bioquímica da Faculdades IDEAU, Getúlio Vargas, RS.
As propriedades nas quais foram coletadas as amostras obtinham cobertura vegetal
nem muito baixa nem muito alta e apresentavam uma boa drenagem. A propriedade 1
apresentava como base de sua alimentação, feno, pasto e ração. Segundo Chagas, Oliveira,
Fernandes, Machador, Esteves, Sales, Junior, (2007), a rotação e descanso de áreas de
pastagens é extremamente recomendável nos sistemas de produção de ovinos, pois ela reduz o
número de animais contaminados por larva viáveis e supostamente a diminuição de infecção.
Em duas propriedades não havia o método de rotação, portando o risco de contaminação por
H. contortus é muito grande, não tendo muito controle do local em que os animais situam. Na
outra propriedade é feito um controle, em que o proprietário mantém um bom tamanho da
pastagem para evitar a contaminação dos animas pelo parasita, também realizando o sistema
de rotação de piquetes.
A mucosa ocular de todos os animais deve ser observada periodicamente para
diagnosticar a necessidade ou não de sua vermifugação. Com base no exame, deverão ser
vermifugados apenas os animais que apresentam anemia clínica por verminose (graus
FAMACHA 4 e 5), ficando sem receber medicação aqueles que não mostram sintomas
clínicos, isto é, os que forem classificados nos graus 1 e 2, o grau 3, terá que ser avaliado a
necessidade, observando os exames anteriores (VIEIRA, 2007).
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De acordo com a pesquisa desenvolvida por Chagas, Oliveira, Fernandes, Machador,
Esteves, Sales, Junior, (2007), em São Carlos- SP, os animais foram criados em piquetes de
capim Aruana e suplementados com uma ração que teve 18% de proteína bruta. Eles também
realizaram o método OPG tendo bons resultados como valores iguais ou superiores a 4000 e
que também receberam medicamentos à base de albendazol por via oral.
Conforme Almeida, Brum, Lemos, Leal, Borges, (2013), realizada no período de
1996-2010, foram feitos 8.333 exames histopatológicos em diversas espécies de animais,
dentre eles 331 laudos de espécie ovina, na região centro-oeste. Foram encontrados
numerosos exemplares de H. contortus visualizados na mucosa do abomaso confirmaram o
diagnóstico em 24 dos 36 casos. A contagem de ovos (OPG) foi realizada em cinco casos,
apresentando valores entre 5.500 e 15.200. Correlacionando com a pesquisa desse devido
artigo, o pesquisador Almeida apresentou resultados maiores, o que ocasionou grande
prejuízo para o produtor. Os surtos de hemoncose apresentaram uma sazonalidade marcante
no período da primavera e verão, coincidindo com os índices pluviométricos.
Outro surto de hemoncose, relatado por Junior et al, ocorreu na região central de
Rondônia que foram provocados possivelmente por resistência aos anti-helmínticos com
princípio ativo levamisol e ivermectina. As propriedades que foram analisadas utilizam os
anti-helmínticos em períodos de 21 dias sem realizar manejo rotativo e nem troca de princípio
ativo. A mortalidade dos ovinos foi grande no mês de abril. Neste estudo os autores
concluíram uma média de infestação menor, de 4940 ovos por gramas de fezes, comparando
com as análises realizadas, que se obteve valores maiores, pois o tempo que os proprietários
faziam a vermifugação era maior.
A utilização de anti-helmínticos leva ao desenvolvimento e seleção de cepas
resistentes de H. contortus as formulações comerciais existentes no mercado, aumentando a
incidência da doença. Sendo assim, os principais desafios da ovinocultura são o controle e
tratamento da hemoncose. A administração de anti-helmínticos em doses corretas e em
períodos estratégicos são métodos eficazes para o controle da helmintose no rebanho. Uma
forma de prevenção é a rotação de piquetes. (RADOSTITTS, GAY, BLOOD, HINCHCLIFF,
2000).
O anti-helmíntico ideal, injetável ou oral, é aquele que for eficaz contra todas as
formas do desenvolvimento do parasito, seja larval ou os adultos. Os mais utilizados são o
Albendazol (10 mg/kg VO); Doramectina (0,2 mg/kg IM ou SC); Eprinomectina (0,5 mg/kg
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pour-on); Ivermectina (0,2 mg/kg SC); e Levamisol (5 a 8 mg/kg VO). Deve-se ter atenção,
pois os parasitas podem tornar-se resistentes ao princípio ativo. (CLIMENI, MONTEIRO,
CICOTI, 2008).
4 CONCLUSÃO
No presente trabalho, verificou-se a presença do parasita H. contortus em três ovinos
analisados, correlacionando o exame de FAMACHA, OPG e Sedimentação Natural. De
acordo com os resultados obtidos, concluiu-se que o parasita acomete principalmente os
ovinos que não possuem um controle de prevenção adequado.
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Laboratório de Anatomia Patológica Animal da Universidade Federal de Mato Grosso
do Sul (1996-2010), 2013.
BOWMAN, D.D., Parasitologia Veterinária. 2010
CHAGAS, A. C. S., OLIVEIRA, M. C. S., FERNANDES, L. B., MACHADO, R.,
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CLIMENI, B. S. O. C.; MONTEIRO, M. V.; CICOTI, C.A. HEMONCOSE OVINA, 2008,
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SOUZA, I. G., A ovelha: Manual prático zootécnico, 2005.
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